Клонирование и крупномасштабное производство высокопроизводительного аденовирусные векторы на основе типа аденовируса человека 5

Bioengineering

Your institution must subscribe to JoVE's Bioengineering section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Ehrke-Schulz, E., Zhang, W., Schiwon, M., Bergmann, T., Solanki, M., Liu, J., Boehme, P., Leitner, T., Ehrhardt, A. Cloning and Large-Scale Production of High-Capacity Adenoviral Vectors Based on the Human Adenovirus Type 5. J. Vis. Exp. (107), e52894, doi:10.3791/52894 (2016).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Introduction

Для терапевтического применения генных это имеет большое значение, чтобы избежать цитотоксические и иммуногенные побочных эффектов, вызванных экспрессии вирусных белков, самой трансгена или на входящих вирусных белков. Аденовирусные векторы (ADV) широко используются для введения чужеродной ДНК в самых разнообразных клетках, чтобы исследовать воздействие трансгенной экспрессии 1,2. Наиболее продвинутая версия ADV представлена ​​высокопроизводительных аденовирусных векторов (HCAdV), лишенных все вирусные кодирующие последовательности 3,4, и тем самым, предлагающих емкость упаковки до 35 кб в сочетании с низкой иммуногенности и низкой токсичностью 5-8. Из-за их высокой вместимости тары они позволяют доставки больших или нескольких трансгенов с помощью одного вектора дозу. Таким образом, они представляют собой ценный инструмент для научного сообщества.

В отличие от первого или второго поколения AdV хватает ранних генов Е1 и / или Е3, которые могут быть легко получены с использованием коммерческих наборов, VECTor строительство генома вируса и производство HCAdV является более сложным. Система для строительства HCAdV геномов на основе плазмиды, несущей pAdFTC HCAdV геном, лишенный всех вирусных кодирующих последовательностей и трансфер плазмиды pHM5 9-12. Любой интерес ген до 14 килограмм базами (кб) может быть клонирован в вектор трансфер pHM5, в котором сайт множественного клонирования в окружении признания / рассекая сайты самонаведения эндонуклеаз Пи сю I и I-Сеу I. Таким образом, клонированный ген интереса может быть выпущен подряд PI-сю I и I-I Céu переваривает для последующего направленного вставки в тех же сайтов рестрикции, присутствующих в геноме HCAdV, содержащейся в плазмиде pAdFTC. В pAdFTC сайт трансгенной инсерции расположен между PI-сю I и I-я Céu сайты расщепления в окружении извитости ДНК и некодирующих последовательностей аденовирусных, необходимых для генома упаковки, такие как 5 'и 3' инвертированные концевые повторы (СПУ)на обоих концах и упаковочной сигнала ниже по потоку от 5'ITR. Дополнительное извитости ДНК обеспечивает оптимальную размер конечного HCAdV генома в пределах от 27 до 36 кб, чтобы обеспечить эффективную упаковку в процессе производства вируса. Так pAdFTC большой плазмиды до 45 кб (в зависимости от размера вставленного трансгена) и использование наведения эндонуклеаз со сравнительно сайтов ДНК длиной распознавания проявляет сильное к ДНК, несколько шагов очистки необходимы во время передачи трансгена от pHM5 чтобы pAdFTC. Осторожное обращение избежать сдвига силы рекомендуется.

РМЭ о HCAdV генома в окружении я не сайтов рестрикции распознавания, расположенных непосредственно перед 5'ITR и ниже по течению от 3'ITR 12. Таким образом, HCAdV может быть освобожден от Not I переварить для последующего трансфекции вирусного генома в HCAdV производителем клеточной линии. Обратите внимание, что использование фермента рестрикции Not I для отнпростота вирусного генома из плазмиды pAdFTC означает, что вставлен трансген лишена сайтов узнавания не я ДНК. Клеток-продуцентов НЕК293 клеток, основанные (116 клеток) стабильно выразить Cre рекомбиназу. Для амплификации вируса клетки 116 с сочетанной инфекцией вируса-помощника (HV), обеспечивающей все гены, необходимые для ADV репликации и упаковки в транс 3,4. Гибридного является первым поколения AdV с floxed упаковки сигнал, который удаляется во амплификации вируса по Cre рекомбиназой выраженной в 116 клеток 4. Это гарантирует, что преимущественно HCAdV геномы, содержащие целостности упаковки сигнала encapsidated.

Предварительно усиление HCAdV выполняется путем проведения последовательных шагов пассирования в 116 клетки, выращенные на поверхности в культуре ткани блюд. После каждого прохода вирусные частицы высвобождаются из инфицированных клеток путем проведения трех последовательных шагов замораживания-оттаивания. С каждым прохождение большее число клеток, инфицированных1/3 из клеточного лизата из предыдущего прохода. Наконец лизата с последней стадии предварительной амплификации используют для инфицирования клеток-продуцентов выращивают в суспензии в вращаемой колбе при больших масштабах амплификации. Вирионы очищали из клеток суспензии, выполняя ультрацентрифугирования в цезия плотности хлорида градиента 4,12. С помощью этой процедуры пустые частицы и полностью собранные частицы делятся на два различных диапазонах. Для дальнейшего сосредоточить HCAdV частиц второй без постепенного шаг ультрацентрифугирование выполняется. Впоследствии в результате полосу, содержащую HCAdV собирают и диализуют против физиологическом буфере. Конечный вектор препараты характеризуются относительно числа абсолютных вирусных частиц, инфекционных частиц и уровня загрязнения HV. Абсолютные вирусные частицы могут быть определены путем лизиса вирусных частиц и измерением оптической плотности при 260 нм или при выполнении количественный ПЦР в реальном времени (КПЦР) 12. Инфекционность Пурвирусные частицы маньяков может быть определена путем измерения КПЦР HCAdV геномов, присутствующих в инфицированных клетках 3 ч после инфицирования.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1. Конструирование рекомбинантных геномов HCAdV на основе плазмиды pAdFTC

Примечание: Все плазмиды были описаны ранее 11,12 и доступны по запросу. Процедура клонирования схематически показано на фиг.1.

  1. Клонирование гена интереса (ГОИ) в том числе и промоутер сигнал полиаденилирования (рА) в шаттле плазмиды pHM5, используя стратегию клонирования выбора, чтобы произвести pHM5-ГОИ.
    Примечание: С pAdFTC является относительно большой плазмиды, классические протоколы плазмидной ДНК рекомендуется, чтобы избежать sheering плазмидной ДНК с помощью коммерческих наборов очистки плазмидной, основанные на силикагеле, мембран. I-я Ceu П.И. -Sce я сильно связываются с ДНК и изменить электрофоретической подвижности переваренной ДНК. Таким образом, извлечение фенола и хлороформа EtOH осадков (шаг 1.3) необходимо до электрофореза в агарозном геле.
  2. Дайджест 20 мкг PHM5-ПИ и 10 мкг pAdFTC от I-CeuI (10 U) в течение 3 часов при 37 ° С в общем объеме 100 мкл для линеаризации плазмиды (~ 2,8 т.п.н. + ПИ ORF последовательность и ~ 31kb, соответственно).
  3. Очищают линеаризованные плазмиды с использованием экстракции фенол-хлороформ с последующей этанола (EtOH) осаждения 13.
    1. Добавить 100 мкл фенола: хлороформ: изоамиловый спирт и аккуратно перемешать с помощью переворачивания пробирки несколько раз. Центрифуга в течение 2 мин при 15000 х г в.
    2. Передача супернатант в новую пробирку, добавить 20 мкл ацетата натрия (рН 5, 3 м) и 400 мкл охлажденного льдом этанола (99,8%) и смешивают подвески энергично. Центрифуга течение 10 мин при 15000 х г в.
    3. Удалить супернатант, добавить 300 мкл 70% этанола и центрифугируют в течение 2 мин при 15000 х г в. Затем снимите супернатант и сухой воздух осадок ДНК. Растворите таблетку в 10- 20 мкл ЦТ 2 O. Не сушите шарик ДНК слишком долго, как это будет труднее получить ДНК в растворе.
  4. Дайджест I-Ceu я -digested pHM5-ГОИ и pAdFTC плазмиды со стадии 1.3), по крайней мере 3 часа или O / N с рестриктазы PI -Sce I (10 U) при 37 ° С в общем объеме 50 мкл, а затем очистить I -CeuI П.И. -Sce я переваривается плазмиды, используя добычу фенол-хлороформ с последующим осаждением этанола (см шаг 1,3). Растворите ДНК в 20 мкл нуклеазы свободной дН 2 O.
  5. Отдельная pHM5 плазмиды костяк (2,8 кб) и ГОИ (с шага 1.4) на препаративной агарозном геле и гель-очищения ГОИ, используя коммерческий гель-ПЦР и комплект очистки. Представитель агарозном геле дайджеста показано на рисунке 2А.
  6. Дефосфорилировать I- Ceu я П. И. -Sce I-переваривается pAdFTC (с шага 1.4) с щелочной фосфатазой кишечника теленка (CIP 10 U) в течение 1 ч при 37 ° С в общем объеме 25 мкл и очистить дефосфорилируется плазмиды pAdFTC экстракцией фенол-хлороформ и последующей EtOH прecipitation (шаг 1.3). Элюции ДНК в 20 мкл нуклеазы свободной дН 2 O.
  7. Выполнение гель-электрофореза аналитическую из аликвоты дефосфорилированного pAdFTC плазмиды (со стадии 1.6), и очищенный ГОИ-фрагмента (со стадии 1.5), чтобы проанализировать дайджесты ли полное и размеры ожидаемых фрагментов верны (~ 31 Кб для линеаризованной pAdFTC ).
    Примечание: Размер ГОИ варьируется в зависимости от размера кластера экспрессии трансгена. Оценить относительную концентрацию соответствующих фрагментов для последующего лигирования. Представитель агарозном геле очищенных фрагментов показан на фиг.2В.
  8. Настройка реакции лигирования в общем объеме 20 мкл с использованием лигазы 400 ед Т4 ДНК и молярное соотношение вектора для вставки 1: 3.
    Примечание: по согласованию с агарозном геле, показанной на фиг.2В, мы обычно лигируют в общем объеме 20 мкл с 2 до 6-мкл вектора, от 8 до 12 мклвставлять и 400 ед ДНК-лигазы Т4. При увеличении концентрации ДНК, как правило, с низким после нескольких шагов обработка карболовой кислотой, использовать столько ДНК, сколько возможно, так что никакого дополнительного H 2 O не должен быть добавлен, чтобы достичь конечный объем 20 мкл. Перевязывать при 16 ° CO / N, а затем выполнять извлечение фенол-хлороформ с последующим осаждением этанола (этап 1.3).
    1. Элюции ДНК в 15 мкл нуклеазы свободной дН 2 O и переварить очищенного реакции лигирования с помощью фермента рестрикции SwaI (10 U) в течение 2 ч при 25 ° С в общем объеме 20 мкл. Затем сконцентрироваться и очистить ДНК, выполняя извлечение фенол-хлороформ с последующим осаждением этанола (этап 1.3). Элюции ДНК в 10 мкл нуклеазы свободной дН 2 O.
  9. Преобразование 2 мкл очищенной SWA переваренного продукт лигирования путем электропорации в DH10B или DH5 & alpha; Электрокомпетентные E. палочка и отбора клонов в течение 16 до 24 часов при 37 ° С на ампициллин-LB, содержащейПластины (50 мг / мл ампициллина). Выбор 5- 10 клонов и подготовить мини-препараты плазмидной ДНК с помощью щелочного лизиса с последующей экстракцией фенол-хлороформ и последующей EtOH осадков (шаг 1,3) 13.
  10. Выполнение аналитический дайджест плазмиды мини-препаратов с последующим электрофорезом в агарозном геле, чтобы проверить размер фрагментов ДНК. Предлагаемые ферменты рестрикции например I-Ceu я и PI-сю я выпуская вставку, SPE I или II Hinc (рис 2С).
  11. Амплификации клона правильное в ампициллин, содержащий LB среде (50 мг / мл ампициллина) и выполнить Миди или Макси-плазмиду, используя любой препарат коммерчески доступного набора для очистки плазмид.

2. Выпуск HCAdV-геномов из pAdFTC плазмиды и предварительное усиление HCAdV векторы в клеточной линии 116 Производитель

  1. Дайджест 20 мкг pAdFTC основе аденовируса производства плазмиды, содержащей клонированную ГОИ с шага 1.11) вобщий объем 100 мкл с помощью Not I (20 ЕД) при 37 ° С в течение 2 ч> и выполнять экстракции фенолом и хлороформом два раза с последующим осаждением EtOH. Растворите в 20-ти 30 мкл стерильной дН 2 O.
  2. Проверьте аликвоту разбавленного 1:10 переваренной pAdFTC-ГОИ-ДНК гель-электрофореза. A 9 кб фрагмент плазмиды для позвоночника и, в зависимости от размера ГОИ, второй ДНК-фрагмента для HCAdV генома (размер: 28- 36 Кб) можно обнаружить.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Представитель пример я не дайджеста отображается на рисунке 2D. Линеаризованная ДНК можно хранить в течение нескольких дней при температуре 4 ° С или при -20 ° С в течение нескольких недель.
  3. Прежде чем приступить к протоколу, убедитесь, что помощник вирус AdNG163R-2 был усилен 4.
    Примечание: Клетки, трансфицированные pAdFTC получены HCAdV векторов генетически модифицированные организмы, классифицируемые как уровень биологической безопасности 2 (BSL-2), пожалуйста, используйте правильную локализации и обращения с отходамимеры, включая средства индивидуальной защиты, и работы в рамках BSL-2 капюшонами ламинарного потока.
  4. Культура клеток в 116 MEM Дульбекко среде с добавлением 10% FBS и гигромицину B (100 мкг / мл). Семя низкий проход (ниже канал 10) 116 клеток (~ 0.4x 10 6 клеток) в 60 мм блюдо культуры ткани за один день до трансфекции, чтобы они достигают 50- 80% слияния на следующий день.
  5. Трансфекции геном линеаризованной HCAdV со стадии (2.1) в 116 клетках с помощью методов, таких как фосфат кальция трансфекции или других коммерчески доступных реагентов трансфекции (фиг.3А). 16 18 ч после трансфекции, осторожно снимите среду, добавить 3 мл свежей среды (MEM, 5% FBS) и инфицировать клетки с HV AdNG163R-2 4 5 применяющие преобразующие единиц (ТУ) на ячейку (поскольку сливной 60 мм тканевой культуры блюдо содержит ~ 3,2 • X 10 6 клеток, добавить ~ 1,6 10 7 ТУ ВН).
    1. Аккуратно переместите блюду каждые 20 минут в течение первого часа после заражения вобеспечить равномерное распределение HV. Выращивают инфицированные клетки при 37 ° С и 5% СО 2. В случае эффективного влияния вируса усиления цитопатического (CPE), вызванных вирусом репликации (клетки округляются и свободно прикреплены или отдельно от ткани блюдо культуры) наблюдаема 48 ч наблюдается после infection.If CPE ранее количество HV должен быть снижена. Если CPE начинается позже, более помощник вирус должен быть использован.
  6. Урожай клетки, включая надосадочной 48 ч после инфекции путем промывки от клеток от культуральной чашки с помощью культуральной среды. Клетки, которые суспендируют в их культуральную среду называют прохода 0 (P0). Сплит Р0 на две фракции.
    1. Из 0,5 мл клеток отдельных спином вниз клетки в течение 3 мин при 2000 х г и удалить носитель из клеточного осадка, который затем используется для выделения геномной ДНК (GDNA) для основе КПЦР анализа процесса амплификации. Магазин клеточные осадки при -20 ° С до дальнейшей обработки.
    2. От 2,5мл обособленных клетки высвобождают вирусные частицы путем замораживания (при -80 ° С или в жидком азоте) и оттаивания (при комнатной температуре или в водяной бане при 37 °) клетки, которые resupended в их средней три-четыре раза. Эта фракция, чем называемой лизата P0.
  7. Обеспечить, чтобы культуры тканей блюда с 116 клеток, которые выращивали до 90- 95% слияния с помощью MEM-среду, дополненную FBS (10%) и к гигромицину B (100 мкг / мл) и HV доступны для следующих этапов пассирования.
  8. Смешайте 1 мл свежей среды (MEM, 5% FBS) с 2,5 мл лизата из предыдущего прохода (этап 2.6.2) до конечного объема 3,5 мл, добавляют ВН применяя 2 ТУ на клетку (с 60 мм ткани культура блюдо на слияния в 90- 95% содержит 3,2 • X ~ 10 6 клеток, добавить ~ 6.4x 10 6 ТУ ВН). (3В). Тщательно удалить носитель из 60 мм чашку 116 клеток и добавить вирусную смесь с клетками. Повторите шаг 2.6) - 2.8) два раза, чтобы получить лизаты проходвозраст P1 и P2.
  9. Смешайте 17,5 мл свежей среды (MEM, 5% FBS) с 2,5 мл лизата от P2 и добавить HV применяя 2 ТУ на клетку (с 150 мм блюдо культуры ткани при сплошности из 80- 100%, содержит ~ 10 7 2x Клетки, добавить ~ 4x 10 7 ТУ ВЛ). Удалить среду из 150 мм блюдо 116 клеток и инфицировать клетки с вирусной смеси. Выращивают инфицированные клетки при 37 ° С и 5% СО 2.
  10. 48ч после заражения урожая клетки, как описано в шаге 2.6), чтобы получить проход Р3 (рис 3B).
    1. Повторите шаг 2.6) 1.
    2. Из оставшихся 19,5 мл Р3 выпуска вирусных частиц из клеток resupended замораживания и оттаивания три-четыре раза. Эта фракция, чем называемого лизата P3.
      Примечание: Некоторые векторы в конечном итоге могут потребоваться дополнительные проходы в 150 мм чашки, пока они не усиливаются в достаточной степени. Поэтому Effectivity процесса предварительного усиления необходимо контролировать во время серийного проходстарения. КПЦР основе анализа процесса усиления может быть выполнена, как описано в разделе 3 (смотри также рисунок 4А). Предварительно усиление HCAdV несущий экспрессионную кассету для зеленого флуоресцентного белка (GFP) может быть легко оценена путем наблюдения flourecscent сигнал GFP с помощью флуоресцентного микроскопа (фиг.4В).

3. Мониторинг процесса амплификации с использованием количественно-ПЦР в реальном времени (КПЦР) (см также рис 4А).

  1. Изолировать GDNA из осадков клеток из каждого прохода preamplifaction (шаги 2.6) - 2.10), используя любой коммерческий набор для выделения ДНК изоляции гДНК из культивируемых клеток или другой метод выбора. Для получения оптимальных результатов ПЦР использовать GDNA как свежие, как это возможно. В противном случае гДНК можно хранить при -20 ° С до дальнейшего использования.
  2. Чтобы определить количество HCAdV геномов в клетках соответствующего прохода по анализу КПЦР получения стандартной кривой, используя 10 1 </ SUP> - 10 9 копий плазмиды, несущей ГОИ, содержащиеся в HCAdV генома.
  3. Анализ же количество гДНК от P0- P3 (шаг 2.6- 2.10) нанесение КПЦР с использованием 400 нМ праймеров, специфичных для ГОИ, содержащихся в HCAdV генома. Для проведения количественной ПЦР инструкции следовать производителя о соответствующих химических веществ КПЦР. Установите программу КПЦР следующим образом: предварительно инкубации при 95 ° С в течение 10 мин, усиления в 40 циклов при 95 ° С в течение 10 с, 55-60 ° С в течение 15 с и 72 ° С в течение 20 сек. На основании стандартной кривой количество HCAdV геномов в реакции, может быть интерполирован.

4. Крупномасштабная Усиление HCAdV векторы в 116 клеток, выращиваемых в суспензии

  1. Добавить 900 мл предварительно нагретой (37 ° C) свежего MEM с добавлением 10% FBS и гигромицину B (100 мкг / мл) в 3 л колбе счетчик культуры (фиг.3В).
  2. Удалить среду, по крайней мере 10 отдельных 150 мм чашках для тканевых культур с 116 клетки, выращенные на 90- сплошности из 100% и очистить от клеток с 10 мл свежего подогретого (37 ° С) МЕМ с добавлением FBS (10%) и к гигромицину B (100 мкг / мл) с помощью пипетки серологические. Внесите вверх и вниз несколько раз, чтобы получить однородную суспензию клеток. Перевести клеток непосредственно во вращающуюся колбу, уже содержащего 900 мл из шага 4.1).
    Примечание: Не используйте трипсин / ЭДТА, как это может негативно повлиять на рост клеток суспензии. После удаления среды немедленно передать клеток в вращаемой колбе. Не обрабатывать более двух чашках для тканевых культур одновременно. Чем дольше время ожидания после добавления свежей среды, тем труднее будет отдельно клеток от блюдо культуры ткани.
  3. Для обеспечения оптимального роста клеток Инкубировать вращающийс сосуд на магнитную мешалку в культуральной инкубаторе ткани в течение 24 ч при 37 ° С и 5% СО 2. Регулировка магнитной мешалки до 70 оборотов в минуту, чтобы избежать прикрепление клеток к поверхности стекла. Монитор рост клеток во вращающихся культуры колбу изучить ли клетки, выращенные в счетчик культуры колбу жизнеспособны и расти ли они достаточном количестве. Каждый раз перед добавлением свежей среды Transfer 2 мл из биореактора к 60 мм блюдо культуры ткани. Заметим, морфологии клеток под микроскопом.
    Примечание: клеток, образующих комки, плавающие в культуральной среде показывают оптимальный рост и жизнеспособность (смотри также фиг.4С). Через 24 часа они образуют колонии на поверхности чашки для культивирования тканей. 30- 50% слияния указывает оптимальную плотность.
  4. 24 ч после настройки счетчик культуральной колбы добавляют 500 мл свежей среды (MEM, 10% FBS) с добавкой к гигромицину B (100 мкг / мл). 24 ч спустя повторить этот шаг.
  5. 72 ч после настройки в счетчике культуру, добавить 1000 мл свежей MEM средах (10% FBS) с гигромицину B (100 мкг / мл), в результате общего объема 3 л клеточной суспензии.
  6. 24 ч после достижения AVolume из трех литров, урожай 116 клеток суспензии центрифугированием в течение 10 мин при 500 х г при комнатной температуре. Удалите супернатант. Держите опустели счетчик культуры колбу под капот культуры ткани.
  7. Ресуспендируют осадок клеток в свежей среде MEM с добавлением 5% FBS с помощью пипетки вверх и вниз относительно 8- 10 раз, чтобы получить гомогенную суспензию клеток. Объем среды зависит от того, лизат, полученный на стадии 2,10) 2. (19,5 мл, см шаг 4,8) 1. Вариант А) или очищенный вирусный запас HCAdV с шага 5.9) 2. (несколько мкл depanding на титра вируса, см шаг 4,8) 2., вариант Б) используется для заражения клеток. Использование общего объема 150 мл.
    1. Вариант А: Для инфекции 116 клеток суспензии с лизатом от P3 (главный усилительный) передачи клетки со стадии 4.8) к бутылке для хранения 250 мл, снабженную стерильной магнитной мешалкой или 250 мл малого масштаба вращающейся колбе и со-инфицировать клетки с Вирус в лизата от P3 (шаг 2.10.2) и 2 ТУ ВН на клетку. Если предположить, что плотность 3x10 5 клеток на мл, общее количество клеток является 9x 10 8 клеток. Таким образом, добавить 1.8x 10 9 ТУ в HV.
    2. Вариант Б: К инфекции 116 клеток суспензии с очищенной вирусной акции, передача клетки, полученные на стадии 4.8) в хранилище бутылки 250 мл, снабженную стерильной магнитной мешалкой или 250 мл малого масштаба вращающейся колбе и со-инфицировать клетки с вирусными частицами 100 на клетку из ранее очищенных HCAdV (со стадии 5.9) 2.). Таким образом, добавление 9x 10 10 VP в соответствии с физическими титра (измеренной по поглощению при 260 нм; этап 6) очищенного HCAdV и 1.8x 10 9 ТУ в HV.
  8. Размешайте клеток вируса смесь из Сен 4.8.1) или 4.8.2) в магнитной мешалкой в культуре ткани инкубаторе при 37 ° С и 5% СО 2 в течение 2 ч при 60 оборотах в минуту. Убедитесь, что бутылка хранения не полностью закрыта для циркуляции воздуха.
  9. 2 ч после заражения передать общий объем клеток вируса смеси обратно во вращающуюся культа 3 лЮр колбу и добавить 1850 мл свежей предварительно нагретой (37 ° C) MEM, дополненной 5% FBS до общего объема 2 л и инкубируют в инкубаторе тканевых культур при 37 ° С и 5% СО 2 в течение 48 ч при 70 мин.
  10. Урожай клетки центрифугированием в течение 10 мин при 890x г при комнатной температуре в 500 мл центрифужные пробирки. Извлеките носитель и ресуспендируют осажденные клетки в общем объеме 28 мл DPBS. Пипетировать вверх и вниз до получения однородной клеточной суспензии. Замораживание клеток вирусной суспензии в жидком азоте или при температуре -80 ° С, убедившись, что подвеска полностью заморожена. Не хранить клетки-вирусной суспензии при -80 ° С до начала очистки вируса.

5. Очистка и Диализ HCAdV

  1. Чтобы приготовить вирусный лизат для хлорида цезия (CsCl) градиентов, заморозить клетки-вирусной суспензии, полученной на стадии 4.11) в жидком азоте и оттаивания в водяной бане при 37 ° С в четыре раза.
  2. Центрифуга лизата вируса при 500 мкг в течение 8 мин при RТ и собирать надосадочную жидкость, содержащую HCAdV.
  3. Ультрацентрифугирование готовить растворы CsCl, как follows.Weigh 37,5 г (1,5 г / см 3), 33,5 г (1,35 для г / см 3), и 31,25 г (1,25 г / см 3) CsCl порошка, соответственно, и заполнить с дН 2 O до 25 мл.
    1. Stirr до решения становится ясно, и стерильный фильтр решения. Наконец удалить 1 мл каждого раствора и взвесить его на мелкой шкале, чтобы проверить погоду плотность является правильным. 1 мл должны весить 1,5 г, 1,35 и 1,25 г соответственно.
    2. Если плотность слишком высока отрегулировать его ступенчатым добавлением небольших объемов (мкл) стерильного дН 2 O. После того ЦТ 2 O измерить плотность которых снова. При необходимости добавить еще дН 2 O.
    3. Повторите эту процедуру, пока плотность не является правильным. Если плотность слишком низка настроить его добавлением небольшого количества порошка CsCl. Стерильный фильтр снова и проверьте плотность. Если плотность слишком высокая отрегулируйте его надстройкаг дН 2 O, как описано выше. Если плотность еще слишком низок добавить мор CsCl, стерильный фильтр снова и проверить плотность. Повторите эту процедуру, пока плотность не является правильным.
  4. Подготовка CSCL шаг градиенты в шести прозрачных Ультрацентрифуга труб. Осторожно и медленно пипетки решения CsCl в трубы с помощью следующий порядок: 0,5 мл 1,5 г / см 3 раствора CsCl, 3 мл 1,35 г / см3 раствора CsCl и 3,5 мл 1,25 г / см3 раствора CsCl (фиг.2С) ,
  5. Наложение ~ 4,5 мл очищенной вектор супернатант из шага 5.2) в верхней части г / см 3 хлористого цезия слоя 1.25. Центрифуга градиентов в ультрацентрифуге помощью качели из ротора (SW-41) при 12 ° С в течение не менее 2 ч при 226000 х г (35 000 оборотов в минуту) с медленным ускорением и замедлением в отдельном HCAdV-генома, содержащая вирусные частицы из пустых частиц и ячейки мусора.
    ПРИМЕЧАНИЕ: При оптимальных условиях диффузного группа клеток мусора форм на верхнейтруб. Ниже два белые полосы можно наблюдать. Верхняя полоса содержит пустые частицы в то время как нижняя полоса равна HCAdV (рис 2С и 5А).
  6. Тщательно удалить слои клеточного дебриса и пустых частиц и собирать 1 мл нижних зон из каждой пробирки и передачи вируса с чистой пипетки в стерильную пробирку на 50 мл. Добавьте до 24 мл 1,35 г / см3 CsCl решение собранных вирусных частиц и тщательно перемешать.
  7. Заполните центрифужные пробирки с 1.35 г / см 3 CsCl вирусов решение верхней и центрифуги O / N (18- 20 ч) в 226000 мкг (35000 оборотов в минуту) при 12 ° С в ультрацентрифуге помощью качели из ротора (SW-41 ) медленно ускорения и замедления.
  8. Соберите HCAdV присутствующих в видном нижней полосы. В качестве потенциального верхняя полоса содержит пустые частицы удалить верхние слои сверху с помощью пипетки (см рисунки 2C и 5B) Потом заберите нижнюю USI полосынг пипетки.
  9. Диализировать собранные вирусные частицы для буфера обмена.
    1. Отрежьте полоску диализной трубке (MWCO: 50,000) около 8 см в длину, промойте его стерильным дН 2 O в течение трех раз. Затем закройте одну сторону диализной трубки с пластиковым зажимом и передают собранную вирус с шага 5.8) в системе трубопроводов при использовании 1-мл пипетки. Избегайте пузырьков воздуха в трубки и закрыть его на другой стороне с пластиковых колпачков зажима диализа.
    2. Диализировать в 1 л буфера для диализа (10 мМ Трис-HCl (рН 7,5), 10% глицерина и 1 мМ MgCl 2 в деионизированной H 2 O) в течение 2 часов при температуре 4 ° Cwith медленном перемешивании. Обмен буфера для диализа с 2 л буфера для диализа и диализ O / N при 4 ° С при медленном перемешивании. Можно также использовать sucrosebuffer (140 мМ NaCl, 5 мМ Na 2 HPO 4 x2h 2 O, 1,5 мМ KH 2 PO 4 и 730 мМ сахарозы, рН 7,8).
    3. Соберите Диализованные вирусных частиц из шага 5.9) 2. с использованием 1 мл рipette. Подготовьте несколько аликвот желаемых небольших объемах (25- 100 мкл) и хранить очищенный вирус при -80 ° С.

6. Измерение физической Титр Заключительных HCAdV препаратов по оптической плотности (ОП)

  1. Развести 25 мкл конечного препарата вектор из шага 5.9) 2 475 мкл буфера для лизиса (10 мМ Трис-HCl (рН 7,5), 10 мМ ЭДТА (рН 8,0), 0,5% SDS)), осторожно встряхивают в течение 20 мин при РТ и, наконец, центрифуги в течение 2 мин при комнатной температуре при 15000 х г в.
  2. Так как значения поглощения при 260 нм (А260), как правило, низкой, Измерить поглощение четыре раза с использованием 100 мкл супернатанта и рассчитать среднее значение четырех измерений. Рассчитать количество вирусных частиц на мл (VP / мл -1), используя следующую формулу: Vp / мл -1 = (средний A260) х (20) х (1,1 х 10 12) х (36 кб размер / HCAdV в кб ).
    ПРИМЕЧАНИЕ: Результаты типичного урожая абсолютных вирусных частиц (ОД) титр показаны на рис

7. Измерение всех частиц, Инфекционные Подразделения HCAdV и уровней загрязнения в HV конечный вектор подготовки по кПЦР. Схема титрование показано на рисунке 6

  1. Семенной НЕК293 в 6 или 12 пластин культуры ткани также, чтобы клетки достигают 90% слияния на следующий день. Чтобы определить количество инфекционных вирусных частиц (инфекционный титр), инфицировать клетки одного хорошо мульти-луночный планшет с 1 мкл и второй скважины с 10 мкл очищенного вируса от шага 5.9) 3.
  2. Урожай клетки после заражения 3 ч. Удалить среднего и добавить трипсин, чтобы покрыть всю лунку и инкубировать в 37 ° С и 5% СО 2 в течение 5 мин. Промойте от клетки с помощью трипсина с помощью пипетки и спином вниз клетки при 890 мкг в течение 3 мин при комнатной температуре.
  3. Ресуспендируют гранулированных клеток в 200 мкл DPBS и тщательно вымойте их, чтобы удалить свободные (без инфекционных) векторных частиц. Центрифуга в течение 3 мин при 890 мкг при комнатной температуре. Удалите супернатант и ресуспендирования гранул клеток в 200 мкл свежей DPBS.
    Примечание: Для точного определения инфекционного титра, важно, чтобы удалить все не-инфекционных вирусных частиц из клеток поверхностей путем обработки трипсином и тщательное мытье.
  4. Чтобы определить общее число частиц вируса (инфекционные частицы, так и не инфекционные частицы = физическое титр), урожай неинфицированных клеток НЕК293 из двух скважин без трипсина путем промывки от клеток с их питательная среда с помощью пипетки.
  5. Спин вниз клетки в течение 3 мин при 890 х г при комнатной температуре. Откажитесь от среды и ресуспендирования клеток в гранулированные 200 мкл DPBS. Суbsequently добавить 1 мкл и 10 мкл очищенного препарата HCAdV непосредственно к клеткам, соответственно. Использовать не инфицированные клетки в качестве фона, чтобы обеспечить одинаковые условия для изоляции GDNA и последующей д-PCR.
  6. Изолировать GDNA из НЕК293 клетках, полученных из шагов 7.3) и 7.5)
    1. Вихревые клетки ресуспендировали в 200 мкл DPBS (шаг 7,3 и 7,4) в течение 3 сек, добавьте 200 мкл раствора SDS. (10 мМ Трис-HCl (рН 7,5), 10 мМ ЭДТА (рН 8,0), 0,5% SDS) и 20 мкл протеиназы К (20 мг / мл) и суспензию вихревого в течение 3 сек. Выдержите 12- 16 ч при 55 ° C и встряхните медленно. Затем добавляют 2 мкл РНКазы А (20 мг / мл) и инкубируют в течение 30 мин при 37 ° С.
    2. Добавить 350 мкл фенол: хлороформ: изоамиловый спирт и центрифуги в течение 2 мин при 15000 х г в. Перенести супернатант в новую пробирку и повторить этот шаг сразу
    3. Передача супернатант в новую пробирку, добавить 50 мкл ацетата натрия (рН 5, 3 м) и 1 мл охлажденного льдом этанола (99,8%) и смешивают суспензию. CentriFuge образцы в течение 10 мин при 15000 х г для осаждения геномной ДНК.
    4. Затем удалить супернатант, добавить 500 мкл 70% этанола и центрифугируют в течение 2 мин при 15000 х г в. Удалить супернатант, добавить 500 мкл 70% этанола и встряхивают в течение 30 мин при комнатной температуре. Затем центрифуги в течение 2 мин при 15000 х г в.
    5. Удалить супернатант и сухой воздух-ДНК гранул. Не сухие гранулы ДНК в течение длительного времени, как это будет труднее получить GDNA в растворе. Ресуспендируют гранул ДНК в 120 мкл дН 2 O и инкубировать в течение ~ 1 ч при 37 ° С при встряхивании. Если раствор ДНК появляется вязкая, встряхнуть его в течение нескольких часов при 37 ° С, или инкубировать при 55 ° С в течение ~ 1 ч.
  7. Для определения инфекционных HCAdV-частицы и абсолютные HCAdV-частиц, получения стандартной кривой 10 1 - 10 8 копий плазмиды, несущей ГОИ, содержащихся в HCAdV генома.
  8. Определите общее частиц и инфекционные частицы, анализируя те же суммы гДНК зараженных HEK293 Слоктей с шагом 7.3) и 7.4) применяются КПЦР с использованием 400 нМ праймеров, специфичных для ГОИ, содержащихся в HCAdV генома.
  9. Установите программу ПЦР следующим образом: предварительно инкубации при 95 ° С в течение 10 мин, усиление в 40 циклов при 95 ° С в течение 10 сек, 55 ° С в течение 10 сек и 72 ° С в течение 20 сек. На основании стандартной кривой (шаг 7,7), интерполируют общее количество аденовирусных геномов в реакции.
  10. Рассчитать количество аденовирусных геномов в окончательной подготовки вектора используя следующий формуляр: (Количество HCAdV / вес в нг гДНК в реакции) х (вес в нг ДНК всех клеток в инфицированной блюдо / вирус объем в мкл) ,
    ПРИМЕЧАНИЕ: типичный диапазон для абсолютные и инфекционные вирусные частицы урожайности около 1x10 7 -1x10 8 вирусных частиц / мкл. Титры, которые в десять раз выше или ниже показано здесь можно рассматривать как нормальное. Более высокие титры будет улучшение. Что касается соотношения абсолютного HCAdV участнле инфекционных частиц HCAdV, опыт показывает, что примерно 5 10% абсолютных частиц HCAdV являются инфекционные (7А).
  11. Для определения уровней загрязнения с HV, выполнить КПЦР путем амплификации часть аденовирусного гена конце 3 (L3), присутствующих в геноме HV. Использование плазмиды, несущей аденовирусного гена конце 3 (L3), и получения стандартной кривой (этап 7.7).
  12. В этой реакции применяют 400 нм L3 праймеров вперед 5'-AGA AGC TTA ГПК ТСС GTT GTT АКТ CGA GG-3 'и L3 обратной 5'-ATA AGC ТТГ КПП GTT ATG CAG ГГТ GAT GG-3 "вместе с 300 нМ в L3-специфического зонда 5'-Фам-CCA ССС ГТГ TGT АКК TGG TGG АСА-Tamra-3 ".
  13. Установите программу ПЦР следующим образом: предварительная инкубация / активации при 95 ° С в течение 10 мин, в течение 40 усиления циклов 95 ° С в течение 15 сек и 60 ° С в течение 1 мин. Используйте любой универсальный датчик ПЦР Mastermix для реакции КПЦР. На основе стандартной кривой (шаг 7.7), вычислить количество вfectious частицы HV в окончательной подготовки вектора. См (7А) для типичных доходности для высоковольтных частиц.
  14. Наконец рассчитать соотношение абсолютных инфекционных частиц HCAdV до уровней загрязнения HV, чтобы оценить качество подготовки вектора.
    ПРИМЕЧАНИЕ: До сих небольшая часть оставшегося HV не может быть исключена. Обычно процент загрязнения HV составляет ~ 5% от инфекционных частиц или менее, что является приемлемым (7В). Конечно, как менее HV, насколько это возможно, желательно, особенно если препарат вектор будет использоваться для экспериментов на животных.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Здесь типичные примеры для клонирования, амплификации и очистки HCAdV препаратов приведены. Обзор стратегии клонирования (Рисунок 1) и типичные примеры для клонирования и выпуск HCAdV генома ограничением фермента переварить предоставляются (рисунок 2). Типичный образец ограничение после выпуска кассеты ПИ-выражение из pHM5 по PI-сю I и I-я Céu переварить и последующей экстракции фенолом и хлороформом и осаждением EtOH (смотри также шаги 1.2- 1.5) показан рисунок (2а). Обычно можно наблюдалось ~ 3 т.п.н. полосу, соответствующую плазмиду позвоночника pHM5 и второй полосы, соответствующей кассете экспрессии ГОИ. Полосу, содержащую кассету экспрессии ПИ-затем очищают из агарозного геля. Очищенный кассеты ПИ-выражение анализировали на агарозном геле совместно с очищенной, дефосфорилированного pAdVFTC что ша расщепляли PI-сю I и I-Сеу I соответственно (шаг 1.7), чтобы убедиться, правильный размер и оценить относительное количество молекул для последующего лигирования (рис 2B). После лигирования (см шаг 1,8) с последующей экстракцией фенолом-хлороформом и EtOH осадков и SWA я переварить устранить режиссерский pAdFTC и последующую экстракцию фенол-хлороформом и EtOH осадков (шаг 1.9), Продукты лигирования трансформируют в бактерию и клоны отбирают на ампициллин содержащий LB- агаром. Обычно десятков до сотен клонов получены, из которого 5- 10 клонов готовы к мини-препаратов плазмидной ДНК. Ограничение образец аналитической Hinc II дайджеста положительных и отрицательных клонов вместе с пустой pAdFTC в качестве негативного контроля (смотри также шаг 1.10) показан (фиг.2С). Вот положительные клоны не показывают 5 кб группа, которая присутствует в пустом pAdFTC и отрицательных клонов и появляется 1,7 кб фрагментчто нет в пустом pAdFTC и отрицательных клонов. Для этого соответствующей ГОИ это означает, тха клонирование было успешным. Положительный клон, который был очищен с помощью midiprep затем гидролизуют Нет Ti выпустить HCAdV генома, несущий ГОИ от pAdVFTC-ГОИ (шаг 2,2). Наконец Нет Ti не расщепленной ДНК IST дважды очищают с помощью экстракции фенолом-хлороформом и осаждению EtOH, чтобы обеспечить высокую чистоту ДНК для последующего трансфекции в 116 клеток. Анализ небольшой части Нет Ti переваривается pAdVFTC-ГОИ на агарозном геле показывает ~ 9 кб группу, соответствующую pAdFTC плазмиды позвоночника и большой полосы до ~ 36 Кб (в зависимости от размера ГОИ кассеты экспрессии) соответствующий HCAdV генома (рис 2D). Общий обзор амплификации и очистки трубопровода схематически показана (рисунок 3). Типичные примеры мониторинга процесса вектор предварительного усиления предусмотрены ( (рис 4а). Следует отметить, что количество векторных геномов, как правило, descreases течение первых проходов и сильно возрастает в более поздних пассажей. Вектор количество копий 10 6 - 10 7 клеток на 15000 достаточно, чтобы заразить 116 клеток для крупномасштабного производства в 3 л вращающуюся колбу. Если ПИ в HCAdV вектора генома содержит экспрессионную кассету GFP, процесс предварительной амплификации (раздел 2) может также контролироваться флуоресцентной микроскопии. Представительства фотографии каждого прохода показаны (4В). Обратите внимание, что количество GFP-положительных клеток обычно уменьшается в течение первых проходов и сильно увеличивается в конце проходов. Если количество GFP-положительных клеток достигает ~ 100%, вектор амплифицируют Sufficiently заразить 116 клеток для крупномасштабного производства в 3 л вращающуюся колбу. Крупномасштабное процесс усиления из HCAdV содержащий GFP кассеты экспрессии контролировали с помощью микроскопического анализа культуральной среды и клеток, которые были перетекает от вращающейся колбе на блюдо культуры ткани. Микроскопические фотографии клеток, продуцирующих HCAdV в суспензионной культуре (см шаг 4,4 и 4,11), предоставляются (рис 4C). Обратите внимание, что клетки растут в глыбах, указывающих, что рост клеток, предшествующих было достаточно и клетки здоровы. При использовании флуоресцентной микроскопии ~ 100% Эти клетки GFP позитивными, что указывает эффективную трансдукцию клеток суспензии в биореакторе и эффективным вектором производства. Векторные частицы очищали от среды и клеток 3 л суспензионной культуре по CsCl ультрацентрифугирования. Представительства фотографии очистки HCAdV вектора с использованием CsCl градиента плотности ультрацентрифугирование показаны (рисунок 5). Послеп начальное центрифугирования с использованием ступенчатого градиента CsCl, как правило, наблюдаются две полосы. Верхняя полоса содержит пустой частичных капсидов в то время как нижняя полоса состоит из ДНК, содержащий векторных частиц (шаг 5.5) 5.4- (рис 5А). ДНК, содержащая векторные частицы впоследствии собирают (этап 5.6) и объединяли для второй стадии ультрацентрифугирования сконцентрировать векторных частиц. Этот шаг обычно приводит к одной полосы ДНК, содержащей вектор частиц, которые, наконец, собирают для последующего диализа (шаг 5.7- 5.8) (Фиг.5В). Диализованные вектор препараты характеризовались измерения количества абсолютных частиц, инфекционных частиц и загрязнения HV. Схема схема процедуры титрования (раздел 6 и 7) при условии, (рисунок 6). Представитель результаты характеристике конечного препарата вектора показаны (рисунок 7). Гистограмма показывает типичные номера вектор частиц, которыеполучены в порядке, который описан в данном протоколе. Абсолютные цифры частицы векторных частиц были определены по оптической плотности (раздел 6), инфекционные векторных частиц и загрязнений HV измеряли кПЦР (раздел 7) (рис 7А). Опыт показывает, что ОД титр переоценивает количество вирусных частиц. Абсолютные вирусные частицы, измеренные OD может быть 20- 500 раз выше, чем инфекционных вирусных частиц, измеренных д-PCR. Инфекционные векторные частицы Usally диапазоне между 5 10% абсолютных частиц, когда оба были измерены д-ПЦР (раздел 7). Если препарат имеет вектор очень хорошее качество, более 20% абсолютных частиц являются инфекционные. Типичный соотношение между ВН и инфекционных частиц HCAdV (шаг 7,14), как правило, колеблется между 1-5% инфекционных частиц (рис 7В). Это допустимо ВЛ является репликация недостаточно. Тем не менее, как менее загрязнения HV, как это возможно (<1% инфекционных частиц) будетпредпочтительным.

Рисунок 1
Рисунок 1. Блок-схема клонирования ГОИ в pAdFTC. Правительство Израиля клонируют в MCS челночной плазмиды pHM5. Плазмиды pAdFTC и pHM5-ГОИ перевариваются с I-Сеу I и PI-сю I и очищают путем экстракции фенолом-хлороформом и этанола осадков. Расщепленный pHM5 загружен в препаративного агарозного гел очистить интерес ген (смотри также шаг 1,5), в то время как переваривается pAdFTC плазмиду дефосфорилируется. Впоследствии Реакцию лигирования с CIP-обработанного pAdFTC и кассета экспрессии трансгена настроен (см шаг 1,8) и после завершения очищают экстракцией фенолом-хлороформом и осаждением EtOH. Последующее Сва я дайджест продуктом лигирования с последующей экстракцией фенол-хлороформ и этанола осадков предотвращает рост клонов, несущих pAdFTC без вставки. Черный триУглы показывают сайты узнавания рестриктазой; серые прямоугольники обозначают AdV5 перевернутый терминала повторов (ITR), белые коробки, помеченные Ч указывают сигнал упаковки AdV5, красная стрелка указывает промотор, зеленые коробки указывают трансген (ген интереса, ГОИ), которые будут высказаны, синие показывают сигнал полиаденилирования, оранжевый или синий Стрелки указывают генов устойчивости к антибиотикам плазмиды позвоночника, соответственно. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

фигура 2
Рисунок 2. Типичные результаты для клонирования и выпуска HCAdV генома от pAdVFTC. (А) Выпуск ГОИ-кассеты экспрессии с помощью PI-pHM5 сю I и I-Сеу I сборника (см также шаги 1.2- 1.5). (Б) PI-сю I и I-Сеу I соответственно (шаг 1.7). (С) Аналитический Hinc II дайджест pAdVFTC клонов с и без ГОИ (смотри также шаг 1.10). (D), Выпуск HCAdV-генома, несущий ГОИ от pAdVFTC-ГОИ ни в Ti дайджеста (шаг 2.2) Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Рисунок 3
. Рисунок 3. Схема для высокой пропускной способностью аденовирусный вектор амплификации и очистки (А) трансфекции ДНК и HCAdV вспомогательный вирус (ВН) инфекции Трансфекция линеаризованной HCAdV генома, несущий ГОИ в HCAdV производителем клеточной линии (116 клетки [4]) и суbsequent инфекции с HV AdNG163R-2 [4].   (Б) Усиление HCAdV: После этапов предварительной амплификации с помощью последовательно перенос клеточного лизата к новому блюдо культуры ткани и со-заражении HV, крупномасштабное производство осуществляется в 3 л суспензионной культуре (С) очистки HCAdV:. Для очистка, вирус выделяют с помощью ультрацентрифугирования с использованием хлорида цезия градиенты (D) Диализ:. Очищенные частицы HCAdV диализуют против 2 л буфера хранения. HCAdV, высокой емкости аденовирусный вектор; ИТР, аденовируса серотипа 5 перевернутой концевой повтор; Ψ, сигнал упаковки; ВН, помощник вирус; МВД, множественность инфекции. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Рисунок 4 <ш /> Рисунок 4. Представитель результаты процесса усиления (А) по мониторингу процесса предварительного усиления путем амплификации вирусных геномов с использованием КПЦР (см также раздел 3.);. (б) Если ГОИ содержит GFP в качестве трансгена, процесс предварительной амплификации может контролироваться флуоресцентной микроскопии. (С) Типичные результаты крупномасштабного процесса амплификации в вращающейся колбе examplified для кодирования HCAdV GFP. На левой панели показывает микроскопическая картина инфицированных клеток из 116 вращающуюся колбу. Образец культуральной среды и клетки переносили в 60 мм блюдо культуры ткани. Обратите внимание, что сгустки усиленных клеток видны. На правой панели показывает ту же картину, используя флуоресцентной микроскопии. Почти 100% клеток, трансдуцированных HCAdV проведения GFP. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобыпросмотреть большую версию этой фигуры.

Рисунок 5
Рисунок 5. Представитель результаты после центрифугирования в градиенте CsCl (а) после выполнения шага градиент (смотри также шаг 5.5);.. (Б) после непрерывного градиента (см также шаг 5.7) Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Рисунок 6
Рисунок 6. Схематическое контур процедуры титрования. (А) Измерение инфекционных частиц: Клетки в нескольких луночный планшет заражены различными объемами очищенного вируса и собирали, как клеточных осадков (б) Измерение O.е абсолютные частицы: Unifected клетки образуют многолуночных собраны трипсинизацией и центрифугирования. После добавил ресуспендирование очищают вирус и геномной ДНК является изолированным. (С) Выделение геномной ДНК. (D) Для количественной оценки вирусного генома числа копий количественный ПЦР (Q-ПЦР), выполняемые. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть увеличенную версию этого фигура.

Рисунок 7
Рисунок 7. Представитель результаты для характеризации окончательной подготовки вектора. (А) Абсолютные числа частиц препарата вектора в соответствии с представленной протокола определяется различными методами:. ОД титр измеряется по оптической плотности (раздел 6), инфекционного титра и загрязнения HV измеренная кПЦР (раздел 7) (Б)Соотношение общего инфекционных частиц HCAdV и уровней загрязнения высоковольтных измеренных qPCRs (раздел 7). Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы посмотреть большую версию этой фигуры.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Протокол, представленные здесь позволяет очистку HCAdV векторов на основе аденовируса человека типа 5 на основе описанных выше процедур 4,12. HCAdV генома в плазмиды pAdFTC лишена всех аденовирусов генов и только несет 5'- и 3'РМЭ и сигнал упаковки. В рамках этой стратегии ВЛ AdNG163R-2 4 предоставляет все необходимые гены для эффективного производства вируса в транс. Это дает упаковки емкостью до 35 кб, в которой четко outcompetes AdVs первого и второго поколения или широко используемый лентивирус (LV) - или адено связанный вирус (AAV) векторы на основе. Второе преимущество HCAdV специально для применения в естественных условиях является тот факт, что в отличие от первого или второго поколения AdVs они показывают более низкие уровни цитотоксических и иммуногенные побочных эффектов, вызванных выражения вирусных белков 5-8.

Тем не менее, протокол, описанный здесь больше времени иработать интенсивнее, чем для других вирусных векторов, таких как LV- или AAV-векторов, а также первого или второго поколения AdVs. Основным препятствием является клонирование больших трансгенов и последующий перевод на производственной вирус плазмиды ПБНС-FTC. Использование наведения эндонуклеаз Пи сю я и I-я предложить Ceu точное и направленное введение трансгена от челнока плазмиду pHM5, но имеют тот недостаток, сильно прилипает к расщепленной ДНК. По этой причине многие шаги фенол-хлороформ очистки необходимы при подготовке plasmid- и вставьте ДНК во время процедуры клонирования. Поэтому, строго следуя при условии протокол клонирования строго рекомендуется. После клонирования HCAdV геном высвобождается из плазмиды pAdFTC, не я ферментом рестрикции, а затем переваривают трансфицировали в клеточную линию производителем. Обратите внимание, что начальные эффективность трансфекции имеют решающее значение для достижения достаточного усиления вирусов. Важно отметить, что протокол предлагает несколько шаговиз которого процедура может быть перезапущен в случае последующие шаги неудачу. Во время предварительной амплификации треть лизатов могут быть сохранены в качестве резервного, чтобы начать процедуру с этой точки еще раз или сократить повторения в случае более вирус должен быть произведено.

HCAdV перевозить большие, сложные или несколько трансгенов или определенный писака ДНК может быть усиления медленнее, чем ожидалось. Поэтому, очень важно внимательно следить за процессом предварительного усиления, прежде чем подвеска культура выращивается во вращающейся колбе. Если предварительно усиление не удалось, процедура должна быть остановлена ​​и начал все с начала. Если предварительно усиления является неэффективным, дополнительное пассажи могут быть необходимы до тех пор, количество вируса не достаточно высока, чтобы инфицировать клетки, выращенные в 3 л вращающуюся колбу. В качестве альтернативы в суспензионной культуре вращающейся колбе, от 20 до 30 150 мм чашках для тканевых культур можно использовать для окончательного прохода. Тем не менее, это может быть больше времени и трудоемкими.

Для измерений КПЦР гДНК либо может быть очищен с помощью протокола упомянутого здесь или любой коммерчески доступного набора для выделения гДНК из культивируемых клеток. При использовании коммерчески доступного набора протокол может быть сокращен один день, но различной часть HCAdV геномных копий, которые присутствуют в инфицированных клетках, могут быть потеряны в процессе очистки, в зависимости от набора, используемого. Поэтому HCAdV геномы будет немного недостаточно представлены в следующем измерения Q-ПЦР по сравнению с методом, изложенным в пункте 7.4).

ObtaiNED всего инфекционные титры в одном окончательной подготовки вектора получены от одного вращателя диапазоне колбу с 1 х 10 10 до 5 × 10 11 инфекционных частиц. Эта сумма достаточна для выполнения многочисленных в пробирке эксперименты. В зависимости от клеток-мишеней, также несколько экспериментов в естественных может быть проведено. Например, для достижения достаточной трансдукции печени после системного введения 1 х 10 9 инфекционные частицы не требуется.

В целом, широкий тропизм клеток и возможность производить капсида модифицированный аденовирус вместе с улучшенным профилем безопасности HCAdV векторы лишена всех вирусных генов оказывают эти HCAdV векторную систему весьма ценным инструментом для генных терапевтических применений.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Авторы заявляют, что у них нет конкурирующих финансовых интересов.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
I-CeuI New England Biolabs R0699S restriction digest
PI-SceI New England Biolabs R0696S restriction digest
T4 Ligase New Engand Biolabs M0202S ligation
SwaI New England Biolabs R0604S restriction digest
NotI New England Biolabs R0189S restriction digest
Calf Intestinal Alkaline Phosphatase (CIP) New England Biolabs M0290S dephosphorylation of digested plasmids
Hygromycin B PAN Biotech P02-015 selection of CRE expressing 116 cells
DMEM PAN Biotech P04-03590    Hek293T cell culture medium
Minimal Essential Medium (MEM) Eagle PAN Biotech P04-08500 116 cell culture medium  
Dulbecco’s phosphate buffer saline (DPBS) PAN Biotech P04-36500 washing of cells, resuspension of cells
250-ml storage bottle Sigma CLS430281-24EA infection of 116 cells grown in suspension
500-ml PP CentrifugeTubes Sigma CLS431123-36EA sedimentation of cells from suspension culture
Spinner flask Bellco 1965-61030 growth of 116 cells in suspension
Ultra Clear Ultracentrifuge tubes Beckmann Coulter 344059 density gradient centrifugation
Ultracentrifuge Beckmann Coulter density gradient centrifugation
SW-41 rotor Beckmann Coulter density gradient centrifugation
Spectrum Laboratories Spectrapor Membrane VWR 132129 dialysis tubing
ready-to-use dialysis cassettes  Thermo 66383 dialysis
one shot DH10B electrocompetent E. coli invitrogen C4040-52 transformation of ligation reactions
PureYield Plasmid Midiprep System Promega A2495 midiprep
peqGOLD Tissue DNA Mini Kit  Peqlab 12-3396-02 isolation of genomic DNA
SuperFect Transfection Reagent Qiagen 301305 tranfection of 116 cells
opti MEM (10% FBS) Gibco 31985-062 transfection of 116 cells
iQ SYBR Green Supermix BioRad  170-8882 q-PCR
CFX 96 C1000 touch  Biorad qPCR machine
Phenol/Chloroform/Isoamyl alcohol  Carl Roth A156.1 purification of DNA
Cesium chloride Carl Roth 8627.1 density gradient centrifugation
sodium acetate 99% Carl Roth 6773.2 DNA precipitation
LB medium  Carl Roth X968.3 bacterial growth medium
ethanol  99.8% pure Carl Roth 9065.5  DNA precipitation and washing
SDS 99.5% Carl Roth 2326.2 lysis  buffer
EDTA Carl Roth 8043.2 lysis  buffer
Tris-HCl 99% Carl Roth 9090.3 dialysis buffer/ lysis  buffer
glycerol 99.5% Carl Roth 3783.1 dialysis buffer
MgCl2 98.5% Carl Roth KK36.2 dialysis buffer
NaCl Carl Roth 3957.1 optional dialysis buffer
KH2PO4 Carl Roth 3904.2 optional dialysis buffer
sucrose Carl Roth 9286.1 optional dialysis buffer
Na2HPO4x2H2O Carl Roth 4984.2 optional dialysis buffer
1.5-ml tubes sarstedt 72,730,005 storage of virus preparations at -80 °C

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Benihoud, K., Yeh, P., Perricaudet, M. Adenovirus vectors for gene delivery. Curr Opin Biotechnol. 10, (5), 440-447 (1999).
  2. Crystal, R. G. Adenovirus: the first effective in vivo gene delivery vector. Hum Gene Ther. 25, (1), 3-11 (2014).
  3. Parks, R. J., et al. A helper-dependent adenovirus vector system: removal of helper virus by Cre-mediated excision of the viral packaging signal. Proc Natl Acad Sci U S A. 93, (24), 13565-13570 (1996).
  4. Palmer, D., Ng, P. Improved system for helper-dependent adenoviral vector production. Mol Ther. 8, (5), 846-852 (2003).
  5. Morral, N., et al. High doses of a helper-dependent adenoviral vector yield supraphysiological levels of alpha1-antitrypsin with negligible toxicity. Hum Gene Ther. 9, (18), 2709-2716 (1998).
  6. Muruve, D. A., et al. Helper-dependent adenovirus vectors elicit intact innate but attenuated adaptive host immune responses in vivo. J Virol. 78, (11), 5966-5972 (2004).
  7. Ehrhardt, A., et al. A gene-deleted adenoviral vector results in phenotypic correction of canine hemophilia B without liver toxicity or thrombocytopenia. Blood. 102, (7), 2403-2411 (2003).
  8. Cots, D., Bosch, A., Chillon, M. Helper dependent adenovirus vectors: progress and future prospects. Curr Gene Ther. 13, (5), 370-381 (2013).
  9. Mizuguchi, H., Kay, M. A. Efficient construction of a recombinant adenovirus vector by an improved in vitro ligation method. Hum Gene Ther. 9, (17), 2577-2583 (1998).
  10. Mizuguchi, H., Kay, M. A. A simple method for constructing E1- and E1/E4-deleted recombinant adenoviral vectors. Hum Gene Ther. 10, (12), 2013-2017 (1999).
  11. Ehrhardt, A., Kay, M. A. A new adenoviral helper-dependent vector results in long-term therapeutic levels of human coagulation factor IX at low doses in vivo. Blood. 99, (11), 3923-3930 (2002).
  12. Jager, L., et al. A rapid protocol for construction and production of high-capacity adenoviral vectors. Nat Protoc. 4, (4), 547-564 (2009).
  13. Sambrook, J., Russell, D. W. Molecular Cloning: A Laboratory Manual. 1-3, Cold Spring Harbor Laboratory Press. New York. (2001).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics