לוקליזציה, זיהוי, וכריתה של בסיס מיון Murine שומן

Medicine

Your institution must subscribe to JoVE's Medicine section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

בשל קשר דרסטי והשלילי בין השמנת יתר ומחלות רקע אחרים, מחקר על תפקיד השומן משחק במחלה ועל בריאות כללית היא מוצדקת. אנו מציגים פרוטוקול לבידוד והכריתה של מחסני שומן ומאפשרים לחקר השומן באמצעות באתר ובשיטות חוץ גופית.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations | Reprints and Permissions

Mann, A., Thompson, A., Robbins, N., Blomkalns, A. L. Localization, Identification, and Excision of Murine Adipose Depots. J. Vis. Exp. (94), e52174, doi:10.3791/52174 (2014).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Introduction

שומן היה חלש בולטת באור זרקורי התקשורת, כתוצאה מהעלייה הדרמטית של השמנת יתר במהלך העשורים האחרונים של המאה ה -20. השמנה כיום משפיעה על יותר משליש ממבוגרים ו -17% מילדים ובני הנוער בארצות הברית (ארה"ב) 1. פורש את כל הקבוצות האתניות, מחקר סטטיסטי המקיף את מגיפת ההשמנה הראה שיש לי שחורים שאינו היספנים השיעור מותאם לגיל הגבוה ביותר של השמנת יתר (49.5%) בהשוואה לאמריקאים מקסיקניים (40.4%), כלל ההיספאנים (39.1%), ואי לבנים היספני (34.3%) 2. ההשפעה הכלכלית של השמנת יתר היא גם דאגה גוברת למערכת הבריאות. בשנת 2012, הוערך כי העלות השנתית של טיפול הרפואית לטיפול בהשמנה בארה"ב בשנת 2005 הייתה $ 190,200,000,000, כמעט 21% מתקציב ההוצאות רפואיות הכללי. למרבה הצער, השמנה בילדות הייתה מוערך להיות אחראי על 14 מליארד דולרים בעלויות רפואיות ישירות לבד. מבחינה סטטיסטית, נקבע כי העלות הממוצעת של רפואיתאנשים עם השמנת יתר היו גבוה יותר 2741 $ בשנה מאשר אלו ללא תחלואה זה 3-5.

השמנת יתר היא גורם סיכון עיקרי למגוון רחב של מצבים כגון: סוכרת מסוג 2, דיסליפידמיה, מחלות לב וכלי דם, סרטן, הפרעות שלד שרירים ודלקת כרונית. השמנה קשורה עמוק לפתוגנזה של תסמונת מטבולית ומחלות כרוניות אחרות 6-8. עם קשרי דרסטי ושליליים כגון בין השמנת יתר ומחלות רקע אחרים, מחקר מדעי מיקד את תשומת לב כדי להבין את המגיפה הנוכחית ותפקידים המגוונים ומרכזיים שמילאו שומן טוב יותר.

מבחינה הסטורית, רקמת שומן נחשבה חסרת חשיבות ונתפסה רק כרקמת מילוי פשוטה. נכון לעכשיו, שומן הוכח לשחק הרבה תפקידים חיוניים בתפקוד הגוף ב: חילוף חומרים, ויסות הורמון, דלקת, הגנה ובידוד 9. רקמת שומן מורכבת בעיקר מadipocytes אלא גם מכיל pericytes, תאי האנדותל, מונוציטים, מקרופאגים ותאי גזע pluripotent 8. רקמת שומן מופצת בכל הגוף בתחנות שונות. ניתן למצוא המחסנים העיקריים subdermally, תת-עורית, לשריר, ולעומק 10. מחסני שומן הוכחו לי פרופילי מחסן ספציפיים חילוף חומרים, אשר הראו רגישות ספציפית מחסן להשמנה והפרעות הקשורות 8.

באופן מסורתי, רקמת שומן כבר מסווגת לשני סוגים עיקריים: רקמת שומן לבנה (WAT) ורקמת שומן חומה (BAT); למרות שהספרות האחרונה מציינת את הנוכחות של קבוצה שלישית הוטבלה שומן brite או בז '11. רקמת שומן הוכח לי צבעים שונים, מורפולוגיות, פונקציות מטבוליות, תכונות ביוכימיות ודפוסים גנטיים ביטוי 10. יש לי adipocytes בWAT, טיפה אחת גדולה של שומנים וכמויות משתנות של המיטוכונדריה. WATנמצא דומיננטי ביישובים תת-עורי והקרביים של הגוף. פונקציות WAT כאתר של אחסון אנרגיה והגנה על איברים בעיקר. יש לי adipocytes בBAT מורפולוגיה multilocular והמיטוכונדריה בשפע. BAT ממוקם בעיקר בצוואר וכלי דם גדולים של בית החזה, כמו גם את השכמות 12. BAT פונקציות בעיקר בהתנהגויות משקיעה באנרגיה, המסדירות thermogenesis 7. שומן Brite או בז 'הוכח לשתף מורפולוגיה דומה וביטוי לBAT אבל כבר מצא להיות מקור מתאי שומן לבן 11.

השיטה הניתוחית שתוארה בכתב היד הזה מספקת לחוקרים עם היכולת לנתח תופעות שונות שגורמים כגון: סביבה, תרופות, וגנטיקה, יש בשומן; כמו גם את תפקיד השומן מועיל או מזיק משחק במחלה ועל בריאות כללית. כמו כן, מספק דרך לזהות ולבודד סוגים שונים של רקמת שומן ללאפשר להבין טוב יותר של מערכות יחסים ביוכימיים והבדלים בין מחסנים. זה יכול לסייע בקביעת הקשר בין מיקום, פונקציה, וסוגים של שומן בגוף. שיטה מתוארת זה משיגה זאת על ידי מתן האמצעי להדמיה גולמית, ניתוח ביטוי גנים, ניתוח ביטוי חלבון, בדיקה היסטולוגית, ובידוד של שורות תאים עיקריות למחקרים במבחנה. נכון לעכשיו יש מאמרים רבים המספקים תובנה התנהגות חילוף חומרים של מחסנים שונים שומן, כמו גם במקומות אנטומיים שלהם; אבל לא מספק שיטה לעומק על איך למקם במיוחד, לזהות, ולבודד מחסנים אלה. שיטה ניתוחית זו מספקת טכניקה מדויקת שמאפשרת בידוד של מחסנים מרובים עם כמות מינימאלית של נתיחה וזיהום בהשוואה לאחרים שיטות שנועדו לבודד ממחסנים אחד או שתיים 13-14.

המטרה של פרוטוקול זה היא לספקשיטה מדויקת לזיהוי ולבידוד סוגים שונים של מחסני שומן ממקומות אנטומיים רבים של.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

הערה: כל הנהלים בבעלי החיים בוצעו באישור הוועדה המוסדי הטיפול בבעלי חיים והשימוש (IACUC) מאוניברסיטת סינסינטי ובהתאם למדריך לטיפול והשימוש בחי מעבדה מהמכון הלאומי לבריאות (NIH פרסום מס . 85-23, מתוקן 1996).

1. להרדים ולעקר את העכבר

  1. מניחים את העכבר בdropbox המכיל מינון supratheraputic של isoflurane ולאפשר לשאוף להשפעה. לאחר העכבר הוא מורדמים, להסיר מהתיבה.
  2. Cervically לנקוע כאמצעי שני של המתת חסד.
  3. לעקר את פני השטח החיצוניים של העכבר על ידי ניקוי את החיה עם אתנול 70%.

2. זיהוי ובידוד של שלושה בסיס מיון שומן שונה

  1. רקמות שומן חום בידוד (BAT):
    1. ודא שהפרווה היא רטובה מטיהור האלכוהול כדי לסייע בחיתוך דרך Laye אפידרמיס ועוריrs.
    2. מקם את העכבר במצב שכיבה עם גב על השולחן.
    3. תפוס את העור ממש מתחת לסרעפת עם מלקחיים, מעלית ולחתוך עם מספריים.
    4. לחתוך רוחבי סביב ההיקף של העכבר כדי לחשוף את הצפק.
    5. לחשוף את מחסן BAT בצורת פרפר על ידי degloving המחצית העליונה של העכבר. החזק את הנספחים והבטן התחתונים ביד אחת ומושך את העור כלפי מעלה, אל הראש.
    6. כוון את העכבר, כך שהוא נמצא בעמדה נוטה על השולחן. היזהר שלא לזהם את המחסן החשוף עם שיער.
    7. מכשירים נקיים כירורגית ושינוי לזוג טרי של כפפות.
    8. אתר את השכמות ומחסן מקביל. מוציא בזהירות את כל שומן לבן שטחי על גבי הפרפר ולאחר מכן לנתח את הפרפר של שומן חום interscapular. להיות זהיר, כדי למנוע את השריר קשור קשר הדוק עם שומן החום.
      הערה: השימוש במיקרוסקופ לנתיחה מומלצת להסרת wשומן היט, כמו גם בהפרדה של שומן החום מעצם השכמה.
    9. להסיר את שומן המחסן ולהעביר לצינור microcentrifuge 2 מיליליטר.
    10. אם RNA או חלבון הוא להיעקר, להקפיא את הרקמה על ידי טבילה בחנקן נוזל חנות ב -80 ° C. להקפיא את המדגם בבת אחת כדי למנוע השפלה. אם culturing, לכסות את הרקמה בDMEF-12 ולהגדיר על קרח עד שכל הדגימות שנאספו לתרבות (מידע נוסף).
  2. בידוד של רקמה התת עורית שומן (SQ), רקמות שומן לבן דיפו (WAT):
    1. לשים על זוג טרי של כפפות כדי לא לזהם צולב בין מחסני שומן.
    2. לחשוף את המפשעה, מחסני SQ משולשים על ידי דה-gloving המחצית התחתונה של העכבר. החזק את הנספחים ובית החזה העליונים ביד אחת ומושך את העור כלפי מטה לכיוון הרגליים ביד השנייה.
    3. כוון את העכבר במצב שכיבה בזמן נזהר שלא לזהם את המחסן החשוף עם שיער.
    4. surgica הנקימכשירי l ושינוי לזוג טרי של כפפות.
    5. זהירות לנתח המשולשים של שומן SQ. היזהר שלא לזהם את הדגימה עם שריר, שומן השכן, בלוטות החלב או על ידי חיתוך כל כלים ולזהם את דגימת דם.
      הערה: השימוש במיקרוסקופ לנתיחה מומלצת אם גבולות אינם מוגדרים באופן ברור.
    6. הסר מחסני שומן ולהעביר עד 2 מיליליטר צינורות microcentrifuge.
    7. אם RNA או חלבון הוא להיעקר, להקפיא את הרקמה על ידי טבילה בחנקן נוזל חנות ב -80 ° C. להקפיא את המדגם בבת אחת כדי למנוע השפלה.
    8. עבור מכתים, לתקן או להטביע באוקטובר אם culturing, לכסות את הרקמה בDMEF-12 ולהגדיר על קרח עד שכל הדגימות שנאספו לתרבות (מידע נוסף).
  3. בידוד של אשכי שומן קרבי שומן רקמות (מע"מ) ולבן שומן רקמות (WAT) דיפו:
    1. לשים על זוג טרי של כפפות כדי לא לזהם צולב בין מחסני שומן.
    2. עם מדעssors, לחתוך את הצפק רוחבי, ישירות מתחת לסרעפת. חותך את הצפק מהסרעפת לאמצע פי הטבעת coronally לחשוף אברי בטן.
    3. אתר את האשכים או שחלות ולזהות את רקמת שומן הלבנה המצורפת, הידועה בשם שומן epididymal בזכרים או שומן אשכים אצל נקבות.
    4. מכשירים נקיים כירורגית ושינוי לזוג כפפות חדש
    5. זהירות לנתח שני מחסני שומן epididymal מהאשכים, epididymides, וdeferentia Vasa. או אם נקבה, לנתח בזהירות את שני רפידות שומן האשכים מהשחלות.
    6. הסר מחסני שומן ולהעביר אותם ל- 2 צינורות microcentrifuge מיליליטר.
    7. אם RNA או חלבון הוא להיעקר, להקפיא את הרקמה על ידי טבילה בחנקן נוזל חנות ב -80 ° C. להקפיא את המדגם בבת אחת כדי למנוע השפלה.
    8. עבור מכתים, לתקן או להטביע באוקטובר אם culturing, לכסות את הרקמה בDMEF-12 ולהגדיר על קרח עד שכל הדגימות שנאספו לתרבות (מידע נוסף).

    3. בידוד של רקמות שומן perivascular (PVAT)

    1. בידוד של הלב:
      1. הנח את העכבר במצב שכיבה עם נספחים העליונים ותחתונים מורחבים כלפי חוץ.
      2. נספחים מאובטחים באמצעות קלטת כירורגית.
      3. לאחר מיצוב העכבר כמפורט לעיל, ליצור מתח על ידי ההרמה על תהליך xiphoid עם מלקחיים. חותך אופקי דרך הסרעפת, חושף את החלק התחתון של חלל בית החזה.
      4. תוך שמירה על מתח, על ידי ההרמה על תהליך xiphoid, לחתוך דרך בית החזה superiorly לכיוון הראש, רק לצד של עצם החזה.
      5. להרים את כלוב הצלעות רק נחותה עצם הבריח, ולחתוך לאורכו הנחותים של עצם הבריח לעבר הבית השחי בשני הכיוונים. חלל בית החזה ובתכניו (לב, ריאות, וכו ') צריכים עכשיו להיות ברור לעין.
      6. נקה את חלל בית החזה של דם ונוזל זרים באמצעות ga סטריליuze לספוג את הנוזל. אם איברים או כלי איסוף הקפידו שופע (מידע נוסף).
      7. ברגע שהאזור מנוקה של נוזל, לחתוך את כלי הסמפונות ומצרפים להסיר את הריאות, המאפשר חשיפה טובה יותר של הלב.
    2. לוקליזציה ורקמות כריתה של אבי העורקים perivascular השומן (PVAT):
      1. הסר את האיברים הבאים כלזהות טוב יותר את החלקים הנחותים של אב העורקים: כבד, קיבה, טחול, לבלב, מעי, ומעי גס.
      2. ראשית תתחיל עם זיהוי של הקיבה והוושט. חותך את הוושט בצומת גסטרו-הוושט כדי לשחרר את הבטן מהגוף.
      3. בשלב הבא, לזהות את המעיים ולפדר שמסביב. לחתוך באופן שטחי דרך לפדר, כפי שהוא נמצא קרוב מאוד לחלק הכליות של אב העורקים, ואז "להפעיל את המעיים."
      4. חותך את המעי הגס לשחרר קרוב לפי הטבעת ככל האפשר. לפיכך, לשחרר את הקיבה, המעי ומעי גס מהעכבר.
      5. Reלהזיז את הקיבה, מעי, מעי גס, הלבלב וטחול על ידי חיתוך דרך לפדר המצרף וכלי דם. הלבלב והטחול צריך לבוא בחינם עם הקיבה, המעי ומעי גס.
      6. הסר את הכבד על ידי חיתוך דרך ורידי הכבד ומצרף לפדר, להסיר את כל האונות.
      7. לחתוך את שכבת שומן הקרביים ומקיף את הכליות. השאר את הכליות מחוברים לאב העורקים בvivo לשמש כסמנים גיאוגרפיים למגזרים שונים של אב העורקים.
      8. יש לשטוף את האזור עם סטרילי 1X PBS ולהסיר את כל הנוזל על ידי קליטה עם גזה סטרילית.
      9. באמצעות מיקרו המספריים ומיקרו-מלקחיים, להפריד את אב העורקים מזיקתו לגב עמוד השדרה והקובץ המצורף גחונו לוושט.
      10. לבודד את אב העורקים על ידי ביצוע וניתוק אב העורקים האורך של אב העורקים היורדים מהמוצא בלב להסתעפות באזור הכסל.
      11. לזהות ולבודד את כלי subclavian. לבודד הכלים האלהמהצוואר ועד שורש אב העורקים לחשוף טוב יותר לצומת אב העורקים ושורש בלב.
      12. הסר את בלוטת התימוס ואז לחתוך את עורק brachiocephalic, עורק התרדמה המשותף שמאל, ועורק subclavian שמאל, המאפשר תנועה של הלב.
      13. בסיוע מיקרוסקופ לנתיחה, להציג את שכבת perivascular רקמת שומן (PVAT) המקיפה את אב העורקים.
      14. נקיטת זהירות רבה שלא לצבוט או לסחוט PVAT, משוך בעדינות את דרך PVAT מאב העורקים עם מיקרו-מלקחיים. בעדינות לחתוך את הקובץ המצורף של PVAT לאב העורקים עם מיקרו המספריים החל משעת אזור בית החזה פשוט מעולה למקום שבי הסרעפת ממוקמת.
        הערה: מיקרוסקופ לנתיחה מומלץ.
      15. חזור על תהליך זה לכל האורך של אב העורקים, שסיים באזור אב העורקים infrarenal, הנמצא רק מעולה להסתעפות הכסל של כלי השיט של אב העורקים.
      16. אם PVAT קשת אב העורקים הוא רצוי, השתמש באותה השיטה כדי להסיר את PVAT מג פחותיםurvature של הקשת.
      17. הנח דגימות PVAT לתוך 2 מיליליטר צינור microcentrifuge (ים).
      18. אם RNA או חלבון הוא להיעקר, להקפיא את הרקמה על ידי טבילה בחנקן נוזל חנות ב -80 ° C. להקפיא את המדגם בבת אחת כדי למנוע השפלה. אם culturing, לכסות את הרקמה בDMEF-12 ולהגדיר על קרח עד שכל הדגימות שנאספו לתרבות (מידע נוסף).
        הערה: מחסני שומן נוספים לשקול אם מעוניין בניתוח מחסן שומן מקיף כוללת: retroperitoneal, mesenteric, omental, קרום הלב וpopliteal.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

זיהוי, ולוקליזציה של שומן תת-עורי מפשעתי, שומן חום interscapular, שומן קרביים epididymal (איור 1), כמו גם את שומן קשת אב העורקים perivascular, שומן אב העורקים החזי, שומן אב העורקים suprarenal ושומן אב העורקים infrarenal (איור 2) הושג בהצלחה באמצעות השיטה הניתוחית שתוארה. בדיקה היסטולוגית ובידול בין דגימות BAT וWAT הוערכו באופן חיובי באמצעות Hematoxylin ו Eosin (H & E) מכתים (איור 3). ניתוח של רמות RNA של אדיפונקטין, גמא קולט מופעל proliferator peroxisome (PPAR-γ) (AdipoQ), מפעיל כמו-DFFA (CIDEA), ושומן אחר סמנים ספציפיים וישכנע מוות של תאים נמדדו עבור כל המחסנים מבודדים ונכרתו מעל (מידע לא מוצג).

שורות תאים ראשוניות של תאי שומן תת עורי וadipocytes perivascular היו בתרבית ומבודלת מpreadipocyte ים לתאי שומן בהצלחה לניתוח microarray. Preadipocytes התרבותי יומר לadipocytes אושרה עם כתמי השמן האדום O (איור 4). בידוד מוצלח, תרבות והתמיינות של תאי שומן הושגה לשימוש במחקרים במבחנה, ופעילות החלבון נמדדה בהצלחה. פעילות האנזימטית של מטריצת metaloprotease-2 (MMP2) נמדדה בקבוצת טיפול לעומת השליטה. הפעילות של MMP2 נמדדה באתר בקו adipocyte perivascular עיקרי באמצעות zymography (איור 5).

איור 1
איור 1. מקומות האנטומי של מחסני שומן עכבר C57BL זכר / 6. מחסן () Interscapular שומן חום שומן. שומן שומן תת-עורי דיפו מפשעתי (B). epididymal הקרבי מחסן שומן שומן (C)."Target =" w.jove.com/files/ftp_upload/52174/52174fig1highres.jpg _ blank "> לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.

איור 2
איור 2. מקומות האנטומי של מחסני PVAT בעכבר זכר C57BL / 6. (א) מחסן אבי העורקים קשת perivascular שומן. שומן מחסן perivascular אב עורקים החזי (B). מחסן שומן perivascular אב העורקים Suprarenal (C). מחסן שומן perivascular אב העורקים infrarenal (D). אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.

איור 3
איור 3. צביעת H & E של BAT ושומן WAT. () H הכתמת E של paraformaldehyde הקבוע, C57BL פרפין מוטבע / 6 מדגם עכבר זכר של שומן WAT בהגדלת 40X מכתים (B) H & E של paraformaldehyde הקבוע, C57BL המוטבע פרפין / 6 מדגם עכבר זכרה של בת בהגדלת 40X; 8.. אנא לחץ על כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.

איור 4
איור 4. מכתים השמן האדום O של preadipocytes PVAT התרבותי וadipocytes. הכתמה () השמן האדום O של preadipocytes perivascular אב העורקים בתרבית בתחילת המחקר של בידול בהגדלה 20X עם ניגוד שלב. (ב) מכתים השמן האדום O של adipocytes perivascular אב העורקים בתרבית לאחר 5 ימים של בידול בהגדלה 20X עם ניגוד שלב.es / ftp_upload / 52,174 52174fig3highres.jpg "target =" / _ blank "> לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.

איור 5
איור 5. zymography של adipocytes מובחנת, מבודדת מרקמת שומן perivascular, הפגין פעילות מופחתת של MMP2 שוחרר לאחר טיפול בהשוואה לתאים שלא טופלו (שליטה), * P <0.01 לעומת שליטה.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

השמנת יתר יכול להוביל למארח גדול של תחלואות וההבנה המלאה של התפקיד שממלא שומן אינו מובן במלואו; מחקר לכן המשיך בתחום השומן הוא הכרחי. מודלים של בעלי חיים, במיוחד מודלים עכבריים הם אידיאליים למחקר ראשוני בהתקדמות של מחלות ובדיקות של טיפולי תרופות פוטנציאליים. בשימוש במודלים אלה, בידוד וכריתה של מחסני שומן מדויקים הוא כלי חשוב וההכרחי ביותר במחקר של פתולוגיה של מחלות שומן מושפעת.

בספרות הקיימת לגבי מחסני שומן, יש כמות נכבדת של ספרות לגבי התנהגות חילוף חומרים ווריאציה בין מחסני שומן, כמו גם במקומות אנטומיים שלהם. עם זאת, יש כמה שמספק שיטה לעומק על איך למקם במיוחד, לזהות, ולבודד מחסנים אלה. בהתבסס על הסקירה של שיטות בידוד הנוכחיות של שומן, יש קבוצה קטנה של t פרוטוקוליםכובע לספק מתודולוגיה על איך לבודד את מחסנים אחד או שניים בכל פעם. עם זאת, טכניקה מדויקת שמאפשרת בידוד של מחסנים מרובים עם כמות מינימאלית של נתיחה וזיהום, כמו גם כתובות שיטות שונות של לימוד הדגימות שנאספו היא ייחודית לפרוטוקול זה 13-14.

בתוך מתודולוגיה זו, ישנם מספר צעדים שהם חשובים וחיוני לבידוד וטוהר של המדגם. ניקוי כלים, כפפות ומשטחים לעתים קרובות כדי להסיר שיער ומזהמים הוא צעד הכרחי כדי להימנע מזיהום המחסן. בעת חיתוך העור רוחבי סביב ההיקף של העכבר כדי לחשוף את הצפק לdegloving, הוא חיוני, כדי למנוע קיצוץ עמוק מדי. חיתוך הצפק יעשה degloving קשה מאוד ויעלה את הפוטנציאל לזיהום של המדגם. כאשר מוציאים את מחסני שומן SQ הוא חיוני כדי לזהות את הגבולות המשולשים למוסך לפני מוציא כל המודעותipose. כמו כן, קיצוצים זהירים צריכים להיעשות כדי להימנע משרירים, וסמוך כלי, בלוטות ושומן. זה ימנע זיהום של המדגם משומן חלופי, רקמת בלוטות, שרירים או בדם.

ניתן למצוא המגבלה העיקרית לבידוד וכריתה של מחסני שומן, בשיטה זו ושיטות דומות אחרות בהגדרה של גבולות מחסנים מסוימים. בשל גבולות מוגדרים היטב בתחנות, כגון מחסנים תת-עורי, הבידוד חסר כמות קטנה של זיהום משומן השכן יכול להיות מאתגר. ניתן למצוא מגבלה נוספת בהבטחה מספיק רקמה נאסף לניסויים נוספים בתחנות כלי דם קשורה. מגבלה זו לעתים דורשת איגום של דגימות, אם כי זה תלוי באתר של בידוד והדיאטה הקשורים לבעלי החיים.

לאחר מחסני השומן מבודדים, הם יכולים להיות מנוצלים עבור מגוון רחב של מבחני. השומן יכול להיות שימושד למחקרים מולקולריים כגון ביטוי חלבון, פעילות אנזים וניתוח ביטוי גנים. בנוסף, ניתן לבודד את תאי שומן לקו תא ראשוני בניסויים במבחנה. גם קווי תאים הנציחו יכולים לשמש למחקרים במבחנה, אך תאים אלמותיים אינם אמינים כמו שורות תאים מבודדות עיקריות. לבסוף, השומן יכול להיות קבוע או קפוא ב אוקטובר לבדיקה היסטולוגית לזהות חדירות לויקוציטים, לוקליזציה חלבון, כמו גם אפיון של מורפולוגיה adipocyte.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Isoflurane Med-Vet International #RXISO-250
70% Ethanol Fisher 07-678-001
DMEF-12 Sigma Aldrich D-6421 Warm in waterbath before putting on tissue.
2 ml Microcentrifuge tubes Midsci MCT-200-C-S
Phosphate buffered saline Sigma Aldrich P5368-10PAK

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Ogden, C. L., Carroll, M. D., Kit, B. K., Flegal, K. M. Prevalence of obesity in the United States, 2009-2010. NCHS Data Brief. 82, 1-8 (2012).
  2. Flegal, K. M., Carroll, M. D., Kit, B. K., Ogden, C. L. Prevalence of obesity and trends in the distribution of body mass index among US adults, 1999-2010. 307, (5), 491-497 (2012).
  3. Cawley, J., Meyerhoefer, C. The medical care costs of obesity: an instrumental variables approach. Journal of Health Economics. 31, (1), 219-230 (2012).
  4. Obesity accounts for 21 percent of U.S. health care costs, study finds. Cornell University. Available from: http://www.sciencedaily.com/releases/2012/04/120409103247.htm (2012).
  5. Marder, W., Chang, S. Childhood Obesity: Costs, Treatment Patterns, Disparities in Care, and Prevalent Medical Conditions. Thomson Medstat Research Brief. (2006).
  6. Cortez, M., Carmo, L. S., Rogero, M. M., Borelli, P., Fock, R. A. A high-fat diet increases IL-1, IL-6, and TNF-α production by increasing NF-κB and attenuating PPAR-γ expression in bone marrow mesenchymal stem cells. Inflammation. 36, (2), 379-386 (2013).
  7. Sanchez-Gurmaches, J., Hung, C. M., Sparks, C. A., Tang, Y., Li, H., Guertin, D. A. PTEN loss in the Myf5 lineage redistributes body fat and reveals subsets of white adipocytes that arise from Myf5 precursors. Cell Metab. 16, (3), 348-362 (2012).
  8. Sethi, J. K., Vidal-Puig, A. J. Thematic review series: adipocyte biology. Adipose tissue function and plasticity orchestrate nutritional adaptation. J Lipid Res. 48, (6), 1253-1262 (2007).
  9. Aarsland, A., Chinkes, D., Wolfe, R. R. Hepatic and whole-body fat synthesis in humans during carbohydrate overfeeding. Am J Clin Nutr. 65, (6), 1774-1782 (1997).
  10. Park, A., Kim, W. K., Bae, K. H. Distinction of white, beige and brown adipocytes derived from mesenchymal stem cells. World J. Stem Cells. 6, (1), 33-42 (2014).
  11. Wu, J., et al. Beige adipocytes are a distinct type of thermogenic fat cell in mouse and. 150, (2), 366-376 (2012).
  12. Giralt, M., Villarroya, F. White, brown, beige/brite: different adipose cells for different functions. Endocrinology. 154, (9), 2992-3000 (2013).
  13. Casteilla, L., Pénicaud, L., Cousin, B., Calise, D. Choosing an adipose tissue depot for sampling: factors in selection and depot specificity. Methods Mol. Biol. 456, 23-38 (2008).
  14. Grant, R., Youm, Y. H., Ravussin, A., Dixit, V. D. Quantification of adipose tissue leukocytosis in obesity. Methods Mol. Biol. 1040, 195-209 (2013).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics