Isolatie en karakterisering van enkele cellen van zebravis embryo's

1Department of Cell Biology and Physiology, University of North Carolina at Chapel Hill, 2McAllister Heart Institute, University of North Carolina at Chapel Hill, 3Department of Pathology and Laboratory Medicine, University of North Carolina at Chapel Hill
Published 3/12/2016
0 Comments
  CITE THIS  SHARE 
Developmental Biology

Your institution must subscribe to JoVE's Developmental Biology section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

Welcome!

Enter your email below to get your free 10 minute trial to JoVE!





By clicking "Submit", you agree to our policies.

 

Summary

Cite this Article

Copy Citation

Samsa, L. A., Fleming, N., Magness, S., Qian, L., Liu, J. Isolation and Characterization of Single Cells from Zebrafish Embryos. J. Vis. Exp. (109), e53877, doi:10.3791/53877 (2016).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Introduction

De meeste huidige studies van de cel- en moleculaire biologie gebaseerd op gemiddelden populatie. Echter, belangrijke biologische gebeurtenissen worden gemaskeerd door deze traditionele bevolking op basis van analyses aangezien kleine populatie grote rol in biologische processen en de ziekte uitkomst kunnen spelen. Inzicht in genexpressie in heterogene populatie in de enkele cel niveau kan (en moet) leiden tot relevante biologische en klinische inzichten 1,2. Van belang voor studies embryonale ontwikkeling, in een grotere populatie van cellen, progenitorcellen vaak ondervertegenwoordigd, waardoor het een uitdaging om subtiele veranderingen in genexpressie die uiteindelijk lot van de cel beslissingen 3 initiëren detecteren. Evenzo kan een enkel celtype verschillende expressieprofielen hebben in reactie op de micro 4. Bijvoorbeeld, woonachtig endotheelcellen in hetzelfde orgaan of in verschillende organen (bijv., Aorta of nier) vertonen aanzienlijke heterogeniteit, ondanks het delen van gemeenschappelijke morphological en functionele kenmerken 5. Bovendien kunnen kankercellen bevolken dezelfde tumor ook variërende moleculaire profielen of mutaties op de enkele cel niveau 6.

In modelsystemen heeft transcriptomics in enkele cellen met succes geïdentificeerd nieuwe cel populaties, gekenmerkt tussenliggende staten die optreden tijdens de celdifferentiatie, en onthulde differentiële cellulaire reacties op stimuli 7,8,9. Dergelijke inzichten zou zijn gemaskeerd in conventionele bevolking op basis van studies. Zebravis embryo's zijn een enorm weinig gebruikte bron van stamcellen, voorlopercellen, en differentiërende cellen voor het verkennen van vragen van enkele cel heterogeniteit en moleculaire regulatie van cellulaire identiteiten tijdens de ontwikkeling. Hun zeer stereotiep, ex vivo ontwikkeling en het gemak van genetische manipulatie maken ze een uitstekend modelsysteem voor deze aanpak 10,11. In het bijzonder, een belangrijke beperking van de interpretatie van enkele cel gene uitdrukking gegevens is dat een betrouwbare identificatie van nieuwe intermediaire cel toestanden tijdens de ontwikkeling vereist zeer zorgvuldige timing van weefsel collectie 9. Dit is nodig om ervoor te zorgen dat de heterogeniteit tussen gevangen cellen vertegenwoordigt heterogeniteit binnen een weefsel op een enkel tijdstip in plaats van heterogeniteit in genexpressie door leeftijdsafhankelijke celdifferentiatie. In vergelijking met muizen kunnen zebravisembryo ontwikkeling nauwkeurig gesynchroniseerd over een groot aantal embryo's 12. Bovendien, met grote clutch formaten zebravisembryo's kunnen worden gebruikt als een rijke bron van stamcellen en progenitorcellen.

Dit protocol beschrijft een werkwijze om cellen van zebravis embryo's te isoleren en te vangen enkele cellen met behulp van een commercieel verkrijgbare geïntegreerde schakeling microfluidics (IFC) chip en autoprep voor qRT-PCR analyse van genexpressie. Dit protocol kan snel overdraagbaar aan een high throughput multiplexing assays waaronder geheeltranscriptoom sequencing dat meer uitgebreide analyse van de cellulaire heterogeniteit 13 toelaat. Het biedt ook een aantal voordelen aan traditionele genexpressie testen. Ééncellig isolatieprotocol levert hoge levensvatbaarheid na FACS, waar het aantal besmette cellen die zijn opgenomen in stroomafwaartse toepassingen afneemt. Door het gebruik van een IFC, kan gevangen cellen direct worden genomen om vast te leggen tarieven te evalueren en morfologisch beoordelen gezondheid van de cellen. Bovendien, dit protocol is breed toepasbaar op de zebravis onderzoek gemeenschap, is er slechts een label transgene vis lijn en toegang tot microfluïdische cel afvangtechnologieën.

Als bewijs van het principe werden afzonderlijke cellen afkomstig van cardiale progenitors geïsoleerd en vastgelegd op een IFC chip, en vervolgens de relatieve hoeveelheid van cardiale differentiatie merkers werd gemeten met qRT-PCR. Genexpressie analyse op de single cell niveau toont aan dat cardiale voorlopercellen samengaan met hun differentiating nageslacht. Het inzicht verkregen uit eencellige profilering van cardiale voorlopercellen kan licht werpen op de heterogeniteit in genexpressie patronen onder cardiale stamcellen tijdens de ontwikkeling van gewervelde dieren, die kunnen zijn gemaskeerd in de traditionele bevolking op basis van analyses.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Dit protocol vereist het gebruik van levende, volwassen zebravissen om embryo's te produceren. De embryo's worden geoogst voor weefsel collectie. Het is essentieel om de goedkeuring van de juiste ethische review boards te verkrijgen om dit experiment uit te voeren.

1. Vraag Geënsceneerde Embryo's

  1. De dag voor het experiment, voor te bereiden gezonde, volwassen zebravissen voor de fokkerij. Plaats een mannelijke en een vrouwelijke aan weerszijden van een duidelijke divider in een kweekbak.
  2. Herhaal 1.1 voor zoveel kweekbakken als nodig is voor voldoende embryo productie voor de downstream toepassing. Verkrijgen van embryo's uit zowel wild-type vis en transgene vis die fluorescerende eiwitten in het celtype van belang uit te drukken.
    LET OP: Het aantal embryo's die nodig zijn voor downstream-toepassingen in de stappen 2-8, hangt af van de relatieve rijkdom van de cellen van belang op het moment point of interest. Hoewel dit kan verschillen per cel, 200 embryo's te produceren 2,000-5,000 gesorteerde cellen wanneer de cellen van belang vertegenwoordigen <1,0% van de totale cellen op 24 HPF (uur na de bevruchting).
  3. De volgende ochtend, ververs het water in het paneren tank door de overdracht van vis om een ​​frisse kweekbak en verwijder de verdeler. Kantel de tank schuin op kweek stimuleren.
  4. Verzamel geënsceneerd embryo's.
    1. Elke 15 min, het verzamelen van embryo's door het overbrengen van de volwassenen om een ​​frisse kweekbak en het passeren van de eieren die zijn achtergelaten door een theezeefje.
      OPMERKING: zebravis embryo's synchroon te ontwikkelen wanneer gehandhaafd op vergelijkbare dichtheden en temperaturen.
    2. Spoel de eieren met Ei Water (0,21 g / l Instant Ocean zouten in 1 L dubbel gedestilleerd water) en over te dragen aan een petrischaal. Breng de petrischaal op een vochtige incubator bij 28,5 ° C met luchtcirculatie.
  5. Twee uur na de laatste collectie, sorteren bevruchte, meercellige embryo's in 10 cm petrischalen en het verminderen van de dichtheid tot 50 embryo's per gerecht. Selecteer embryo's van een enkele, 15min tijdvenster van de collectie voor downstream-applicatie. Incubeer embryo's bij 28,5 ° C.
    LET OP: Bijvoorbeeld, het verzamelen van embryo's om 8:30, 08:45, 09:00, 09:15, 09:30, 09:45, 10:00 en 10:15. Het vergelijken van in de tijd punten, wanneer het grootste aantal bevruchte embryo's uit de verzamelde om 9:00 koppelingen, gebruik dan alleen deze embryo's voor downstream-toepassingen.

2. Stel voor Single Cell Dissociatie

  1. Ongeveer 30 minuten voorafgaand aan het tijdstip van belang (18 HPF) verwijderen embryo's uit hun chorion handmatig met fijne pincet.
  2. Verzamel en label het volgende voor elke voorwaarde: twee 2 ml microcentrifugebuizen, een 40 um cel zeef, een 35 mm celkweek gerecht, en twee FACS buizen met daarop een 35 micrometer cel zeef.
  3. Chill de volgende reagentia op het ijs: Egg Water met 0,21 g / l Instant Ocean zouten in 1L dubbel gedestilleerd water; De yolking-buffer bevattende 55 mM NaCl, 1,8 mM KCl en 1,25 mM NaHCO3; en FACS buffer bevattende Leibovitz L-15 medium aangevuld met 5% hitte-geïnactiveerd foetaal runderserum.
  4. Breng 1 ml per monster celdissociatie Reagens 1 tot kamertemperatuur. Dooi 1 ml Cell Dissociatie Reagens 2 per monster op ijs. Breng direct KT voor gebruik.

3. Single Cell Dissociatie

  1. Met een wijde boring glazen pipet 100-300 embryo een 2 ml microcentrifuge buis een minimumhoeveelheid Egg Water.
  2. Euthanaseren embryo's door het vervangen van water met 1 ml ijskoude Egg Water en onder te dompelen buis in ijs gedurende 20 min.
    LET OP! Het is van cruciaal belang voor de goedkeuring van de juiste institutionele Animal Care commissie van toezicht voor deze euthanasie methode (chillen op ijs, gevolgd door de cel dissociatie als secundaire euthanasie) te verkrijgen. Standaard euthanasie vereist gewoonlijk dat embryo <3 dagen na bevruchting gebleekt nadat ze zijn gekoeld, die niet geschikt is voor het verkrijgen van levensvatbare cellen.
  3. Was de embryo tweemaal met 1 ml ijskoude Egg Water. Te wassen, gebruik van een breed boring glazen pipet naar Egg Water en een P1000 Egg water toe te voegen te verwijderen.
  4. Verwijder de dooier van embryo water vervangen door 1 ml Deyolking buffer en 8-12 maal tritureren met een P1000 tip of totdat de dooier opgelost en alleen de organen van het embryo zichtbaar.
  5. Verzamel het weefsel door centrifugatie bij 300 xg gedurende 1 min. Gebruik een pipet om de bovenstaande vloeistof voorzichtig te verwijderen zonder verstoring van het weefsel pellet Re-schorten in 1 ml Egg Water.
  6. Herhaal stap 3.5 voor een totaal van drie wasbeurten, maar op de laatste wasbeurt, opnieuw te schorten in 1 ml RT Cell Dissociatie Reagent 1.
  7. Incubeer in celdissociatie Reagens 1 gedurende 10 minuten bij kamertemperatuur met buizen horizontaal geplaatst. Elke 2-3 min voorzichtig vermaal met een P1000 pipet om klonteren te voorkomen.
    OPMERKING: ga monsters voorzichtig tijdens tritureren stappen. Ergens een enkele, grote klomp zal vormen in de buis van een wirwar van embryo lichamen. Dit zaluiteen te drijven met extra spijsvertering geholpen door zachte trituratie. NIET VORTEX.
  8. Verzamel materiaal door centrifugatie bij 300 xg gedurende 3 min. Verwijder supernatant en resuspendeer in 1 ml Cell Dissociatie Reagent 2.
  9. Incubeer gedurende 5-15 minuten bij kamertemperatuur. Plaats de buizen horizontaal. Elke 2-3 min zachtjes vermaal om klonteren te voorkomen. Elke 5 min, beoordeelt de spijsvertering vooruitgang.
    1. Om de spijsvertering vooruitgang te beoordelen, te verdunnen 2 pl supernatant in 18 ul FACS buffer en pipet als een druppel op een celkweek schotel.
    2. Plaats een dekglaasje boven het monster en te observeren onder een weefselkweek microscoop bij 10X en 20X vergrotingen.
      NB: Het preparaat moet verschijnen als een mix van enkele cellen, kleine clusters, grote clusters, en af ​​en toe meestal intact embryo lichaam.
    3. Visueel beoordelen het aandeel van het preparaat die enkele cellen en kleine clusters.
      OPMERKING: Over-vergisting zal levensvatbaarheid te verminderen; onder-vergisting zal enkele opbrengst cel vermindert. </ Li>
  10. Verzamel de celpreparaat door centrifugatie bij 300 xg gedurende 5 minuten. Verwijder het supernatant en resuspendeer in 1 ml koud FACS buffer.
  11. Bevochtig een 40 micrometer cel zeef met FACS buffer. Passeer de cel suspensie door de 40 um cel zeef op een 35 mm celkweek schotel. Was de cel zeef één keer met 1 ml FACS sortering buffer.
  12. Transfer het doorstroomkanaal een 2 ml microcentrifugebuis. Verzamel cellen door centrifugatie bij 300 xg gedurende 5 minuten en resuspendeer in 100 gl FACS buffer.
  13. Celtelling met een hemocytometer opbrengst. Verdun monsters 5x10 6 cellen per ml of optimale concentratie aanbevolen voor FACS machine keuze. Optionele Bij het tellen cel rendement op de hemocytometer, tegenkleuring dode cellen met trypan blauw om de levensvatbaarheid van het preparaat cel voorafgaand aan FACS sortering bevestigen.
    LET OP: De voorbereidingen die te worden verdund zal het teveel tijd in beslag nemen om te sorteren. Preparaten die ook zijn concentrated neiging tot klonteren in multimeren en suboptimaal voor het sorteren van een zuivere populatie.
  14. Reserve 10-20% van elk monster als ongekleurde controls te gebruiken. Voor overige monsters, vlek dode cellen door toevoeging van een fluorescente live / dead (L / D) discriminatie kleurstof in elk monster. Niet wassen.
    OPMERKING: fluorescente kleurstof die cellen doordringt met een gecompromitteerde celmembranen en vlekken nucleïnezuren kunnen worden toegepast als de L / D kleurstof, op voorwaarde dat de fluorescentie spectra verenigbaar met de FACS machine keuze en fluorofoor labeling cellen plaats.
    1. Laat de voorbereiding niet wassen na het toevoegen van de kleurstof als sommige cellen zullen sterven op doorreis naar FACS zuivering en van de gesorteerde populatie moet worden uitgesloten.
  15. Bevochtig de 35 micrometer cel zeef bedekte FACS buis met 20 ul FACS buffer. cellen toe te voegen aan de zeef en het verzamelen door de zwaartekracht. Op te slaan op het ijs.

4. FACS Enrichment

  1. Gebruik FACS te verrijken voor alleenstaande, Levende cellen die de fluorescente merker.
    1. Zet een hek om cellen te onderscheiden van puin op een scatter plot van voorwaartse verstrooiing (FSC-A) amplitude vs zijwaartse verstrooiing amplitude (SSC-A), beide met lineaire scaling.
      Let op! Zebravis cellen zijn doorgaans kleiner zijn dan de muis of menselijke cellen. Dit komt tot uiting in een lagere basale scheiding van cellen en afval.
    2. Van de in 4.1.1 poort, zet een hek te verrijken voor enkele cellen zijn exclusief multimeren met behulp van een scatterplot van voorwaartse verstrooiing hoogte (FSC-H) en lage zijwaartse verstrooiing hoogte (SSC-H), beide met lineaire scaling.
      OPMERKING: Cellen met onevenredig hoge FSC-H en lage SSC-H zijn waarschijnlijk multimeren en zijn uitgesloten van het sorteren.
    3. Van de poort set in 4.1.2, met behulp van enkele kleur controles, stelt een poort om alleen levende cellen met behulp van een scatterplot van FSA-A met lineaire scaling en amplitude van het kanaal zijn onder andere gebruikt om de L / D vlek te detecteren met log scaling. Omvatten L / D-negatieve cellen.
    4. Vande poort in 4.1.3, met behulp van enkele kleur controles, stelt een poort om alleen levende cellen met positieve fluorescentie onder andere met behulp van een scatter plot van FSA-A met lineaire scaling en amplitude van het kanaal dat wordt gebruikt om fluorescerend eiwit cel marker te detecteren met log scaling . Inclusief positieve cellen.
    5. Stel schadevergoeding controle, indien nodig, verklaren interferentie tussen de L / D kleurstof en fluorescerende eiwit spectra.
  2. Set soort logica om cellen die in elk van de in stap 4.1 poorten vallen.
    1. Het gebruik van dubbel gelabelde cellen, controleren venstertijd voor celsortering.
      OPMERKING: Cellen voor het sorteren van cellen zal plaats puin, enkele cellen in plaats van multimeren, L / D negatief en fluorescentie positieve cellen.
  3. Soort 2.000-4.000 cellen uit de populatie van belang in 5 ui koude FACS buffer in een microcentrifuge buis op ijs. Om te snijden en druk op de cellen te minimaliseren tijdens het sorteren, gebruik dan de laagste druk mogelijk voor de celsorteerder.
    OPMERKING: De 5 ul druppel FACS buffer dient als een kussen voor het verlaten van de cellen FACS machine. Verzamelen van 2.000-4.000 cellen direct in FACS buffer elimineert de noodzaak van centrifugatie voorafgaand aan het laden op de IFC chips. Deze strategie wordt aanbevolen omdat centrifugeren kan leiden tot de vorming van multimeren of cellen aan elkaar hechten in de pellet.
  4. Beoordeel de post-soort levensvatbaarheid analyse.
    1. Breng 1 pl gesorteerde cellen een nieuwe FACS buis met 100 ui FACS sortering buffer en 1: 1000 verdunning van L / D vlek. Leid de cellen door FACS sorter de gating strategie in stap 4,1. Gebruik het aandeel van de L / D negatief naar positief om de levensvatbaarheid van de gesorteerde cellen te schatten.

5. Plaats cellen op Microfluidics Chip

  1. Met behulp van een hemocytometer, meet zowel de concentratie en de grootte van gesorteerde cellen.
    1. Verdun gesorteerde cellen ten minste 10 pl. Verdun een hoeveelheid van 5 μ; L cellen met 5 pi trypan blauw. Laden op hemocytometer en dekglaasje aan.
    2. Verzamel heldere veld beelden van alle cellen in 4 x 4 roosters van hemocytometer. Tel het aantal levende cellen en bereken levende cellen / ml. Levende cellen nemen geen trypan blauw.
      OPMERKING: Gebruik een standaard beeldanalyse software om de diameter van alle levende cellen te meten. Bereken het gemiddelde en de standaarddeviatie van de celgrootte en selecteer een IFC plaat geschikt voor celgrootte bereik plaats. Als cel grootte variëren straddles een IFC plaat cel grootte, gebruik van meerdere platen om het volledige scala van cellen van belang vast te leggen.
  2. Load cellen op te IFC plaat volgens de instructies van de fabrikant (zie Materials).
    1. Verdun cellen 1x10 6 cellen / ml en uitvoeren drijfvermogen optimalisatie instructies van de fabrikant.
      OPMERKING: drijfvermogen optimaliseren zodat cellen niet zinken naar de bodem of naar boven drijven van de lading well voor optimale belading op IFC chip. De verhouding van buffer tot cellen kan per celtype, maar varieert kenmerkend 6: 4-7: 3 cellen: buffer.
    2. cellen om primer-IFC plaat toe te voegen. Load plaat in compatibele fluidics machine, en uitvoeren van een cel laden script naar de cellen door te drukken microfluidics circuit en in capture rijstroken.
  3. Bevestigen dat cellen in capture sites op IFC plaat worden ingediend.
    1. Verwijder IFC plaat uit fluidica machine. Monteer de IFC plaat op een microscoop uitgerust met een plaat adapter.
    2. Verzamel snapshots van heldere veld en fluorescentie voor elke capture site op 10x vergroting.
      LET OP: Helderveld capture tijden kunnen variëren 10-50 ms, afhankelijk van de lamp intensiteit. Fluorescence capture tijden kunnen variëren 250-750 ms, afhankelijk van de helderheid fluorofoor. Vermijd overbelichten cellen photodamage voorkomen.

6. cDNA Synthesis

  1. Voeren cellysis in situ volgens Iinstructies FC plaat fabrikant.
    1. Voeg lysis buffers te putten op IFC plaat. Load plaat op compatibele fluïdica machine en run cellysis script volgens de instructies van de fabrikant.
  2. Voer reverse transcriptie volgens de instructies van IFC plaat fabrikant.
    1. Voeg reverse transcriptie reagentia IFC plaat. Load plaat op compatibele fluidica machine. Run reverse transcriptie script. Sample fietsomstandigheden: 1 cyclus bij 25 ° C gedurende 10 min, 1 cyclus bij 42 ° C gedurende 1 uur, daarna 1 cyclus bij 85 ° C gedurende 5 minuten.
  3. Voer voorversterking met genspecifieke probes volgens de instructies IFC constructieplaat.
    LET OP: Door hun grotere specificiteit met een laag-kopie-aantallen, gebruiken fluorogene-gelabelde probes in plaats van probes geoptimaliseerd voor gebruik met intercalator kleurstoffen.
    1. Pool primers en verdun tot de uiteindelijke 180 nM elk. Voeg samengevoegd primers aan IFC plaat. Load plaat op compatibele fluidics machine. Run voorversterking script.
  4. Uitvoeren pre-amplificatie met de volgende cyclusomstandigheden: 1 cyclus bij 95 ° C gedurende 10 min, vervolgens 18 cycli voor 15 sec denatureren bij 95 ° C dan annealing en verlenging bij 60 ° C gedurende 4 min. WINKEL voorversterkte cDNA bij 4 ° C tot oogst. Oogst cDNA uit microfluïdische plaat volgens de instructies van de fabrikant en opslag bij -20 ° C tot gebruik.

7. Selecteer cDNA van Single Cellen voor Single Target qRT-PCR

  1. Verdun cDNA in 25 pl verdund reagens volgens de instructies van de fabrikant.
    LET OP: Geschatte uiteindelijke opbrengst is 28 ul van pre-versterkte cDNA per cel. Reserveren een hoeveelheid oplosmiddel voor toepassing als een no-template controle in qRT-PCR.
    1. Verwijzend naar helderveld en fluorescerende beelden die zijn opgenomen in stap 5.3.2, scoren elk capture website. Handmatig tellen en het aantal cellen nemen. Beoordelen en registreren of elke cel grieporescent.
      OPMERKING: Elke individuele site kan bevatten respectievelijk 0, 1, of> 1 cel, waarbij> 1 cel omvat capture sites die meerdere cellen en / of niet-identificeerbaar puin bevatten. Als de beelden voldoende kwaliteit kan een pixelwaarde tevens in de intensiteit van het fluorescentiesignaal kwantificeren.
  2. Select monsters voor qRT-PCR analyse.
    1. Selecteer cDNA monsters van capture locaties die in stap 7.2 dat exacte 1 cel met positieve fluorescentie bevatten. Pool 1 ui porties van cDNA uit elk monster.
      Opmerking: Dit is het "Pool" positieve controle voor het constateren van genen van belang zijn in willekeurig welke van de geselecteerde cellen.
    2. Kies cDNA uit ten minste een invangplaats die exact 0 cellen als een negatieve controle bevat. Gebruik verdunner uit stap 7.1.2 als een no-template controle.
  3. Run qRT-PCR assay.
    1. Uitsluitend probes gebruikt voor pre-amplificatie in stap 6.4.1. Laad alle monsters in triplicate. Fietsweerbericht een 10 ul reactie op een plaat met 384 putjes: 1 cyclus 50 ° C 2 min, 1 cyclus 95 ° C gedurende 10 min, 40 cycli van denaturatie bij 95 ° C 15 sec daarna annealing en verlenging bij 60 ° C gedurende 1 min.

8. Data Analysis

  1. Valideren qRT-PCR-producten door middel van standaard gelelektroforese. Bevestig product is een enkele band bij verwachte molecuulgewicht (verschilt per sonde).
    LET OP: Als een sonde produceert meerdere banden of een enkele band op een ongeschikt formaat, dan specificiteit is twijfelachtig, en dit is exclusief het gen uit de analyse.
  2. Controleer alle versterking rondingen en zijn goed voor eventuele afwijkingen 14. Bereken de gemiddelde CT-waarde voor elk monster / gencombinatie 15.
    LET OP: CT-waarden voor positieve controles variëren doorgaans 10-30. CT-waarden voor de negatieve controles variëren doorgaans 35-40 (geen versterking). CT waarden 30-35 worden beschouwd als zeer lage expressieen moeten met voorzichtigheid worden geïnterpreteerd 14.
  3. rapport data
    1. Wanneer monsters in de CT = 10-30 vallen, kunnen gegevens worden gerapporteerd als voudige verandering in overvloed transcript ten opzichte van een controlemonster.
      OPMERKING: Fold change gelijk aan 2 ^ (- ΔΔCT) waarbij OCT heeft betrekking op een housekeeping gen door het gemiddelde CT van het monster uit het huishoud-gen en ΔΔCT de verschillen in OCT tussen het monster en een positieve controle 15.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Als proof of principle, werd genexpressie onderzocht om differentiatie dynamiek te verkennen tijdens de ontwikkeling van het hart. In de zebravis, cardiale voorlopercellen ontstaan ​​uit een mesodermale populatie van cellen die migreren naar de voorste laterale plaat mesoderm waar ze fuseren met de lineaire hart buis te vormen. Voorafgaand aan fusie, cardiale voorlopercellen beginnen de transcriptiefactor Nkx2.5 (NK2 homeobox 5), waarvan wordt gedacht dat het eerste specifieke marker van cardiale voorlopercellen 16,17 te drukken. Hier, een eerder beschreven BAC transgene vis Tg (Nkx2.5: ZsYellow) 18, afgekort Nkx2.5: ZSY werd gebruikt om cardiale differentiatie markers in enkele cellen te onderzoeken op de 18 somiet podium, 18 uur na de bevruchting (HPF) 12. Dit was het vroegste tijdstip waarop ZsYellow signaal was visueel waarneembaar. Zoals eerder beschreven voor de transgene lijn, ZsYellow labels cardiale progenitors, zoals well een paar extra cardiale cellen die leiden tot de faryngeale boog endotheelcellen bij 28 HPF 19 verkregen (Figuur 1A-B, gegevens niet getoond). Op 18 HPF, Nkx2.5: werden ZSY embryo's los in een enkele cel suspensie vervolgens gekleurd met Sytox Blue om dode cellen te sluiten. Leef, ZsYellow positief, Sytox Blue negatieve cellen waren FACS gesorteerd met behulp van een MoFloXDP of Sony SH800Z sorteerder uitgerust met 100 micrometer mondstuk (figuur 1C-F). Om de zuiverheid van de gesorteerde populatie en post-sorteren levensvatbaarheid te beoordelen, een monster van gesorteerde cellen werden gekleurd met Sytox Blue en evalueerde de percentage van gebeurtenissen die vielen onder de oorspronkelijke sortering gate (figuur 1G-J).

Na het sorteren werden cellen in een geïntegreerde microfluïdische schakeling (IFC) chip werkstroom (Figuur 2A) aangebracht, overeenkomstig instructies van de fabrikant. Een hemocytometer, gecombineerd met trypan blue exclusion werd gebruikt om celdiameter, concentratie en meten van de levensvatbaarheid (figuur 2B en gegevens niet getoond). Cell drijfvermogen geoptimaliseerd (6,5: 3,5 cellen: buffer) volgens de instructies van de fabrikant en de cellen werden op een IFC 5-10 urn cellen diameter vangen. Om afvangrendement, fluorescentie en / of heldere veld signalen werden afgebeeld op alle capture websites te beoordelen, een tegelwerk functie in Fiji werd gebruikt om een ​​enkel beeld van de microfluidics plaat steek. Elke invangplaats bevatte 0, 1 of> 1 afzonderlijke cellen (figuur 2C-F). Zoals verwacht van FACS verrijking, gevangen cellen brachten ZsYellow (figuur 2G). Afvangrendement 90% overschreden 5 afzonderlijke experimenten met Nkx2.5: ZSY gesorteerde cellen en ten minste 70% van de invangplaatsen werd bezet door een enkele cel (gegevens niet getoond). Cellen werden gelyseerd RNA geïsoleerd, cDNA gesynthetiseerd en specifieke doelwitgenen werden geamplificeerd, allemaal volgens de instructies van de fabrikant.

Een subset van cellen invangplaatsen geselecteerd voor qRT-PCR analyse zoals beschreven in het bovenstaande protocol. Specifiek verlengingsfactor 1a (efl1a) 20 en glyceraldehyde-3 fosfaat (GAPDH) 21 werden getest als housekeeping genen verwacht worden uitgedrukt in elke cel; GATA-bindend eiwit 4 (GATA4) 22 en NK2 homeobox 5 (Nkx2.5) reeds cardiale voorlopercellen markers; ISL LIM homeobox 1 box 1 (isl1) als een tweede hart veld marker 23,24; en myosine lichte keten (myl7) en ventriculaire myosine zware keten (vmhc) 25 tot ventriculaire hartspiercellen te markeren. Genspecifieke probes zijn gevalideerd met cDNA uit 48 HPF embryo (figuur 3). qRT-PCR werd gebruikt om relatieve genexpressie van deze genen in 45 afzonderlijke cellen beoordelen van 18 HPF embryo, een no-template negatieve controle en een samengevoegde populatie positieve controle containing cDNA uit alle 96 capture sites. Ruwe CT waarden voor 40 representatieve cellen en controles worden getoond in tabel 1. Met name uit de pool van 46 cellen onderzocht, werden 6 cellen uit de analyse uitgesloten omdat alle genexpressie CT waarden overschreden CT = 35,0, en het is niet bekend of deze hoge CT waarden zijn toe te schrijven aan echte, zeer lage expressie niveaus of sample degradatie. Daar de CT waarden voor de huishoud-gen, ef1a, te ruim om genexpressie te vergelijken tussen de monsters en vele CT waarden boven 30, CT waarden werden gevisualiseerd als warmtebron kaart (Figuur 3). Vergelijking in monsters werd aanzienlijke heterogeniteit in genexpressie waargenomen en de cellen werden geclassificeerd als type cellen 1-5 gebaseerd op expressiepatroon (figuur 3).

Figuur 1
Figuur 1. Enkele cel isolatie van de zebravis positieve cellen bij 18 HPF Whole mount beelden van representatieve Tg (Nkx2.5: ZsYellow). embryo bij 18 HPF met (A) ZsYellow fluorescentie alleen of (B) samengevoegd helder beeld veld met. (CF) Vertegenwoordiger FACS gating strategie te verrijken voor ZsYellow positieve cellen en (GJ) post-sort analyse (C, G) FSC / SSC grootte gating, (D, H) doublet discriminatie, (E, I) Levend / Dead gating en (F, J) gesorteerd bevolking. Schaal bar is 100 micrometer. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

figuur 2
Figuur 2. Enkele cel vangst van de zebravis Nkx2.5: ZSY ong> positieve cellen. (A) Werk flow. (B) Cell grootteverdeling voor gesorteerde cellen van Tg (Nkx2.5: ZsYellow) embryo's die bij 18 HPF. (CF) Vertegenwoordiger cel capture evenementen op IFC plaat waarbij (C) is een lege goed, (D) bevat twee cellen, (E) heeft een enkele cel in de fluïdica kanaal ingediend als een "channel capture", en (F) een enkele gevangen cel. Paarse dozen markeren inzet voor de vergrote weergave van de opname sites. (G) Enkele cel capture met helderveld, ZsYellow en samengevoegd beelden. (CF) Witte schaal bar is 50 micrometer; gele schaal bar is 10 micrometer. (G) Schaal bar is 10 micrometer. Klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

IGUUR 3 "src =" / files / ftp_upload / 53877 / 53877fig3.jpg "/>
Figuur 3. Genexpressie analyse van capture enkele zebravis Nkx2.5:. ZSY positieve cellen Genexpressie door qRT-PCR in de positieve controles (embryo's in 2 dagen post-bevruchting, samengevoegde cDNA van enkelvoudige cellen), negatieve controle (no-template ) en 40 enkele cellen (Cell 01-40). Ruwe CT waarden kleurcode basis zoals beschreven in de sleutel. Ef1a = verlengingsfactor 1a, GATA4 = GATA-bindend eiwit 4, Nkx2.5 = NK2 homeobox 5, myl7 = myosine lichte keten 7, vmhc = ventriculair myosine zware keten GAPDH = glyceraldehyde-3-fosfaat en isl1 = ISL LIM homeobox 1. klik hier om een grotere versie van deze figuur te bekijken.

Cycle Threshold (CT)
ef1a GATA4 nkx25 myl7 vmhc GAPDH isl1
Embryo 20.69 20.92 28.59 32.87 26.30 27.00 33.57
zwembad 26.4 22.4 27.7 27.4 24.5 29.2 40.0
NTC 40.0 40.0 40.0 40.0 40.0 40.0 40.0
Type 1 Cel-01 25.1 40.0 40.0 40.0 40.0 40.0 40.0
Cel-02 25.4 40.0 40.0 40.0 40.0 40.0 40.0
Cel-03 26.3 40.0 40.0 40.0 40.0 40.0 40.0
Cel-04 27.4 40.0 40.0 40.0 40.0 40.0 40.0
Cel-05 28.0 40.0 40.0 40.0 40.0 40.0 40.0
Cel-06 28.2 40.0 40.0 40.0 40.0 40.0 40.0
Cel-07 29.3 40.0 40.0 40.0 40.0 40.0 400,0
Cel-08 30.7 40.0 40.0 40.0 40.0 40.0 40.0
Cel-09 34.3 40.0 40.0 40.0 40.0 40.0 40.0
Type 2 Cel-10 23.5 28.0 40.0 40.0 40.0 26.3 40.0
Cel-11 23.5 27.2 40.0 40.0 40.0 40.0 40.0
Cel-12 23.7 17.9 40.0 40.0 40.0 40.0 40.0
Cel-13 24.1 32.4 40.0 40.0 40.0 40.0 40.0
Cel-14 24.9 27.5 40.0 40.0 40.0 40.0 40.0
Cel-15 25.9 28.6 40.0 40.0 40.0 40.0 40.0
Cel-16 26.0 28.1 40.0 40.0 40.0 40.0 40.0
Cel-17 27.0 27.7 40.0 40.0 40.0 38.5 40.0
Cel-18 27.0 27.4 40.0 40.0 40.0 40.0 40.0
Cel-19 27.0 30.2 40.0 40.0 40.0 38.2 40.0
Cel-20 27.0 28.2 40.0 40.0 400,0 39.2 40.0
Cel-21 27.7 30.3 40.0 40.0 40.0 38.6 40.0
Cel-22 30.4 26.2 40.0 40.0 40.0 38.3 40.0
Cel-23 31.3 22.4 40.0 40.0 40.0 39.7 40.0
Cel-24 31.5 28.8 40.0 40.0 40.0 39.5 40.0
Cel-25 33.8 27.4 40.0 40.0 40.0 37.3 40.0
Cel-26 40.0 27.4 40.0 40.0 40.0 36.6 40.0
Type 3 Cel-27 24.7 19.9 28.8 40.0 40.0 40.0 40.0
Cel-28 24.8 28.4 26.3 40.0 40.0 40.0 40.0
Cel-29 25.1 23.5 27.6 40.0 40.0 32.5 40.0
Cel-30 26.3 21.4 27.5 40.0 40.0 39.9 40.0
Cel-31 26.9 24.8 28.2 40.0 40.0 40.0 40.0
Cel-32 27.0 22.5 23.8 40.0 40.0 40.0 40.0
Cel-33 27.8 27.6 27.7 40.0 40.0 40.0 40.0
Cel-34 28.1 21.9 26.6 40.0 40.0 37.7 40.0
Cel-35 29.3 26.5 28.1 40.0 40.0 38.3 40.0
Type 4 Cel-36 24.8 20.3 26.0 27.4 26.6 40.0 40.0
Cel-37 28.7 22.3 25.9 28.9 22.9 38.5 40.0
Type 5 Cel-38 25.5 20.0 29.3 23.0 19.9 25.9 40.0
Cel-39 25.9 21.8 28.6 25.1 21.7 25.7 40.0
Cel-40 28.9 22.0 27.0 23.0 21.3 27.6 40.0

Tabel 1. Raw CT-waarden.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

De hierin beschreven werkwijze maakt gebruik van expressie van een fluorescerend eiwit onder controle van een cel-type specifieke promotor om een ​​populatie van cardiale progenitorcellen van zebravis embryo's voor gebruik in microfluïdische steungebied eencellige beeldverwerkingssysteem verrijken expressie van een subset van cardiale genen in één evalueren cellen. Mits FACS laser excitatie en emissie vermogen verenigbaar met het fluorofoor (s) naar keuze, kan deze methode worden gebruikt voor elke fluorescerende reporter lijn. Veel zebravis reporter lijnen zijn al in het bestaan, en transgene vis uitvoeren roman reporters kunnen worden gegenereerd in slechts 3 maanden. Bovendien kan deze workflow worden aangepast om cDNA te produceren uit de hele transcriptoom van cel-RNA sequencing. Hiertoe stappen 5-7 moeten enigszins worden aangepast voor gebruik met chemische geoptimaliseerd voor het bereiden van cDNA-bibliotheken voor het genereren geschikt voor RNA-sequencing. Het is echter raadzaam populatie heterogeniteit validerenmet de methode beschreven vóór nastreven high throughput sequentiebepaling toepassingen.

Het is belangrijk op te merken dat er een aantal beperkingen aan de beschreven werkwijze. Ten eerste, het gebruik van geïntegreerde microfluïdische schakeling (IFC) platen vereist gespecialiseerde, dure apparatuur. Echter, microfluïdische chips bieden aanzienlijke voordelen ten opzichte van traditionele 96 goed en 384 wells plaat formaten voor het testen van enkele cellen. Door stromend cellen en reagentia door middel van micrometer schaal rijstroken, zijn enkele cellen gepositioneerd in enkele capture sites waar ze direct kunnen worden waargenomen om te bevestigen dat ze zijn enkele cellen in goede gezondheid. RNA-extractie en cDNA-synthese voorkomen in situ op de IFC chip gebruik van zeer kleine hoeveelheden voor elke cel. Geïntegreerde fluïde chips, ten tijde van dit schrijven, zijn commercieel verkrijgbaar bij één bron. Hoewel niet-commerciële fabricage werd uitgevoerd door verschillende groepen, is buiten de capaciteit van de meeste laboratoria. Stappen 5-7 kanmoeten worden aangepast voor platforms geproduceerd door andere bedrijven of in-house verzinsels. Ten tweede, hoewel de handel verkrijgbaar IFC platen kunnen maximaal 96 genen de geselecteerde genen worden beperkt door de beschikbaarheid van fluorogene gemerkte gen probes gevalideerd voor gebruik in de zebravis. Ten derde, de zebravis cellen zijn doorgaans kleiner dan zoogdiercellen, en dit kleine formaat biedt uitdagingen voor de steekproef verwerking. Een kleine verandering in celdiameter vertaalt in een grote verandering in celvolume, reducerende beschikbare materiaal en het verminderen van de waarschijnlijkheid van het detecteren van lage expressie van genen.

Er zijn een aantal extra overwegingen voor dit protocol. In stap 1, is het belangrijk om alleen gebruik bevrucht embryo binnen een korte tijdsbestek. Het houden van een constante temperatuur en zonder beperkende voorwaarden zuurstof, zebravis embryo's te ontwikkelen synchroon. Het uiteindelijke uitlezing van dit protocol (relatieve genexpressie van enkelvoudige cellen) kan de bron van heteroge niet discriminerenneity tussen individuele cellen. Om deze reden, de interpretatie van de intercellulaire heterogeniteit is gebaseerd op zorgvuldig geënsceneerde embryo's en synchrone ontwikkeling. In stappen 2-3, is er een afweging tussen dissociatie en levensvatbaarheid. Hoewel stap 4 selecteert voor levensvatbare cellen, en stap 3 bevat een aantal filtering stappen die helpen uitsluiten multimeren, over-vergisting zal de levensvatbare materiaal dat beschikbaar is voor FACS te verminderen en potentieel te verminderen gesorteerde opbrengst cel. Stappen voor het oplossen van problemen met lage levensvatbaarheid onder andere het verminderen van de spijsvertering tijd, het verminderen van trituratie intensiteit, en het optimaliseren van het aantal embryo's in het uitgangsmateriaal. FACS verrijking van de cel bevolking van belang (stap 4) is misschien wel de meest cruciale stap in dit protocol. Strenge sorteercriteria zijn essentieel voor een enkele cel preparaat dat genereren alleen levende cellen die het fluorescerende eiwit van belang. Verontreinigende cellen uit andere populaties kan leiden tot een verkeerde voorstelling van intercellulaire heterogeniteit. OpmerkelijkFACS verrijking van een populatie van belang is niet beperkt tot de twee kleurenstrategie getoond in dit protocol. Complexere strategieën kunnen meer verfijnde celpopulaties te produceren en zijn een snelle manier om de gemeld in de proof of principle studie methodiek uit te breiden. In stap 5 kunnen cellen direct worden waargenomen dat het aantal cellen gevangen, celgezondheid en expressie van fluorescentie eiwit te bevestigen. Maar afhankelijk van celgrootte en helderheid, de fluorofoor plaats kan niet visueel detecteerbaar zijn en geen betrouwbare uitlezing. Een succesvolle uitvoering van de stappen 6-8 vereist een zorgvuldige naleving van de protocollen van de fabrikant.

Als bewijs van het principe werden expressieniveaus van een subset van bekende hartmarkers in één afgeleid van een eerder beschreven BAC transgene zebravis lijn Nkx2.5 beoordeeld: ZSY cardiale differentiatie merkers in individuele Nkx2.5 onderzocht: ZSY positieve cellen op 18 uur na bevruchting (hPF). Om de heterogenei verkennenty differentiatiemarkers uitgedrukt in gevangen Nkx2.5: ZSY expressie brengen, een reeks genen werden getest waaronder housekeeping genen (ef1a, GAPDH), transcriptiefactoren bekend worden ingeschakeld begin cardiale specificatie (GATA4, Nkx2.5), een tweede hart veld voorlopercellen marker (isl1), en genen bekend te worden ingeschakeld later gedurende cardiale differentiatie (myl7, vmhc). De relatieve overvloed van elk gen werd gemeten met qRT-PCR door het berekenen cyclus drempelwaarde (CT). De laagste CT waarde berekend was 17,9 en de hoogste was 40, die geen amplificatie (Tabel 1). CT-waarden van> 35.0 waren beneden de detectielimiet beschouwd.

Van de 46 cellen in de gegevensverzameling, 6 werden uitgesloten vanwege mislukte amplificatie van elke genen. De resterende cellen werden sub-gecategoriseerd cellen in 5 types gebaseerd op de expressie van GATA4, Nkx2.5, myl7 en vmhc en were gesorteerd per ef1a waarde binnen groepen. Hoewel GAPDH werd oorspronkelijk opgenomen als een mogelijke housekeeping gen expressie was zeer variabel over cellen, waardoor het niet geschikt als een housekeeping gen. GAPDH expressie waarschijnlijk beter vertegenwoordigt veranderingen in energiemetabolisme in verband met cardiale differentiatie in dit type cel. Interessant, was er één cel waarin ef1a was vn-detecteerbaar, maar een ander gen detecteerbaar was (GATA1 in de cellen 26). Dit suggereert dat, hoewel ef1a het algemeen voldoende huishoudingsgen onderscheid tussen succesvolle en niet succesvolle cel reverse transcriptie reactie, kan het niet geschikt voor alle toepassingen. Het ontbreken van ef1a expressie in cel 26 kan worden veroorzaakt door eencellige transcriptionele dynamiek. Recente single-cellen studies tonen aan dat gen transcriptie fundamenteel stochastisch, afwisselend fasen van snelle en verwaarloosbare transcriptionele activiteit 26. Tzijn transcriptie barsten model suggereert dat het gebruik van een huishouding gen voor kwantitatieve vergelijkingen tussen enkele cellen in totaal ongeschikt zijn.

In het Type 1 groep ef1a de enige detecteerbare gen. Deze cel kan ofwel Nkx2.5 omvatten: ZSY negatieve cellen of cellen met een zeer lage expressie van de andere genen van belang. Type 2 cellen, met uitzondering van Cell-26, tot expressie gebracht zowel ef1a en GATA4 zonder correlatie in de relatieve expressieniveaus van deze genen. Met name kan Nkx2.5 expressie in Type 1 en Type 2 cellen door suboptimale FACS stringentie, transcriptionele barsten, transgene leakiness of sub-threshold expressieniveaus. Type 3-cellen bracht detecteerbare niveaus van ef1a, GATA4 en NKX-2,5. Deze cellen zijn waarschijnlijk cardiale progenitorcellen en kunnen differentiëren atriale cardiomyocyten. Type 4 cellen bracht detecteerbare niveaus van ef1a, GATA4, Nkx2.5, myl7 </ em> en vmhc en zullen waarschijnlijk cellen differentiëren in ventriculaire hartspiercellen. Type 5 cellen tot expressie ef1a, GATA4, Nkx2.5, myl7, vmhc en GAPDH. De toevoeging van detecteerbare niveaus van GAPDH suggereert dat deze cellen het vermogen tot verbeterde glycolytische stofwisseling in gedifferentieerde cardiomyocyten. Het is intrigerend dat ondanks het sorteren van ZsYellow positieve cellen van Tg. (Nkx2.5: ZsYellow), embryo, 21/40-cellen was sub-drempelniveaus van Nkx2.5 in onze qRT-PCR analyse Dit kan te wijten zijn aan transcriptionele barsten of kunnen verschillen transcript bewerking tussen endogene en Nkx2.5 ZsYellow weerspiegelen. Belangrijk is dat de tweede hart veld marker isl1 was niet detecteerbaar in alle cellen of cDNA gebundeld van al onze capture sites. Kortom, het vergelijken van over monsters, substantiële heterogeniteit was duidelijk op de enkele cel niveau, wat erop wijst dat bij 18 HPF, Nkx2.5: ZSY + cells omvatten cardiale progenitors en nakomelingen in verschillende stadia van differentiatie.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Supplies
Dumont #5 forceps Fine Science Tools 11254-20 For removing the chorion from embryos
Microcentrifuge tube 2 ml GeneMate C-3261-1
40 um cell strainer Biobasic SP104151
35 mm culture dish Falcon 351008
FACS tubes topped with 35 um cell strainer Falcon 352235
P1000 and tips Rainin 17005089
P20 and tips Rainin 17005091
IFC chip manufacturer's protocol Fluidigm 100-6117 Version 100-6117 E1 was used in representative experiment
Wide bore pastuer glass pippette VWR 14673-010 For transferring embryos
Adult wild type zebrafish N/A We used AB line
Adult transgenic zebrafish N/A We used Tg(nkx2.5:ZsYellow)
Name Company Catalog Number Comments
Reagents for cell dissociation
Double distilled water N/A
Instant Ocean Sea Salt Instant Ocean SS15-10
NaCl FisherScientific S271-3 make stock in water and use for de-yolking buffer
KCl Sigma Aldrich P5405 make stock in water and use for de-yolking buffer
NaHCO3 Sigma Aldrich S6014 make stock in water and use for de-yolking buffer
Leibovitz's L-15 Gibco 21083-027
FBS FisherScientific 03-600-511 Heat inactivate; any brand of FBS should be fine
Cell Dissociation Reagent 1 -TrypLE Life Technologies 12605-010 Store at room temperature.
Cell Dissociation Reagent 2 - FACSmax Genlantis T200100 Store -20; thaw on ice; bring to room temp before use
pronase (optional) Sigma P5147
L/D Dye - Sytox Blue Life Technologies S34857 Any live/dead stain suitable for flow cytometry will work
Trypan Blue Gibco 15250-061
Name Company Catalog Number Comments
Reagents for IFC plate use and qRT-PCR
Gene-specific probes Probes will vary by experiment
TaqMan Probe ef1a Life Technologies Dr03432748_m1
TaqMan Probe gata4 Life Technologies Dr03443262_g1
TaqMan Probe nk2-5 Life Technologies Dr03074126_m1
TaqMan Probe myl7 Life Technologies Dr03105700_m1
TaqMan Probe vmhc Life Technologies Dr03431136_m1
TaqMan Probe isl1 Life Technologies Dr03425734_m1
TaqMan Gene Expression Master Mix Life Technologies 4369016
Reagents listed in IFC manufacturer's protocol
C1 Reagent Kit Fluidigm 100-5319 Reagents for loading cells onto IFC plate
Ambion Single Cell-to-CTTM Life Technologies 4458237 Reagents for reverse transcription and pre-amplification steps
Molecular Biology Quality Water Corning 46-000CM
C1 IFC for PreAmp (5-10 um) Fluidigm 100-5757 IFC plate for small cells
Name Company Catalog Number Comments
Equipment
C1 AutoPrep machine Fluidigm 100-5477 For IFC plate use
Hemocytometer  Sigma Aldrich Z359629 For counting cells and assessing cell size
Dissecting microscope For removing embryos from chorion
Tissue culture microscope For assessing single cell digestion
FACS machine For isolating cells of interest

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Speicher, M. R. Single-cell analysis: toward the clinic. Genome medicine. 5, (2013).
  2. Macaulay, I. C., Voet, T. Single cell genomics: advances and future perspectives. PLoS genetics. 10, e1004126 (2014).
  3. Marco, E., et al. Bifurcation analysis of single-cell gene expression data reveals epigenetic landscape. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 111, 5643-5650 (2014).
  4. Yin, H., Marshall, D. Microfluidics for single cell analysis. Current opinion in biotechnology. 23, 110-119 (2012).
  5. Garlanda, C., Dejana, E. Heterogeneity of endothelial cells. Specific markers. Arteriosclerosis, thrombosis, and vascular biology. 17, 1193-1202 (1997).
  6. Diaz-Cano, S. J. Tumor heterogeneity: mechanisms and bases for a reliable application of molecular marker design. International journal of molecular sciences. 13, 1951-2011 (2012).
  7. Guo, G., et al. Mapping cellular hierarchy by single-cell analysis of the cell surface repertoire. Cell stem cell. 13, 492-505 (2013).
  8. Guo, G., et al. Resolution of cell fate decisions revealed by single-cell gene expression analysis from zygote to blastocyst. Developmental cell. 18, 675-685 (2010).
  9. Treutlein, B., et al. Reconstructing lineage hierarchies of the distal lung epithelium using single-cell RNA-seq. Nature. 509, 371-375 (2014).
  10. Kimmel, C. B. Genetics and early development of zebrafish. Trends in genetics : TIG. 5, 283-288 (1989).
  11. Liu, J., Stainier, D. Y. Zebrafish in the study of early cardiac development. Circulation research. 110, 870-874 (2012).
  12. Kimmel, C. B., Ballard, W. W., Kimmel, S. R., Ullmann, B., Schilling, T. F. Stages of embryonic development of the zebrafish. Developmental dynamics : an official publication of the American Association of Anatomists. 203, 253-310 (1995).
  13. Zhao, S., Fung-Leung, W. P., Bittner, A., Ngo, K., Liu, X. Comparison of RNA-Seq and microarray in transcriptome profiling of activated T cells. PloS one. 9, e78644 (2014).
  14. McCall, M. N., McMurray, H. R., Land, H., Almudevar, A. On non-detects in qPCR data. Bioinformatics. 30, 2310-2316 (2014).
  15. Schmittgen, T. D., Livak, K. J. Analyzing real-time PCR data by the comparative C(T) method. Nature. 3, 1101-1108 (2008).
  16. Lyons, I., et al. Myogenic and morphogenetic defects in the heart tubes of murine embryos lacking the homeo box gene Nkx2-5. Genes & development. 9, 1654-1666 (1995).
  17. Chen, J. N., Fishman, M. C. Zebrafish tinman homolog demarcates the heart field and initiates myocardial differentiation. Development. 122, 3809-3816 (1996).
  18. Zhou, Y., et al. Latent TGF-beta binding protein 3 identifies a second heart field in zebrafish. Nature. 474, 645-648 (2011).
  19. Paffett-Lugassy, N., et al. Heart field origin of great vessel precursors relies on nkx2.5-mediated vasculogenesis. Nature cell biology. 15, 1362-1369 (2013).
  20. McCurley, A. T., Callard, G. V. Characterization of housekeeping genes in zebrafish: male-female differences and effects of tissue type, developmental stage and chemical treatment. BMC molecular biology. 9, 102 (2008).
  21. Tang, R., Dodd, A., Lai, D., McNabb, W. C., Love, D. R. Validation of zebrafish (Danio rerio) reference genes for quantitative real-time RT-PCR normalization. Acta biochimica et biophysica Sinica. 39, 384-390 (2007).
  22. Serbedzija, G. N., Chen, J. N., Fishman, M. C. Regulation in the heart field of zebrafish. Development. 125, 1095-1101 (1998).
  23. de Pater, E., et al. Distinct phases of cardiomyocyte differentiation regulate growth of the zebrafish heart. Development. 136, 1633-1641 (2009).
  24. Hami, D., Grimes, A. C., Tsai, H. J., Kirby, M. L. Zebrafish cardiac development requires a conserved secondary heart field. Development. 138, 2389-2398 (2011).
  25. Yelon, D., Horne, S. A., Stainier, D. Y. Restricted expression of cardiac myosin genes reveals regulated aspects of heart tube assembly in zebrafish. Developmental biology. 214, 23-37 (1999).
  26. Molina, N., et al. Stimulus-induced modulation of transcriptional bursting in a single mammalian gene. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110, 20563-20568 (2013).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Video Stats