Вывод сердца клеток-предшественников из эмбриональных стволовых клеток

Developmental Biology

Your institution must subscribe to JoVE's Developmental Biology section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

Welcome!

Enter your email below to get your free 1 hour trial to JoVE!





We use/store this info to ensure you have proper access and that your account is secure. We may use this info to send you notifications about your account, your institutional access, and/or other related products. To learn more about our GDPR policies click here.

If you want more info regarding data storage, please contact gdpr@jove.com.

 

ERRATUM NOTICE

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Lei, I. L., Bu, L., Wang, Z. Derivation of Cardiac Progenitor Cells from Embryonic Stem Cells. J. Vis. Exp. (95), e52047, doi:10.3791/52047 (2015).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Introduction

Сердечно-сосудистые заболевания по-прежнему ведущей причиной смертности в мире сегодня, и уровень смертности остается практически неизменным в течение последних двух десятилетий (Американская ассоциация сердца). Существует острая необходимость в разработке новых терапевтических стратегий для эффективного предотвращения или обратить вспять сердечной недостаточности. Одним из перспективных стратегия клеточной терапии после бурного развития биологии стволовых клеток 1. В связи с этим, мультипотентных ЦЧП может быть отличным источником клеток для лечения из-за их способности к пролиферации, но совершено только клонов дифференциации сердечной. Таким образом, эффективный и надежный метод генерации и изолировать цены за клик имеет большое значение для исследований сердца клеточной терапии.

Этот протокол фокусируется на эмбриональных цены за клик, выявленных в ходе раннего эмбриогенеза и как их поколение из ЭСК. Различные ЦЧП были выделены из эмбриональных и взрослых сердец, даже из костного мозга 2. Во время развития эмбриона, кости morphogeмагнитные белки (BMPs), бескрылые типа члены семьи интеграции MMTV сайт (WNTs) и узловых сигналы вызывают приверженность Mesp1 + мультипотентной мезодермы 3. Mesp1 + клетки затем дифференцируются в эмбриональные цены за клик 4. Эти цены за клик, как правило, отмечается HCN4, NK2 гомеобокс 5 (Nkx2-5), Isl LIM гомеобокс 1 (Isl1), T-бокс 5 (Tbx5), и миоцитов фактором усилитель 2C (Mef2c), образуют поля первичного и вторичного сердце, и способствовать основных частей сердца во время кардиогенеза 5-10. Цены за клик Как Nkx2-5 + и Isl1 + / MEF2C + способны дифференцироваться в кардиомиоциты, гладкие мышечные клетки (ГМК) и эндотелиальные клетки 5-8. Таким образом, эти ЦЧП будет приводить к сердечной сосудистой, а также сердечных тканей и идеальным источником клеток для клеточной основе сердечной терапии. Следовательно, создавая цены за клик в пробирке был крупным научным внимание при сердечно-сосудистых исследований. С ЭСК имеют неограниченное расширение емкости ай представляют ICM клетки на стадии бластоцисты, дифференциация ЭСК в эмбриональные цены за клик по естественному эмбриогенеза считается логичным и эффективным подходом для получения цены за клик.

Одним из широко используемым подходом для получения цены за клик от ЭСК является агрегирование ЭСК в ЭТ 11. Для повышения эффективности дифференциации, определенные химические и факторы роста, основанные на знании развития сердца были использованы 12-14. Тем не менее, нет никаких категорических КПК маркеры, в частности, нет клеточной поверхности маркеры, которые широко принятые в этой области. Чтобы решить эту проблему, ЭСК разработаны, чтобы отметить цены за клик Isl1 + или MEF2C + и их производные флуоресцентных журналистами, используя Cre системы / LoxP. CRE рекомбиназы постучал в под контролем Isl1 / Mef2c промотор / энхансер. Модифицированный люминесцентные RFP белок или ген YFP обусловлен конститутивного промотора может быть активирован удаления Flox стоп-кодона с CRE рекомбиназой(Isl1: CRE; pCAG-Flox-СТОП-Flox-GFP или RFP / Isl1-CRE; Rosa26YFP / Mef2c-CRE; Rosa26YFP) 5,6. После того, как ЭСК дифференцируются во вторые СРС сердце на местах, Isl1 / Mef2c промотор / энхансер приводом CRE активирует флуоресцентные журналистам и цены за клик может быть обогащен FACS-очистки. Вкратце, метод агрегирования EB используется для инициирования ESC дифференциации. Для повышения эффективности дифференцировки, дифференцированные клетки обрабатывают аскорбиновой кислоты (АК) и факторов роста, таких как Bmp4, активин А и Vegf 13,15. Этот протокол позволяет надежный и эффективный дифференциации CPC, используя и мышь и ЭСК человека.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1. Вывод мышиных эмбриональных цены за клик от мыши ЭСК

  1. Подготовка мышиных эмбриональных фибробластов (МЭФ) фидерного слоя.
    1. Теплый MEF среды (10% FBS в DMEM) до 37 ° С.
    2. Подготовка желатиновых пластинок, покрытых.
      1. Добавить 1 мл 0,1% желатина в воде в лунку 6-луночного планшета или 5 мл в 10 см чашку.
      2. Оставьте пластин или блюда при 37 ° С или при комнатной температуре в течение по крайней мере 30 мин. Стремитесь желатин перед использованием.
    3. Оттепели облучают MEFs быстро в водяной бане при 37 ° C, при осторожном встряхивании.
    4. Передача клетки осторожно к 15 мл или 50 мл коническую трубку. Добавить 5 мл подогретого MEF среды. Вихревой клетки медленно и центрифуге при 200 х г в течение 5 мин.
    5. Ресуспендируют клеток в MEF среды и считать жизнеспособных клеток. Используйте следующие объемы MEF среды: 2 мл для клеток на лунку от 6-луночного планшета и 10 мл для клеток от 10 см блюдо.
    6. Пластина клеток в 6-луночных планшетах или 10 см блюда в 1-2х 10 6 на чашку / блюдо.
    7. Инкубируйте MEF пластин / блюда при температуре 37 ° C, 5% CO 2 по крайней мере, 24 часа в сутки до использования.
      ПРИМЕЧАНИЕ: Отменить MEF пластин / блюда старше недели.
  2. Подготовка ЭСК мыши
    1. Культура Isl1-CRE; Rosa26YFP / Mef2c-CRE; Rosa26YFP мыши ЭСК на MEFs до 90% сливной. Используйте ES клеточная среда состоит из 410 мл DMEM, 75 мл FBS, 0,1 мМ MEM NEAA 2 мм L-глутамина, 0,1 мМ пирувата, 100 U Pen / Strep и 0,1 мм β-меркаптоэтанола.
    2. Подготовьте желатин покрытием 6-луночных планшетах, как описано в 1.1.2.
    3. Отберите среду из пластин и промыть клетки с DPBS.
      1. Аспирируйте DPBS и добавить 0,4 мл 0,25% трипсина в одну лунку 6-луночного планшета. Инкубируйте клетки при 37 ° С, 5% СО 2 в течение 5 мин. Добавить 1 мл подогретого ES среднего прекратить реакцию трипсина.
    4. Урожай клетки и центрифуги клетки при 200 мкг в и аспирации среды. Ресуспендируют клеток в 1 мл ES клеточной среде и считать клетки. </ Li>
    5. Пластинчатые ЭСК на желатиновых пластинок, покрытых при плотности 3 х 10 4 / см 2. Выдержите при 37 ° С, 5% СО 2 в течение примерно 2 дней, когда ЭСК составит около 90% вырожденная. Изменение средней каждый день.
    6. Когда ЭСК являются 90% сливной, повторите шаги 1.2.2-1.2.5, чтобы полностью удалить MEF питатели.
  3. Вызвать CPC дифференциация по образованию EB
    1. Подготовка дифференциации среды, как следует: 36 мл IMDM, 12 мл F12 Хэма, 2 мМ L-глутамина, 0,34 мл БСА (7,5%), 0,25 мл N 2, 0,5 мл В27, 50 мкг / мл А.А., 0,45 мМ 1-тиоглицерин.
    2. Отберите среду из клеток и промыть DPBS. Аспирируйте DPBS и добавить 0,4 мл 0,25% трипсина в одну лунку 6-луночного планшета. Инкубируют при 37 ° С в течение 5 мин.
    3. Добавить 1 мл дифференциации среду прекратить реакции и пипетки вверх и вниз, чтобы разогнать клетки кластеров в одиночных камерах.
    4. Центрифуга ЭСК в 200 мкг в течение 5 мин и отбросить среды.
      1. Ресуспендируют 1 х 10 6 </ SUP> ЭСК в 1 мл дифференциации среды. Количество клеток, культуры клеток в цене отрыва чашки Петри в концентрации 1 × 10 5 клеток / мл в среде для дифференцировки при 37 ° С в течение первых агрегации EB.
    5. Через два дня после формирования EB, трансфер ЭТ из блюд 50 мл пробирки. Спина в 200 мкг в течение 1 мин. Удалить среду и промыть ЭТ с 10 мл DPBS без Са 2+ и Mg 2+.
    6. Отберите DPBS и добавить 1 мл 0,25% трипсина. Инкубируют при 37 ° С в течение 5 мин. Добавить 4,5 мл дифференциации среды, чтобы остановить реакцию. Внесите вверх и вниз, чтобы отделить ЭТ в одиночных камерах.
    7. Центрифуга клетки при 200 х г в течение 5 мин. Вытяжку средних и ресуспендирования клеток в 1 мл дифференциации среды.
    8. Граф клеток и разбавить 2 х 10 6 клеток в 1 х 10 5 клеток / мл в среде для дифференцировки среды. Добавить VEGF, BMP4 и активин А в среду в конечной концентрации 5 нг / мл, 0,8 нг / мл, и 5 нг / мл, соответственно. CultuRe клеток в чашки Петри для формирования второго EB при 37 ° С.
    9. 40 ч после второго образования EB, трансфер ЭТ в 50 мл пробирки. Промыть DPBS один раз, диссоциируют ЭТ 1 мл 0,25% трипсина при 37 ° С в течение 5 мин. Внесите вверх и вниз, чтобы отделить ЭТ в одиночных камерах.
    10. Ресуспендируют клеток в Stempro-34 среды с 5 нг / мл VEGF, 10 нг / мл bFGF и 12,5 нг / мл FGF10. Пластина клеток в 2 х 10 5 / см 2 в покрытые желатином пластин. Культура в 37 ° C инкубаторе в течение примерно 32 ч перед выделением КПК.
  4. Изолировать mCPCs
    1. Отберите средних и промыть DPBS. Добавить 0,5 мл 0,25% трипсина в культуральные планшеты при 37 ° С в течение 5 мин. Добавить 4,5 мл дифференциации среды, чтобы остановить реакцию. Внесите вверх и вниз, чтобы отделить ЭТ в одиночных камерах. Сбор клеток путем центрифугирования и ресуспендирования клеток в 2% FBS / PBS для FACS-очистки.
    2. Запустите недифференцированные ЭСК на сортировщик отрицательного контроля. Изменение напряжения для регулировки вперед копротер (FSC) и боковое рассеивание (SSC), чтобы выбрать нужный населения. Используйте рассеяния вперед по сравнению с боковой разброс и вперед высоте рассеяния по сравнению с шириной, чтобы исключить мусор и камзол. В выбранной подгруппы населения, в соответствии с распределением контроля ESC, рисовать ворота YFP положительный на гистограмме, чтобы устранить клеток аутофлуоресценцию. Сбор YFP + цены за клик от YFP + гейт.
    3. Пластина очищенные цены за клик (YFP + клетки) в 6-луночных планшетах с дифференцированием среды (1.3.1). Культура дополнительные 3-5 дней при 37 ° С в течение дифференциации цены за клик в кардиомиоциты и ГМК.

2. Вывод человеческих эмбриональных цены за клик от ЭСК человека

  1. Подготовка Кормушки
    1. Подготовка мышиных эмбриональных фибробластов (MEFs) фидерного слоя, как описано выше, при плотности 2 х 10 4 / см 2.
  2. Поддержание ЭСК человека
    1. Поддержание человека Isl1: CRE; pCAG-Flox-СТОП-Flox-GFP или RFP ЭСК обычно на МEF с помощью регулярного чЭСК среды (нокаут DMEM / F-12 385 мл, Нокаут SR 100 мл, 2 мМ L-глутамина, 0,1 мМ NEAA, 0,1 мМ β-меркаптоэтанола, 10 нг / мл основного ФРФ). До остановки дифференциации, передачи ЭСК человека в фидерной свободном состоянии, по крайней мере, 2 проходов.
  3. Подготовка ЭСК человека в фидерной свободном состоянии
    1. Подготовка покрытием пластины для ЭСК человека культуры.
      1. Оттепель Матригель при 4 ° С в течение ночи. Поместите 50 мл пробирку на льду и добавляют 30 мл холодной DMEM / F12 среды в трубе.
      2. Добавить 1 мл Матригель в холодную среду и хорошо перемешать. Добавить 1 мл холодного Матригель-DMEM / 12 среды в лунку 6-луночного планшета или 5 мл в 10 см чашку.
      3. Оставьте Тарелки / блюда в 4 ° С в течение ночи или при комнатной температуре в течение 2 ч. Отберите Перед использованием в среду.
    2. Сплит ЭСК человека на пластинах: Аспирируйте средств массовой информации из MEF пластины и промыть ЭСК человека с DPBS. Затем добавить 1 мл диспазу (1 мг / мл) в лунку 6-луночного планшета. Инкубируйте клетки в 37 ° Cинкубатор пока края колоний не начнут отделяться.
    3. Удалить диспазу решение. Промыть DPBS в два раза, а затем добавить 2,5 мл / лунку средой mTeSR или MEF-кондиционированной среды к пластине.
    4. Очистите клеток с использованием клеток скребком и тщательно пипетки вверх и вниз, чтобы сломать человека колонии ЭСК в небольшие пряди.
    5. Трансфер глыбы ESC и разбавить 1: 3 в покрытых плитами.
    6. Добавить 2 мл / лунку mTeSR средний или MEF-кондиционированной среды и изменения средней ежедневно.
    7. Культура ЭСК человека в mTeSR среды или MEF-кондиционированной среды на пластинок, покрытых по крайней мере 2 проходов.
  4. Вызвать CPC дифференцирование от эмбриональных клеток
    1. Когда клетки ~ 90% сливной, аспирация среды и промыть DPBS. Тогда инкубировать ЭСК в 0,5 мг / мл диспаза при 37 ° С в течение 20 мин.
    2. Промыть ЭСК с DPBS два раза, удалить соты из плит с сотовым подъемника, то ресуспендируйте клеток зажимы в дифференцировке среде (DMEM / F12, содержащей 18% FBS, 0,1 мМ NEAA, 2 мМL-глутамина, 0,1 мМ β-меркаптоэтанола и 50 мкг / мл аскорбиновой кислоты).
    3. Перевести клетки в 6-а ультра-низких пластин крепления для формирования EB.
    4. Изменить дифференциации среду на следующий день.
    5. Замените среду каждые 3 дня, и поддерживать ЭТ в суспензионной культуре.
  5. Изолировать HCPCS
    1. Собрать ЭТ не позднее, чем через 9 дней дифференциации для изоляции человека КТК.
    2. Отберите среднего и промыть ЭТ с DPBS в два раза. Добавить 0,5 мл 0,25% трипсина в каждую лунку культуральных планшетах 6-а при 37 ° С в течение 5 мин.
    3. Добавить равный объем среды для дифференцировки, чтобы остановить реакцию. Внесите вверх и вниз, чтобы отделить ЭТ в одиночных камерах. Сбор клетки центрифугированием при 200 х г в течение 5 мин и ресуспендируют клеток в 2% FBS / DPBS. Фильтровать клетки с сетчатым фильтром клеток 40 мкм и FACS-очищенной ППП + КПК клеток, как описано в разделе 1.4.3.
    4. Plate сортируются HCPCS на geltin покрытием пластин. Культура HCPCS дифференциации среды для 7-9 Дней дифференцироваться в кардиомиоцитов и гладкомышечных клеток. 7 дней после посева, культура дифференцированные клетки с 5% нокаут СР в DMEM / F12 среде.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Протокол показывает вывод всех цен за клик от нескольких клеточных линий ES. ЭСК объединяются, чтобы сформировать ЭТ дифференцироваться в цены за клик. ЭСК регулярно поддерживается на MEF фидеров (рис 1А, F) и питатели удаляются перед дифференциации. После агрегации ESCs в ЭТ в дифференциации среды (Фиг.1В, G), то второй образованные ЭТ обрабатывают Bmp4 и активин А, чтобы усилить дифференциацию мезодермы у мышей линий клеток (фиг 1с). ЭСК дифференцируются в сердечной линии, определенных флуоресцентный белок YFP / RFP (рис 1D). ЦЧП были FACS-очищали (фиг 1H) и далее культивировали дифференцироваться в кардиомиоциты и клетки гладкой мускулатуры. Окрашивание cTnT и SM-MHC показали дифференцировку потенциала СРС в кардиомиоциты и клетки гладкой мускулатуры (Рисунок 1 E, I, J). Как правило, 80-90% ЦЧП получены из мышиного ESC дифференцировки протocol и 0,5-5% ЦЧП получают из протокола дифференцировки человеческих ESC.

Рисунок 1
Рисунок 1: Дифференциация ЭСК в мультипотентными цены за клик. (AE) мыши ESC дифференциация. () Морфология мыши ESC в фидерных клеток. (B) формирование первых EB ЭСК мыши. (C) образование Второе EB в дифференциации среды с факторами роста. (D) за клик выражают YFP. (E) кардиомиоциты (cTnT +) происходит от FACS-очищенных цены за клик. (FJ) Дифференциация эмбриональных клеток. (F) Морфология человека ESC поддерживается на фидерных клеток. (G) EB формирование человека ЭС клеток. (H) FACS-очищенной цен за клик. (IJ) цены за клик дифференцировались в кардиомиоциты (cTnT +) и клеток гладкой мускулатуры (SM-МНС + Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы увидеть увеличенную версию этой цифры.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
FBS Thermo scentific SH30070.03E
Knockout SR Life technology 10828028
Knockout DMEM Life technology 10829018
DMEM Life technology 11965118
NEAA Life technology 11140050
GlutaMAX Life technology 35050061
N2 Life technology 17502048
B27 Life technology 12587010
Ham’s F12 Life technology 11765062
IMDM Life technology 12440061
Pen/Strep Life technology 15140122
Pyruvate Life technology 11360070
Dispase Life technology 17105041
Stempro-34 Life technology 10639011
DMEM/F12 Life technology 11330032
BSA  Life technology 15260037
Trypsin  Life technology 25200056
Ascobic Acid  Sigma A5960
1-Thioglycerol Sigma M1753
2-Mercaptoethanol Sigma M3148
VEGF R&D 293-VE
Bmp4 R&D 314-BP
ActivinA R&D 338-AC
bFgf R&D 233-FB
Fgf10 R&D 345-FG
mTeSR Stemcell technologies 5850
Matrigel BD Biosciences 354277

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Garbern, J. C., Lee, R. T. Cardiac stem cell therapy and the promise of heart regeneration. Cell Stem Cell. 12, (6), 689-698 (2013).
  2. Passier, R., van Laake, L. W., Mummery, C. L. Stem-cell-based therapy and lessons from the heart. Nature. 453, (7193), 322-329 (2008).
  3. Bondue, A., Blanpain, C. Mesp1: a key regulator of cardiovascular lineage commitment. Circulation Research. 107, (12), 1414-1427 (2010).
  4. Bondue, A., et al. Mesp1 acts as a master regulator of multipotent cardiovascular progenitor specification. Cell Stem Cell. 3, (1), 69-84 (2008).
  5. Bu, L., et al. Human ISL1 heart progenitors generate diverse multipotent cardiovascular cell lineages. Nature. 460, (7251), 113-117 (2009).
  6. Lei, I., Gao, X., Sham, M. H., Wang, Z. SWI/SNF protein component BAF250a regulates cardiac progenitor cell differentiation by modulating chromatin accessibility during second heart field development. The Journal of Biological Chemistry. 287, (29), 24255-24262 (2012).
  7. Lei, I., Liu, L., Sham, M. H., Wang, Z. SWI/SNF in cardiac progenitor cell differentiation. Journal of Cellular Biochemistry. 114, (11), 2437-2445 (2013).
  8. Wu, S. M., et al. Developmental origin of a bipotential myocardial and smooth muscle cell precursor in the mammalian heart. Cell. 127, (6), 1137-1150 (2006).
  9. Spater, D., et al. A HCN4+ cardiomyogenic progenitor derived from the first heart field and human pluripotent stem cells. Nature Cell Biology. 15, (9), 1098-1106 (2013).
  10. Verzi, M. P., McCulley, D. J., De Val, S., Dodou, E., Black, B. L. The right ventricle, outflow tract, and ventricular septum comprise a restricted expression domain within the secondary/anterior heart field. Developmental Biology. 287, (1), 134-145 (2005).
  11. Boheler, K. R., et al. Differentiation of pluripotent embryonic stem cells into cardiomyocytes. Circulation Research. 91, (3), 189-201 (2002).
  12. Wada, R., et al. Induction of human cardiomyocyte-like cells from fibroblasts by defined factors. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110, (31), 12667-12672 (2013).
  13. Kattman, S. J., et al. Stage-specific optimization of activin/nodal and BMP signaling promotes cardiac differentiation of mouse and human pluripotent stem cell lines. Cell Stem Cell. 8, (2), 228-240 (2011).
  14. Takahashi, T., et al. Ascorbic acid enhances differentiation of embryonic stem cells into cardiac myocytes. Circulation. 107, (14), 1912-1916 (2003).
  15. Wamstad, J. A., et al. Dynamic and coordinated epigenetic regulation of developmental transitions in the cardiac lineage. Cell. 151, (1), 206-220 (2012).
  16. Cong, L., et al. Multiplex genome engineering using CRISPR/Cas systems. Science. 339, (6121), 819-823 (2013).
  17. Ding, Q., et al. Enhanced efficiency of human pluripotent stem cell genome editing through replacing TALENs with CRISPRs. Cell Stem Cell. 12, (4), 393-394 (2013).
  18. Gaj, T., Gersbach, C. S. 3rd, Barbas, T. A. L. E. N. ZFN, TALEN, CRISPR/Cas-based methods for genome engineering. Trends in Biotechnology. 31, (7), 397-405 (2013).
  19. Joung, J. K., Sander, J. D. TALENs: a widely applicable technology for targeted genome editing. Nature Reviews. Molecular Cell Biology. 14, (1), 49-55 (2013).
  20. Yang, H., et al. One-step generation of mice carrying reporter and conditional alleles by CRISPR/Cas-mediated genome engineering. Cell. 154, (6), 1370-1379 (2013).
  21. Mali, P., et al. RNA-guided human genome engineering via Cas9. Science. 339, (6121), 823-826 (2013).
  22. Laflamme, M. A., et al. Cardiomyocytes derived from human embryonic stem cells in pro-survival factors enhance function of infarcted rat hearts. Nature. biotechnology. 25, (9), 1015-1024 (2007).
  23. Burridge, P. W., et al. A universal system for highly efficient cardiac differentiation of human induced pluripotent stem cells that eliminates interline variability. PloS One. 6, (4), e18293 (2011).
  24. Kouskoff, V., Lacaud, G., Schwantz, S., Fehling, H. J., Keller, G. Sequential development of hematopoietic and cardiac mesoderm during embryonic stem cell differentiation. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 102, (37), 13170-13175 (2005).
  25. Xu, X. Q., et al. Chemically defined medium supporting cardiomyocyte differentiation of human embryonic stem cells. Differentiation: Research in Biological Diversity. 76, (9), 958-970 (2008).
  26. Lian, X., et al. Robust cardiomyocyte differentiation from human pluripotent stem cells via temporal modulation of canonical Wnt signaling. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109, (27), E1848-1857 (2012).
  27. Bizy, A., et al. Myosin light chain 2-based selection of human iPSC-derived early ventricular cardiac myocytes. Stem Cell Research. 11, (3), 1335-1347 (2013).

Erratum

Formal Correction: Erratum: Derivation of Cardiac Progenitor Cells from Embryonic Stem Cells
Posted by JoVE Editors on 08/10/2016. Citeable Link.

A correction to the author list was made to: Derivation of Cardiac Progenitor Cells from Embryonic Stem Cells.

The following author is now listed as a co-corresponding author:

Lei Bu

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics