Обонятельных нейронов, полученных с помощью носовой биопсии в сочетании с лазерной съемки микродиссекции: возможный подход к исследуемым препаратом ответ психических расстройств

Neuroscience

Your institution must subscribe to JoVE's Neuroscience section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

Welcome!

Enter your email below to get your free 10 minute trial to JoVE!





We use/store this info to ensure you have proper access and that your account is secure. We may use this info to send you notifications about your account, your institutional access, and/or other related products. To learn more about our GDPR policies click here.

If you want more info regarding data storage, please contact gdpr@jove.com.

 

Summary

В этом исследовании, роман платформа для расследования внутринейрональную молекулярные подписи ответа на лечение биполярного расстройства (BD) была разработана и утверждена. Обонятельный эпителий от пациентов BD был получен с помощью назальных биоптатов. Тогда лазерного захвата микродиссекции сочетается с реальным временем ПЦР для исследования молекулярной подписи ответ лития в БД.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Narayan, S., McLean, C., Sawa, A., Lin, S. Y., Rai, N., Hipolito, M. S., Cascella, N., Nurnberger, Jr., J. J., Ishizuka, K., Nwulia, E. A. Olfactory Neurons Obtained through Nasal Biopsy Combined with Laser-Capture Microdissection: A Potential Approach to Study Treatment Response in Mental Disorders. J. Vis. Exp. (94), e51853, doi:10.3791/51853 (2014).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Биполярное расстройство (BD) является серьезным психоневрологических расстройств, с плохо понимал патофизиологии и обычно обрабатывают с стабилизатором настроения, карбонат лития. Исследования на животных, а также генетические исследования человека показывают, что литий влияет молекулярные мишени, которые участвуют в нейронной роста, выживания и созревания, и, в частности молекул, участвующих в Wnt сигнализации. Учитывая этической проблемой для получения биопсии мозга для исследования динамических молекулярных изменений, связанных с литий-ответ в центральной нервной системе (ЦНС), можно рассмотреть возможность использования нейронов, полученных из обонятельных тканях для достижения этой цели goal.The обонятельный эпителий содержит обонятельные нейроны рецептора на разных стадиях развития и глиальных как опорных клеток. Это дает уникальную возможность для изучения динамических изменений в ЦНС у больных с нервно-заболеваний, используя обонятельный ткани безопасно, полученную из носовых биопсии. Чтобы преодолеть недостаток, исходящей от SUBSTantial загрязнение биопсию ткани обонятельной с не-нейрональных клеток, новый подход, чтобы получить обогащенные популяции нейрональных клеток был разработан путем объединения носовые биопсии с лазерным захвата микродиссекции. В этом исследовании, система расследования связанный с лечением, динамические молекулярные изменения в нервной ткани была разработана и утверждена, с помощью небольшой опытный образец пациентов BD, набранных для исследования молекулярных механизмов ответа на лечение литием.

Introduction

Биполярное расстройство (BD) является серьезным психоневрологических расстройств, характеризующихся патологическим изменениям в настроении, драйв и познание 1. Литий используется для лечения BD было показано, чтобы изменить состояние стабильный уровень мРНК большого числа генов в исследованиях на животных 2, но остается неизвестным, если любой из этих молекул связана с клинической реакции в организме человека 2. Понимание механизма ответа лития потребует расследования литий-индуцированной молекулярные изменения в нервных тканях. К сожалению, это не практично, чтобы получить мозга биопсии пациентов BD пред- и пост-литиевой терапии для определения молекулярных подписей ответ лития. Посмертный ткани мозга были использованы для изучения биомаркеров в БД, однако, они не могут быть использованы для оценки молекулярных маркеров, связанных с динамическими изменениями в эмоциях, познания и управлять; и действия ретроспективно констатировали ответа на лечение лития может быть проблематичным 4, Лимфоциты и другие клетки крови могут быть полезны, но молекулярные изменения в клетках крови может не отражать нейронов изменения 3-5. Спинномозговой жидкости может быть недостаточным для получения информации о внутриклеточных молекул, которые могут отражать, ассоциированных с заболеваниями и лекарства обратимым внутренние изменения.

Обонятельный эпителий (OE) является уникальной частью центральной нервной системы (ЦНС), эмбриологически связанных с лимбических структурах 6; и это легко доступны через носовые биопсии. Он состоит из глиальных типа поддержки (т.е. sustentacular) клетки, базальные пролиферирующих клеток, и обонятельные нейроны рецептора на разных стадиях развития 7-9. Таким образом, OE предоставляет уникальную возможность доступно исследования динамических изменений в ЦНС у больных с нервно-заболеваний 7. Исследования демонстрируют полезность OE в качестве суррогатной ткани для исследования болезней, связанных события, которые отражают эти ОККurring мозговых нейронов 8,9. Например, исследования использовали OE исследовать молекулярные профили, которые связаны с психическими заболеваниями 10-14. Обонятельная система также служит для идентификации клинических endophenoytpes, такие как дефицит запах, которые ассоциируются с негативными симптомами шизофрении 15. Кроме того, с развитием нервной системы процессы продолжают в OE в течение всей жизни, обеспечивая полезный форум для моделирования патофизиологии психических расстройств 8,9.

Однако недостатком в использовании этой ткани является значительное загрязнение обонятельные биопсии с не-нейрональных клеток 16. Например, общая РНК использовали для исследования экспрессии генов в предыдущих исследованиях OE содержится РНК, выделенной из всей носовой биопсию ткани, включая РНК из не-нейрональных клетках 17. Таким образом, предыдущие подходы были ограничены качества клеток. Чтобы преодолеть эту проблему, новый подход, чтобы получить обогащенные популяции нейрональных клеток путем объединения носовые биопсии с лазерной захвата микродиссекции (LCM) была разработана 18.

LCM является метод, который позволяет для селективного выделения клеток с использованием УФ лазерной резки в сочетании с инфракрасной лазерной 19-21. Сочетание МДК с OE подход минимизирует загрязнение значительное OE не-нейрональных клеток, тем самым повышая обогащение нейрональных клеток 18. Кроме того, слой нейронов можно отличить от подслизистой слоя под микроскопом, тем самым устраняя необходимость в окрашивании. Нейронные клеточные типы дополнительно можно отличить от других клеточных популяций с использованием первичных антител, которые выражены по типу клеток, представляющих интерес 7. Таким образом, эта процедура устанавливает легкий способ для обогащения почти исключительно нейронов популяции клеток, которые могут быть использованы для исследований экспрессии генов, иммуногистохимии и других морфологических исследований.

ve_content "> Это исследование направлено создать экспериментальную площадку для расследования молекулярные изменения в обонятельных нейронов, связанных с болезненными состояниями и реакции на лечение. Для решения этой проблемы, небольшой набор пациентов для некурящих, которые имели диагностические критерии DSM-IV для BD на основе диагностическое интервью для генетических исследований (DIG) 22 был принят на работу пройти два носовых биопсии: один биопсия предварительная обработка с литием и второй биопсии, после 6 недель ежедневного перорального лечения лития Кроме того, исследование включали больных BD должны быть:. симптоматично для депрессии на основе забил ≥10 из 60 в клинициста в ведении Монтгомери-Asberg Rating Scale (MADRS) 23; симптоматический гипомании или мании, на основе баллов ≥10 из 56 на врача в ведении Young-Mania Rating Scale (YMRS) 24;. или ≥10 на обоих MADRS и YMRS коэффициента Rater Интер-Rater соглашения между клиницистами для обеих шкал> 0,96 После биопсии, нейроны ENRI.Чед от ОЕ по LCM. После дополнительных мер по контролю качества, чтобы обеспечить добычу высокого качества РНК из тканей и нейронов обогащения, в режиме реального времени RT ПЦР проведено расследование до и экспрессии после лечения уровни генов, представляющих интерес. Последующие разделы содержат описание проверки этого подхода, подчеркивая оптимизации протокола и стратегии, которые были применены для поиска и устранения неисправностей протокола.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

ПРИМЕЧАНИЕ: Все исследовательские добровольцев в этом исследовании, были введены обоснованные документы согласия, утвержденные ведомственного комитета Говарда университет и Университета Джонса Хопкинса. Только те участники, кто согласился на подписание документов обоснованного согласия были включены в исследование. База исследования для этого анализа состояла из: 20 предметам (12 BD и 10 управления, 30% мужчин) и средний возраст (стандартное отклонение) 38,2 (14,1) лет.
ПРИМЕЧАНИЕ: Спрей все поверхности с РНКазы Зап удалить РНКазы загрязнения из стеклянных и пластиковых поверхностей.

1. Биопсия Процедура

  1. Спрей для местного лидокаина (Xylocaine) жидкости 4% и оксиметазолин HCl 0,05% в носовой полости участника исследования и позволить 15 минут от онемение времени.
  2. Замачивание ½ дюйма х 3 хирургических cottonoids в смеси лидокаина и оксиметазолина и вставить в полость носа по превосходной части носовой перегородки и позволить, чтобы сидеть в течение 15 мин.
  3. Использование 30 ° жесткойносовой эндоскоп, чтобы найти верхнюю часть носовой полости, удаления слизистой оболочки носа, используя до грызть носовые щипцы от верхнего участка носовой перегородки, принимая несколько небольших образцов.

2. Получение блоки ткани

  1. Непосредственно перед биопсией заполнить стандартного размера cryomolds с замораживания тканей среду.
  2. Использование автоклавного пинцет, установите свежий ткани в морозильной среды и заморозить на сухом льду. Заполните оставшуюся часть cryoblock с морозильной среде, заморозить cryoblock на сухом льду, и хранить блоки в -80ºC.

3. Cryosectioning

  1. Подготовка полиэтиленнафталат (PEN) мембрана стеклянные пластинки непосредственно перед cryosectioning. Спрей слайды с РНКазы Зап раствора в течение 5 мин. Затем промыть слайдов в диэтилпирокарбонатом (DEPC) водой и дайте высохнуть на воздухе в течение 30 мин. Активируйте сушеные слайды под ультрафиолетовым светом в течение 30 минут.
  2. Cryosection каждый блок полностью на 30 мкм. Держите слайды на сухом IСе и замороженных срезах, насколько это возможно. Храните слайды при температуре -80 ° С после завершения.

4. Лазерная Захват микродиссекция

  1. Начните путем дегидратации слайды непосредственно перед микродиссекции. Пусть замороженные горки таять в течение 10 сек, а затем применить следующую серию этанола к каждому слайду: 60% (2 мл, 15 сек), 80% (2 мл, 15 сек), 95% (3 мл, 25 сек), 100 % (7 мл, 60 сек).
  2. Включите фотоактивированные локализации микроскопии (PALM) микроскоп и установлен на следующих условиях: Для 10-кратным увеличением установленной энергию 82, сосредоточиться на 74 и скорость до 25 - 30 Для 20-кратным увеличением, установить энергию 63, сосредоточиться на 67, и скорость 5 - 6. При необходимости отрегулируйте, чтобы получить оптимальные результаты при резке.
  3. Визуально определить нейронов использованием 20X или 10-кратным увеличением. Различают тонкий поверхностный слой нейронов обонятельной от базовой суб-слизистой оболочки под микроскопом без использования процедуры окрашивания. Соблюдайте нейронов в виде плотного столбчатого появления 18.
  4. Использование функции карандашом в вышеупомянутой микроскопом в шаге 4.2, следов вокруг нейронов слоя. Проследите немного в стороне от нейронов, чтобы предотвратить сжигание нейронов лазера. Это очень важно для получения высокого качества РНК. Тогда начать с лазерным наведением резки.
  5. Возьмите расчлененные участки с помощью тоненького кончика микродиссекции щипцы и положил ткань в микропробирку, содержащей 100 мкл буфера для лизиса на льду. Повторите эти действия для всех нейронов полученных сечений из одного образца. Общее время рассечение на образец не должен превышать 50 мин.
  6. После рассечения завершена, немедленно образца лизаты вихревые и держать в сухом льду. Магазин образцы при -80ºC для полной изоляции РНК.

5. Выделение тотальной РНК и анализ качества управления

  1. Оттепель образцы лизатов на льду. Провести полную изоляцию РНК с RNAqueous Micro Kit с ДНКазы I инактивации в соответствии с протоколом производителя без каких-либо модификаций (см <STRONG> Рисунок 1). Общий объем элюирования составляет примерно 20 мкл.
  2. Измерьте концентрацию РНК и оценить качество РНК с РНК целостности номер (РИН) с помощью Bioanalyzer. Образцы, которые соответствуют критериям контроля качества на рис 2 может быть использован для синтеза кДНК.

6. Синтез кДНК

  1. Синтеза кДНК с использованием утвержденной коммерческого набора (табл реагентов). Выполнение этапа отжига путем объединения 0,1 - 1,0 нг РНК (в зависимости от наличия) и РНКазы свободной воды до общего объема 8 мкл на пробирку. Затем добавить 1 мкл олиго D (T) 20 праймера и 1 мкл 10 мМ дНТФ смеси в трубе, при общем объеме 10 мкл.
  2. Мягко вихревые и центробежные образцы и образцы отжиг при 65 ° С в течение 5 мин. После завершения реакции, немедленно охладите образцы на льду.
  3. Подготовка главное решение смеси в соответствии со спецификациями в таблице 1. Затем добавить 9,5 μл Master Mix и 0,5 мкл коммерчески готов обратной транскриптазы (RT) в каждую пробирку. Добавить 0,5 мкл РНКазы воду, чтобы достать трубку вместо РТ.
  4. Запуск реакции RT с первой инкубации при 50 ° С в течение 50 мин, затем 85 ° С в течение 5 мин и окончательного удержания 4 ºC, без езды на велосипеде.
  5. Развести все образцы от 5х водой и аликвоту. Магазин образцы при -80 ° С.

7. ПЦР в реальном времени - Подтвердите нейронных обогащение

  1. Приготовьте раствор Master Mix в соответствии с требованиями в таблице 2. Используйте внутренний контроль, например, GAPDH. Сравните обонятельный маркер белка (OMP) выражение в микродиссекции ткани с ОМП выражения в undissected ткани, чтобы определить нейронов обогащения.
    ПРИМЕЧАНИЕ: OMP является маркером для обонятельных нейронов.
    OMP последовательность: вперед, 5'-CTGTCGGACCTGGCCAAG-3 "
    реверс, 5'-CACCCTCGCCAAAGGTGA-3 '
    GAPDH последовательность: вперед, 5'-CATGAGAAGTATGACAACAGCCT-3 "
    реверс, 5'-AGTCCTTCCACGATACCAAAGT-3 '.
  2. Настройка ПЦР планшета, добавив 7 мкл мастер смеси в каждую лунку и 3 мкл кДНК.
  3. Центрифуга пластины в течение 5 мин при 300 мкг (1300 оборотов в минуту). Реакция Run Real Time ПЦР с использованием тепловых условий на велосипеде по умолчанию, указанные для коммерческого Supermix такие как SYBR зеленее кПЦР.
  4. Анализ данных (рис 2 по характеристикам).

8. ПЦР в реальном времени - экспрессии генов интересов

  1. Выполните на образцах, которые показывают нейронов обогащение 2 раза или больше.
  2. Подготовка мастер-микс на льду в течение каждого зонда (FAM-меченного зонда интересов и VIC-меченого GAPDH) в отдельные пробирки в соответствии со спецификациями в таблице 3.
  3. Настройка ПЦР планшета с 8 мкл смеси мастер-микс в каждую лунку и 2 мкл кДНК.
  4. Центрифуга пластины в течение 5 мин при 300 мкг (1300 оборотов в минуту). Запуск Real реакцию Time-ПЦР с использованием ЗащитуAult тепловые условия езды на велосипеде как на экспрессию генов протокола Master Mix, предоставленной производителем. Анализ результатов экспрессии (рис 2 по характеристикам).

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Стратегия протокол и устранение неполадок в изучении молекулярных подписей были успешно оптимизированы. Качество РНК и нейронные критерии обогащения проб, которые будут использоваться в дальнейшем вниз по течению Real-временной анализ ПЦР были стандартизированы. Рин и концентрация РНК рассматривается как сопутствующих факторов, чтобы обнаруженные уровни экспрессии. На основе анализа нескольких образцов с RINS в пределах от 1 - 10, было определено, что минимальное RIN из ~ 3,0 и выше, достаточно для нисходящего анализа в данном исследовании. В результате, количество РНК для синтеза кДНК был стандартизирован в 1,0 нг. Таким образом, высококачественные образцы с РИН выше ~ 3,0 и РНК количество 1,0 нг были преобразованы в кДНК. Образцы с 0,1 - 1,0 нг РНК могут быть использованы, если адекватный размер выборки трудно получить.

Нейронов обогащение было подтверждено с помощью реального анализа времени PCR. OMP уровни экспрессии гена в образцах микродиссекции сравнению с теми, в undissected образцадля того чтобы определить, если нейронов слой, обогащенный. Образцы микродиссекции с двумя раскладными или более выражения ОМП по сравнению с не-расчлененный ткани используются.

Поэтому, применяя эти критерии, технико-экономическое обоснование этого предлагаемого подхода для изучения молекулярных изменений в OE нейронов была подтверждена. Рисунок 3 показывает, что уровни экспрессии GSK-3β страдают от литий, а не неспецифических экзогенных факторов, указывая, что эта методология Достаточно, чтобы обнаружить специфические молекулярные изменения до и после лечения лития. В частности, изменения молекулярных подписей, связанных с ответом на лечение литий в БД могут быть решены путем объединения этой молекулярной данные с клиническими данными.

Рисунок 1
Рисунок 1. Экстракция РНК и ДНКазы Инактивация протокол. Flowcharт иллюстрирует процедуру экстракции РНК из образцов после LCM. Общую РНК элюируют два раза, чтобы получить максимальный объем РНК приблизительно 20 мкл. Элюированные Затем образцы подвергаются ДНКазы I лечение ДНКазы инактивации. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этой цифры.

Фиг.2
Рисунок 2. Протокол Резюме. Эта цифра суммирует весь протокол для экспериментов исследования. Носовые ткани сначала биопсию и замораживают, как cryoblocks. После секционирования ткани, нейронные слои расчленены с помощью НОК. Выделение РНК и ДНКазы Инактивация выполняются с помощью руководства изготовителя (см рис 1). Образцы, которые соответствуют критериям контроля качества (Рин и количество РНК) используются для синтеза кДНК и насизд нейронов анализа по обогащению урана. Обогащенные образцы используются в режиме реального времени анализа ПЦР с желаемой цели. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этой цифры.

Рисунок 3
Рисунок 3. GSK-3β Экспрессия в BD и контрольных проб. Эта цифра показывает изменения в ГСК-3β уровней экспрессии в образцах BD до и после лечения лития и последовательность в ГСК-3β уровней экспрессии в контрольных образцах между первой и второй биопсии. Взятые вместе, эти данные показывают, что экспрессия GSK-3β зависит от лития, а не неспецифических экзогенных факторов.

Реагенты Объем
10 х RT буфера 2 мкл
25 мМ MgCl 4 мкл
0,1 М DDT 2 мкл
РНКазы Out 0,5 мкл
SuperScript III 0,5 мкл
РНКазы свободной воды 1 мкл

Таблица 1. Синтез кДНК Мастер Mix Решение.

Реагенты x1 х (# выборок)
ДНК-матрицы 3 мкл -
SYBR Green 5 мкл
Грунтовка Mix 0,8 мкл
Вода 1,2 мкл
Общий 10 мкл -

Таблица 2. ПЦР нейронов Обогащение Мастер Mix Решение.

Реагенты x1 х (# выборок / грунтовки)
dWater 2 мкл
Мастер Mix 5 мкл
FAM меченым зондом 0,1 мкл
VIC меченым зондом 0,5 мкл
кДНК 2 мкл -

Таблица 3. Целевая ПЦР Master Mix.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Новая платформа для получения обогащенного обонятельные нервные слоев путем объединения носа биопсии и НОК представлена ​​и была утверждена в данном исследовании. Этот метод может иметь широкие последствия. Он может быть применен к биомаркеров исследований, в том числе ответ на лечение, и усилия обнаружения наркотиков для других психоневрологических расстройств, что делает более широкое воздействие в этой области.

Для получения высокого качества нейроны поддающиеся последующих применений, необходимо отметить, несколько критических и устранению неисправностей. Во-первых, получить 4 - 6 штук обонятельной ткани на одного пациента иметь достаточный размер выборки. Во-вторых, так как образцы подвержены деградации РНК, сохранить ткани при соответствующих температурах, работать с РНКазой свободного оборудования и поверхностей, использование перчаток, и избегать вдыхания непосредственно над образцами. Если качество РНК остается низким, считают завершения микродиссекции в 50 минут и выполнять извлечение РНК сразу же после вскрытия или Vortбывшие образцы немедленно и не хранить на сухом льду до тех пор, хранения при -80 ° C. Чтобы увеличить выход РНК, увеличить количество секций рассеченных во LCM.

Задача изучения мозга, ассоциированных молекулярных изменений в нервно-психических расстройств существует из-за отсутствия доступа к изучению человеческого мозга. Альтернативные подходы включают в себя изучение клеток периферической крови, вскрытие мозга, и индуцированных плюрипотентных стволовых (плюрипотентных) клеток. Клетки крови не могут представлять изменения нейронов, ассоциированных с заболеваниями. Вскрытие мозги не может быть ресурсом для исследования динамических и государственные изменения, связанные с прогрессированием заболевания и ответ на лечение. плюрипотентных клеток не может непосредственно отражать изменения состояния, поскольку такие следы могут быть удалены в ходе процессе перепрограммирования и поддержания клеток. Таким образом, преимущества использования OE тканей способность к обучению как изменения состояния и динамики в нейронной связи. В частности, частоту смены кадров происходит нейрональных стволовыхчто клетки не могут адекватно отразить эффект 6 недель лечения лития, из-за культивирования и перепрограммирование шагов. Методология, представленная в этой статье позволяет изучать связанный с лечением, молекулярные изменения и соотносить их с изменениями в клинических симптомов. Следует отметить, что, по крайней мере, в настоящее время, количество нейронов получают из тканей OE является достаточным для исследований на молекулярном уровне, но не может быть ограничено характеризации белков с помощью иммуногистохимических приложений. Таким образом, дальнейшее технические усовершенствования также ожидалось.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Авторы не сообщают никаких финансовых отношений с коммерческими интересами.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Tissue Preparation
Tissue-Tek Cryomold Molds Sakura Finetek 4557
Tissue-Tek O.C.T. Compound Sakura Finetek 4583
Cryosectioning
Membrane Slide 1.0 PEN (D) Carl Zeiss Microscopy 415190-9041-000
Rnase Zap Ambion AM9780
DEPC Treated Water Quality Biological 351-068-131
Microdissection
Microscope: PALM Series MicroLaser System Carl Zeiss Microscopy Model: Axiovert 200M
Software: Robo v3.2
No. 5 Dumont Microdissction Forceps Roboz RS-49085
RNA Extraction
RNAqueous Micro Kit Ambion AM1931
cDNA Synthesis
SuperScript III First Strand Synthesis Kit Invitrogen 18080-051
OMP qPCR
SYBR GreenER qPCR SuperMix Invitrogen 11760-500
Taqman qPCR
TaqMan Expression Assay Probes Applied Biosystems Various
TaqMan Gene Expression Master Mix Applied Biosystems 4369016

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Goodwin, F. K., Jamison, K. R. Manic-depressive illness. Oxford University Press. (1990).
  2. Einat, H., Manji, H. K. Cellular plasticity cascades: genes-to-behavior pathways in animal models of bipolar disorder. Biol Psychiatry. 59, (12), 1160-1171 (2006).
  3. Severino, G., et al. Pharmacogenomics of bipolar disorder. Pharmacogenomics. 14, (6), 655-674 (2013).
  4. Beech, R. D., et al. Gene-expression differences in peripheral blood between lithium responders and non-responders in the Lithium Treatment-Moderate dose Use Study (LiTMUS). Pharmacogenomics J. 14, (2), 182-191 (2013).
  5. Horiuchi, Y., et al. Olfactory cells via nasal biopsy reflect the developing brain in gene expression profiles: utility and limitation of the surrogate tissues in research for brain disorders. Neurosci Res. 77, (4), 247-250 (2013).
  6. Dryer, L., Graziadei, P. P. Projections of the olfactory bulb in an elasmobranch fish, Sphyrna tiburo: segregation of inputs in the telencephalon. Anat Embryol (Berl. 190, (6), 563-572 (1994).
  7. Hahn, C. G., et al. In vivo and in vitro neurogenesis in human olfactory epithelium. J Comp Neurol. 483, (2), 154-163 (2005).
  8. Cascella, N. G., Takaki, M., Lin, S., Sawa, A. Neurodevelopmental involvement in schizophrenia: the olfactory epithelium as an alternative model for research. J Neurochem. 102, (3), 587-594 (2007).
  9. Sawa, A., Cascella, N. G. Peripheral olfactory system for clinical and basic psychiatry: a promising entry point to the mystery of brain mechanism and biomarker identification in schizophrenia. Am J Psychiatry. 166, (2), 137-139 (2009).
  10. Mor, E., et al. MicroRNA-382 expression is elevated in the olfactory neuroepithelium of schizophrenia patients. Neurobiol Dis. 55, 1-10 (2013).
  11. Kano, S., et al. Genome-wide profiling of multiple histone methylations in olfactory cells: further implications for cellular susceptibility to oxidative stress in schizophrenia. Mol Psychiatry. 18, (7), 740-742 (2013).
  12. Toritsuka, M., et al. Deficits in microRNA-mediated Cxcr4/Cxcl12 signaling in neurodevelopmental deficits in a 22q11 deletion syndrome mouse model. Proc Natl Acad Sci U S A. 110, (43), 17552-17557 (2013).
  13. Evgrafov, O. V., et al. Olfactory neuroepithelium-derived neural progenitor cells as a model system for investigating the molecular mechanisms of neuropsychiatric disorders. Psychiatr Genet. 21, (5), 217-228 (2011).
  14. Fan, Y., et al. Focal adhesion dynamics are altered in schizophrenia. Biol Psychiatry. 74, (6), 418-426 (2013).
  15. Ishizuka, K., et al. Negative symptoms of schizophrenia correlate with impairment on the University of Pennsylvania smell identification test. Neurosci Res. 66, 106-110 (2010).
  16. Sattler, R., et al. Human nasal olfactory epithelium as a dynamic marker for CNS therapy development. Exp Neurol. 232, (2), 203-211 (2011).
  17. Rimbault, M., Robin, S., Vaysse, A., Galibert, F. RNA profiles of rat olfactory epithelia: individual and age related variations. BMC Genomics. 10, 572 (2009).
  18. Tajinda, K., et al. Neuronal biomarkers from patients with mental illnesses: a novel method through nasal biopsy combined with laser-captured microdissection. Mol Psychiatry. 15, (3), 231-232 (2010).
  19. Bonner, R. F., et al. Laser capture microdissection: molecular analysis of tissue. Science. 278, (5342), 1481-1483 (1997).
  20. Fink, L., et al. Real-time quantitative RT-PCR after laser-assisted cell picking. Nat Med. 4, (11), 1329-1333 (1998).
  21. Emmert-Buck, M. R., et al. Laser capture microdissection. Science. 274, (5289), 998-1001 (1996).
  22. Nurnberger, J. I. Jr, et al. Diagnostic interview for genetic studies. Rationale, unique features, and training. NIMH Genetics Initiative. Arch Gen Psychiatry. 51, (11), 849-859 (1994).
  23. Montgomery, S. A., Asberg, M. A new depression scale designed to be sensitive to change. Br J Psychiatry. 134, 382-389 (1979).
  24. Young, R. C., Biggs, J. T., Ziegler, V. E., Meyer, D. A. A rating scale for mania: reliability, validity and sensitivity. Br J Psychiatry. 133, 429-435 (1978).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics