ייצור ושימוש בLentivirus לתאי סלקטיבי transduce הראשי oligodendrocyte מבשר ל

Developmental Biology

Your institution must subscribe to JoVE's Developmental Biology section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations | Reprints and Permissions

Peckham, H. M., Ferner, A. H., Giuffrida, L., Murray, S. S., Xiao, J. Production and Use of Lentivirus to Selectively Transduce Primary Oligodendrocyte Precursor Cells for In Vitro Myelination Assays. J. Vis. Exp. (95), e52179, doi:10.3791/52179 (2015).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Myelination הוא תהליך מורכב שכרוכים בשני תאי עצב ותאי גליה המיאלין יוצרים, oligodendrocytes במערכת העצבים המרכזית (CNS) ותאי שוואן במערכת העצבים ההיקפית (PNS). אנו משתמשים במבחנה assay myelination, מודל שנקבע ללימוד myelination CNS במבחנה. כדי לעשות זאת, תאי מבשר oligodendrocyte (OPCs) מתווספים לנוירונים המטוהרים גנגליון שורש הגבי מכרסם העיקרי (DRG) כדי ליצור שיתוף תרבויות myelinating. על מנת לחקור את אופן ספציפי התפקידים שחלבונים מסוימים שהביעו oligodendrocytes מפעילים על myelination פיתחנו פרוטוקולים שסלקטיבי transduce OPCs באמצעות lentivirus ביתר סוג בר, חלבונים שליליים פעילים constitutively או דומיננטיים לפני שזורע על נוירונים DRG. זה מאפשר לנו לחקור את אופן ספציפי את התפקידים של חלבוני oligodendroglial אלה בויסות myelination. יכולים להיות מיושמים גם בפרוטוקולים במחקר של otסוגי תאיה, ובכך לספק גישה המאפשרת מניפולציה סלקטיבית של חלבונים לידי ביטוי בסוג תא רצוי, כגון oligodendrocytes למחקר הממוקד של איתות ומנגנוני פיצוי. לסיכום, שילוב של assay myelination במבחנה עם OPCs lentiviral נגוע מספק כלי אסטרטגי לניתוח של מנגנונים מולקולריים המעורבים בmyelination.

Introduction

Myelination של אקסונים הוא חיוני להעברה מהירה ויעילה של פוטנציאל פעולה בשתי מערכות העצבים המרכזיות והיקפיות. תאים מיוחדים, תאי שוואן במערכת העצבים ההיקפית וoligodendrocytes במערכת העצבים המרכזית, לעטוף וensheathe האקסונים במיאלין, ביעילות בידוד העצב והקלת הולכה קופצנית 1. תהליך היווצרות של מעטפת המיאלין ניתן ללמוד במבחנה באמצעות נוירונים ברשתית גנגליון 2, nanofibers המהונדס 3, או נוירונים גנגליון שורש הגבי שיתוף תרבותי עם שני תאי שוואן 4 או oligodendrocytes 5-7. Assay myelination במבחנה הוא מודל הוקם לחקר myelination מערכת עצבים וזה משכפל רב של התהליכים הבסיסיים המתרחשים במהלך myelination in vivo 5-8. Assay כרוך coculture של אוכלוסיות מטוהרים של הגבי שורש גנגליון (DRG) נוירונים, עם OPCs (לגmyelination NS) או בתאי שוואן (לmyelination PNS). בתנאים מסוימים תאי myelinating אלה ensheathe אקסונים DRG במאומת מבני גיליון הורה, אולטרה, רב-שבשבת של בידוד קרום פלזמה המבטא את אותו משלים של חלבונים ספציפיים המיאלין הנוכחיים in vivo.

מודל התא הנפוץ ביותר של לימוד myelination CNS במבחנה הוא שיתוף התרבויות של נוירונים DRG וOPCs, אשר שימשו בהצלחה כדי לחקור את ההשפעה שגורמים אקסוגניים כגון neurotrophins להפעיל על myelination CNS במבחנה 5,6. גורמים אקסוגניים כגון גורמי גדילה או מעכבים תרופתיים מולקולה קטן היו בשימוש נרחב כדי ללמוד את התפקיד של מסלולי איתות בmyelination באמצעות 7,9 מודל coculture DRG-OPC. עם זאת, בהגדרות שיתוף התרבות המעורבות המכילות שני תאי העצב וoligodendrocytes, הוא נשאר באופן רשמי ייתכן שגם גורמי גדילה או pharמעכבי macological יכלו הפעילו השפעות על שני נוירונים DRG וoligodendrocytes (OL). זה עושה מציע את היכולת לנתח באופן ספציפי התפקידים שהחלבונים לידי ביטוי רק על ידי DRGs או oligodendroglia מפעיל על myelination באמצעות מערכת תא הכפולה הזה. כדי לאשר באופן חד משמעי כי מסלול האיתות בoligodendroglial ישירות מסדיר myelination, התמרה lentiviral של OPCs, לפני זריעה על נוירונים DRG לassay myelination במבחנה, הוכיח להיות דרך אלגנטית לביטוי יתר שני wild-type וחלבוני מוטציה, כמו גם כביטוי מציאה של חלבונים הביעו constitutively ידי oligodendrocytes. כך גישה זו מציעה שדרת לחקור באופן ספציפי ולטפל מסלולי איתות תוך oligodendrocytes ללימוד myelination 9,10.

במאמר זה, אנו מדווחים שיטות שפיתחנו לביטוי יתר של חלבון של עניין באופן סלקטיבי בoligodendrocytes באמצעות lentiviralגישה ללימוד myelination במבחנה. הטכניקה מתחילה עם הדור של וקטורי ביטוי המכילים את הגן של עניין, יהיה זה בסוג בר, צורה שלילית פעילה constitutively או דומיננטית אשר לאחר מכן משובטות לאחר מכן לתוך וקטור pENTR (pENTR L1-L2 pENTR4IRES2GFP). וקטור זה (המכיל את הגן של עניין), תורם promotor CMV (pENTR L4-R1 pENTR-pDNOR-CMV) וlentivector 2K7 משולבים בתגובת אנזים לייצר וקטור 2K7 מכיל אמרגן CMV, הגן של עניין, אתר פנימי ריבוזומלי כניסה וGFP (איור 1). מבנה זה Gateway המשובט 2K7 בשילוב עם מעטפת וירוס PMD2.G וחבילת וירוס pBR8.91 יכול להיות שותף transfected לתאי HEK293T ליצור lentivirus שלאחר מכן ניתן להשתמש כדי transduce OPCs. ברגע שנדבק בlentivirus OPCs להביע רמה גבוהה של החלבון של עניין. אז יכול להיות שנזרע OPCs אלה על תרבויות נוירון DRG ועל ההשפעה שביטוירמות גבוהות של החלבון הרצוי מפעילה על myelination יכול להיחקר. שיתוף התרבויות מוערכות לביטוי חלבון המיאלין על ידי ניתוח כתם מערבי ומדמיינות ליצירת מגזרי axonal myelinated ידי immunocytochemistry.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

הערה: כל בעלי החיים המשמשים למחקר זה היו מעורב מין וגדלה במתחם בעלי החיים מהמחלקה לאנטומיה ופתולוגיה ומכון Florey of Neuroscience והמחקר לבריאות נפש באוניברסיטת מלבורן. נהלי כל החיה אושרו על ידי בעלי החיים ועדות אתיקה לניסויים באוניברסיטת מלבורן.

1. שיבוט של 2K7 Lentivector

  1. לפני שיבוט הגן של עניין לתוך וקטור lentiviral 2K7, subclone הגן לתוך וקטור pENTR (3637 נ"ב, Kanamycin עמיד) תוך שימוש בטכניקות מולקולריות סטנדרטיים 11. השתמש באתרי הגבלת EcoRI וSacII לsubcloning.
  2. הגברה של Lentivector 2K7
    1. להפוך DNA lentivector 2K7 בעדינות על ידי הערבוב של ה- DNA פלסמיד עם תאים מוסמכים 100 ng ולדגור על קרח למשך 30 דקות.
    2. DNA הלם חום / תאים מוסמכים לערבב על 42 מעלות צלזיוס למשך 90 שניות וצלחת אותם על צלחות LB-אגר המכילות את שני ampicillin (100 מיקרוגרם / מיליליטר) וכלורמפניקול (15 מיקרוגרם / מיליליטר) ב 37 מעלות צלזיוס במשך 16-18 שעות.
      הערה: כלורמפניקול משמש למניעת רקומבינציה בין חזרות מסוף הארוכות.
    3. למחרת, לגדול נבחרו שיבוטים חיידקים בתקשורת LB המכילה את שני אמפיצילין (100 מיקרוגרם / מיליליטר) וכלורמפניקול (15 מיקרוגרם / מיליליטר) ב 37 מעלות צלזיוס במשך 16-18 שעות. חלץ את ה- DNA באמצעות פלסמיד המסחרי ערכת DNA Maxiprep לפי הוראות יצרן.
  3. תת-שיבוט מוקטור pENTR ל2K7 Lentivector (איור 1)
    איור 1
    איור 1:. ייצוג סכמטי של תהליך רקומבינציה Gateway הגן של עניין, כאן מיוצג כדגל-Erk1, הוא משובט לתוך וקטור pENTR L1-L2. זה מתווסף לוקטור pENTR L4-R1 המכיל את אמרגן CMV ווקטור 2K7 עמוד השדרה. שלושת וקטורים אלה recombined על ידי אנזים LR Clonase II Plus להכנס את הגן-של-עניין והאמרגן לתוך וקטור 2K7 וירוס-מוכן.
    1. להוסיף את הדברים הבאים לצינור 1.5 מ"ל ומערבבים בעדינות:
      L4-R1 pENTR-pDNOR-CMV (אמרגן) (60 BNG) 1-2.5 μl
      L1-L2 pENTR4IRES2GFP (עם גן של עניין) (80 BNG) 1-2.5 μl
      lentivector K7 (80 ng / μl) 1 μl
      TE-חיץ, μl 82-5 pH
      8 μl סה"כ
    2. הסר תערובת אנזים clonase מ-80 ° C ולהפשיר על קרח למשך 2 דקות. ודא שאנזים זה הוא aliquot טרי מ-80 מעלות צלזיוס כאנזים צמצם באופן משמעותי את יעילות שיבוט עם להקפיא להפשיר מחזורים חוזרים ונשנים
    3. הוסף 2 μl של אנזים לכל תגובה ומערבבים היטב באמצעות מערבולת, ודגירת תערובת תגובת clonase ב23-25 ​​מעלות צלזיוס למשך 6-24 שעות.
    4. הוסף 1 μl של פתרון proteinase K (מסופק עם ערכת אנזים) לתערובת תגובת clonase ודגירה של 10 דקות על 37 מעלות צלזיוס.
    5. להפוך תערובת תגובת clonase לתוך תאים מוסמכים ולגדול בחרמושבות בתקשורת LB המכילה אמפיצילין (100 מיקרוגרם / מיליליטר) ב 37 מעלות צלזיוס במשך 16-18 שעות.
    6. לחלץ ולטהר DNA באמצעות פלסמיד המסחרי ערכת DNA Miniprep לפי הוראות יצרן.
    7. אשר את ה- DNA באמצעות אנזימי עיכול באמצעות הגבלת Spe אני וSac השני ומאגר מתאים בהתאם להוראה של היצרן כדי להסיר את הקטע המכיל את האמרגן וגן של עניין.
      הערה: שלב זה הוא קריטי כדי לבדוק אם DNA subcloned יש גן להכניס הנכון של עניין עם עמוד השדרה הווקטור תקין. גודלו של הווקטור עצמו ללא בר הוכנס הוא 6.7 kb. גודל שוחרר הבר הוכנס כולל גם את האמרגן וגן להוסיף עניין. לחשב את גודל השבר הצפוי מהתקציר עבור גן המסוים באמצעות תכנית רצף ה- DNA עריכה, למשל, APE - פלסמיד עורך.
    8. בדקו את הגדלים של שני עמוד השדרה וקטור DNA והבר שפורסם על ידי פועל ג'ל agarose 1%במאגר 1x טה (ראה טבלה של פתרונות מניות) ב 100 V.
    9. להגביר את ה- DNA אישר על ידי גידול חיידקים ב500 מיליליטר של תקשורת LB המכילה אמפיצילין (100 מיקרוגרם / מיליליטר) ב 37 מעלות צלזיוס במשך 16-18 שעות.
    10. לחלץ ולטהר DNA באמצעות פלסמיד המסחרי ערכת DNA Maxiprep לפי הוראות יצרן.
      הערה: Maxiprep בדרך כלל מייצר כמות מספקת של DNA הנדרשת לייצור נגיפי.
  4. חזור על שלבים 1.3.9-1.3.10 כדי להגביר את DNAs הבא להכנות lentiviral: וקטור מעטפה (PMD2.G, 6.1 kb), וקטור חבילה (pBR8.91, 12.5 kb), ווקטור lentiviral ריק כביקורת (GFP -CMV-2K7, 8.7 kb).

ייצור וירוס 2. 2K7

הערה: יום 1:

  1. ביום transfection, צלחת 32 מיליון תאי T HEK293 בבקבוק T175 המכיל 25 מיליליטר תקשורת סלולארי HEK293 T (ראו טבלה של פתרונות מניות). לחלופין, צלחת 16 מיליון תאים ביוםלפני transfection אם נגמר זמן הדוק ביום transfection.
    הערה: Transfection יכול להיות מוצלח באותה מידה על ידי תאי ציפוי ביום transfection או לפני היום. באמצעות אחת משתי החלופות, הנקודה הקריטית כאן היא להפוך את התאים בטוחים להיות תקועים על פני השטח צלחת תרבות לפני transfection.
    הערה: יום 2:
  2. Transfection
    1. לפני transfection, לדלל DNA 1 מיקרוגרם / μl בTE מאגר המכיל 10 מ"מ טריס pH 8, 1 mM EDTA pH 8 במים ללא יונים.
    2. בשפופרת 50 מיליליטר, להכין תערובת הורים (טבלת 1) לtransfection בבקבוק T175. להוסיף DNA למחומם מראש הנשר בינוני השתנה Dulbecco (DMEM) ומערבבים היטב על ידי מערבולת, ולאחר מכן להוסיף polyethylenimine סטרילי (PEI) (ראה הטבלה של פתרונות מניות), כדי למנוע משקעים מוקדמים. ">
      וקטור trong> ריכוז נפח
      pMDG.2 1 מיקרוגרם / μl 5 μl
      pBR8.91 1 מיקרוגרם / μl 15 μl
      וקטור 2K7 עם GFP + גן של עניין 1 מיקרוגרם / μl 22 μl
      Polyethylenimine סטרילי (PEI) g 1 / L 500 μl
      DMEM 2,100 μl
      טבלת 1: תערובת transfection הכנה לוירוס 2K7.
    3. מערבבים היטב על ידי היפוך 3-4x צינור דגירה במשך 15 דקות בטמפרטורת חדר (RT).
    4. לבצע שינוי תקשורת מלא בתאי HEK293T. לשאוב את התקשורת והתרבות מהתאים לחלוטין ולהאכיל עם תקשורת מחוממת מראש תרבית תאי HEK293T (25 מיליליטר לכל בקבוק T175).
    5. מוסיף את תערובת transfection (DNA תערובת / PEI) שחרר חכם תאי monolayer. העבר בעדינות לתערובת היטב דגירה תאי transfected על 37 מעלות צלזיוס, 5% CO 2, לילה.
      הערה: יום 3:
    6. כדי להבטיח את transfection הוא מוצלח, לבדוק הביטוי של GFP לאחר transfection 24 שעות באמצעות מיקרוסקופ פלואורסצנטי.
      הערה: מעל 50% מתאים המבטאים GFP בדרך כלל מציין transfection טוב.
      הערה: יום 4:
    7. שבלאחר transfection 48 שעות, לאסוף את supernatant ויראלי ולהחליף עם תקשורת טרי HEK293 T (25 מיליליטר לכל בקבוק T175).
      1. צנטריפוגה supernatant ויראלי ב1,140 XG במשך 10 דקות ב 4 ° C כדי לנקות את פסולת תא מsupernatant. העברה פינתה supernatant לצינור 50 מ"ל ולאחסן ב 4 מעלות צלזיוס.
        הערה: יום 5:
    8. ב 72 שעות שלאחר transfection, לאסוף את המנה השנייה של supernatant ויראלי. חזור על שלב 2.3.1 ובריכה 48 ו -72 שעות פינו supernatants.
    9. לרכז את הנגיף, supernatant ויראלי צנטריפוגות ב 170,000 XG למשך 90 דקות ב 4 ° C באמצעות 30 מיליליטר צינורות ultracentrifuge.
    10. בטל supernatant וחזור על שלב 2.6 עד שכל supernatant פינה כבר centrifuged עוזב גלולה (בלתי נראית) של וירוס בתוספת זירז PEI בבסיס של הצינור.
    11. לresuspend וירוס, להוסיף מדיה SATO 500 μl (ראה טבלה של פתרונות מניות) לצינורות ultracentrifuge. מערבולת 30 שניותnd לגרד הבסיס של הצינור עם קצה פיפטה כדי לשחרר את הווירוס באופן מכאני. חזור 6x שלב זה כדי לאבד גלולה ויראלי.
    12. בריכת וירוס resuspended לתוך צינורות microcentrifuge ספין לזמן קצר מאוד כדי להסיר PEI מסיס. סנן את supernatant דרך פילטר 0.45 מיקרומטר להסיר חלבונים.
    13. Aliquot הווירוס לתוך 20 μl, 50 μl, ו- 100 aliquots μl ולאחסן ב -80 ° C.

    3. קביעת כייל נגיף בתאי HEK293T

    1. כדי לבדוק את הביטוי של חלבון של עניין וכדי לקבוע את הריכוז הנגיפי האופטימלי לניסויים, להוסיף שורה של דילולים סדרתי של מניית ויראלי (למשל, 0, 5, 10, 20, 40, 80 μl) לtransduce תאי T HEK293 מצופים ב 6-גם צלחות, ותרבות למשך 24 שעות על 37 מעלות צלזיוס, 5% CO 2. פרוטוקול זה בדרך כלל יוצר וירוס שיכול לשמש בריכוזים הנעים בין 01:50 עד 1: 200 שהשיג ביטוי חזק של הגן שלריבית.
    2. התמרה 48 שעות שלאחר נגיפית, תאי lyse HEK293T במאגר TNE (ראה טבלה של פתרון מניות) עם מעכבי פרוטאז.
      1. יש לשטוף את בארות פעמיים עם DPBS המקורר ולאחר מכן להוסיף למאגר TNE 150 μl היטב כל אחד.
      2. תאי Lyse ידי pipetting מעלה ומטה 5-10x. העבר את lysates תא השלם לצינור microcentrifuge 1.5 מ"ל ולדגור על קרח במשך 15-30 דקות.
      3. צנטריפוגה lysates על 4 מעלות צלזיוס למשך 30 דקות במהירות המרבית (20,000 XG) והעברה פינתה supernatant לצינור טרי לקביעת חלבון על ידי ברדפורד וניתוח כתם מערבי שלאחר מכן.
    3. לקבוע את רמת הביטוי של החלבון של עניין על ידי ניתוח כתם מערבי סטנדרטי תוך חיטוט לנוגדנים נגד החלבון עצמו ואת התג התמזגו (כלומר, הדגל). השתמש בדילול הנגיפי שמניב תאי GFP> 95% + וביטוי חזק של חלבון של עניין לניסויים.

    4. בידוד והתרבות של DRGs (Figure 2 שלבים 1 ו -2)

    איור 2
    איור 2:. תרשים סכמטי של במבחנה myelination assay נוירונים DRG הם גזורים מגורי החולדה P2-3, אז מטוהרים ומתורבתים יותר משבועות (1-2). OPCs מטוהר ממוח החולדה P7-9 באמצעות immunopanning (3). אז OPCs נגוע בlentivirus ותרבותי במשך 48 שעות (4). אז OPCs הם זורעים על DRGs, וכל גורמי גדילה של עניין, כגון BDNF מתווספים (5). שיתוף תרבויות הן בתרבית, 2 שבועות כדי לאפשר OPCs להבדיל וmyelinate אקסונים (6). לבסוף, שיתוף תרבויות הן lysed או למערבי סופג או קבוע לimmunocytochemistry (7).

    הערה: יום 1- 2 ימים לפני לנתיחה:

    <ol>
  3. מעיל autoclaved coverslips x 22 מ"מ 22 מ"מ עם פולי-L-ornithine (0.5 מ"ג / מיליליטר) בצלחת 6-היטב, ולדגור על 37 מעלות צלזיוס למשך לילה.
  4. ביום המחרת, coverslips מעיל שוב עם Laminin (20 מיקרוגרם / מיליליטר בממ) על 37 מעלות צלזיוס למשך הלילה, לשאוב את העודף ויבש במשך 20 דקות במכסת מנוע בתרבית רקמה.
    הערה: יום 2: Dissection ובידוד של DRGs:
  5. גורי החולדה P2-P3 הקרבת 12x על ידי חיתוך רוחב צוואר רחם.
  6. הסר את העור שמעל השריר בחלק האחורי של בעלי החיים. השתמש במספרי Vannas לפתוח foramen השדרה ולהשתמש במלקחיים כדי לגרוף החוצה בעדינות את חוט השדרה.
  7. למרוט את DRGs שמצויים בין עמודות בעמוד השדרה ומנותקות סיבי עצב בעמוד השדרה מצורפים, אז DRGs המקום בצלחת פטרי המכילה 33 מ"מ תקשורת L-15 3 מיליליטר. זה בדרך כלל ניתן לאסוף בין 8 ל 12 DRG מכל צד של חוט השדרה
  8. DRGs העברה נאספה יחד עם L-15 מדיה לתוך צינור 15 מיליליטר, צנטריפוגות ב 180 XG במשך 5 דקות.
  9. לשאובsupernatant, להוסיף 2 מיליליטר טריפסין 0.25% לDRG כדורים ולדגור על 37 מעלות צלזיוס למשך 30 דקות.
  10. הוסף 5 מיליליטר של מדיום M1 (ראה טבלה של פתרון מניות) לכדורי DRG להפסיק טריפסין, ו צנטריפוגות ב 180 XG במשך 3 דקות ב RT.
  11. לשאוב supernatant, מחדש להשעות גלולה ב 2 מיליליטר בינוני M1 מראש חימם (לא עם גורמי גדילה). Triturate גלולה הגרעינים על ידי pipetting 50x או עד הגרעינים פזורים. השעיה תא צנטריפוגות ב 180 XG במשך 3 דקות.
  12. Resuspend ניתק נוירונים בתקשורת M1 וצלחת על שולחן צלחת 6-גם בשעה 5 הגרעינים לכל גם 100 μl.
  13. כדי להסיר תאים מתרבים ללא עצביים, לאחר מינימום של דגירה 4 שעות כדי להקל על קובץ מצורף, להסיר תקשורת M1 ולהאכיל את תאי עצב עם תקשורת M2 (ראה טבלה של פתרון המלאי). הנוירונים DRG תרבות בנוכחות NGF (100 ng / ml) כדי לטהר את תרבות של DRGs להביע TrkA NGF תלוי. לחלופין, להשתמש BDNF (100 ng / ml) כדי לטהר TrkB-Expres BDNF תלוילשיר DRGs.
  14. לשמור על תאי עצב בתקשורת M1 (+ NGF או BDNF ב 100 ng / ml) לסירוגין עם תקשורת M2 antimitotic 2 שבועות כלהלן.
  15. לשמור M1 הבינוני (+ NGF או BDNF ב 100 ng / ml) בימים: 4-6, 8-10, 12-14 ותקשורת M2 (+ NGF או BDNF ב 100 ng / ml) עם FDU וuridine בימים 1 ל 4, 6-8, ו10-12. מינימום של 3 מחזורים של טיהור תקשורת M2 נדרש.
  16. לשמור DRGs בM1 לבד במשך שבוע נוסף לאחר שסיים את מחזור antimitotic 2 שבוע. שינוי בתקשורת M1 כל 2-3 ימים.

5. בידוד והתרבות של OPCs (איור 2 שלב 3)

הערה: יום 1- 2 ימים לפני לנתיחה:

  1. צלחות מעיל 10 סנטימטרים תרבית רקמה עם פולי-D ליזין (PDL, 10 מיקרוגרם / מיליליטר במים ללא יונים מעוקרים) בשעה 4 ° C למשך הלילה.
    הערה: יום 2: יום 1 לפני לנתיחה:
  2. לשטוף צלחות PDL עם מים ללא יונים מעוקרים ל3x. לייבוש ~ 6 שעות במכסת מנוע בתרבית רקמה. אם אינו בשימוש מייד, לעטוף ולאחסןלתקופה של עד 4 שבועות ב 4 מעלות צלזיוס.
  3. הכן צלחות נוגדנים משני לimmunopanning. לנתיחה מוח 1, להכין צלחות IgG 2x (לRan2 נוגדן כדי להסיר האסטרוציטים ונוגדן O1 להסיר premyelinating oligodendrocytes), עם IgG 45 μl עכבר α עיזים בDPBS (15 מיליליטר) לכל 10 סנטימטרים צלחת פטרי; צלחת 1x IgM ל( נוגדן O4 לבחירת תאי מבשר oligodendrocyte), 45 μl עיזים α IgM העכבר בDPBS (15 מיליליטר) לכל 10 סנטימטרים צלחת פטרי.
    הערה: יום 3: יום של נתיחה:
  4. הוספת 200 יחידות של פפאין ב 10 מיליליטר של חיץ פפאין (טבלה 2), ולהתחמם על 37 מעלות צלזיוס עד החיץ הופך ברור.
    ריכוז עבור 250 מיליליטר ריכוז סופי
    מניית EBSS 10x 25 מיליליטר 1x
    4 MgSO 100 מ"מ 2.5 מיליליטר 1 מ"מ
    גלוקוז 30% 3 מיליליטר 0.46%
    EGTA 0.5 M 1 מיליליטר 2 מ"מ
    NaHCO 3 1 M 6.5 מיליליטר 26 מ"מ
    תביא נפח של עד 250 מיליליטר עם מים ללא יונים ולעקר מסנן
    טבלה 2: הכנת חיץ פפאין.
  5. לשטוף את כל צלחות נוגדנים משני עם DPBS ל3x.
  6. יוצקים את נוגדן Ran2 וO1 לצלחות IgG וhybridoma O4 לצלחת IgM. דגירה כל צלחות נוגדן הראשוניות הללו במשך שעה 2 ב RT.
  7. לנתח מוח אחד מעכברוש P7. לערוף גור עם מספריים מושחזים ולהסיר את העור שמעל הגולגולת במספריים.
    1. חותך סביב הגולגולת מהאונה העורפית, האונה הטמפורלית ולאונה הקדמית. הסר מוח מגולגולת באמצעות מלקחיים ובעדינות להעביר אותו לצלחת פטרי 35 מ"מ עם 1 DPBS מיליליטר.
    2. קוביות המוח לחתיכות קטנות בערך במספריים או סכין סטרילי.
  8. מסנן מראש חימם חיץ פפאין (10 מיליליטר) לתוך צינור 15 מיליליטר חדש המכיל כמה גרגרים של L-ציסטאין, ולאחר מכן להוסיף DNAase 200 μl (12,500 U / ml) למאגר פפאין המסונן.
  9. יוצקים את חיץ פפאין על רקמות המוח חתוכות לקוביות; לדגור על 37 מעלות צלזיוס במשך 90 דקות.
  10. העברת Gentlly ניתקה רקמות מוח לתוך צינור 50 מיליליטר בעזרת פיפטה 25 מיליליטר ולאפשר ליישוב.
  11. הסר חוצץ פפאין, להוסיף 2 מיליליטר Lo אוב (Ovomucoid) לרקמות המוח וtiturate 5-10x ידי pipetting כדי לשבור את הגושים של רקמות מוח, מאפשר להתיישב ולהסיר את 2 מיליליטר העליון של supernatant לצינור חדש.
  12. להוסיף עוד 2 מיליליטר Lo אוב לרקמות מוח וחזור על שלב 5.11 עד אין גושים של רקמה להישאר. Tituration יכול לקבל יותר ויותר אגרסיווי.
  13. צנטריפוגה ניתקה השעיה תא במשך 15 דקות ב 200 x גרם. לשאוב את supernatant ו resuspend תא גלולה ב 10 מיליליטר היי אוב וצנטריפוגות במשך 15 דקות ב 200 x גרם.
  14. לשטוף צלחת immunopanning הראשונה (רן 2 צלחת) עם DPBS ל3x. לשאוב supernatant, תאי resuspend ב 10 מיליליטר פנורמי חיץ (טבלה 2) ויוצקים על הצלחת הראשונה immunopanning (רן 2 צלחת). דגירה תאים במשך 15 דקות ב RT.
  15. לשטוף את הצלחת השנייה immunopanning (צלחת O1) עם DPBS ל3x.
  16. לאחר הדגירה על צלחת immunopanning הראשונה, להטות את ההשעיה התא על שניצלחת immunopanning (צלחת O1), יש לשטוף את כל תאים שנשרו על פני השטח של הצלחת עם 1-3 מיליליטר של צילום פנורמי חיץ והעברה על ידי פיפטה לצלחת O1. דגירה תאים במשך 15 דקות ב RT.
  17. לשטוף את הצלחת השלישית immunopanning (צלחת O4). צלחת זו היא צלחת הסלקציה החיובית שבו OPCs לאגד פני השטח שלו. לשטוף את צלחת O4 עם DPBS ל3x.
  18. לאחר הדגירה על צלחת immunopanning השנייה, להעביר את תאי הצלחת הסופית immunopanning (צלחת O4), דגירה תאים במשך 45 דקות ב RT. צעד זה יבחר O4 + OPCs.
  19. לשאוב supernatant מצלחת immunopanning האחרונה (צלחת O4) ולשטוף את הצלחת עם EBSS ל6x.
  20. כדי להסיר OPCs מהצלחת, דגירה תאים עם 5 מיליליטר של 0.05% טריפסין החמים-EDTA מדולל 1:10 עם EBSS על 37 מעלות צלזיוס למשך 8 דקות.
  21. הוסף 5 מיליליטר של FBS 30% (שנעשה בEBSS) על מנת לנטרל את טריפסין. הסרת תאים מפני השטח של הצלחת ידי pipetting כ 50x.
  22. להעביר את כל התאהשעיה לצינור וצנטריפוגות חדשים במשך 15 דקות ב 200 x גרם.
  23. בטל supernatant ו resuspend תא גלולה ב 1 מיליליטר תקשורת SATO מחומם מראש, ואחריו ספירת תאים. Dissection של מוח אחד יכול להניב 1.5-2,000,000 OPCs.
  24. פלייט תאים על גבי צלחות PDL מצופות יבשות בצפיפות בין 1 x 10 5 ו -5 x 10 5 לכל 10 סנטימטרים צלחת עם בתקשורת SATO (10 מיליליטר) המכילים גורם neurotrophic הריסים (CNTF, 10 ng / ml), גורם גדילה של טסיות דם נגזר (PDGF, 10 ng / ml,), neurotrophin 3 (NT3, ng 1 / מיליליטר), וforskolin (4.2 מיקרוגרם / מיליליטר) 2,12. OPCs תרבות על 37 מעלות צלזיוס, 8% CO 2.

6. OPCs transducing

  1. OPCs העיקרי תרבות בתקשורת SATO (10 מ"ל / 10 ס"מ צלחת) עם CNTF (/ מיליליטר 10 ng), PDGF (10 ng / ml), NT3 (1 ננוגרם / מיליליטר), וforskolin (4.2 מיקרוגרם / מיליליטר) בשעה 37 ° C, 8% CO 2 למשך 24 שעות לאחר ניתוח.
  2. לחלוטין לשאוב את התקשורת ותרבות OPC, תאי הזנה עם תקשורת SATO טרי (10 מיליליטר) עם גורמי גדילה (ראה לעיל בשלב 6.1).
  3. להוסיף וירוס לOPCs לריכוז האופטימלי נקבע על ידי שלב 3 (איור 2, שלב 4), OPCs התרבות לשעה 48 נוספת.

זריעת OPC 7. לmyelinating שיתוף תרבויות (איור 2, שלבים 5 ו -6)

  1. כדי להסיר OPCs את פני השטח, צלחות OPC השטיפה הראשונות עם 8 מיליליטר EBSS פעמיים, ואז דגירה תאים עם 5 מיליליטר של 0.05% טריפסין-EDTA החם מדולל 1:10 עם EBSS על 37 מעלות צלזיוס למשך 2 דקות.
  2. לנטרל את טריפסין עם 30% FBS בEBSS (5 מיליליטר) ולהסיר תאים מצלחת ידי pipetting. העבר את ההשעיה תא צינור 15 מיליליטר, צנטריפוגות ב 180 XG במשך 15 דקות ב RT.
  3. לשאוב את התא גלולה supernatant ו resuspend ב 1 מיליליטר תקשורת SATO מראש התחמם ואחרי ספירת תאים.
  4. לפני זריעת OPC, תקשורת לשאוב לחלוטין מצלחת תרבות DRG. בעדינות זרע 200,000 OPCs טיפה חכם לנוירונים DRG תאר 4-6 כמו בעבר.
    הערה:סך הכל OPC זריעת הנפח חייב להיות פחות מ -200 μl לcoverslip 22 מ"מ.
  5. השאר תאים להתיישב מבלי להזיז את הצלחת למשך 10 דקות במכסת המנוע בתרבית רקמה, ואז בעדינות ראש עם תקשורת SATO 1 מיליליטר מחומם מראש לכל טוב.
  6. Replate OPCs האחות שנותר עם תקשורת SATO עם גורמי גדילה (ראה שלב 6.1). השתמש OPCs האחות אלה כדי לוודא ביטוי של החלבון של עניין.
  7. לאחר 24 שעות, להחליף את תקשורת SATO עם תקשורת התרבות המשותפת (2 מיליליטר / טוב) תקשורת SATO מכיל (ללא גורמים) וneurobasal (V / V) עם B27 1%. לשמור על שיתוף התרבויות במשך 14 ימים עם תקשורת לשנות כל 2-3 ימים.
  8. להעריך את שיתוף התרבויות לביטוי חלבון המיאלין על ידי ניתוח כתם מערבי ולדמיין ליצירת מגזרי axonal myelinated על ידי לחיצה כפולה immunostaining עם נוגדנים כנגד סמני המיאלין בסיסיים חלבון וסמנים עצביים 4-6.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

מתויג הדגל תאי kinase 1 (Flag-Erk1) הקשורים לאות בונה הלמשמש לייצור lentivirus מאומת על ידי הגבלת אנזים עיכול של המבנים המשמשים, ביניהם שני מבני 2K7 ובונת האריזה ואבזר הנדרשת לייצור וירוס (איור 3) .

איור 3
איור 3: אימות מבנה ה- DNA. כל מבני DNA הנדרשים לייצור lentivirus היו מטוהרים מחיידקי Stbl3 ומאומתים על ידי אנזים הגבלה לעכל. וקטורי אבזר ואריזה היו מתעכלים עם NcoI וEcoRI, כפי שצוין, ובהשוואה לפלסמיד חתוך (). 2K7-GFP היה מתעכל עם SpeI וSacII (). 2K7-הדגל-Erk1 DNA אומת על ידי עיכול עם או SpeI או SacII לבד, או על ידי לעכל כפול (B). דפוסי פסים היובהשוואה לדפוסים צפויים שנוצרו מעיכול וירטואלי של רצפי המבנה באמצעות תוכנת קוף.

כדי לקבוע את הדילול האופטימלי לשימוש בOPCs, lentivirus Erk 1 טיטרציה בתאי HEK293T (איור 4). הדבר נעשה על ידי הוספת מגוון רחב של דילולים ויראליים לתאי HEK293T (איורים 4 א, ​​4 ג, ו4D) או לOPCs (איור 4). רמות ביטוי של גן העלייה של הריבית בזמן (איור 4D). אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.

איור 4
איור 4: טיטרציה של וירוס הדגל-Erk1 בתאי HEK293T וOPCs. וירוס הדגל-Erk1 היה טיטרציה בתאי HEK293T (A, C, D) או OPCs (B). תאי HEK293T (א) או OPCs (B) היו צילמו במשך שעה 48 ביטוי GFP לאחר הדבקה בנגיף הדגל-Erk1. lysates תא HEK293T נבדקו לנוכחות של Erk1 או Erk1 2 לאחר 48 שעות בסך הכל / של זיהום (C). lysates תא HEK293T נבדקו לנוכחות של דגל, Erk1 / 2 ויקטין כביקורת טעינה או שעה 48 או 96 שעות לאחר הדבקה בנגיף דגל-Erk1 (D). כתמים אלו כל מחקו וצלמו יחד כדי להקל על השוואה ישירה של רמות ביטוי בנקודות הזמן שני (ד '). בר סולם ל() = 100 מיקרומטר. בר סולם ל( B) = 50 מיקרומטר. אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.

ברגע שוירוס הדילול האופטימלי נקבע, OPCs המטוהר נדבקו ותרבותי עבור מינימום של 48 שעות כדי לאפשר ביטוי transgene להגיע suffרמות icient, אז זורעים על נוירונים DRG להעריך את הפוטנציאל שלהם myelination (איור 5). ברגע שזורע על נוירונים DRG, OPCs יהיה להתמיין oligodendrocytes, ולהתחיל להביע את חלבוני המיאלין, שיכול להיות מוערך על ידי מערביים סופג (איור 5 ג). כמה oligodendrocytes הבוגרת תהיה myelinate, וזה יכול להיות דמיין באמצעות צביעת MBP (איור 5D). האקסונים גם צריכים להיות מוכתמים עם סמן כגון neurofilament או βIII טובולין (איור 5D) כדי להבטיח צפיפות האקסון נלקחת בחשבון בעת ניתוח רמות myelination.

איור 5
איור 5: OPCs היו נגוע בנגיף הדגל-Erk1 במשך 48 שעות לפני זריעה על נוירונים DRG. OPCs אחות או קובע ונצבע לדגל וGFP (א) או lysed וחקר לדגל וErk1 לאמתביטוי של החלבון באופן ויראלי-ביטוי יתר (C). שיתוף תרבויות תוקנו לאחר 2 שבועות בתרבות ובמוכתמים עבור βIII טובולין וMBP לדמיין אקסונים DRG וmyelinating כמו גם oligodendrocytes myelinating-עישון (B). Oligodendrocyte myelinating מצויינים על ידי החץ וoligodendrocyte שאינו myelinating מצויינים על ידי החץ-הראש (B). שיתוף תרבויות מקבילות היו lysed וחקרו לחלבוני המיאלין MBP וMAG, כמו גם הדגל וErk1 / 2 כדי לאשר ביטוי transgene בשיתוף התרבות (D). עלייה ברמות Erk1 לא הייתה גלויה בשיתוף התרבות בשל הכמויות הגדולות של Erk1 נגזר DRG הנוכחיות בבר סולם lysates = 20 מיקרומטר.

שם מרכיבים הערות
pH TE הצפת 8 pH 10 מ"מ טריס 8
pH 1 mM EDTA 8
איפור במים ללא יונים.
Polyethylenimine (PEI) g 1 / L איפור במניות מים ללא יונים, מסנן לעקר ולאחסן ב -20 ° C.
LB בינוני 20 גרם Tryptone
תמצית שמרים 10 גרם
10 גרם NaCl
לעשות עד 2 ליטר עם מים ללא יונים
50% מניות גליצרול גליצרול איפור עם נפח שווה של מים וחיטוי deionized
בינוני 293 תאי T HEK DMEM
10% שור עוברי סרום
1% פניצילין / סטרפטומיצין
1% L-גלוטמין
מאגר תמוגה TNE pH 10 מ"מ טריס 8
150 מ"מ NaCl
pH 1 mM EDTA 8
1% NP40
לפזר NP40 בנפח קטן יותר של מים ללא יונים הראשונים כפי שיתגבש במגע עם מים. לעשות עד נפח סופי במים ללא יונים
M1 ממ
10% שור עוברי סרום
0.4% D-גלוקוז
2 L-גלוטמט ננומטר
1% פניצילין / סטרפטומיצין
לשימוש עם נוירונים DRG העכברוש
MM1 בינוני Neurobasal
2% B27 תוספת (SM1)
0.4% D-גלוקוז
2 L-גלוטמט ננומטר
1% פניצילין / סטרפטומיצין
לשימוש עם נוירונים DRG העכבר
M2 DMEM
10 mg / L transferrin
אינסולין / L 5 מ"ג
20 פרוגסטרון ננומטר
100 מיקרומטר פוטרסין
10 מיקרומטר FDU
10 מיקרומטר uridine
איפור M2 בDMEM גדול יותר נפח ללא FDU וuridine לשימוש על 1-2 חודשים. להוסיף FDU וuridine לכמויות קטנות יותר שניתן לסיים בתוך 2 שבועות
מ"מ 2 MM1
10 מיקרומטר FDU
10 מיקרומטר uridine
להוסיף FDU וuridine לכמויות קטנות יותר של מדיום שיכול להסתיים בתוך 2 שבועות.
pH 10x MT-PBS 7.4 28.48 g / L (160 מ"מ) Na 2 4 HPO · 2H 2 O
5.52 g / L (40 מ"מ) לאא 2 PO 4 · H 2 O
87.66 g / L (1.5 מ ') NaCl
הוסף למים ללא יונים ולהתאים את ה- pH 7.4 עם 10 N NaOH
1x MT-PBS 10x MT-PBS
מים ללא יונים
לדלל 10x MT-PBS 1:10 ב מים ללא יונים לעשות 1x MT-PBS
10x חיץ Borate (1.5 מ ') חומצת 18.55 g בור
1x MT-PBS
לפזר חומצה בור ב150 מיליליטר 1x MT-PBS. התאם לpH 8.56 עם 10 N NaOH ולהביא נפח סופי של 200 מיליליטר עם 1x MT-PBS. דוּד לַחַץ
מאגר 1x Borate (0.15 מ ') מאגר Borate 10x
1x MT-PBS
הכן 100 מיליליטר של חיץ זה לפזר PLN ב. הוסף 10 מיליליטר של 10x חיץ borate (pH 8.56) עד 90 מיליליטר של 1x MT-PBS
0.5 מ"ג / מיליליטר Poly-L-ornithine (PLN) 50מ"ג פולי-L-ornithine hydrobromide
0.15 M חיץ Borate (pH 8.56)
לפזר 50 מ"ג של hydrobromide poly-L-ornithine בשל חיץ borate 1x 100 מיליליטר. סנן לעקר (0.22 מיקרומטר מסנן) ולאחסן ב 4 מעלות צלזיוס למשך עד חודש
100x פולי-D ליזין (PDL) פולי-D ליזין 5 מ"ג
מים סטריליים, ללא יונים
אפשר להקפיא מניות 100x PDL ב -20 ° C בaliquots שימוש יחיד. בעת השימוש, לדלל ל1x במים סטריליים, ללא יונים
מאגר פפאין ראה טבלת 2
DNase 12,500 U DNase אני
1 מיליליטר EBSS
על קרח, לפזר אני DNase ב 1 מיליליטר של EBSS המצונן. Aliquot (למשל, 300 μl / צינור) ולהקפיא למשך הלילה ב -20 ° C. חנות ב -20 מעלות צלזיוס.
4% BSA 8 גרם BSA
200 מיליליטר DPBS
ממיסים את BSA ב150 מיליליטר DPBS על 37 מעלות צלזיוס. התאם את ה- pH 7.4 עם ~1 מיליליטר של 1 N NaOH. תביא את הנפח 200 מ"ל ל. לסנן דרך פילטר 0.22 מיקרומטר לעקר. הפוך aliquots 1 מ"ל ולאחסן ב -20 ° C.
10x Lo Ovomucoid 3 גרם BSA
200 מיליליטר DPBS
מעכבי טריפסין 3 g
להוסיף BSA 150 מיליליטר DPBS ומערבבים היטב. להוסיף מעכבי טריפסין ומערבבים להמסה. להוסיף ~ 1 מיליליטר של 1 N NaOH להתאים את ה- pH ל 7.4. תביא את הנפח 200 מיליליטר עם DPBS. מסנן לעקר דרך פילטר 0.22 מיקרומטר. הפוך aliquots 1 מ"ל ולאחסן ב -20 ° C.
6x היי Ovomucoid 6 גרם BSA
200 מיליליטר DPBS
מעכבי טריפסין 6 g
להוסיף BSA 150 מיליליטר DPBS ומערבבים היטב. להוסיף מעכבי טריפסין ומערבבים להמסה. להוסיף ~ 1 מיליליטר של NaOH 1N כדי להתאים את ה- pH 7.4. תביא את הנפח 200 מיליליטר עם DPBS. מסנן לעקר דרך פילטר 0.22 מיקרומטר. הפוך 1 מ 'aliquots ולאחסן ב -20 ° C.
בסיס SATO ראה טבלת 3
תקשורת SATO (חולדה) 1% בסיס SATO
1% פניצילין / סטרפטומיצין
1% 0.5 מ"ג / מיליליטר אינסולין
1% L-גלוטמין
0.1% NAC
0.1% ביוטין
איפור עם DMEM ולסנן לעקר.
תקשורת SATO (עכבר) 1% בסיס SATO
1% 0.5 מ"ג / מיליליטר אינסולין
1% פניצילין / סטרפטומיצין
1% L-גלוטמין
0.1% NAC
0.1% ביוטין
0.1% יסודות קורט B
2% B27
איפור עם DMEM ולסנן לעקר.
אינסולין 10 מ"ג אינסולין
מים deionzed 20 מיליליטר סטרילי
להוסיף אינסולין למים ללא יונים ולהוסיף של 1 N HCl 100 μl כדי לאפשר לאינסולין לפזר. מערבבים היטב. לסנן דרך פילטר 0.22 מיקרומטר ולאחסן ב 4 מעלות צלזיוס במשך 4-6 שבועות
NAC (N-Acetyl-L-ציסטאין) 5 מ"ג / מיליליטר NAC
DMEM
לפזר NAC בDMEM לעשות מ"ג 5/ מיליליטר הפתרון, aliquot ולאחסן ב -20 ° C.
ד-ביוטין 50 מיקרוגרם / מיליליטר ביוטין
מים סטריליים, ללא יונים
לפזר ביוטין במים כדי להפוך 50 מיקרוגרם / מיליליטר פתרון, aliquot ולאחסן ב -20 ° C.
CNTF (גורם נוירוטרופי הריסים) 10 מיקרוגרם / מיליליטר CNTF
BSA 0.2% בDPBS
לדלל CNTF לעשות פתרון / מיליליטר 10 מיקרוגרם עם BSA 0.2% סטרילי בDPBS. Aliquot, פלאש הקפאה בחנקן נוזל חנות ב -80 ° C.
PDGF (גורם גדילה של טסיות דם נגזר) 10 מיקרוגרם / מיליליטר PDGF
BSA 0.2% בDPBS
לדלל מניות PDGF אדון (שהוכנו על פי הוראות יצרן) עד 10 מיקרוגרם / מיליליטר עם BSA 0.2% סטרילי בDPBS. Aliquot, פלאש הקפאה בחנקן נוזל חנות ב -80 ° C.
NT3 (neurotrophin-3) 1 מיקרוגרם / מיליליטר NT-3
BSA 0.2% בDPBS
לדלל stoc אדון NT3k (שהוכן על פי הוראות יצרן) עד 1 מיקרוגרם / מיליליטר עם BSA 0.2% סטרילי בDPBS. Aliquot, פלאש הקפאה בחנקן נוזל חנות ב -80 ° C.
Forskolin 50 מ"ג Forskolin
DMSO סטרילי
הוסף 1 מיליליטר DMSO סטרילי לבקבוק 50 מ"ג של forskolin ומערבבים היטב לresuspend באופן מלא. העברה לצינור 15 מיליליטר ולהוסיף 11 מיליליטר DMSO סטרילי כדי להגיע לריכוז של 4.2 מ"ג / מיליליטר. Aliquot ולאחסן ב -20 ° C.

טבלת 3. פתרונות מניות.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Myelination של אקסונים הוא תהליך חיוני לתפקוד האופטימלי של שני מערכות עצבים המרכזיות והיקפיות של בעלי חוליות. הייצור והתחזוקה של אקסונים myelinated הוא תהליך מורכב ומתואם מעורבים אינטראקציות מולקולריות בין תאי עצב, גליה (מתאי שוואן או oligodendrocytes) וחלבוני מטריצה ​​סלולריים נוספים. המשמעות ותחולתה של פרוטוקול זה היא שהיא מאפשרת מניפולציה של חלבונים בתאים מסוג ספציפי אחד בתוך הגדרות שיתוף התרבות המעורבות. כמספר סוגים של תאים מעורבים בmyelination שני in vivo ובמבחנת assay myelination, תוך שימוש בכלים תרופתיים בוטים כדי לחסום את פעילותם של חלבונים מסוימים או מסלולי איתות לא יכולים לספק מידע ספציפי לגבי ההשפעה שהחלבונים מפעילים על myelination משני עצבי או נקודת מבט גליה, אלא אם כן החלבון מתבטא באופן ייחודי על ידי סוג תא אחד. לפיכך, myelination במבחנה כאומר בשיתוף עם השימוש בLentivirus לtransduce במיוחד OPCs מאפשר לנו לחקור את ההשפעות שחלבוני oligodendroglial מפעילים על myelination. אנחנו השתמשנו בהצלחה 2K7 Lentivirus לביטוי יתר של חלבונים מסוימים באופן ספציפי בoligodendrocytes עבור assay myelination במבחנה כדי לנתח את ההשפעה שאותות oligodendroglial מפעילים על מערכת העצבים המרכזית myelination 9.

כדי להשיג תוצאות לשחזור בOPC transduced בassay myelination מבחנה, אופטימיזציה נדרשת לכל שלב בפרוטוקול מהשיבוט באמצעות ניתוחים וזריעת OPC. זה הכרחי כי, ברמה של DNA, וקטור pENTR המכיל את הגן מתויג של מבנה ריבית רצף ושDNA 2K7 עם הגן מתויג עניין נבדק על ידי כתם מערבי לביטוי של התג ואת הגן של עניין, לפני השימוש ב- DNA כדי ליצור וירוס. זה חיוני כדי לבחור HEK293Tcells או HEK293תאי FT כדי ליצור את הווירוס ולגדול תחת הסביבה חופשית mycoplasma. לאחר שהפיק lentivirus חשוב לכייל כל אצווה של וירוס כדי לקבוע את הדילול האופטימלי לשימוש בOPCs. ניתן לעשות זאת על ידי הוספת מגוון רחב של דילולים ויראליים לתאי HEK293T או לOPCs. כמבנה 2K7 מכיל גם את הגן-של-עניין וGFP, יעילות של התמרה ניתן להעריך על ידי ביטוי של GFP על ידי מיקרוסקופ פלואורסצנטי ומנסים לאמוד ביטוי של התג ואת הגן של עניין על ידי ניתוח כתם מערבי. תאי GFP + בהירים יהיו גלויים עם ריכוזים גבוהים יותר וירוס, כפי שניתן לחלקיקים נגיפיים מרובים כדי להדביק תא בודד. אימות של הביטוי של GFP באמצעות מיקרוסקופ פלואורסצנטי היא אינדיקטור מועיל של כייל נגיף והביטוי של ה- GFP, אבל לא יכולה לשמש כתחליף לבדיקת הביטוי של החלבון של עניין. לכן זה קריטי כדי לוודא את רמת הביטוי של החלבון של עניין בשני תאי HEK293TוOPCs על ידי ניתוח כתם מערבי. אם החלבון של העניין בא לידי ביטוי באופן אנדוגני על ידי תאי עצב בשיתוף התרבויות, ביטוי היתר של OPCs / OLS עשוי להיות רעול פנים בעת ניתוח lysate שיתוף התרבות על ידי כתם מערבי; לכן חשוב גם כדי לתייג את החלבון של OPCs אחות הריבית או התרבות הבאה זריעה כך ביטוי של החלבון של עניין ניתן לאמת בOPCs האחות אם לא בתרבות המשותפת.

האיכות של שני DRG ותרבות OPC ישירות קובעת אם הניסויים יצליח. בהגדרות coculture, ניתן cocultured נוירונים DRG עכברוש עם OPCs נגזר משתי חולדה או עכבר. OPCs דורש טיפול עדין ומהיר. חשוב כדי לייעל את כייל הנגיף לOPCs כקטן מדי אינו יעיל transduce OPCs מוביל לרמות נמוכות של ביטוי של החלבון של עניין ויותר מדי וירוס הוא רעיל לOPCs כך שיש מעט מדי תאי זרע על תאי העצב. שניהם transductions האופטימלי תת אלה עשויים Result בשינויים להסבירה או לא משמעותיים בביטוי myelination או המיאלין חלבון. OPCs להבחין אם הם הופכים ליותר ומחוברות, ולא ניתן שנזרעו לאחר שהם נבדלים, כך מספר OPCs התרבותי והצרכים transduced להיות מותאמים לתנאים מקומיים. רצוי זרע אותו המספר של OPCs עבור כל assay myelination מאפשר השוואה ישירה של מספר מגזרי axonal myelinated להיות בהשוואה בין תנאים על ניסויים מרובים.

הגבלת פוטנציאל של שיטה זו היא בגיוון ברמות myelination הבסיסיים בין מבחני myelination. בעקבות התמרה ויראלית, הרמה הבסיסית של מעטפת המיאלין מצטמצמת, מה שמרמז שOPCs הנגוע בנגיף לא myelinate כמו גם OPCs הנאיבי (לא הנגיפי הנגוע). זה ניתן להתגבר על ידי כימותי היקף יחסי myelination לmyelination הבסיסי בכל assay. לפיכך, הווקטור הריק שמבטא רק GFP חייב לשמש contr פנימיol. בנוסף לmyelination, הביטוי של חלבון של עניין עשוי גם להשפיע על היבטים אחרים של OPCs כגון הישרדות, שגשוג והתמיינות, שמוביל להשפעה עקיפה על myelination. לכן, ניתוח של התנהגות OPC כגון כדאיות תא צריך להתבצע במקביל למבחני myelination.

שיטות התמרה ויראלית שתוארו כאן אינן מוגבלות למחקר של מעטפת המיאלין oligodendrocyte; למעשה ניתן להכליל אותו ולהחיל ללמוד סוגי תאים אחרים כגון תאי שוואן, האסטרוציטים, ונוירונים, ואילו ייתכן שיהיה צורך אופטימיזציה עבור סוג תא בודד. פרוטוקול זה מציע גמישות רבה ללמוד התנהגות תא כגון ריבוי והתמיינות על ידי ביטוי יתר סלקטיבית של חלבון של עניין (סוג בר או מוטציה) בסוג התא הרצוי, שבו יש יתרונות מסוימים בעת שימוש במערכת תרבות תאים מעורבת. התאים המשמשים לתמרה יכולים להיות מבודדים משני עכברוש אועכבר (סוג בר או מהונדס), ובכך מאפשר למחקר הממוקד של מנגנוני איתות ופיצוי בבעלי חיים מהונדסים, שהוא בדרך כלל קשה להשיג והרבה יותר זמן רב יותר מאשר שימוש במודל עכבר מהונדס in vivo. העדויות האחרונות מראות כי האסטרטגיה המבוסס על lentiviral שמשה בהצלחה לתמרת תא במודלים של בעלי החיים 13, המצביעה על פוטנציאל חזק של transducing תאי oligodendroglial באמצעות גישות lentiviral in vivo.

לסיכום, שילוב במבחנה assay myelination עם זיהום lentiviral של OPCs מספק כלי אסטרטגי לניתוח של מנגנונים מולקולריים המעורבים בmyelination. תפקידם של חלבונים מסוימים בmyelination יכול להיחקר וכיכול להיות מבודד OPCs מחולדות ועכברים לשימוש על שיתוף תרבויות DRG החולדה, גישת lentiviral יכולה לשמש גם בשילוב עם טכנולוגיה של נוקאאוט קווי עכבר שונים לחקור mechanisms פיצוי בתהליכי היווצרות של מעטפת המיאלין.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
2K7 lentivector  Kind gift from Dr Suter9
5-Fluoro-2′-deoxyuridine Sigma-Aldrich F0503-100mg
Alexa Fluor 488 Goat anti-mouse IgG Jackson Immunoresearch 115545205
Alexa Fluor 488 goat anti-rabbit IgG (H+L) Life Technologies A11008
Alexa Fluor 594 goat anti-mouse IgG (H+L) Life Technologies A11005
Alexa Fluor 594 goat anti-rabbit IgG (H+L) Life Technologies A11012
Ampicillin Sigma-Aldrich A9518-5G
B27 - NeuroCul SM1 Neuronal Supplement Stem Cell Technologies  5711
BDNF (Human) Peprotech PT450021000
Biotin (d-Biotin) Sigma Aldrich B4639
Bradford Reagent Sigma Aldrich B6916-500ML  
BSA Sigma Aldrich A4161
Chloramphenicol Sigma-Aldrich C0378-100G
CNTF Peprotech 450-13020
DAKO fluoresence mounting media DAKO S302380-2
DMEM, high glucose, pyruvate, no glutamine Life Technologies 10313039
DNase Sigma-Aldrich D5025-375KU
DPBS Life Technologies 14190250
DPBS, calcium, magnesium Life Technologies 14040182
EBSS Life Technologies 14155063
EcoRI-HF NEB R3101
Entry vectors for promoter and gene of interest Generate as per protocols 1-2
Fetal Bovine Serum Sigma-Aldrich 12003C
Forskolin  Sigma Aldrich F6886-50MG
Glucose (D-glucose) Sigma-Aldrich G7528
Glycerol Chem Supply GL010-500M See stock solutions
Goat Anti-Mouse IgG Jackson ImmunoResearch 115005003
Goat Anti-Mouse IgM  Jackson ImmunoResearch 115005020
Goat Anti-Rat IgG Jackson ImmunoResearch 112005167
Hoechst 33342 Life Technologies H3570
Igepal Sigma Aldrich I3021-100ML 
Insulin  Sigma Aldrich I6634 
Kanamycin Sigma-Aldrich 60615
Laminin  Life Technologies 23017015
LB Medium See stock solutions
LB-Agar See stock solutions
L-Cysteine Sigma-Aldrich C-7477
Leibovitz's L-15 Medium Life Technologies 11415064
L-Glutamate Sigma-Aldrich G1626
L-Glutamine- 200 mM (100x) liquid Life Technologies 25030081
LR Clonase II Plus enzyme Life Technologies 12538-120
MEM, NEAA, no Glutamine Life Technologies 10370088
Mouse α βIII Tubulin  Promega G7121
Mouse αMBP (monoclonal) Millipore MAB381
Na pyruvate  Life Technologies 11360-070
NAC Sigma Aldrich A8199
NcoI-HF NEB R3193S
NEBuffer 4 NEB B7004S
Neurobasal medium Life Technologies 21103049
NGF (mouse) Alomone Labs N-100
NT-3 Peprotech  450-03
O1 antibody - Mouse anti-O1 Millipore MAB344 Alternative if O1 hybridoma cells are unavailable
O1 hybridoma cells Conditioned medium containing anti-O1 antibody to be used for immunopanning
O4 antibody - Mouse anti-O4 Millipore MAB345 Alternative if O4 hybridoma cells are unavailable
O4 hybridoma cells Conditioned medium containing anti-O4 antibody to be used for immunopanning
Competent cells Life Technologies A10460
One Shot Stbl competent cells Life Technologies C7373-03
Papain Suspension Worthington/Cooper LS003126
pBR8.91 Kind gift from Dr Denham10
PDGF-AA (Human) Peprotech PT10013A500  
Penicillin-streptomycin 100x solution Life Technologies 15140122
pENTRY4IRES2GFP Invitrogen 11818-010 
pMD2.G Addgene 12259
Poly-D-lysine Sigma P6407-5MG
Polyethylenimine (PEI)  Sigma-Aldrich 408727-100ML
Poly-L-ornithine  Sigma Aldrich  P3655
Progesterone  Sigma Aldrich P8783
Protease inhibitor tablet (Complete mini) Roche 11836153001
Proteinase K Supplied with Clonase enzyme
Putrescine Sigma Aldrich P-5780
Rabbit α neurofilament Millipore AB1987  
Rabbit αMBP (polyclonal) Millipore AB980
Ran2 hybridoma cells ATCC TIB-119 Conditioned medium containing anti-Ran2 antibody to be used for immunopanning
Rat anti CD140A/PDGFRa antibody BD Pharmingen 558774
SacII NEB R0157
SOC medium Supplied with competent bacteria
Sodium selenite  Sigma Aldrich S5261
Spe I NEB R0133S
T4 DNA Ligase NEB M0202S
T4 DNA Ligase Buffer NEB B0202S
TE buffer pH8 See stock solutions
TNE lysis buffer
Trace Elements B Cellgro  99-175-CI
Transferrin (apo-Transferrin human) Sigma-Aldrich T1147
Triton X-100 Sigma-Aldrich T9284 
Trypsin Sigma-Aldrich T9201-1G
Trypsin Inhibitor From Chicken Egg White Roche 10109878001
Trypsin-EDTA (1x), phenol red (0.05%) Life Technologies 25300-054
Unconjugated Griffonia Simplicifolia Lectin BSL-1 Vector laboratories  L-1100
Uridine Sigma-Aldrich U3003-5G

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Baumann, N., Pham-Dinh, D. Biology of oligodendrocyte and myelin in the mammalian central nervous system. Physiol Rev. 81, (2), 871-927 (2001).
  2. Watkins, T. A., Emery, B., Mulinyawe, S., Barres, B. A. Distinct stages of myelination regulated by gamma-secretase and astrocytes in a rapidly myelinating CNS coculture system. Neuron. 60, (4), 555-569 (2008).
  3. Lee, K., et al. MDGAs interact selectively with neuroligin-2 but not other neuroligins to regulate inhibitory synapse development. Proc Natl Acad Sci U S A. 110, (1), 336-341 (2013).
  4. Xiao, J., et al. BDNF exerts contrasting effects on peripheral myelination of NGF-dependent and BDNF-dependent DRG neurons. J Neurosci. 29, (13), 4016-4022 (2009).
  5. Chan, J. R., et al. NGF controls axonal receptivity to myelination by Schwann cells or oligodendrocytes. Neuron. 43, (2), 183-191 (2004).
  6. Xiao, J., et al. Brain-Derived Neurotrophic Factor Promotes Central Nervous System Myelination via a Direct Effect upon Oligodendrocytes. Neurosignals. 18, (3), 186-202 (2010).
  7. Lundgaard, I., et al. Neuregulin and BDNF induce a switch to NMDA receptor-dependent myelination by oligodendrocytes. PLoS Biology. 11, (12), e1001743 (2013).
  8. Kleitman, N., W, P. M., Bunge, R. P. Tissue culture methodes for the study of myelination. MIT Press. Cambridge, MA. (1991).
  9. Xiao, J., et al. Extracellular signal-regulated kinase 1/2 signaling promotes oligodendrocyte myelination in vitro. J Neurochem. 122, (6), 1167-1180 (2012).
  10. Wong, A. W., Xiao, J., Kemper, D., Kilpatrick, T. J., Murray, S. S. Oligodendroglial expression of TrkB independently regulates myelination and progenitor cell proliferation. The Journal of Neuroscience. 33, (11), 4947-4957 (2013).
  11. Li, Z., et al. Molecular cloning, Characterization and Expression of miR-15a-3p and miR-15b-3p in Dairy Cattle. Molecular and Cellular Probes. (2014).
  12. Emery, B., et al. Myelin gene regulatory factor is a critical transcriptional regulator required for CNS myelination. Cell. 138, (1), 172-185 (2009).
  13. Murai, K., et al. Nuclear receptor TLX stimulates hippocampal neurogenesis and enhances learning and memory in a transgenic mouse model. Proc Natl Acad Sci U S A. 111, (25), 9115-9120 (2014).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics