Öğrenmenin Ayrık Aşama sırasında Kemirgenler uzaktan suskunluğu Sinir Aktivitesi Bir Yöntem

Behavior

Your institution must subscribe to JoVE's Behavior section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Robinson, S., Adelman, J. S. A Method for Remotely Silencing Neural Activity in Rodents During Discrete Phases of Learning. J. Vis. Exp. (100), e52859, doi:10.3791/52859 (2015).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Bu protokol hayvanların öğrenme ve bellek işlerle meşgul iken geçici ve uzaktan ayrık beyin bölgelerinde nöronal aktivitenin susturmak açıklamaktadır. yaklaşım birleştiren farmakogenetik (Tasarımcı-Reseptörler-Münhasıran-Aktif-by-Designer-İlaçlar) bir davranış paradigma (duyusal önkoşullama) ile öğrenmenin farklı biçimlerde ayırt üzere tasarlanmıştır. Spesifik olarak, viral kaynaklı dağıtım, bir genetik olarak tadil edilmiş inhibe edici G-protein bağlı reseptör kemirgen içinde ayrı bir beyin bölgesine (tasarımcı Reseptör) ifade etmek için kullanılır. Tasarımcı reseptör ekspresyon düzeyleri yüksek olduğunda Üç hafta sonra, bir farmakolojik ajan (Tasarımcı İlaç) önce belirli bir davranış oturuma sistemik 30 dakika uygulanır. ilaç tasarım reseptörü için afiniteye sahiptir ve bu nedenle tasarım reseptörünü eksprese eden nöronların inhibisyonu ile sonuçlanır, ancak aksi takdirde, biyolojik olarak inerttir. beyin bölgesi (2-5 saat susturulmuş vin kalırding) doz ve uygulama yoluna. Davranışsal paradigmanın tamamlayan beyin dokusu doğru yerleştirme ve reseptör ifadesi için değerlendirilir. Bu yaklaşım, davranış belirli bileşenleri tek tek beyin bölgelerinin katkı belirlenmesi ve davranışsal paradigmaların bir dizi boyunca kullanılabilir için özellikle yararlıdır.

Introduction

Davranışsal nörobilim alanında heyecan verici bir meydan okuma, karmaşık davranışlar nöral substratlar belirlemektir. Böyle kalıcı lezyonlar, kanüller implantlar yoluyla geçici beyin inaktivasyonu ve optogenetics olarak bir dizi teknik, karmaşık davranışlar alt bileşenleri ayrık beyin bölgelerinin katkıları belirlemek için kullanılmıştır. Bu yaklaşımlar öğrenme sırasında bölgesel özgüllük anlayışımızı haberdar ederken, her teknik sınırlamaları olmadan değildir. Özellikle kalıcı lezyonlar genellikle böylece etkileri paradigma süresince mevcut, davranış testi öncesinde yapılmaktadır. Beyin dokusunda önemli bir hasar üretebilir kısa süreli sinir inaktivatör (örneğin, tetrodotoxin) sunumunu içeren ve hemen önce davranışsal test konularda strese neden olabilir kanülasyon çalışmaları. Bundan başka, kanülasyon yoluyla etkisiz hale getirilmesi çevreleyen doku bölgesi ile sınırlıdırkanül ucu. Optogenetics spesifik beyin bölgelerinde aktivitesi zamansal kontrolü için bir esneklik sunar ise Son olarak, bu maliyetlidir ve teknik olarak zor olduğu.

Bu sınırlamalar bir farmakogenetik yaklaşım (Tasarımcı-Reseptörler-Münhasıran-Aktif-by-Designer-İlaçlar, DREADDs) 1,2 kullanılarak aşılabilir. Farmakogenetik kavramı gelişmiş iken önemlisi, tekniğin yürütme basittir. Bir tadil edilmiş inhibitör G-proteine ​​akuple bir reseptör için bir DNA fragmanını içeren bir toksin (örneğin, NMDA, ibotenik asit) ayn beyin bölgeleri içine, bu teknik, bir adeno-bağlantılı virüs (AAV) infüzyonu içerir infüzyonu içeren geleneksel bir stereotaksik cerrahi yöntemlere benzer (hM4Di; tasarımcı reseptörü) standart laboratuar kemirgenler ilgi bölgeye (Şekil 1). viral vektör, bir floresan haberci (mcitrine) içerir. Dahil kezhücrelere, tasarımcı reseptörü (ve raportör protein) maksimum ~ 3 hafta sonra infüzyon ifade edilir ve seçici olarak, aksi biyolojik olarak eylemsiz tasarım ilacın sistemik olarak uygulanması, klozapin-N-oksit ile 2-5 st için aktive edilebilir (CNO) 1 3. Deneyci, belirli beyin bölgelerinde nöral aktivitenin üzerinde kesin, ancak uzaktan kumanda zamansal sahip olduğundan, farmakogenetik birden aşamalarda yürütülen davranışsal paradigmalar ile özellikle de birleştirir. Bu örnekte, retrosplenial korteks katkısı (RSC) uyaran-uyaran öğrenme Pavlov öğrenmedeki rolü ile karşılaştırıldığında, ancak yaklaşımların bu kombinasyon beyin bölgelerinin nasıl katkıda özgü tespit etmeye sorulardan herhangi bir sayı için uygundur Karmaşık davranış.

Bu protokolde tarif edilmemiş ise ek olarak, viral ve transjenik yaklaşımlar hücre tipine spesifik DREADD ifade 2 elde etmek için kullanılabilir. IDREADD yaklaşımı kullanıldığında s doğasında deneysel manipülasyonlar, deneysel tasarım ve sonraki kantitatif analiz dikkatli dikkate farmakolojik ve / veya diğer türde içeren davranışsal paradigmalar gereklidir. DREADD yaklaşım yeni Deneyciler mevcut DREADD teknolojisi 2 kapsamlı bir inceleme adlandırılır.

Her gün, organizmalar yeni uyaranlara ve olayları ve birbirlerine olan ilişkileri hakkında bilgi edinin. Hatta tanıdık bir ortamda, örneğin ev, biri bu değişikliklerin anlamlı olayların tahmin olabilir, çünkü uyaranlara arasındaki ilişkilerde değişiklikler tespit etmek hızlıdır. Böyle bir uyaran-uyaran (örneğin, ilişkisel) öğrenme birden uyaranların conjoining içerir ve geleneksel medial temporal lobda 4 içinde merkezi bulunduğu hipokampus ile ilişkili olmuştur. Ancak, hipokampus var, ne de tek başına hareket etmez; içinde ve dışında hem kortikal bölgelermedial temporal lob yan hipokampal formasyon 5-7 kritik duyusal bilgi sağlar. Geleneksel kalıcı lezyon çalışmaları hipokampus bağımlı öğrenme kortikal bölgelere (örneğin, retrosplenial postrhinal ve entorinal korteks) bir dizi katılımı için ikna edici bir kanıt sağlar, ancak ayrı aşamalarında belirli bir bölgede rolünü ayırt etme yeteneği sınırlıdır 8-10 öğrenme.

Mevcut protokol RSC 3 fazlı duyusal önkoşullamasının paradigma 11,12 tek bir aşamasında RSC susturma yoluyla uyaran-uyaran öğrenme için gerekli olan hipotezini test eder. Kısaca, sıçanlar tasarım reseptörü içerir ve ~ 3 hafta sonra davranış testleri başlamadan önce tasarım madde (CNO) 30 dakika süresince verilir bir AAV infüzyonu yapılan. Mevcut protokolde, deneysel fareler test ilk aşamasında (uyarıcı-uyarıcı lear sırasında CNO alıyorsunuzning oluşur) ve test sonraki 2 aşamalarında aracı alırsınız. Davranışına CNO yanlışlıkla etkilerini kontrol etmek için, tasarım reseptörü (hM4Di) farelere süzülür ve bunun yerine CNO bir araç ile enjekte edilir. Viral infüzyon ve reseptör ifadesinin genel etkileri hesaba katmak için, tasarımcı reseptörü içeren ve CNO yönetmek değil bir kontrol virüsü demlenmeye.

AAV, farklı serotiplerin çok sayıda genetik bir malzeme uygulamak üzere kullanılır. rekombinant veya sentetik moleküllerini içeren Araştırma mevcut NIH Kılavuzu transgen potansiyel tümörijenik gen ürünü ya da bir toksin molekülü ya da kodlamak etmez ve yokluğunda üretildiği bu AAV (bütün serotipler) ve rekombinant ya da sentetik AAV yapıları korur Yardımcı virüs, BSL-1 önlemler (Ek B-1. Risk Grubu 1 (RG1) Acenteleri) 13 gerektirir. AAV yapısı, programı ve güvenlik ile ilgili yorumunun sayısı 14,15 mevcuttur. Özellikle, olsaAAV ile çalışırken, kemirgenlerde muhtemel üreme 16,17 ve potansiyel kanserojen mekanizmalar 18-20 ilişkin endişeler nedeniyle, bazı kurumlar BSL-2 önlemlerin kullanılmasını gerektirir. Araştırma Hastalık Kontrol ve ABD'de gen manipülasyonu için viral vektörler kullanılırken Rekombinant DNA Moleküller 13 İçeren Araştırma NIH Rehberi için, Merkezleri yapılacaktır bireysel kurumlarında gözetim komiteleri ile danışarak kullanımdan önce uygun BSL doğrulayın. Kişisel korunma, araştırmacı eğitimi, vektör çevreleme, dekontaminasyon, dekontamine malzemelerin imhası ve enjeksiyon sonrası hayvan barınağı gereksinimleri bu yönergelere göre belirlenir. Buna ek olarak, danışmak ve uygun Kurumsal Hayvan Bakım izleyin ve güvenli kullanım, yönetim ve AAV'nin bertarafını sağlamak için komite kurallarına veya eşdeğer kurumsal gözetim komitesi yönergeleri kullanın.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

hayvanların kullanımı Oberlin College Kurumsal Hayvan Bakım tarafından onaylanmış ve komite kullanın ve Laboratuvar Hayvanları 21 Bakım Kılavuzu ile uyumlu ve Kullanımı vardır.

Viral İnfüzyon 1. Hazırlık

Not: Bu protokol BSL-1 önlemleri kullanır. BSL-2 önlemleri, tek kullanımlık laboratuvar önlüğü, eldiven, ayakkabı kapakları, göz korumaları ve maske (N95 tipi) kullanıldığında gereklidir. BSL-2 bileşikleri işleme Tüm bireylerin yerel halk sağlığı kurumu tarafından partikül solunum test uyması gerekir. Kullanım ve viral vektörlerin depolama ek ayrıntılar için Lowery & Majewska (2010) 22 Bkz.

  1. 20 ul mikrosantrifüj tüpler ilk kullanımda, kısım ve mağaza kullanılmayan virüs üzerine tekrarlanan donma ve çözülme önlemek için.
  2. Gereksiz nesneler kaldırarak ve% 70 etanol ile yüzeyi sterilize edilerek çalışma yüzeyini hazırlayın. Bir 1 hazırlayınAAV atık dekontaminasyon için% 0 çamaşır suyu çözeltisi. Çalışma yüzeyi üzerine çamaşır suyu çözeltisi ve steril bir 10 ul şırınga dolu bir behere koyun. Kurulması sırasında ezilmiş buz ile bir kapta AAV ile ependorf tüp yerleştirin.
  3. Standart bir tezgah yardımcısı içine virüs ile ependorf tüp yerleştirin. AAV en az 4 ul ile 10 ul şırınga yükleyin. Yükleme sırasında mikrosantrifüj tüp alt karşı şırınga ucu eğmemeye özen gösterin. Şırınga AAV solüsyonu 4 ul hiçbir hava kabarcığı olmadığından emin olun.
  4. % 10 çamaşır suyu içeren beher boş virüs tüp atınız. Tedarikçi tarafından belirtilen virüsün kullanılmayan kısımlarını saklayın.
  5. Atık konteynerine ek% 10 çamaşır suyu ekleyin ve atık dekontamine sıvı atık atmadan önce 30 dakika boyunca bekletin.
  6. Kurumsal rehberlere tarafından talimat olarak bir biyolojik tehlike kapta tüm koruyucu ekipman ve plastik atıkların bertaraf edin. Deco% 10 çamaşır suyu kullanarak virüs ile temas geldi herhangi bir ekipman veya yüzeyleri ntaminate.

2. Cerrahi

  1. Stereotaksik aparat altında ve özel bir virüs taşıma alanı olarak belirlenen bir komşu uzayda emici tezgah kağıdı koyarak cerrahi alan hazırlayın.
    1. Cerrahi aparat yakın adanmış virüs taşıma alanında% 10 çamaşır suyu atık kabını yerleştirin.
  2. Anestezi istikrarlı bir seviyede neden ve cerrahi sıçan hazırlar.
    1. Bilinç ve brüt maksatlı hareket eksikliği kaybı olana kadar izofluran gazı (1 ila 3% aralığı) ve oksijen (% 100 yaklaşık 1 L / dk) bir karışımını içeren bir indüksiyon odasına sıçan yerleştirin. Cerrahi prosedür boyunca izofluran anestezisi koruyun.
    2. 6 derin anestezi elde edildikten sonra, biraz kulakların arkasında gözleri arasından sıçan tıraş.
    3. Bir indüksiyon odasına geri sıçan yerleştirinEk 1-3 dk.
    4. Izofluran anestezi sistemi stereotaksik cerrahi burun konisi bağlı olduğundan emin olun. Stereotaksi için izofluran akışını başlatmak için izofluran boru üzerine musluğunu açın. Yukarıda belirtilen seviyelerde izofluran ve oksijen koruyun.
    5. Isırık bar üzerine ağız güvence ve kulak çubukları güvence altına alarak bir stereotaksik aparat sıçan yerleştirin.
    6. Kesi öncesinde cerrahi siteye göz gözler için yağlayıcı ve betadin uygulayın.
  3. Gözleri kaudal yaklaşık 2 mm başlangıç ​​kafatasının dorsal yüzeyi üzerinde bir deri 2.4 cm'lik orta hat kesi olun. Kafatası açığa çıkarmak için cildi çekin. Periyodik kurumasını önlemek için dokuların cerrahi sitenin marjları üzerinde steril% 0.9 steril tuzlu su aşılamak.
  4. Bregma ve lambda kadar kafatası temizle membranöz doku açıkça görülebilir.
  5. Kafatası dorsal-ventral koordinatları ölçerek düzeyi olduğundan emin olunBregma ve lambda de. Bregma ve lambda dorsal-ventral koordinatlar fazla 0.04 mm farklılık kadar buna göre stereotaksik cihaz ayarlayın.
  6. Şu anda,% 2 ila 2.5 izofluran gazı azaltır.
  7. Koordinatlar rezero, bregma matkap dönün ve sonra istenen medial-lateral için matkap taşımak ve ön-arka koordinat.
  8. Bir delik delin bir 28 G infüzyon şırınga için uygun bir boyut deliği üreten bir 0.9 mm matkap ucu kullanarak koordinat.
  9. 0.2 ul / dakikalık bir oranda virüs sunmak için infüzyon pompası olarak ayarlayın. Stereotaksik cihazın infüzyon koluna şırınga yerleştirin ve koordine istenen içine şırınga indirin. Virüs istenen miktarda (0.1 ul 0.8 arasındadır). Örneğin, 4 dakika boyunca AAV 0.8 ul sağlar.
    Not: İdeal infüzyon hacmi ve ilgi her bölgede virüsün yayılmasını tipik belirlemek için pilot çalışmalar yapmak.
    1. Virüsün teslim eş sonra10 dk iğne yolu içine geri akmasını önlemek için mplete yerinde şırınga bırakın. Yavaşça yaklaşık 5 mm / dakikalık bir oranda bir şırınga kaldırın. Tüm koordinatları AAV ile aşılanmış edilene kadar tekrarlayın.
  10. Cerrahi zımba ve kat topikal antibiyotik merhem ile yara yara kullanarak kapatın.
  11. Post-operatif ağrı yönetimi için kurumsal yönergeleri izleyin.
  12. Yatak, bir kapak ve uygun tabela ile bir kafeste sıçan yerleştirin ve hayvan tesis sıçan dönün.
    1. BSL-2 önlemler altında çalışan ise, kurumsal kurallar tarafından belirlenen süre (genellikle 48-72 saat) için yatak toplamak. Bir biyolojik tehlikeli atık kabına yatak yerleştirin.
    2. Güvenli bertarafı için kurallar tarafından belirtilen tüm AAV-kontamine malzemelerin imha ediniz.

3. Davranış Aparatı

Not: duyusal ön şartlandırma cihazı, standart edimsel koşullanma cham oluşurber paslanmaz çelik ızgara zemin ile (12 "L x 9.5" W x 11.5 "H), 2 pleksiglas yanaklar ve 2 metal duvarlar.

  1. 2 Hz parladı zaman görsel uyaranın ev ışık olarak hizmet alüminyum duvarlarının birinde ve bir 2.8 W ışık monte edin. Işitsel uyaranlara teslim odasının bir hoparlör monte (10 sn, 1500 Hz, 78 dB saf ses ve 10 sn 78 dB beyaz gürültü).
    1. Gıda kap içine 45 mg gıda pelet teslim etmek için bir gıda hazneyi kullanın. Gıda fincan içinde, kızılötesi fotoseller sırasında ve uyaranlara ve gıda ödülleri sunumların ardından, daha önce gıda fincan harcanan toplam zamanı algılar.
    2. Ev egzoz hayranları ile donatılmış ses azaltıcı dolapları odaları (22 "W x 22" H x 16 "D) (~ 68 dB).
    3. Veri edimsel odasına kontrol etmek ve elde etmek için Med Associates yazılım ile PC bilgisayar kullanın. Klima oturumları sırasında, presenta sırasında gıda fincan kafa ile harcanan toplam zaman hakkında veri toplamakIşık uyarıcı (5 sn çağında) ve tion ve gıda ödül (5 sn çağı) sunumu sırasında. Deney oturumu sırasında, (işitsel uyaranlar sonlandırılır 10 sn dönem başında) işitsel uyaranların sunum tepki olarak gıda fincan harcanan toplam zaman hakkında veri toplamak.

Duyu Önkoşullama Paradigma 4. Bakış

  1. Ameliyatın sonra, yavaş yavaş gıda serbestçe beslendikleri vücut ağırlığının% 85 sıçan sınırlar. Uygun bir yiyecek kısıtlaması paradigma için veteriner personel danışın.
    Not: 3-faz duyusal ön şartlandırma paradigması, Şekil 2'de tasvir edilmiştir.
  2. Önkoşullama Sessions (Faz 1; Günlük 64 dakika eğitimler 4 gün üst üste genelinde yürütülen):
    1. Işitsel ve görsel uyaranlara teslim oluşan 12 karışmış çalışmalar ile mevcut sıçanlar. Arası deneme aralıkları dahil her a sonra ortalama 4.5 dakika (aralık 4,0 dk 5,0) olduğunuuditory sunumu.
    2. 10 saniye boyunca denemeler, mevcut bir ton (ön şartlandırılmış uyaran) ile 6 günü, yanıp sönen ışık uyaran bir 5 sn sunumu hemen ardından.
    3. Diğer 6 çalışmalarda üzerinde 10 saniye boyunca yalnız beyaz gürültü (eşleşmemiş uyaran) sunuyoruz.
  3. Klima oturumları (Faz 2, 5 ardışık gün boyunca yapılan günlük 64 dk eğitimler):
    1. 5 saniye görsel uyaranın (yanıp sönen ışık uyaran) teslim oluşur 8 çalışmalar ile mevcut sıçan iki 45 mg gıda pelet teslim hemen ardından. Arası deneme aralıkları dahil her yargılamadan sonra ortalama 7 dakika (aralık 6.0 dk 8.0). Bazen fareler hafif yiyecekler dernek öğrenmek için 5'ten fazla klima oturumları gerektirir.
  4. Deney Session (Faz 3; tek 78 dakika oturumu):
    1. Yalnız işitsel uyaranların teslim oluşan 12 karışmış çalışmalar ile sıçan sunun. Ave arası deneme aralıkları dahilöfke 4.5 dakika (aralık 4,0 dk 5.0) Her işitsel sunumdan sonra.
    2. Çalışmaların, 6, 10 saniye boyunca tek başına ton uyaran (ön şartlandırılmış uyaran) sunuyoruz.
    3. Diğer 6 çalışmalarda üzerinde 10 saniye boyunca yalnız beyaz gürültü (eşleşmemiş uyaran) sunuyoruz.
  5. Şartlandırılarak uyarıcı olarak beyaz gürültü ve eşleşmemiş uyarıcı olarak sesi almak sıçanların ikinci seti ile çalışmayı tamamlayarak uyaranlara dengelemek.

5. Farmakolojik ve Davranış Prosedürü

  1. Davranışsal alete güç açın ve uygun davranış oturumu için Med-PC kodunu yükleyin. Tel ve programın davranış cihaz ses zayıflatma dolapları monte edilmiş fanları güç açıldığında açın böyle.
  2. Klozapin, N-oksit (CNO) bir 1 mg / ml çözelti hazırlamak için, 15 ml konik bir tüp içine CNO 5.0 mg ağırlığında ve steril% 0.9 SalI 5 steril su ml ya da 5 mlne. Çözelti kadar Vortex açıktır.
    1. CNO çözeltisi içine çözülmez veya CNO daha konsantre çözeltiler, örneğin DMSO 23 gibi çözündürücü bir ajan eklemek istendiğinde. Spesifik olarak,% 0.5 DMSO ile CNO bir 1 mg / ml çözelti hazırlamak CNO 5.0 mg ağırlığında ve 15 ml konik tüp DMSO 25 ul ekleyin. Fiske yavaşça içeriği tüpün tabanında kalmasını sağlamaktır. Çözelti berraklaştığında, steril su 5 ml ya da steril% 0.9 tuzlu su içinde 5 ml ekleyin. CNO çözeltilerini hazırlamak için ayrıntılı talimatlar DREADD wiki kaynak sayfa 25 mevcuttur.
    2. Uygulandığı her gün yeni CNO çözeltisi hazırlayın.
  3. 1 mg dozunda intraperitonal olarak enjekte edilir CNO / yaklaşık 30 dakika önce davranış testi kg. Örneğin, 1 mg / ml CNO çözeltisi 0.2 ml ile 200 g sıçan enjekte edilir. CNO yönetiminin dozu ve zamanı ders önce yayınlanan raporlara 2,12 dayanarak seçildi.
    1. (Faz 1, enjeksiyonların 4 gün toplam) her ön hazırlık oturumu öncesinde CNO 30 dakika enjekte ama tüm sonraki davranış oturumlar öncesinde araç yönetmek.
  4. 30 dakika sonra, davranış testi odalarına sıçanlar yer ve uygun davranış oturumu için bir bilgisayar kodu başlatır.
  5. Davranışsal görevin tamamlanmasının ardından hemen odalarından fareler kaldırmak ve hayvan koloni sıçanları dönün.

Davranış Verilerin 6. Analizleri

Not: Tüm davranışsal oturumlar için bağımlı değişken gıda fincan kızılötesi fotosel kesintisi ile tespit edilen sıçan kafası gıda fincan içinde olan süredir. (sn) veriler toplandı ve bilgisayar yazılımı tarafından kaydedilir.

  1. Davranış etmeyin Preconditioning aşamasında üretilen veriler üzerinde analiz eder.
  2. Klima oturumları için: Her farelerin a analizbility 5 davranışsal seans boyunca görsel uyaranın sunumu sırasında gıda fincan davranışını karşılaştırarak hafif yiyecekler dernek öğrenmek için. Özellikle, / oturum 8 çalışmaların her biri için 5 sn ışık çağında sırasında gıda fincan harcanan ortalama zamanı hesaplamak (yani, süresi / sıçan her 5 sn 8 çalışmaların ortalama). Ortalama kontrol ve 5 günlük oturumlar her biri için deneysel değerleri (Şekil 3A bakınız) öneririz.
    1. Yukarıdaki 5 saniye ışık yılı için belirlenen aynı hesaplama ile 5 davranışsal oturumları arasında gıda ödül (5 sn çağı) teslimi sırasında gıda fincan davranışını karşılaştırarak gıda ödül elde etmek için farelerin motivasyonunu analiz edin. Bu değerler, görsel uyaranın sunumu sırasında edinilen daha tutarlı yüksek olacaktır (Şekil 3B).
  3. Test oturumu için: pres yanıt farelerin yiyecek fincan davranışını açıklayan bir ayrımcılık oranını hesaplamakHer işitsel uyaran entations.
    1. Özellikle, her sıçan için, 6 sunumlar her Aşağıdaki gıda fincan harcanan ortalama süre toplamına duyusal koşullanan uyaran 6 sunumlar (yani, sesi) her Aşağıdaki gıda fincan harcanan ortalama süre bölmek duyusal ön şartlandırılmış uyaran (örneğin, ton uyaran) artı eşleştirilmemiş uyaran (yani, beyaz gürültü uyarıcı) 6 sunumlar her Aşağıdaki gıda fincan harcanan toplam süre ortalama. Her dönem süresi 10 saniyedir.
      Not: 0.5 veya daha büyük bir ayrımcılık puanı sıçan duyusal önkoşullanma paradigma doğasında dernekleri öğrendiğini göstermektedir.

AAV Yerleştirme ve İfade 7. Doğrulama

  1. Uyutmak ve transcardially% 4 paraformaldehid kullanarak sıçan serpmek. Nedeniyle floresan etiketlerin kullanılması, min 2 saat bir post-fiksasyon süresini aşmamakhadde indirgenmesi kaybı antijenisite ve flüoresan sinyal korumak için.
  2. 2 günlük bir minimum ya da beyin, beyin kavanozun dibine batar dek fosfat tamponlu tuzlu su (1x) ve% 20 sukroz çözeltisi 30 ml ihtiva eden bir beyin kavanoz içine aktarılması ile perfüze beyinleri kurutmak.
  3. Ilgili bölgenin tamamını rostro tamamı boyunca koronal beyin kesitleri (20-40 um) yapmak için, bir donma kayar mikrotom kullanın.
  4. Tasarımcı reseptörü ve / veya muhabir 12 konumunu ve ifadesini anlamak için etiketli reseptör veya raportör proteine ​​yönelik immunhistokimya yürütün. Bir immünohistokimya boyama protokolü DREADD wiki kaynak sayfa 25 sağlanır.
  5. Sulu montaj orta 100-200 ul kullanarak SuperFrost-artı slaytlar ve lamel üzerine bölümleri monte edin.
  6. AAV yerleştirme ve protein ifadesini 12,24 doğrulamak için beyin dokusu üzerinde floresan mikroskobu gerçekleştirin.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Davranış Sonuçlar

Deneyin tamamlanması üzerine, bölgeye özgü geçici inaktive etkinliği nicel ve nitel olarak değerlendirilmelidir. Mevcut örnek CNO RSC nötr uyarıcılara 12 arasında dernek oluşumu için gerekli olan hipotezini test etmek Preconditioning oturumları sırasında RSC nöral aktiviteyi azaltmak için uygulanan edildiği bir 3 fazlı davranışsal paradigma (duyusal önşartlama), içerir. Önemli olarak, deneyi davranış paradigma ya farmakogenetik yaklaşım en davranışsal modeller ile birleştirilebilir gibi, burada tarif edilen deney tasarımı ile sınırlı değildir.

Analizler tipik Önkoşullanma oturumları (Faz 1) sırasında üretilen veriler üzerinde gerçekleştirilen değil Oysa, bu fareler Klima oturumları (Faz 2) sırasında hafif yiyecekler dernek öğrenildi olup olmadığını ölçmek için çok önemlidir. Fi gösterildiği gibişekil 3A hem deneysel (Expt) ve Kontrol (Ctrl) sıçanlar fareler görsel uyaranın (ışık) ve gıda ödül arasında bir ilişki Pavlov edinilen belirten ışık uyaran (Şekil 3A) ve sunumlar sırasında gıda fincan davranışı artırarak işlemini göstermektedir. Buna ek olarak, her iki grup ödül elde etmek için eşdeğer motivasyon belirten gıda ödül (Şekil 3B) sunumu sırasında gıda fincan davranışı artırarak işlemini göstermektedir. Işitsel uyaranlar, diğer uyaranların yokluğunda sunulmuştur zaman kritik test oturumu sırasında, kontrol fareleri deney sıçanlarda (Şekil 3C) önemli ölçüde farklı olan bir ayrımcılık puanı var. Grafiğin görsel kontrol kontrol sıçanlarının ortalama ayrım oranı yiyecek kabına göre (Önkoşullamanın sırasında) ışık ile eşleştirilmiş işitsel uyaran sunum karşılık olarak, daha fazla yiyecek kap davranışının göstergesi 0.5'ten yüksek olduğunu ortaya koymaktadır(Önkoşullamanın sırasında) eşleşmemiş olan işitsel uyaran sunum cevaben davranış. Buna karşılık, deney sıçanları şans üzerinde olan bir fark puanı göstermek için başarısız olur. Bu nedenle, Şekil 3C kontrolü ancak deney sıçanları duyu ön şartlandırma etki gösterdiği ortaya koymaktadır.

AAV Yerleştirme doğrulanması

Davranışsal testlerin tamamlanmasından sonra, doğru yerleştirme ve tasarımcı reseptörünün ekspresyonu için, sıçan beyin dokusu analiz eder. Davranış immünohistokimya bir alıcı etiketi (örneğin, bir anti-HA birincil antikor) ya da flüoresan raportör karşı primer antikorlar kullanılarak 12,25 (bu örnekte, yeşil floresan proteini (GFP) için bir antikor ile tespit edilir mcitrine). Sıçan beyin ile koronal kesit şematik Şekil 4A'da gösterilmiştir. Şekil 4B, raportör prot sağlam flüoresan immunodeteksiyon görüntülemektedir. Çevre bölgelerde tespit edilen herhangi bir floresan etiket ile temsili bir deneysel sıçan RSC içinde ein Şekil 4C - D deneysel (Expt raportör proteinleri temsilcisi floresan etiketleme göstermektedir; sıçan tasarımcı reseptör geni içeren bir AAV yapı ve mcitrine geni ile infüze edildi ) ve Kontrol (CTRL; fareler, sırasıyla, GFP geni, ancak tasarım reseptörü için bir sekans) sıçanları, ihtiva eden benzer bir AAV yapı ile demlenmiştir. Reseptör seviyeleri de en az, temsilci ve maksimal ifadesi 24 olarak gösterilebilir. Etiketleme ilgi alanı dışında bölgelerinde tespit edilirse, davranışsal analiz gelenler verileri hariç.

Şekil 1
Şekil 1:. AAV yapısının şematik diyagramıdır hSyn-HA-hM4D (Gi) ihtiva eden bir diyagramdır AAV exp kullanılmış mCitrine -IRESArş RSC nöronlarda bir nöronal belirli sinapsin organizatörü (hSyn) kapsamında inhibitör tasarımcı reseptörü (hM4Di). Immunofluorescent muhabir (HA-tag ve / veya mcitrine), sırasıyla, bir protein ve raportör ekspresyonunu görselleştirmek için kullanılabilmektedir. hSyn insan sinapsin promoteri; nöronlarda ekspresyonunu belirtir. HA, hemaglütinini etiketi; bu etiket tasarım reseptörüne kaynaşmış ve reseptör ifadesinin saptanmasını sağlayan bir epitop etiketi olarak hizmet eder. hM4Di, tasarım önleyici G-proteinine bağlı reseptör geni. IRES, dahili ribozom giriş sitesi; bildirici (mcitrine) çevrilmesine izin verir. mcitrine, GFP bir varyantı olan, ancak ışıkla ağartma için daha dayanıklı olan bir flüoresan raportör.

Şekil 2,
Şekil 2: duyusal önkoşullamasının paradigmasının şematik (A) Önkoşullama sess sırasında.iyonlar, 12 intermixed çalışmalar sunulmuştur. 10 sn yanıp sönen bir ışık ev uyaran (5 saniye boyunca 2 Hz) hemen ardından ilişkin çalışmaların 6 sırasında, bir işitsel uyaran sunulmuştur. Diğer 6 çalışmalar sırasında, ikinci bir işitsel uyaran görsel uyaranın olmadan sunulmaktadır. Klima oturumları sırasında (B), daha önceden eşleştirilmiş görsel uyaran gıda ödül ile eşleştirilmiş. Deney oturumu sırasında (C), görsel uyaranlara veya gıda yokluğunda iki işitsel uyaranların 12 karışmış sunumları bulunmaktadır. Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.

Şekil 3,
Şekil 3:. (A) sırasında yanıt Davranışsal sonuçlar ortalama gıda fincan Işık ve (B) Gıda dönemini duKlima oturumları (Faz 2) halka. Veriler tekrarlanan önlemleri varyans analizi kullanılarak analiz edildi. Deney oturumunda (Faz 3) sırasında (C) Ayrımcılık oranları. Noktalı çizgi, her işitsel uyarana yanıt klimalı gıda fincan eşit miktarda (yani, hiçbir duyu önşartlama) Veri bağımsız örneklem t-testi kullanılarak analiz edildi gösterir. Expt; Deney fareleri (n = 17), engelleyici G-proteinine bağlanmış reseptör tasarım (hM4Di) bir floresan haberci (mcitrine) için bir DNA dizisi için bir DNA sekansı içeren bir AAV yapı ile güçlendirilmiştir. Ctrl; Kontrol fareleri (n = 6) hM4Di ile aşılanmış ve tatbik araç kontrol sıçanlarda ile birlikte (n = 4) tasarım reseptörü içermeyen bir AAV virüsü ile aşılanmış ve CNO uygulanmıştır. Kontrol grupları birbirinden anlamlı (p> 0.05) farklı değildi. Hata çubukları, ortalama ± SEM belirtmektedir.

Şekil 4, Şekil 4: protein ekspresyonu histolojik doğrulama (A) sıçan beyninde aracılığıyla koronal bölümünde RSC yerini gösteren şematik.. (B) önleyici G-proteinine bağlanmış reseptör tasarımcısı için DNA dizisini (hM4Di) ve bir flüoresan raportör için DNA dizisini içeren (bir AAV yapı ile infüze edildi deneysel fare (Expt) için immünohistokimyasal etiketli sıçan beyin dokusu Örnek Çıkan mcitrine). mcitrine yeşil floresan protein ve bir çok solmaya karşı dirençli bir varyantıdır. (C) floresan muhabiri etiket (mcitrine) konumunu gösteren bir deneysel sıçan Temsilcisi görüntü. (D), bir flüoresan raportör için DNA dizisini içeren bir AAV yapısı ile aşılanmış bir kontrol sıçan (CTRL) den Örnek görüntüsü (GFP gelişmiş). Ölçek çubuklar: B, 500 mikron; C ve D, 10081;. M bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayınız.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Bu protokol, belirli bir beyin bölgesi çok fazlı karmaşık öğrenme görevi nasıl katkıda araştırmak için bir farmakogenetik yaklaşım (DREADD) uygulamak açıklamaktadır. Geçici ve uzaktan öğrenme aşamalarında farklı beyin bölgelerinde nöral aktiviteyi susturmak için yeteneği ile, yaklaşımların bu kombinasyon öğrenmenin daha nüanslı ve maskeli formları dahil olmak üzere davranışları geniş bir yelpazede, araştırmak için bir platform sağlar. Bu protokol açıklanan örnekte, retrosplenial korteks (RSC) tasarımcı reseptörü ifade sıçanlar ve fareler 3 fazlı davranışsal görev 12 test edildi kontrol. Görevin ilk aşaması uyaranların ikisi arasında bir uyarıcı-uyarıcı dernek kazanmak istiyorum sıçan kontrol varsayımı ile birden nötr uyaranların sunum çıkıyor. çalışma hipotezi RSC 30 dakika önce davranış testi başlangıcından 4 condition gün, her biri üzerinde, bu şekilde, uyarıcı-teşvik öğrenim için gerekli olmasıdırIng, Deney ve kontrol sıçanları tasarım ilaç (CNO) veya araç ya da sistematik olarak hastaya verilmesini verildi. Tasarımcı, reseptöre bağlanmış olduğunda, CNO bu reseptör eksprese edildiği nöron etkinliğini azaltır. RSC öğrenmeyi etkileyen hipotez değil davranışsal klima ve test, kalan aşamalarında, CNO uygulandı değildi ve bu nedenle sinirsel aktivite rahatsız değildi.

Protokol çerçevesinde Kritik Adımlar

AAV bileşiklerinin Güvenli kullanım: farmakogenetik yaklaşımda yer alan cerrahi işlemler artık teknik olarak zor bir basit stereotaksik infüzyon daha Ancak, bazı kurumlarda AAV'nin kullanımı denemecileri BSL-2 önlemlere uymasını gerektirir. Bu müfettişler Centers for Disease Control, finansman kurumları, ev kurumları ve araştırma programına özgü diğer gözetim komiteleri tarafından kurulan yönergeleri takip çok önemlidir. Th ilgili bilgilerAAVS e güvenli olarak taşınması 13 hazır.

Tasarımcı ilacın hazırlanması ve uygulanması: CNO, tasarımcı ilaç, tasarımcı reseptöre bağlanan ve nöral aktiviteyi susturur ama başka türlü biyolojik 1,3 etkisiz olduğunu. Tedarikçilerden CNO sevkiyatı kıvamında değişebilir. bileşiği, kabın yanlarına yapıştırılmayan bir toz olarak ulaşması gerekir.

Önce davranışsal test, tasarımcı ilacın non-spesifik etkilerini kontrol etmek için deneysel sıçan farklı bir dizi demlenmeye (yani, tasarımcı reseptörünü ifade edenler) yerine CNO araç enjeksiyonları ile: Önemli kontrol gruplarına dikkate. Buna ek olarak, tasarım reseptörünün spesifik olmayan etkileri için bir flüoresan raportör fakat değiştirilmiş tasarım reseptörü içeren bir kontrol virüsü ile aşılanmış farelerin bir grup içerir kontrol etmek ve tasarımcı ilaç ile bu fareleri enjekte (yani, CNO) . Ensugruplar arasında dengelemek yoluyla yeterli deneysel tasarım yeniden.

Konstruktunun sentezlenmesinin kontrol etme: Tasarımcı reseptörünün ekspresyonunu ve algılama üst düzeye çıkarmak için bir dizi yol vardır. Infüzyon öncesinde viral titre 10 12 parçacıklar / ml yakın olduğundan emin olun. Genellikle flüoresan raportör görselleştirilmesi düşüktür ve bu nedenle, raportör immünohistokimya (ler) ine karşı yönelik antikorlar kullanılarak söz konusu bölgeye uygulanması önerilir bir virüs yapısına 25 dahil edilir. Bu örnekte, bir anti-GFP immünoreaktivite güçlü bir sinyal sağlar (Şekiller 4B - D). Önemli bir şekilde, çünkü floresan etiketler doğası, 2 saat için sabitleme sürenin uzunluğunu da sınırlandırabilir.Eğer.

Teknikleri Avantajları

Viral yapı stereotaksik cerrahi yoluyla beyne teslim edildikten sonra, farmakogenetik yaklaşım geçici inacti sağlarTasarımcı, bir ilacın, bir minimal invaziv sistemik enjeksiyon aracılığıyla küçük bölgelerde beyin aktivitesinin işareti koyar. İlaç tedavisi arka arkaya gün ya da hafta 12,24,26 boyunca meydana gelen davranış görevler için avantajlı olan, tekrar tekrar oluşabilir. Ayrıca, delil tasarımcı ilaç (CNO) lokomotor davranış veya iştah 27,28 müdahale etmediğini gösterir. Bu durumda, yöntem, geçici inaktivasyonu için diğer yöntemler doğasında stres kaçınırken, zaman (2-5 saat), kısa bir süre için sinirsel aktiviteyi azaltmak için bir fırsat sağlar. Spesifik olarak, kanülasyon çalışmalarında geçici inaktivasyon sürekli kafatası yapıştırılmıştır kanül yoluyla nörotoksinlerin teslimi ile elde edilir. Bu yaklaşım enkaz net ve korumalı kanül tutmak zor olduğu sınırlıdır. Ayrıca, hareketsizlik ikna etmek için, hayvanların davranış testi hemen önce (kanüller aracılığıyla toksin yönetmek için) yoğun işlenir, WHIch hayvan üzerinde stres empoze ve aynı zamanda kanüller kafatası çıkarmak olabilir olasılığını artırır. CNO etkisi nispeten daha kısa süreli olduğu için, (örneğin, kalıcı lezyonlar ardından gözlenen olarak ya da genetik mühendisliği farede) uzun vadeli telafi edici mekanizmalar olasılığı 29,30 en aza indirilmiştir.

Teknikleri Sınırlamalar

DREADD invasiv olmayan bir nöronal aktivitenin zayıflatıcı nispeten yeni bir yöntemdir. Bu tür deneyci bağımsız doğrulamak için eğimli olabilir gibi bu nöronal susturma bunların hazırlanması oluşur. Kontrol elektrofizyolojik yaklaşımlar kullanılarak gerçekleştirilebilir, ama bu deneyler, yüksek maliyetli, zaman alıcı ve belirli uzmanlık gerektiren edilebilir. Chemogenetic teknikler optogenetics daha az maliyetli Buna ek olarak, yaklaşım, TTX farmakolojik maddeler ile geleneksel bir inaktivasyon daha pahalıdır. DREADD yaklaşımının bir diğer kısıtlılığı o Infus olduğunuViral yapıların iyon ilgi bölgesi nöronların% 100 enfeksiyona neden ne de bir nöronal etkinlik% 100 azalma CNO kablosu ile inaktivasyonu yapar etmez. Son olarak, bazı AAV serotipleri retrograd deneysel sonuçlar 2 yorumlanması komplike hangi taşınabilir.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Acknowledgments

Biz bu protokol kısmen türediği yazının katkılarından dolayı Robinson ve ark., 12 yazarları teşekkür ederim.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Male, Long Evans Rats, 55-60 days old Hilltop Lab Animals Inc
rAAV8/hSyn-HA-hM4D(Gi)-IRES-mCitrine Virus Vector Core Caution: This is a BSL-1 compound
rAAV8/hSyn-GFP Virus Vector Core Caution: This is a BSL-1 compound
Clozapine-N-oxide R&D Systems 4936-10 Designer drug
Rat Cage lid (polycarbonate) Alternative Design  FT 8XL-PC Used to cover animal cages 48-72 hr post infusion
Filter paper (replacement) Alternative Design FP-R-1018XAD Filter paper that goes with cage lids
Table top vise JETS 2201-265 For holding microscentrifuge tubes containing AAV in the hood
Biohazard trash bags Staples 113444 Medline biohazard liners
Biohazard trash can Amazon.com United Solutions 34 gallon rectangular wheeled trashcan with hook and lock handle
Isoflurane, 100 ml Patterson Veterinary Supply Inc. 07-890-8540 Anesthetic
Dual small animal stereotaxic with digital display readout console David Kopf Model 942 Surgical equipment
Non-rupture ear bars, set of 2 (rat) David Kopf Model 955 Surgical equipment
Anesthesia mask (rat) David Kopf Model 906 Surgical equipment
High speed stereotaxic drill includes table top motor controller, foot pedal, handpiece, stereotaxic handpiece holder David Kopf Model 1474 Surgical equipment
Microdrill burrs, 0.9 mm Fine Science Tools Inc 19007-09 Surgical supply
Automated syringe pump with micro4 controller David Kopf Model UMP3-1 Surgical equipment
Pro-animal detachable ceramic blade clipper kit Ahdis 21420 Surgical supply
Betadine skin cleanser Perdue Products L.P 67618-149-04 Surgical supply
Triple antiobiotic ointment Medline Supply 53329-087-01 Surgical supply
Puralube vet ointment Only Veterinary Supply 17033-211-38 Surgical supply
Dino-lite Microscope AD7013MTL An alternative to the traditional disection scope
Dino-lite rigid table-top boom stand Microscope MS36B Surgical equipment
28 G 10 μl syringe Hamilton 80308-701SN Surgical equipment
Extra tall MDF sound attenuating cubicle Med Associates, Inc ENV-018MD 22' W x 22" H x 16" D
Extra tall modular test chamber Med Associates, Inc ENV-007 Behavioral equipment
Stainless steel grid floor Med Associates, Inc ENV-005 Behavioral equipment
House light Med Associates, Inc ENV-215M Used as the house light and stimulus light
Modular pellet dispenser Med Associates, Inc ENV-203M-45 Behavioral equipment
Pellet receptacle, cup type Med Associates, Inc ENV-200R1M Behavioral equipment
Head entry detector for rat Med Associates, Inc ENV-254-CB Behavioral equipment
Dustless precision food pellets, 45 mg Bio-Serv F0165 Behavioral supply
Cage speaker for rat chamber Med Associates, Inc ENV-224AM Behavioral equipment
Programmable audio generator Med Associates, Inc ANL-926 Behavioral equipment
Smart ctrl 8 input/16 output package Med Associates, Inc DIG-716P2 Behavioral equipment
Large table-top cabinet and power supply Med Associates, Inc SG-6510D Behavioral equipment
PCI interface package Med Associates, Inc DIG-700P2-R2 Behavioral equipment
MED Intel core computer pkg with X Pro 19" monitor Med Associates, Inc COM-103V Behavioral equipment
Paraformaldehyde (grannular), 1 kg Electron Microsopy Sciences 19210 Hazard: carcinogen, weigh in hood
Rabbit monoclonal antibody (HA-Tag) Cell Signaling Technologies 3724S Histology reagent
XP Rabbit monoclonal antibody (GFP) Cell Signaling Technologies 2956S Histology reagent
Anti-rabbit IgG Cell Signaling Technologies 4412S Histology supplies
Superfrost plus slides VWR international 483111-703 Histology supplies

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Armbruster, B. N., Li, X., Pausch, M. H., Herlitze, S., Roth, B. L. Evolving the lock to fit the key to create a family of G-protein coupled receptors potently activated by an inert ligand. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 104, (12), 5163-5168 (2007).
  2. Urban, D. J., Roth, B. L. DREADDs (Designer Receptors Exclusively Activated by Designer Drugs): Chemogenetic tools with therapeutic utility. Annu. Rev. Pharmacol.Toxicol. 55, 399-417 (2015).
  3. Weiner, D. M. The role of M1 muscarinic receptor agonism of N-desmethylclozapine in the unique clinical effects of clozapine. Psychopharm. (Berl. 177, (1-2), 1-2 (2004).
  4. Cohen, N. J., Memory Eichenbaum, H. amnesia and the hippocampal system. MIT Press. Cambridge, MA. (1993).
  5. Strien, N. M., Cappaert, N. L., Witter, M. P. The anatomy of memory: an interactive overview of the parahippocampal-hippocampal network). Nat. Rev. Neurosci. 10, (4), 272-282 (2009).
  6. Agster, K. L., Burwell, R. D. Cortical efferents of the perirhinal, postrhinal and entorhinal cortices of the rat. Hippocampus. 19, (12), 1159-1186 (2009).
  7. Aggleton, J. P. Multiple anatomical systems embedded within the primate medial temporal lobe: implications for hippocampal function. Neurosci. Biobehav. Rev. 36, 1579-1596 (2012).
  8. Robinson, S., Poorman, C. E., Marder, T. J., Bucci, D. J. Identification of functional circuitry between retrosplenial and postrhinal cortices during fear conditioning. J. Neurosci. 32, (35), 12076-12086 (2012).
  9. Bucci, D. J., Saddoris, M. P., Burwell, R. D. Corticohippocampal contributions to spatial and contextual learning. J. Neurosci. 24, (15), 3826-3836 (2004).
  10. Kaut, K. P., Bunsey, M. D. The effects of lesions to the rat hippocampus or rhinal cortex on olfactory and spatial memory: retrograde and anterograde findings. Cogn. Affect. Behav. Neurosci. 1, (3), 270-286 (2001).
  11. Brogden, W. J. Sensory preconditioning. J. Exp. Psychol. 25, 323-332 (1939).
  12. Robinson, S. Chemogenetic silencing of neurons in retrosplenial cortex disrupts sensory preconditioning. J. Neurosci. 34, (33), 10982-10988 (2014).
  13. NIH guidelines for research involving recombinant or synthetic nucleic acid molecules. Available from: http://oba.od.nih.gov/rdna/nih_guidelines_oba.html. (2013).
  14. Samulski, R. J., Muzyczka, N. AAV-mediated gene therapy for research and therapeutic purposes. Annu. Rev. Virol. 1, 427-451 (2014).
  15. Tenenbaum, L., Lehtonen, E., Monahan, P. E. Evaluation of risks related to the use of adeno-associated virus-based vectors. Gene Ther. 3, 545-565 (2003).
  16. Arechavaleta-Velasco, F., Ma, Y., Zhang, J., McGrath, C. M., Parry, S. Adeno-associated virus-2 (AAV-2) causes trophoblast dysfunction, and placental AAV-2 infection is associated with preeclampsia. Am J Path. 168, (6), 1951-1959 (2006).
  17. Erles, K., Rohde, V., Thaele, M., Roth, S., Edler, L., Schlehofer, J. R. DNA of adeno-associated virus (AAV) in testicular tissue and in abnormal semen samples. Hum. Reprod. 16, (11), 2333-2337 (2001).
  18. Donsante, A. AAV vector integration sites in mouse hepatocellular carcinoma. Science. 317, (5837), 477-47 (2007).
  19. Donsante, A. Observed incidence of tumorigenesis in long-term rodent studies of rAAV vectors. Gene Ther. 8, (17), 1343-1346 (2001).
  20. Wu, K. Enhanced expression of Pctk1, Tcf12 and Ccnd in hippocampus of rats: impact on cognitive function, synaptic plasticity and. 97, (1), 69-80 (2011).
  21. National Academy Press. Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. National Academy Press. Washington, DC. (1996).
  22. Lowery, R. L., Majewska, A. K. Intracranial injection of adeno-associated viral vectors. J. Vis. Exp. (45), (2010).
  23. Cavaletti, G. Effect in the peripheral nervous system of systemically administered dimethylsulfoxide in the rat: a neurophysiological and pathological. 119, (1-2), 1-2 (2000).
  24. Parnaudeau, S., et al. Mediodorsal thalamus hypofunction impairs flexible goal-directed behavior. Biol. Psychiatry. 77, (5), 445-453 (2014).
  25. wiki, D. R. E. A. D. D. Available from: http://www.dreadd.org (2014).
  26. Ferguson, S. M., Phillips, P. E. M., Roth, B. L., Wess, J., Neumaier, J. F. Direct-pathway striatal neurons regulate the retention of decision-making strategies. J. Neurosci. 33, (28), 11668-11676 (2013).
  27. Cassatarro, D. Reverse pharmacogenetic modulation of the nucleus accumbens reduces ethanol consumption in a limited access paradigm. Neuropsychopharm. 39, 283-290 (2014).
  28. Krashes, M. J., Shah, B. P., Koda, S., Lowell, B. B. Rapid versus delayed stimulation of feeding by the endogenously released AgRP neuron mediators. GABA, NPY and AgRP. Cell Metab. 18, (4), 588-595 (2014).
  29. Gage, F. H., Bjorklund, A., Stenevi, U., Dunnett, S. B. Functional correlates of compensatory collateral sprouting by aminergic and cholinergic afferents in the hippocampal formation. Brain Res. 268, (1), 39-47 (1983).
  30. Nelson, R. J., Young, K. A. Behavior in mice with targeted disruption of single genes. Neurosci. Biobehav. Rev. 22, (3), 453-462 (1998).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics