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1Institute of Neuroscience, University of Oregon

Published 11/07/2014
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Neuroscience

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Summary

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Moore, A. K., Wehr, M. A Guide to In vivo Single-unit Recording from Optogenetically Identified Cortical Inhibitory Interneurons. J. Vis. Exp. (93), e51757, doi:10.3791/51757 (2014).

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Abstract

神経生理学における主要な課題は、大脳皮質に多数の阻害性の細胞型の応答特性および機能を特徴づけることであった。 ここで私たちは、リマと同僚1によって開発された方法を使用して麻酔をかけたマウスの大脳皮質内で識別抑制性介在ニューロンから安定し、十分に単離され、単一ユニット記録を取得するための戦略を共有しています。記録は、特定のニューロンの亜集団にチャネルロドプシン-2(ChR2を)を発現するマウスで行われる。集団のメンバーは、青色光の短いフラッシュに対する反応により同定される。 「PINP」と呼ば、またはニューロン集団の光刺激アシスト識別 - - この技術は、標準的な細胞外記録装置で実現することができる。これは、遺伝的に同定された細胞に細胞外記録を標的とする目的のために、カルシウムイメージングまたは視覚誘導パッチに安価でアクセス可能な代替物として機能することができる。 HERE私たちは毎日の練習方法を最適化するための一連のガイドラインを提供する。我々は、具体的にはパルブアルブミン陽性(PV +)細胞を標的化するための戦略を洗練が、それはそのようなソマトスタチン発現(SOM +)とカルレチニン発現(CR +)介在ニューロンとして、同様に他の介在ニューロンタイプのために働くことを見出した。

Protocol

注:オレゴン大学の動物実験委員会によって承認され、次のプロトコルが健康ガイドラインの国立研究所によるものである。

1.急性手術

  1. 腹腔内(ip)注射した( 表1)を介して、ケタミン-メデトミジンカクテルで動物を麻酔。
    注:これらの実験で使用したマウスは、ドライバ·ライン(; SST-iCre12、SOMの+; CrをiCre12、CR + Pvalb-iCre11、PV +)を介在するCRE依存ChR2を-のeYFPトランスジェニックline10を交配することによって生成されます。 ChR2をまたは関連オプシンのウイルス送達は、同様の発現レベルが得られると仮定して、同様にうまく動作するはずです。
  2. 手術を開始する前に、確実に、動物の展示穏やかつま先のピンチに応答がないという。麻酔のこの深さを維持するために必要に応じて、実験を通して麻酔薬を再投与する。注射用麻酔薬を使用する場合は、必要に応じてメンテナンス注射用のIPカテーテルを埋め込む。
  3. メンテナンス注射( 表1)のために適切に希釈した麻酔薬のカクテルを使用することにより、たとえば、(約3ミリリットル/ kg /時間)、実験を通して生理食塩水または乳酸加リンゲル液で水和動物を保管してください。
  4. 定位や他のヘッド保持装置における動物を置きます。頭蓋骨はよく固定されていることを確認してください。これにより、安定した単一細胞記録を維持するために不可欠である。
  5. 乾燥を防ぐために、目にopthalamic軟膏を適用します。 36.5から37℃の体温を維持する。
  6. 追記安定性のための脳槽ドレーンを実行します。手術用メスの刃を使用して、大槽マグナを露出するために頭蓋骨の後部面から組織を除去する。脳脊髄液を排出する硬膜に小さなニックを作る。刃のごく先端を使用し、小脳や脳幹に接触することは避けてください。
  7. メスを使用して、聴覚のために(対象の皮質領域の上に小さな開頭術(1~2 mm 2で) 行うブレグマの皮質、おおよそ-2.3 mmの後方、正中線の横4.5ミリメートル)。
  8. 硬膜を取り出し、暖かいアガロースの層で0.5さらさ皮質をカバー - 1mm厚を(1.5%アガロース生理食塩水に、0.9%のNaCl;〜37℃で適用されます)。定期的に生理食塩水を数滴を適用することにより、実験を通して湿ったアガロースを保管してください。

2.録画セットアップ

  1. タングステン電極(7〜14MΩ、127ミクロンの直径、12°テーパーチップ、エポキシコーティングされた)を準備します。ガラス毛細管に電極を瞬間接着剤と、グリップ( 図1)のための熱収縮チューブを追加する。
  2. 皮質表面に直交する移動するように設定電動(または油圧)マイクロマニピュレーター上に電極を、マウントします。頭蓋骨に対して、皮膚の下にワイヤー地面をスライドさせます。彼らは筋電図の成果物を生成することができますように頭部の側面と首の後ろに筋肉との接触を避ける。
  3. 細胞外のアンプを用いて電気信号を増幅シングルユニット記録に適したLi FiのERが、好ましくは、インピーダンスチェックモードを装備。 2オシロスコープやパワードスピーカーのセット - 進行中のスパイク活動(5000 Hzのバンドパス300)を監視します。ここで、記録されたデータは、10kHzのサンプリングレートで連続的にデジタル化される。スパイクは、オフラインで抽出される。
  4. 先端が皮質の表面に到達するまで、アガロースを介して電極を進める。顕微鏡でこの手順を守ってください。マイクロマニピュレータ上の "ゼロ"はこの位置。
  5. 最高の記録の深さに近づけるために、視覚的に浸透の終わりに電極を引き出す際に電極先端がゼロの深さで皮質表面を出ることを確認します。
    注:マニピュレータの読み取りと観測された電極位置の間に不一致は、それが組織に比べてドリフトしたことを示しています。これは、脳または動物、またはマニピュレータドリフトの不安定性によって引き起こされ得る。
    1. ことを確実にするための追加のチェックとしてこのゼロ設定点は皮質の表面に対応する、組織の最初の数百メートルを進行しながら、刺激誘発電場電位を監視します。電場電位を監視する場合、10 Hzに細胞外アンプの低い帯域通過フィルタのカットオフを下げます。局所電場電位の極性は層I / IIの国境付近で13、〜100μmの深さを中心に反転させることを確認します。これは聴覚皮質のための信頼性の基準点であるが、それは他の皮質領域のために異なる場合があります。
  6. 手動マイクロマニピュレーター上に青色光源( 図2)に結合された光ファイバをマウントします。顕微鏡を用いて、可能な限り、アガロースの表面に近いファイバの先端を位置決めする。電極が組織に入るビームをセンター。
  7. 指定された幅とduratioのTTL(トランジスタ - トランジスタ論理)パルス列を送達することができる制御ユニットと、光源の出力を調整するn型、例えば、アルドゥイーノ( 図3)、コンピュータI / Oカード(図示のように)、または市販のパルス発生器。
    1. 両方のオシロスコープ上の信号を監視します。
  8. パワーメータを用いた光ファイバの先端に全光パワー出力(mW)を測定する。ファイバコアの断面積で割ることによって放射照度(ミリワット/ mm 2で) 計算するためにこの値を使用します。 10の範囲内の強度値で始まる- 15ミリワット/ mm 2であり、必要に応じて、アーチファクトが除去されるまで、下方向に調整する。
  9. 組織に入るために態勢を整えて、アガロース内の電極、光のアーティファクトを確認してください。検索パルス列を起動します( 例えば、30ミリ秒光パルス、500ミリ秒刺激間間隔(ISI))。
    1. 入射光の角度を変更するために、電極に対する光ファイバを再配置することにより、過渡光アーチファクト( 図4)を除去する。アーティファクトが解決しない場合は、光パワーを減らしてみてください。目の中アーチファクトは、完全に排除することができない電子稀なケース(のみ最小化)、探索パルスの持続時間を延長する。これが本当のニューロンのスパイクを識別するのを助けることができる。

3.ストレートPINPイン」

  1. 約1μm/秒の速度で脳をゆっくり電極を進める。継続的な活動を監視するために、1つのオシロスコープを使用してください。他方では、レーザパルスをオフトリガー。
  2. 電極は、ChR2を+細胞に近づいていることが多い電気信号がオシロスコープ上明らかであるだけでなく前に知覚できることを示しオーディオモニター上に光誘発スパイクのかすかな「ハッシュ」、音を聞きます。前進速度を遅くする。
    注:セルは、電極の経路内に直接にある場合、光誘発活動は大きな(そして大声で)成長します。電極は、単一の介在ニューロンに近づくと、ハッシュは、均一なサイズおよび形状の小さいが明確に定義されたスパイクに解決される。
  3. とすぐにLiなどGHT誘発スパイクは、そうすることを開始、オシロスコープ上で個別のオフを引き起こすのに十分な大きさである。スパイク波形の正確な形状を観察するために横軸にスケーリングを調整します。
  4. 停止し、組織が安定するのを待つ。近いセルに電極を移動する誘惑に抵抗する。このステップでは、安定した記録のために重要である。数分後に、信号対雑音比が改善されない場合 - それは、組織が定着しているが、それは任意に近い電極の先端に細胞を持っていない - 事前さらに5ミクロンおよび再び待つ。
    1. ピークまたは活動電位の谷のいずれかが確実に良くノイズフロア( 例えば、+/- 300μV以上)の上に設定された電圧閾値と捉えることができるまで、このプロセスを繰り返します。
      注:抑制性介在ニューロンをPINPingとき偽陽性または曖昧さの少ないリスクがあります。ほとんどの細胞は、容易に30ミリ秒の持続時間と間PULとのパルス列に従うことができます2-5ミリ秒( 図5)の信頼性のある最初のスパイクレイテンシを持つSE間隔500ミリ秒、またはより速く、。 PV +細胞の大部分は、特に、完全な1秒( 図6)のための焼成に耐えることができます。これらは抑制性ニューロンであるため、disynaptic(間接)活性化は主要な関心事ではありません。
  5. 記録しながら、最初のオシロスコープで継続的な活動を監視する。第二オシロスコープを使用したスパイクの大きさや形状に近い目を離さない。スピーカー上の彼らのサウンドの品質に注意してください。
    1. セルは(それが刺しや損傷危険性がある)は、電極に接近しすぎて描画されるか、または離れて漂流していることを示す急激な変化のために聞き入る。スパイクが大きく歪む場合は、バックアウト。彼らは小さく成長する場合には、電極を進める。 2μmのステップでゆっくりと移動します。
    2. ピークまたは谷に揃え、すべてのスパイク波形を、重ね合わせることにより記録事後の品質を確認してください。電圧THRESを変えるホールド。しきい値の幅広い、しか均一な高さ( 図5a)のいずれかの一貫性のあるスパイク形状があるはずです。
  6. いずれかの時点で信号が隣接ニューロンからのスパイクで汚れた場合は、上に移動します。電極は、隣接セルの範囲外に渡すが、標的ニューロンの範囲内に残ることをオフのチャンスに、ゆっくりと進める。 (これは通常、成功しません。)
  7. 各浸透皮質の深さ全体(900 +μm)を介して電極を移動します。何光応答性ニューロンは逆に、記録は日常の隣接ChR2-細胞からのスパイクで汚染されている多くの侵入や、後に遭遇されていない場合は、新しい電極を試してみてください。
    注:でも、単一のバッチ内で、個別電極のインピーダンスと先端形状がかなり変化することができます。両方の要因は、WH-光誘発スパイクを検出するのに十分な大きさでなければならない電極の有効」を聞い半径」に貢献Ileの検索は、まだ単独での単一ニューロン記録を可能にするために十分な制限された。
  8. 必要に応じて、電極のインピーダンスをテストします。組織の損傷を避けるため、よく脳の外側に、アガロース層の上部に電極の先端でこれを行う。 7-14MΩの範囲内で、正確なインピーダンスは、このアプリケーションの性能、歩留まりの予測を確認し、ない。とは言う、それは半径を聴くための合理的なプロキシです:低インピーダンス電極は、より多くのユニットを拾う。高インピーダンス、少ない。
  9. 実験の最後に、そのような麻酔薬の過剰投与、または麻酔の深い面下に頸椎脱臼などの制度的認定の手段により動物を安楽死させる。

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Representative Results

ここでは、「リマ 1。 表1の詳細を示唆麻酔カクテル、ケタミン-メデトミジン-アセプロマジンを(によって開発された光遺伝学的方法を使用して、麻酔したマウス皮質で遺伝的に分類された抑制性介在からシングルユニット記録を取得するための我々の戦略を共有するKMA」)。 図1は、4図3は、Arduinoのマイクロコントローラと光出力をゲーティングするための構成およびコードが含まれている。図2は、単純なLED制御ユニットの回路図を含んでいる 。記録のために調製したタングステン微小電極を示している例を示している議定書で論じ光誘起電気アーティファクト。アーティファクトは時折(左パネル)に遭遇するが、容易に補正(右パネル)。 図5は、光学的に同定された介在ニューロン(太陽光発電+、CR +、およびSOM +)の3つのタイプから例の記録を示している。左PAネルは、この戦略では得ることが期待できる生の電圧トレースと整列波形、信号対雑音比の1の種類の代表を示している。スパイクは確実に数百マイクロボルトの固定電圧閾値とキャプチャされます。ラスタープロット(右パネル)にChR2陽性ニューロンの明確な同定を可能にする光誘発反応、短い待ち時間と信頼性を示している。 図6図 1秒光パルスに応答して、3のPV +介在ニューロンからのトレースを電圧。 PV +細胞の大多数は、数百ミリ秒のために発射それらを特に容易に識別することは、高周波を維持することができる。

図1
図1.電極を準備する  (A)準備された電極の図。電極はアッフィです2つのスーパー接着剤の小滴と(例えば、ZAP-このような)促進剤の最小量を使用して、ガラス毛細管にXED。熱収縮チューブは、非常に低い熱を使用して、グリップのために添加される。電極は、通常、電極ホルダに装着され準備されたタングステン微小電極のコネクタピン事前に添付。(B)の写真に同梱されている。

図2
図2。 LED制御ユニットの回路図である 光送達のための簡単で安価な回路。超高輝度LED(475 nm)は、ヒートシンクに取り付けられ、光ファイバケーブル(800ミクロン直径)の他端に連結されている。 LEDの出力は、TTLパルスでゲートされる。制御ユニットは、調整可能な光強度を電圧モード電源を内蔵している。 2K POT:光の強度を制御するためのポテンショメータ。 P /秒:DC電源サップ LY( 例えば 、ラップトップ充電器)。ヒント122:ダーリントントランジスタ。 4N35:光アイソレータ。ここに記載されている部品は、<10ドルかかります。

図3
図3。 Arduinoのコードと構成。光出力をゲーティングするためのTTLパルス列は、Arduinoのマイクロコントローラを使用して生成することができる。プログラムがループするパルス列用のパルス持続時間とISIを指定します。ボード上にプログラムをロードするための手順については、Arduinoののページ(「はじめに」に記載されていますhttp://arduino.cc/en/Guide/HomePage )。 この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。

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。図4.ライトアーティファクト金属電極が開始パルスのオフセット( - 5000 Hzのフィルタされた信号、300左パネル)に存在する光のアーティファクトの影響を受けやすい。それらは、通常、入射光の角度を変更するために電極に、光ファイバの相対的な再配置、および/または光パワーを低下させることによって(右パネル)を完全に除去することができる。

図5
5例のセルを図。 (A)光学的に識別されたニューロン、PV +(紫)、CR +(緑)、SOM用+(赤)からの代表的な例レコーディング。細胞は、探索パルストレインにスパイクの信頼性がバーストした(パルス持続時間30ミリ秒、ISI 500 ms)を応答します。右側のパネルには、100トラフ整列スパイクを示しており、平均補間された波形(10 kHzのサンプリングレートからオーバーサンプリングされた10倍)、(B)は 、同じファイルのラスタープロットを短い待ち時間を示している。。(〜2から5ミリ秒)と光誘発スパイクの一貫性のある時期を、(C)平均および最初のスパイクレイテンシの標準偏差- 44 PV +介在ニューロン(平均平均と標準偏差:3.4 +/- 2.6ミリ秒)のサンプル(5〜10パルス)。 この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。

図6
図持続的応答の6例 、それらの大半は数百ミリ秒のための焼成は、高周波を維持することができるように、1つは、PV +介在ニューロンを同定する際に特に自信を持つことができる- 現在までそれらの応答を彷彿とさせる試験管 14 注射。 1秒の光パルスに応答する三つのChR2 / PVセル:パルスの全期間を通じて、定期的に発射二つとないセルの一例を、異常な(<遭遇した細胞の10%)。

1。ケタミン-メデトミジン-アセプロマジン(「KMA」)は。ノックダウンの水和を維持するために、希釈された成体マウス、および維持用量を。必要に応じて、90分 - カクテルは、再投与ごとに40である。

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Discussion

PINPは、概念的には簡単であるが、それは実際に挑戦することができます。成功の主要な決定は、電極の選択である。電気リスニング半径は重要なパラメータである。それは1つがそれに応じて前進速度を調整できるように、先端が、少し離れChR2を+細胞からまだあるときに光誘発スパイクを検出するのに十分な大きさでなければならない。同時に、それは優れた単体分離を可能にするために十分に制限されなければならない。つまり、電極も隣接ChR2-ユニットからのスパイクを拾うしてはならない、である。リスニング半径の点で適切なバランスを打つことは、任意の標的細胞型のために挑戦することができるが、それは比較的大きな外を有し、疎小さく、多くの場合、細胞をピラミッドのすぐ近くで発見され、阻害介在ニューロン、のために特に当てはまるであろうスパイク。ここでも示唆戦略を用いて、予想される収率は高くない。私たちの典型的な収量は、私たちのcriter与えられ、0-2のPV +ニューロン/動物だった優れた単一ユニットの分離時間半にわたり持続録音のIA。

抑制性ニューロンをPINPingとき抑制性神経細胞は、間接的にシナプス後細胞を活性化することが比較的にくいので、disynaptic(間接)の活性化は、主要な関心事ではありません。興奮性ニューロンをPINPingために、disynaptic活性化が一般的です。光に反応して発火、多くのニューロンがChR2を表現ではなく、やるものから強力なシナプス励起を受け取りません。間接的に活性化されたニューロンからdirectly-を識別するための戦略がリマに詳細に議論される。1。

電極の考慮事項

異なるサイズのチップを備えたガラスパッチピペットは、インピーダンスと先端幾何学的に変化タングステン微小電極、及びマルチチャンネル配列( 例えば 、tetrodes):我々は、系統的に、電極と記録、様々な技術を検討した。角度、高インピーダンスのタングステン微小電極(ここで示唆したように)、これまでで、最高の収量を与えた。これらの技術のそれぞれで発生する問題の議論は以下の通りである。

低インピーダンス四極アレイとマルチチャンネル·プローブを使用して、我々は日常的に光誘発スパイクを検出し、しかし、彼らは確実にソートするのに十分な稀大きかった。換言すれば、信号対雑音比(SNR)が不十分であった。私たちは、時折tetrodes優れた録音を手に入れたが、漸近的収率は、単一のタングステン微小電極と高かった、と録音の質は非常に良好であった。四極ヒントは動物当たりの可能な貫通の合計数を制限されているだけでなく、比較的鈍いです。我々は、マルチチャンネルプローブで発生した問題は、おそらく広い表面照射の使用によって悪化した。移植されたファイバからの目標と、低消費電力の刺激とは異なり、表面照明が重畳されたスパイク波形につながる、記録部位を超えてChR2を+ニューロンにおける同期発火の原因となりますソートするのがより困難であること。

標準の緩いセル接続記録のために使用されているもの、また、タスクに適していなかったなどが挙げられるが、さまざまな理由のためのガラスパッチ電極、。低抵抗(<5MΩ)パッチ電極が強く、それが困難な抑制性介在ニューロンを標的とするようになっている、錐体細胞に向かって付勢されている。これは、より高い抵抗(より小さいチップ)電極を使用することによってある程度補正することができる一方で、パッチ電極との大き​​な問題は、非常に制限されたリスニング半径である。セルに接続されたパッチの記録が非常に高いSNRを提供するが、光応答性細胞は、細胞付着したモードの外で検出することができない。パッチ電極との戦略は、ランダムに順次ChR2を発現する抑制性介在ニューロンである非常に少数のそれらのセルに接続された記録を得るために、必然的に、である。

一つができる高インピーダンスタングステン電極と両方の距離からの光誘発スパイクを検出し、優れた単体分離を実現。先端部の形状は、おそらく最も重要な因子である。 5-12°から14MΩ、先端の角度 - 私たちは2に至るまでのインピーダンスと、2メーカーからタングステン電極を試してみました。 14MΩ - 私たちは12°、先端角が優れていたが、正確なインピーダンスが7の範囲内で、それほど重要であったことがわかった。私たちは、ガラス被覆電極はエポキシコーティングされた電極に比べて光のアーティファクトの影響をより受けやすいことを発見したので、我々は後者をお勧めします。我々は独自のカスタム·タングステン電極を作るしようとしませんでした。電極の任意のタイプと同様に、失敗の一般的なモードは、絶縁を失うか、ニューロンを傷害することである。異なるチップのパラメータは、この上で大きな影響を持っているようには見えない。むしろ、組織が安定するのを待って、高品質の記録を維持する上でより重要な因子である。

光送達

光のみが使用されるため、よりむしろ特異的な様式で、それらの出力を調節する - - saがChR2を陽性細胞の同定を意味し、この実験のために使用可能な強度の範囲が広い。下限は強度が関心のあるセルの最大深さにChR2陽性細胞を活性化するのに十分でなければならないという事実によって設定される。我々は、その先端放射照度> 5ミリワットの/ mm 2脳が哺乳動物での直接測定に基づいて計算機を用いて推定することができる内の特定の深さで、深い層6に放射照度を強固なPVからの応答+細胞を誘発するのに十分であった(470 nmで測定)を求める脳組織( 例えば、 http://www.stanford.edu/group/dlab/cgi-bin/graph/chart.php )が、我々は強く1(低インピーダンス微小電極を使用して、経験的に、独自の実験のための最小値を決定するお勧めします - マルチユニット活動のため3MΩ、)。上限は事実によって設定され、高INTENsitiesは誘発スパイクの検出を複雑にする可能性が光のアーティファクトを引き起こす可能性があります。トランスジェニック動物では、高強度にも首と頭の上にさらさPV +筋肉内にChR2を活性化することにより、筋電図アーチファクトを引き起こす可能性があります。

当社独自の光配信システムを構築し、当社は光ファイバにLEDカップリング脳の上に直接LEDを配置することよりも、最終的にはより便利であることがわかった。後者は光を供給するための非常に効果的な方法であるが、いくつかの実用的な欠点を有している。素子に流れる電流をシールドする必要があり、電気的アーチファクトを生成し、LEDは大型のヒートシンクで放熱されなければならないかなりの熱を発生する。また、(太陽光発電や筋電図の両方)光アーティファクトがはるかに困難LEDの広い照明パターンを制御するのである。ファイバ結合は、これらの問題のすべてを解決します。

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Materials

KMA(20.0ミリリットル)
100mgを2mlの/ mlのケタミン(10 mg / mlの一回希釈された)
0.4ミリリットルの1mg / mlのDexdomitor(メデトミジン、0.02 mg / mlで、一回希釈された)のは
100 mgの0.05 / mlのアセプロマジン(0.25 mg / mlの一回希釈)
0.9%食塩水の17.55ミリリットル
投与量、成体マウス(15〜40グラム)
ノックダウン:0.012ミリリットル/ gの*ボディ·マス(ケタミン= 120 mg / kgを)
メンテナンス:0.0025ミリリットル/ gの*ボディ·マス(ケタミン= 25mg / kgの)
Name Company Catalog Number Comments
ChR2-EYFP Line Jackson Colonies 12569
Pvalb-iCre (PV) Line Jackson Colonies 8069
Sst-iCre (SOM) Line Jackson Colonies 13044
Cr-iCre (CR) Line Jackson Colonies 10774
Agarose Sigma-Aldrich A9793 Type III-A, High EEO
Micro Point (dural hook) FST 10066-15
Surgical Scissors FST 14084-09
Scalpel FST 10003-12 (handle), 10011-00 (blades)
Puralube Ophthalmic Ointment Foster & Smith 9N-76855
Homeothermic Blanket Harvard Apparatus 507220F
Tungsten Microelectrodes A-M Systems 577200 12 MΩ AC resistance, 127 μm diameter, 12° tapered tip, epoxy-coated
Capillary Glass Tubing Warner Instruments G150TF-3
Heat Shrink Tubing DigiKey A332B-4-ND
Zapit Accelerator DVA SKU ZA/ZAA Use with standard Super Glue. 
Microelectrode AC Amplifier 1800 AM Systems 700000
MP-285 Motorized Micromanipulator Sutter MP-285
4-channel Digital Oscilloscopes Tektronix TDS2000C
Powered Speakers Harman Model JBL Duet
Manual Manipulator Scientifica LBM-7
800 µm Fiber Optic Patch Cable ThorLabs FC/PC BFL37-800
Power Meter ThorLabs PM100D (Power Meter), S121C (Standard Power Sensor)
475 nm Cree XLamp XP-E DigiKey XPEBLU-L1-R250-00Y01DKR-ND LED power and efficiency are continually increasing, so we recommend checking for the latest products (www.cree.com).
Arduino UNO DigiKey 1050-1024-ND

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References

  1. Lima, S. Q., Hromadka, T., Znamenskiy, P., Zador, A. M. PINP: a new method of tagging neuronal populations for identification during in vivo electrophysiological recording. PLoS One. 4, (2009).
  2. Moore, A. K., Wehr, M. Parvalbumin-expressing inhibitory interneurons in auditory cortex are well-tuned for frequency. J Neurosci. 33, 13713-13723 (2013).
  3. Merchant, H., de Lafuente, V., Pena-Ortega, F., Larriva-Sahd, J. Functional impact of interneuronal inhibition in the cerebral cortex of behaving animals. Prog Neurobiol. 99, 163-178 (2012).
  4. Markram, H., et al. Interneurons of the neocortical inhibitory system. Nat Rev Neurosci. 5, 793-807 (2004).
  5. Atallah, B. V., Bruns, W., Carandini, M., Scanziani, M. Parvalbumin-expressing interneurons linearly transform cortical responses to visual stimuli. Neuron. 73, 159-170 (2012).
  6. Wilson, N. R., Runyan, C. A., Wang, F. L., Sur, M. Division and subtraction by distinct cortical inhibitory networks in vivo. Nature. 488, 343-348 (2012).
  7. Letzkus, J. J., et al. A disinhibitory microcircuit for associative fear learning in the auditory cortex. Nature. 480, 331-335 (2011).
  8. Pi, H. J., et al. Cortical interneurons that specialize in disinhibitory control. Nature. 503, 521-524 (2013).
  9. Adesnik, H., Bruns, W., Taniguchi, H., Huang, Z. J., Scanziani, M. A neural circuit for spatial summation in visual cortex. Nature. 490, 226-231 (2012).
  10. Madisen, L., et al. A toolbox of Cre-dependent optogenetic transgenic mice for light-induced activation and silencing. Nat Neurosci. 15, 793-802 (2012).
  11. Hippenmeyer, S., et al. A developmental switch in the response of DRG neurons to ETS transcription factor signaling. PLoS Biol. 3, 159 (2005).
  12. Taniguchi, H., et al. A resource of Cre driver lines for genetic targeting of GABAergic neurons in cerebral cortex. Neuron. 71, 995-1013 (2011).
  13. Christianson, G. B., Sahani, M., Linden, J. F. Depth-dependent temporal response properties in core auditory cortex. J Neurosci. 31, 12837-12848 (2011).
  14. Povysheva, N. V., Zaitsev, A. V., Gonzalez-Burgos, G., Lewis, D. A. Electrophysiological heterogeneity of fast-spiking interneurons: chandelier versus basket cells. PLoS One. 8, 70553 (2013).

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