Синергетический использованием нейронных клеток-предшественников и самоорганизации пептидов в экспериментальном шейного отдела спинного мозга Травма

Medicine

Your institution must subscribe to JoVE's Medicine section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Zweckberger, K., Liu, Y., Wang, J., Forgione, N., Fehlings, M. G. Synergetic Use of Neural Precursor Cells and Self-assembling Peptides in Experimental Cervical Spinal Cord Injury. J. Vis. Exp. (96), e52105, doi:10.3791/52105 (2015).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Повреждения спинного мозга (SCI) вызывают серьезные неврологические нарушения и психологические, экономические и социальные последствия для пациентов и их семей. Клинически более 50% от ТСМ повлиять на шейный отдел позвоночника 1. Как следствие первичной травмы, каскад вторичных механизмов, включая воспаление, апоптоз и демиелинизации происходят, наконец, приводит к образованию рубцов ткани и развития интрамедуллярные полостей 2,3. Оба представляют физические и химические барьеры для трансплантации клеток, интеграции и регенерации. Таким образом, формирование ингибирующее среды и преодоление полости для создания благоприятной среды для трансплантации и регенерации клеток является перспективным терапевтическая мишень 4. Здесь ушиб сжатия / модель шейки SCI с использованием аневризмы клипа описано. Эта модель является клинически более актуальным, чем других экспериментальных моделей, так как полная перерезка или разрывы корда редки. Кроме того, в comparisoп капельной модели вес, который, в частности, повреждения колонны Спинка, окружная сжатие спинного мозга появляется выгодно. Клип сила закрытия и продолжительность может быть отрегулирован для достижения различной степени тяжести травмы. Кольцо весной облегчает точную калибровку и постоянство клип силу. В физиологических условиях, синтетические самоорганизующиеся пептиды (SAP) самоорганизуются в нановолокна и, таким образом, являются привлекательными для применения в ТСМ 5. Они могут быть введены непосредственно в очаг минимизации повреждения кабеля. ПСП являются биосовместимые конструкции возводят каркасы для преодоления интрамедуллярные полости и, таким образом, оборудовать поврежденный кабель для восстановительных процедур. K2 (QL) 6K2 (QL6) является роман SAP представила Донг с соавторами л. 6 По сравнению с другими пептидами, QL6 самостоятельно собирается в β-листов при нейтральном рН 6 0,14 дней после ТСМ, после острой стадии, ПСП вводятся в центре поражения и нервных клеток-предшественников (NPC) являются ИнджеИДКТК в смежных колонках спинных. Для того чтобы поддерживать жизнеспособность клеток, трансплантации в сочетании с непрерывным субдуральной введения факторов роста осмотическим микро насосов в течение 7 дней.

Introduction

Более 50% повреждений спинного мозга связаны с шейного отдела позвоночника. В клинических условиях два основных патофизиологических механизмов описаны: начальная ушиб спинного мозга и в дальнейшем, продолжающееся сжатие, вызванное переломов костей, кровоизлияний или отек тканей.

Аневризма клип ушиб / модели сжатия имитирует оба патофизиологические механизмы: привязка клип производит контузию и продолжительность отсечения представляет собой компонент сжатия, признавая, что компрессия в клинических условиях, вызванных переломами костей, кровоизлияний или отек тканей последний значительный больше. Использовать аневризма клип изменяется с помощью кольцевого весной, гарантирующей точное и воспроизводимое отсечения силу. Особенно в сравнении с полугидратом перерезки или модели ушиба, эта аневризма клипа модели имитирует лучших медицинских учреждениях. В то время как пациенты с грудной травмы страдают от параплегии, большинство больных раком шейки Injuries являются тетраплегией и полностью зависит. Анатомическое строение шейки матки мозга, однако, показывает существенные различия по сравнению с грудной или поясничный отдел позвоночника, и, таким образом, рассматривается, в частности, в этом протоколе.

Развитие костномозгового полостей и тканей рубцов препятствия для восстановления и регенерации. Чтобы преодолеть эти барьеры использование каркасного материала является перспективным подходом. Самоорганизующиеся пептиды могут быть введены непосредственно в эпицентре поражения. Там они собираются в нано-волокна лесов, соединяющих полости и улучшить ингибирующее среды, уменьшая воспаление и тканевую пугать. В то время как жесткие материалы вызывают значительное повреждение спинного мозга при имплантации, жидкость пептиды могут быть введены безопасно и без серьезного дополнительного повреждения.

Повышение ингибирующей среду с самоорганизующихся пептидов перед трансплантацией стволовых клеток, следовательно, поддерживает клетку яntegration, дифференцирование и, наконец, функциональное восстановление после шейки травмы спинного мозга.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

ПРИМЕЧАНИЕ: Ниже предлагается экспериментальный протокол был одобрен по уходу за животными комитет сети университета здравоохранения (Торонто, Канада) и в соответствии с политикой, установленной в руководстве по уходу и использованию экспериментальных животных, подготовленных Канадский совет по уходу за животными ,

1. шейки аневризмы клипа Ушиб / Сжатие Модель

  1. Перед операцией автоклав инструменты и держать в стерильных условиях в течение всего surgcial процедуры, поставив инструменты в спиртовой ванны 70%.
  2. Анестезировать крыс линии Вистар (250-270 г) с комбинацией кислорода (O 2), закись азота (N 2 O) (1: 1), и 1,8-2,2% изофлуран и поддерживать спонтанное дыхание с помощью газовой анестезии маски. Для индукции анестезии начать с 5% изофлуран в течение 1 минуты, и после этого уменьшают. Перед началом операции, контроль глубины анестезии, давая болезненный стимул (например. На лапах). Применить жирные мазив глазах, чтобы избежать сухости и предотвратить последующие инфекции.
  3. Положите крыс на отопление подушки (37 ° C) и зафиксировать голову в стереотаксической рамы.
  4. Бритье хирургического область вокруг шейного отдела позвоночника и дезинфекции иодповидон и 70% спирта.
  5. Сделайте срединный разрез над позвоночника от шейного позвонка (С2), достигающей выдающегося отростка грудной тела позвонка 2 (T2).
  6. Вырезать через внешний слой позвонков мышц непосредственно по средней линии (чтобы избежать кровотечения) в черепно-каудальном направлении и далее анализировать глубинные слои мышц прямо, пока не достигнете Остистый отросток и пластинки. Вставьте преднатяжителями.
  7. Ориентировать важную Остистый отросток Т2 позвонка тела, чтобы наблюдать целевых уровней для ламинектомии. После идентификации и микро-хирургическая подготовка выбранного пластинок, разрезать ligamenti flavae, чтобы ослабить пластинки и Остистый отросток. Наконец, сут через пластинки с костью машинки сбоку от спинного мозга и удалить те осторожно, избегая каких-либо сжатие самого спинного мозга.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Наиболее распространенные уровни C5 / 6, C6 / 7, или C7 / T1. Скорость, госпитальная летальность возрастает более ростральной уровня травмы. Кровотечение из паравертебральной венозного синуса является общим и может быть решена путем тщательного сжатия с губкой.
  8. Перед установкой клип травмировать мозг, выявлять новые нервные корешки, чтобы избавить их от отсечения (особенно на уровне С5 / 6).
  9. В целях обеспечения бесперебойной индукции клип, ослабьте брюшной твердую мозговую оболочку от спинной стороне тел позвонков с крюком и подготовить коридор для клипа.
  10. Наконец, вставьте Open Clip и пусть он захлопнуться (быстрое закрытие) для достижения травмы ушиб. Клип сила закрытия и продолжительность закрытия клипа определить интенсивность травмы и степень сжатия. Обычно используемые клип силы между 15-35 г и clippiнг продолжительность, например, 1 мин. (Рисунок 1).
  11. После удаления клипа, адаптировать мышцы в 2 слоя и закрыть рану.
  12. Стоп анестезии и пусть животных проснуться под постоянным наблюдением, пока он не восстановит достаточное сознание грудины лежачее положение. Положим, наконец, крысу в одном клетку и следовать послеоперационные рекомендации по лечению.
  13. Так как животные бороться с тяжестью этого типа травмы, необходимо обратить особое внимание на послеоперационных процедур:
    1. Администрирование болеутоляющие средства (бупренорфин и мелоксикам в течение 3 дней и 5 дней, соответственно, и в соответствии с клиническими симптомами).
    2. Дать дополнительные подкожно физиологический раствор в течение 3 дней (2 раза в день, 5-10 миллилитров (мл)).
    3. Обеспечить антибиотики в питьевой воде за 2 дня до и до 7 дней после операции (например, Moxifloxacine)
    4. Сожмите мочевого пузыря 2-3 раза в день до тех пор, восстановление функции мочевого пузыря не является постояннымLY очевидной.
    5. Соблюдайте неврологические дефициты и физиологическое состояние оперированных животных, по крайней мере один раз в день.

2. Потребители инъекционных соки и NPC (через 14 дней после травмы)

  1. Анестезии, как описано в 1.1. 1.3, исправить голову крысы в ​​стереотаксической рамы, удалить швы или раны клипы и дезинфицировать рану и хирургическую область с повидон йода и 70% спирта.
  2. Осторожно вскрыть паравертебральных мышц, вставьте преднатяжителями, удалить рубцовую ткань под микроскопом из твердой мозговой оболочки, и вновь подвергать месте повреждения.
  3. Подготовка ПСП в концентрации 1% (вес / объем), чтобы выполнить внеклеточного матрикса гел. QL6 ПСП имеет физиологически совместимый рН и не должны быть помещены в буфер перед инъекцией. Для визуализации ПСП в спинном мозге, использования флуоресцентного производной от QL6 (QL6-FITC).
  4. Вводят ПСП (5 микролитров (мкл) в центр поражения, распределенной в 2 частей, каждая2,5 мкл двусторонняя от средней линии. Использование шприца Гамильтона, соединенный с стереотаксической рамы с микро стеклянный капилляр (100 мкм (микрон) наружный диаметр (OD)). Открыть твердую мозговую оболочку тщательно кончиком острой иглой, и вставить стеклянный капилляр стереотаксически 2 миллиметра (мм) в травмированной спинного мозга.
  5. После введения 1/3 объема, извлеките иглу до 1,5 мм глубиной, и после дальнейшего 1/3 до 1 мм. После инъекции по всему объему, а перед удалением шприц, подождать 5 минут для стабилизации гелеобразования.
  6. Для создания НПС, используйте мышей взрослых Dsred (или YFP положительных мышей, зеленый) и изолировать и культивировать их из paraventrical зоне 4,18,21.
  7. Оценка жизнеспособности НПС путем окрашивания трипановым синим, свидетельствующих о наличии ~ 90% живых клеток в клеточной суспензии. Развести клеток в среде роста (50 х 103 живых клеток / мкл), а затем использовать их для трансплантации клеток.
  8. Сделайте четыре 2 мкл (8 мкл Общий во-Луме, содержащий 4 х 10 5 НПС) в спинной инъекции на двусторонней основе на 2 мм ростральных и хвостового от места повреждения. После открытия твердой мозговой оболочки, вставить Гамильтон микро стеклянный капилляр 1,5 мм ниже дорсальной поверхности спинного мозга и придать 2 мкл клеточной суспензии. Выберите скорость впрыска в 0,5 мкл / мин (мин).
  9. В конце каждой инъекции и до удаления капилляра из розетки, подождите, по крайней мере, 1 мин, позволяя ткани растяжения для размещения нового тома клеток. (Рисунок 2)

3. Имплантация субдуральной Насосы для фактора роста применения

  1. Для того, чтобы обогатить спинномозговой жидкости (ликвора) с факторами роста поддержки выживания клеток, используйте микро-осмотического насоса разжижающие факторы роста суб-durally всей 7-14 дней, при скорости разбавления 0,5 мкл / ч, диаметр катетер 0,04 см OD, и объем резервуара 100 мкл.
  2. Выберите предпочтительные факторы роста(Например, мозга фактор роста (BDGF), эпидермальный фактор роста (EGF), фактор роста фибробластов (FGF)), заполнения насосов 6-10 ч перед имплантацией, и уравновешивают насосов на водяной бане при 37 ° С.
  3. Сразу после NPC инъекций, подготовить подкожную выемку для размещения насоса. Предпочтительные места являются боковые фланги thoraco- брюшной области, избегая крупных местных дискомфорт, вызванный самого насоса.
  4. Чтобы получить самую высокую концентрацию факторов роста, гарантировать, что открытый кончик катетера недалеко от концов в месте повреждения. Таким образом, выполнить с пропуском ламинэктомии прилегающей верхней или нижней уровне. Например, если ТСМ по крайней C7 / T1, выполнить небольшую ламинэктомии С5.
  5. Поставьте насос в подкожной нише, сократить катетера нужной длины, и закрепите его с несколькими швами (6,0) на паравертебральных мышц, избегая любого движения, связанные дислокации.
  6. После открытия твердую мозговую оболочку (например, у С5), с острым кончикомиглы, ввести катетер в субдуральных пространстве и пусть он скользит в каудальном направлении без какого-либо сопротивления и без повреждения шнура. Пропускаются пластинка, например, С6 служит дополнительной точкой фиксации и стабилизации катетера.
  7. Убедитесь, что катетер проходит гладко и не раз.
  8. Закрыть мышцы за слоем, и кожей, со швами или клипов. (Рисунок 3)
  9. Стоп анестезии и пусть животных проснуться под постоянным наблюдением, пока он не восстановит достаточное сознание грудины лежачее положение. Наконец, положил их обратно в одном клетку и следовать послеоперационные рекомендации по лечению.
  10. Оказывать специальную послеоперационного лечения, хотя, животные, возможно, восстановленный частично в это время точки:
    1. Администрирование болеутоляющие средства (Buprenorthine и мелоксикам в течение 3 дней и 5 дней, соответственно, и в соответствии с клиническими симптомами).
    2. Обеспечить антибиотики в бутылки с водой за 2 дня до до7 дней после операции (например, Moxifloxacine).
    3. Продолжить сжимая мочевой пузырь, если по-прежнему необходимо.
    4. Дайте дополнительные подкожные жидкости, если крысы появляются обезвоживание.
    5. Держите наблюдать неврологическую функцию и физиологическое состояние оперированных животных, по крайней мере один раз в день.
    6. Администрирование лечения иммуносупрессии за 2 дня до инъекции NPC и до 7 дней после пересадке (миноциклин) и до жертвы (SANDIMMUNE), соответственно.

Оценка 4. тканей

  1. Жертву животных в конце времени наблюдения (например. 4 недели после ТСМ) в глубокой анестезии (5% изофлуран в течение 2-3 мин) и заливать их транскардиальную с 50 мл холодного (4 ° С) растворе с последующим 150 мл холодной 4 % параформальдегида в 0,1 М фосфатно-солевом буфере (PBS).
  2. Удалить спинной мозг и поместить его в 4% параформальдегида в 0,1 М фосфатно-солевом буфере (PBS) в течение 24 ч.
  3. Обеспечить продольные криосрезы с толщиной <30 мкм.
  4. Для иммуногистохимического окрашивания всех клеток-ядер, обеспечивающих фона использовать DAPI (1: 1000). DsRed положительные персонажи появляются красные, QL-6 FITC появляется зеленый, и оба, таким образом, не нужно быть окрашены специальным образом. (Рисунок 4).
  5. Для сканирующей электронной микроскопии (SEM) Пусть образцы замочить в глутаральдегидом при 4 ° С в течение 2 ч, обезвоживают их медленно с шагом в 10% приращения этанола в течение 5 мин и поместите их в жидкость под давлением CO 2 сифона в течение 1 часа. Пальто леса с золотом с использованием распылением для нанесения покрытий. Съемку с Hitachi S-3400N сканирующего электронного микроскопа. (Рисунок 5)

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

При выполнении описанного выше процедуру, вы получите каркас SAP Преодоление полость и предлагая улучшение тормозного окружающей среды, меньше ткани пугать и увеличение NPC выживания. Рисунок 4 показывает продольный разрез спинного мозга крысы, полученной при травмы сайт 6 недель после ТСМ и 4 недели после QL6 инъекции SAP и трансплантации NPC. QL6 пептиды были успешно введен в мозге, собраны в эпицентре и рассеянным Rostro-каудально в полутени. Электронный микроскоп изображения дополнительно показывает, на рисунке 5, сборка 1% (вес / объем) QL6 пептиды до нановолокон эшафот в 2 часа разбавленного в растворах PBS.

Эта матрица обеспечивает улучшение ингибирующей среды, способствующей увеличению выживаемости клеток и дифференциации клеток, тканей меньше рубцов и в конечном итоге приводит к улучшению шансов на функциональное восстановление.

Юр 1 "SRC =" / файлы / ftp_upload / 52105 / 52105fig1highres.jpg "/>
Рисунок 1: Зажим модель ушиб / сжатия аневризма () Фотография через операционного микроскопа после ламинектомии С7 / T1 и клип контузии / компрессии спинного мозга крысы (B) Изображение клипа с кольцом весна гарантируя точное.. усилием запирания.

Фиг.2
Рисунок 2: Инъекции точки ПСП и стволовых клеток Графическое изображение точек впрыска:. 2 стереотаксически выполненные инъекции SAP в эпицентре поражения, а затем 4 инъекции НПС в соседних колонках спинных на расстоянии 2 мм каудально и ростральнее от эпицентра.

Рисунок 3
(а) имплантированные субдуральной катетер для того, чтобы администрировать факторы роста:. катетер фиксируют несколько швов 6,0 На параспинальных мышц; Небольшое отверстие в твердой мозговой оболочки в С5; субдуральные расположение катетера с открытым концом катетера близко к месту поражения у С7 / T1. (Б) Катетер подключен к микро насоса, помещенный в субдуральной выемки на боковой фланг.

Рисунок 4
Рисунок 4: Успешное осуществление ПСП и НПС в шейного отдела спинного мозга флуоресцентной окраски (DAPI фон, синий) продольного сечения травмированного спинного мозга крысы.. Меченые ПСП (QL6-FITC, зеленый) были объединены в эпицентре поражения. Введенный NPC (DsRed положительный, красный) диффундировавших вРостральные и хвостовой направления. Шкала бар относится к 5 мм.

Рисунок 5
Рисунок 5:. Nanofiber леса формирование с помощью сканирующего электронного микроскопа (SEM) изображение, показывающее нановолокон образование эшафот собранных ПСП. Шкала бар относится к 1 мкм).

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Этот протокол был разработан, чтобы позволить читателю выполнить шейки модель травмы у крыс и использовать комбинированное лечение подход с ПСП и NPC, способствующих лучшему восстановлению после шейки ТСМ.

В частности, по сравнению с другими шейки матки моделей травм, таких как (Hemi) -transection модели или падение веса и сотрясением мозга моделей, клип ушиб / модель сжатия представляет, как основные, патофизиологические механизмы травмы - ушиб и со сжатием и, следовательно имитирует лучшие клинические условия. В то время как хорошо известно, для использования в крысы и мыши грудного отдела позвоночника 7-11, недавно были адаптированы для использования в шейном отделе позвоночника. Это было важным шагом, поскольку шейные травмы спинного мозга являются наиболее часто видели в клинике и шейки матки анатомии значительно отличается от грудного отдела позвоночника. Кроме того, шейки матки SCI, страдающие от тетрапарез стремятся вернуть по крайней мере, частичное двигателя Fпомазание их верхних конечностей.

Сложных аспектов экспериментальной шейки ТСМ, однако, высокая смертность, что увеличивает в ростральной направлении от С7 до C5 и может доходить до 20-30% в среднем и верхнем шейном отделе позвоночника. Кроме того, развивающиеся нервные корешки (особенно у С5 / 6) чувствительны к манипуляции, а в случае, если они не сохранились, повреждение и раздражение может вызвать жевание лобных лапы, приводящих к необходимости ранней жертву животных. В общем, животные с раком шейки травмы спинного мозга нужно много послеоперационной вниманием и заботой и показать длительный курс восстановления. С другой стороны, в дополнение к тщательной хирургической подготовки, эти проблемы могут быть решены, частично путем адаптации тяжесть травмы, выбрав соответствующий зажим замыкающее усилие (например, от 15 до 35 г) и достаточное время отсечения (например, 1 мин). Изменение этих параметров приводит к различным степени тяжести травмы (легкая, Moderaте или тяжелой SCI). Кроме того, может быть риск хирург зависимости или неравномерное распределение ущерба. Для решения этих проблем использование клипа аппликатора вариант, где клип всегда освобождается и, следовательно, закрыт с той же скоростью и, следовательно, скорости. Перед привязки клипа является обязательным для того, чтобы клип имеет свою правильную позицию и охватывает весь спинной мозг одинаково. Специальный хирургический задача заключается в повторном воздействии на месте повреждения удаления рубцовой ткани от твердой мозговой оболочки. Рекомендуется, чтобы эта процедура выполняется микро-хирургическим путем, с помощью острых подготовки, и избежать какого-либо давления или потянув фиксированной мозга.

Самоорганизующиеся пептиды были идентифицированы, имеющих потенциал для преодоления полость и, кроме того, для улучшения ингибирующего среду в месте повреждения, наконец, даже, ведущей к регенерации аксонов и прорастания 5, 12,13,14. QL-6 нановолокна собираются, чтобы строительных лесов мостаПолость интрамедуллярная и, таким образом, может обеспечить матрицы для аксонов и регенерацию и улучшить ингибирующее среде перед трансплантацией клеток. Преимущества этих пептидов заключается в их низкой вязкости (жидкости) и нейтральном рН. Особенно в сравнении с высоковязкие гидрогели или ткани каркасы, ПСП может легко вводится в поврежденный спинной мозг и дополнительных травм, полученных в результате инъекции сама ограничены.

Хотя QL6 нановолокон сами могут улучшить выживаемость клеток 4,15, тем не менее, использование факторов роста, кажется, выгодно 16,17,18,19,20,21. Они могут быть введены либо гидрогелей рилизинг факторов роста 22, или с помощью применения через осмотические насосы (как описано выше). Осмотические насосы, соединенные с субдуральной катетеров имеют то преимущество, непрерывного и контролируемого высвобождения и, таким образом, обогащение шейного отдела спинного жидкости (СМЖ). Размещение субдуральной катетер, однако, чаllenging особенно в отношении подавляющего рубцов, которые могли произойти после нескольких недель после травмы.

Для того, чтобы обеспечить хорошие условия тканей для NPC выживания и интеграции, несколько исследований выбрали точек впрыска в соседнем белом веществе, 2 мм ростральной или хвостового для поражения сайта, а не непосредственно в эпицентре поражения 4,15,18. Там, НПС, имеют больше шансов на выживание, интеграции и дифференциации в астроциты, олигодендроциты или нейроны, и могут переместиться в сторону или в поражении в результате аксонов и повышения аксонов подключения.

После освоения этих методов это предлагаемый протокол мощь, которая будет принята индивидуальных пользователей в соответствии с их потребности и интересы, охватывающих изменения уровня и тяжести травмы, использование различных типов клеток или факторов роста, или добавлением других нервно-защитные вещества ,

Врезюме, комбинированное лечение с ПСП и НПС может предложить новый и перспективный подход, преодолевая самые сложные препятствия в лечении ТСМ: полостей и тканей рубцов.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Acknowledgments

Мы хотели бы выразить признательность за финансовую поддержку, за эту работу от Канадского института исследований в области здравоохранения (CIHR), Krembil Family Foundation, Halbert кафедра Neural восстановления и регенерации, Филипп и Пегги DeZwirek, и Гордон Яо за вклад Рисунок 2 . Клаус Zweckberger был профинансирован за счет гранта от "Deutsche Forschungsgesellschaft" (DFG).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Aneurysmal clip SharpTech
Surgical microscope Leica
Micro injection system World Precision Instruments, Inc.
Small animal stereotaxic instrument David Kopf Instruments
Hamilton syringe Hamilton company
Subdural pumps Alzet osmotic micro pump 1007D
Surgical instrument Fine Science tools
Isoflurane USP Pharmaceutical Partners of Canada Inc.
0.9% Sodium Chloride injection USP Baxter
7.5% Povidone iodine Purdue Pharma
70% Isopropyl alcohol USP GreenField Ethanol Inc.
QL6 SAP Covidien
0.4% Trypan blue Gibco
Platelet-Derived Growth Factor (PDGF) Sigma
Epidermal Growth Factor (EGF) Sigma
Fibroblast Growth Factor (FGF) Sigma

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Sekhon, L. H., Fehlings, M. G. Epidemiology, demographics, and pathophysiology of acute spinal cord injury. Spine (Phila Pa 1976). 26, S2-S12 (2001).
  2. Fehlings, M. G., Tator, C. H., Linden, R. D. The relationships among the severity of spinal cord injury, motor and somatosensory evoked potentials and spinal cord blood flow). Electroencephalogr Clin Neurophysiol. 74, 241-259 (1989).
  3. Thuret, S., Moon, L. D., Gage, F. H. Therapeutic interventions after spinal cord injury. Nat Rev Neurosci. 7, 628-643 (2006).
  4. Iwasaki, M., Wilcox, J. T., Nishimura, Y., Zweckberger, K., Suzuki, H., Wang, J., Liu, Y., Karadimas, S. K., Fehlings, M. G. Synergistic effects of self-assembling peptide and neural stem/progenitor cells to promote tissue repair and forelimb functional recovery in cervical spinal cord injury. Biomaterials. 35, 2617-2629 (2014).
  5. Holmes, T. C., de Lacalle, S., Su, X., Liu, G., Rich, A., Zhang, S. Extensive neurite outgrowth and active synapse formation on self-assembling peptide scaffolds. Proc Natl Acad Sci U S A. 97, 6728-6733 (2000).
  6. Dong, H., Paramonov, S. E., Aulisa, L., Bakota, E. L., Hartgerink, J. D. Self-assembly of multidomain peptides: balancing molecular frustration controls conformation and nanostructure. J Am Chem Soc. 129, 12468-12472 (2007).
  7. Rivlin, A. S., Tator, C. H. Effect of duration of acute spinal cord compression in a new acute cord injury model in the rat. Surg Neurol. 10, 38-43 (1978).
  8. Poon, P. C., Gupta, D., Shoichet, M. S., Tator, C. H. Clip compression model is useful for thoracic spinal cord injuries: histologic and functional correlates. Spine (Phila Pa 1976). 32, 2853-2859 (2007).
  9. Fehlings, M. G., Tator, C. H. The relationships among the severity of spinal cord injury, residual neurological function, axon counts, and counts of retrogradely labeled neurons after experimental spinal cord injury. Exp Neurol. 132, 220-228 (1995).
  10. Joshi, M., Fehlings, M. G. Development and characterization of a novel, graded model of clip compressive spinal cord injury in the mouse: Part 2. Quantitative neuroanatomical assessment and analysis of the relationships between axonal tracts, residual tissue, and locomotor recovery. J Neurotrauma. 19, 191-203 (2002).
  11. Joshi, M., Fehlings, M. G. Development and characterization of a novel, graded model of clip compressive spinal cord injury in the mouse: Part 1. Clip design, behavioral outcomes, and histopathology. J Neurotrauma. 19, 175-190 (2002).
  12. Cigognini, D., Satta, A., Colleoni, B., Silva, D., Donegà, M., Antonini, S., Gelain, F. Evaluation of early and late effects into the acute spinal cord injury of an injectable functionalized self-assembling scaffolds. PLoS One. 6, (5), e19782 (2011).
  13. Hou, T., Wu, T., Wang, L., Liu, Y., Li, M., Long, Z., Chen, H., Li, Y., Wang, Z. Cellular prostheses fabricated with motor neurons seeded in self-assembling peptides promotes partial functional recovery afters spinal cord injury in rats. Tissue eng Part A. 18, (9-10), (2012).
  14. Gelain, F., Cigognini, D., Caprini, A., Silva, D., Colleoni, B., Donegà, M., Antonini, S., Cohen, B. E., Vescovi, A. New bioactive motifs and their use in functionalized self-assembling peptides for NPC differentiation and neural tissue engineering. Nanoscale. 4, (9), 2946-2957 (2012).
  15. Liu, Y., Ye, H., Satkunendrarajah, K., Yao, G. S., Bayon, Y., Fehlings, M. G. A self-assembling peptide reduces glial scarring, attenuates post-traumatic inflammation and promotes neurological recovery following spinal cord injury. Acta Biomater. 9, 8075-8088 (2013).
  16. Rosner, J., Avalos, P., Axosta, F., Liu, J., Drazin, D. The potential for cell therapy combined with growth factors in spinal cord injury. Stem Cell Int. 826754 (2012).
  17. Lu, P., Wang, Y., Graham, L., McHale, K., Gao, M., Wu, D., Brock, J., Blesch, A., Rosenzweig, E. S., Havton, L. A., Zheng, B., Conner, J. M., Marsala, M., Tuszynsky, M. H. Long distance growth and connectivity of neural stem cells after severe spinal cord injury. Cell. 150, 1265-1273 (2012).
  18. Karimi-Abdolrezaee, S., Schut, D., Wang, J., Fehlings, M. G. Chondrioitinase and grwoth factors enhance activation and oligodendrocyte differentiation of endogenous neural precursor cells after spinal cord injury. PLoS One. 7, (5), e37589 (2012).
  19. Awad, B. I., Carmody, M. A., Steinmetz, M. P. Potential role of growth factors in the management of spinal cord injury. World Neurosurg. (13), 1875-8750 (2013).
  20. Kojima, A., Tator, C. H. Intrathecal administration of epidermal growth factor and fibroblast growth factor 2 promotes ependymal proliferation and functional recovery after spinal cord injury in adult rats. J Neurotrauma. 19, (2), 223-238 (2002).
  21. Karimi-Abdolrezaee, S., Eftekharpour, E., Wang, J., Cindi, M. M., Fehlings, M. G. Delayed trasplantation of adult neural presursor cells promotes remyelination and functional neurological recovery after spinal cord injury. J Neurosci. 26, (13), 3377-3389 (2006).
  22. Burdick, J. A., Ward, M., Liang, E., Young, M. J., Langer, R. Stimulation of neurite outgrowth by neurotrophins delivered from degradable hydrogels. Biomaterials. 27, 452-459 (2006).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics