Macerated Tissue taramalı elektron mikroskobu Ekstraselüler Matrix Visualize'a

Biology

Your institution must subscribe to JoVE's Biology section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations | Reprints and Permissions

Stephenson, M. K., Lenihan, S., Covarrubias, R., Huttinger, R. M., Gumina, R. J., Sawyer, D. B., Galindo, C. L. Scanning Electron Microscopy of Macerated Tissue to Visualize the Extracellular Matrix. J. Vis. Exp. (112), e54005, doi:10.3791/54005 (2016).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Protocol

Etik Beyanı: Hayvan taşıma için protokoller Vanderbilt Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi (IACUC tarafından onaylanmış, AAALAC-Uluslararası standartlara göre sayı M / 10/117 (domuz) ve M / 10/219 (fareler) ve yapılan protokoller. banked insan kalp dokularının kullanımı Vanderbilt Üniversitesi Tıp Merkezi IRB (protokol numarası 100887) tarafından onaylandı.

1. Örnek Toplama ve Depolama

  1. 0.1 M fosfat tamponu (PB) çözelti içinde, taze% 4 glutaraldehit sağlayın.
    DİKKAT: Glutaraldehyde, toksik davlumbaz eldiven ve iş giyim.
    1. 1000 ml dH 2 O. 21.8 g 2 Na HPO 4 ve 6.4 g NaH 2 PO 4. Kuantum satis (Qs) ile PB, pH 7.4 0.2 M stok solüsyonu yapmak
    2. PB stok çözeltisi 2.5 ml 2.1 mL dH 2 O% 50 glutaraldehid 400 ul ekle
  2. bir yığın daldırın (hayır daha büyük 2 c% 4 glutaraldehid çözeltisi içine doku m2). Not: Daha küçük parçaları da kullanılabilir ama kolayca protokol daha adımları kolaylaştırmak amacıyla göz tarafından görüntülenmiştir için yeterli bir boyutta (Resim 5 mm'den 2) arasında olmalıdır.
  3. 4 ° C sıcaklıkta süresiz depolamak, daha sonra 1 saat oda sıcaklığında inkübe edin.

Kalp Doku 2. Decellularization

  1. 10 g NaOH peletleri / 100 ml DH 2 O kullanılarak taze,% 10 sulu NaOH çözeltisi yapmak
    DİKKAT: NaOH çözeltileri aşındırıcı ve alkali yanıklara neden olabilir, eldiven giymek.
  2. DH 2 O. doku durulayın
  3. 6, oda sıcaklığında% 10 NaOH çözeltisi içinde inkübe - 10 gün boyunca (kadar kırmızımsı-kahverengi bir doku değişiklikleri, kirli beyaz veya beyaz).
  4. Doku şeffaf hale gelinceye kadar dH 2 O durulayın.
  5. Oda sıcaklığında 4 saat% 1 tanik asit içinde doku bırakın. 4 ml dH 2 O başına 1 ml% 5'lik stok solüsyonu kullanın
    DİKKAT: Tannik asitGüçlü tahriş edicidir, eldiven giymek.
  6. Gecede DH 2 O durulayın.

3. Osmication ve (Güvenlik Çeker Hood) Kalp Dokusu Dehidrasyon

  1. 21.4 g sodyum kakodilat, 10.0 g kalsiyum klorür ve 450 mi dH 2 O kullanılarak, sodyum kakodilat tamponu, 0.2 M stok çözelti yapmak 7.4 pH ayarlamak için gerektiği kadar karıştırın, daha sonra hidroklorik asit ilave edin. Qs 500 ml dH 2 O ile
    DİKKAT: Sodyum kakodilat ve hidroklorik asit, toksik davlumbaz eldiven ve iş giyim.
  2. 50 ml dH 2 O 1 g osmiyum tetroksit kristal eriterek güvenliği için davlumbaz osmiyum tetroksit% 2'lik sulu stok solüsyonu yapmak
    DİKKAT: osmiyum tetroksit ciddi inhalasyon tehlikesi; mukozasına veya gözbebekleri buhar tespit mümkündür, dolayısıyla sadece eldiven ile davlumbaz anlaştım. Bir sıçrama koruma tavsiye edilir.
  3. dH ile 1: stok çözelti 1 mix (0.1 M sodyum kakodilat tampon doku durulayın
  4. Üç tampon durulama toplam iki kez önceki adımı yineleyin.
  5. döndürücü üzerinde 1 saat süreyle: 0.1 M sodyum kakodilat tampon (1 stok sodyum kakodilat ve stok osmiyum tetroksit 1 mix)% 1 osmiyum tetroksit doku daldırın.
  6. 5 dakika rotator her 0.1 M sodyum kakodilat tamponunda 3 kez doku durulayın.
  7. döndürücü üzerinde her biri 15 dakika için etanol artan konsantrasyonlarda (% 30,% 50,% 75,% 85,% 95, ve son olarak% 100) kullanılarak doku durulayın.

SEM 4. Kesit Yüzey Hazırlama

  1. Ayrıca,% 100 etanol ihtiva eden sığ bir Petri kabı,% 100 etanol içinde doku aktarın.
  2. kenarlarının yassı numune üzerinde bir eşkenar üçgenin iki tarafı meydana getirmek için birbirleriyle ve kesme kenarları haç biçimli parçası ile temas halinde olacak şekilde, iki keskin Jilet tutun. Bunu başarmak için, numunenin sağında bir bıçak yerleştirmek için sol elinizi kullanın vekesim sola. Aynı zamanda, çok örnek ve dilim sağa sol ikinci bıçak yerleştirmek için sağ elinizi kullanın. Böylece, bıçaklar tek pürüzsüz kesim yapmak için ters yönden birbirlerine karşı kaydırılabilir olacaktır.
  3. numune zarar vermeden tercihen mümkün olduğunca büyük bir yüzey alanı açığa minimum distorsiyon veya güç yırtılma ile numunenin çok temiz bir kesim yapmak için birbirlerine karşı düz bıçak tarafı kaydırın.
  4. SEM muayene için mümkün olan en temiz kesit yüzeyleri açığa her numune için tekrarlayın.

5. Kritik Nokta Kurutma (CPD) Kalp Doku

  1. Doku her zaman% 100 etanol içinde kalmasını sağlayarak, kritik nokta kurutucu (CPD) örnek sahibinin doku transferi için bir spatula ya da cımbız kullanın. tutucu etanol içinde ve transfer birkaç saniye fazla havayla temas doku ile elde edilir batırma olduğundan emin olun.
  2. Bizim başına CPD İşletER el kitabı, sıvı karbon dioksit ile etanol yerine bir şekilde doldurmayı tasfiye-ve-3 tamamlayın.
  3. Numunelerin kritik nokta kurutma ulaşmak ve CO 2 kontrollü havalandırma ile atmosfer basıncına onları dönmek için kullanım kılavuzuna başına CPD çalıştırın.

SEM Kalp Doku Örneklerinin 6. montajı

  1. alüminyum saplama üst yüzeyine bir karbon yapıştırıcı sekmesini kalarak, her numune için bir SEM örnek saplama hazırlayın.
  2. Bir stereomikroskopta yardımı ile dikkatlice (uzak görünen sekmesinden gelen) yukarı bakacak şekilde ilgi kesit yüzeyi ile yapışkan sekmesine numune uygun ve mümkün olduğunca yakın örnek saplama yüzeyinin düzlemi ile paralel. prob veya ilgi yüzeyine dokunmayın.
  3. Boya uygulaması için ideal bir konik fırça, elde etmek için bir tahta aplikatör çubuk kırın. saplama bağlılığı geliştiren, taban ve numunenin kenarlarında gümüş ya da karbon boya uygulayın.
  4. Yere ilgi yüzeyinden bir ücret yolu sağlamak için, ilgilenilen yüzeyin bir kenarına kadar boya gümüş ya da karbon çok ince bir çizgi uzatın.
  5. şasiye böylece metal saplama karbon sekme yüzeyinden iletken bir yol temin etmek üzere karbon sekmesinin çevresinde gümüş veya C-boya, 2 veya 3 küçük dabs uygulayınız.
  6. iletken boya iki saat kurumaya bırakın.
  7. altın-paladyum alaşımı veya altın - bir nispeten ağır kaplama (40 nm 30 hedef aralığı) uygulamak için kullanım kılavuzuna başına püskürtme kaplayıcı çalıştırın. yaklaşık olarak 0.1 mbar numune odacığı içinde, pompa; 40 sn Timer ayarlayın. 08:00 pozisyonu (orta Argon gazı akışı) Açık Set valfi. Başlat tuşuna basın 30 mA püskürtme kaplama başlatmak için. Mor kızdırma deşarj numune odasında görünür olmalıdır.

Kalp Doku Örneklerinin 7. SEM Sınav

  1. Görüntüleme P en aza indirmek için, nispeten düşük bir ivmelendirici gerilim taramalı elektron mikroskopuyla gerçekleştirmenumunedeki zayıf şarj yayılımı ile ilişkili GİDERME (şarj). Önerilen ilk görüntüleme koşulu vardır: 5 kV 10 mm çalışma mesafesi, gerilim hızlandırılması.
  2. Deneyimli bir operatör yardımı ile, istihdam z boyutta önemli bir uzunluğu boyunca uzanan birden fazla odak düzlemlerinde liflerin veya lif odak gerektiren görüntüleme koşulları bu alanda derinliğinin genişletmek için çalışma mesafesi artmıştır.
    1. Burada kullanılan mikroskop için kullanıcı arabirimi erişimi, sağ üst taraftaki Gezinti sekmesini (Malzeme Tablo).
    2. Sahne menüsünden Koordinatlar sekmesine erişin. Daha sonra girilen çalışma mesafesi örnek sahne taşımak için sekmesinden Git tıklayın koordinat Z için milimetre daha büyük bir değer girin, çalışma mesafesini arttırmak için.
  3. deneyimli bir operatörün yardımı ile, elektron ışını faiz dik yüzeyini yerleştirmek için örnek tilt ve döndürme kullanır. 10 degr 30 Ek eğimees bu pozisyondan matris yapısının gözlem ve dokümantasyon artırabilir.
    1. Odaklı çalışma mesafesi belirterek, burada kullanılan mikroskop için, (Malzeme Tabloya bakınız) kullanıcı arayüzünde, ilgi hazırlanan yüzey düzlemine çevresine yakın örneği odaklanmak, sonra sola veya sağa kaydırın tıklayın ve sağ fare düğmesini basılı tutun .
    2. Yüzey ve tekrar odak karşıt kenarına yakın taşımak için Manuel Kullanıcı Arabirimi joystick ile gidin. çalışma mesafesi birinci konuma yaklaşık olarak eşit değilse, eğim numune (7.2) ve T bir eğim değeri koordinat girmek Sahne menüsünden koordinatları sekmesini kullanarak iki yerde yaklaşık anlaşmaya ulaşmak için.
    3. Numune doksan derece döndürün (alan Koordinat R içine değeri girin) ve tüm pozisyonları yaklaşık olarak aynı çalışma mesafesinde odaklı kadar işlemi tekrarlayın.
      Not: Değişken basınç SEM yük dağılımı geliştirmek için kullanılabilirmümkün ise. Yüksek vakum taramalı elektron mikroskobu için standart çalışma modudur.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Vurgulanan teknik kullanılmayan bir insan kalp nakli donör (Şekil 1), transplant alıcılarında, yabani tip ve distrofik farelerin (Şekil 3) den kalplerin eksplante dokulardan kalp dokularına ve domuz post-miyokard infarktüsü, kalp örneklerinde uygulandı kalp yaralanma modeli (Şekil 2). Şekil 1 'de gösterildiği gibi, insan kalp matris kesitte görüntülendiğinde bir petek benzeri bir desen görüntülenir çapraz bağlı proteinlerin karmaşık bir dokumadır. Her 'petek' yapısı Şekil 1'de düzlemsel görünümü dikkate alındığında interkalat diskler tarafından bağlandığında bir çubuk zaman metafor 'tünelden' üzerinden uzunlamasına çalışan yaklaşık olarak 40 mikron genişliğinde, normalde tek bir myocyte engellemeyi., Birkaç kardiyomyositler öngörülen edilebilir üç boyutluluk kadar uzatılmıştır. Ayrıca 1 vurgular ŞekilKesme işlemi (Şekil 1, sağ üst) sırasında "çökerttiğini" bölümlere göre daha hassas daha revelatory topografik verileri verimli ile kesme işleminin önemi, (Şekil 1, sol üst).

ikamet kalp hücreleri, kan damarları ve SEM işleme öncesinde dolaşım hücrelerinin çıkarılması bütün kalp dokusu blok SEM az kayda değer olacaktır ilave ultra yapısal ayrıntılarını ortaya çıkarır. Her bir kollajen "payanda", örneğin, (Şekil 1, alt paneller) görünüşte düzenli aralıklarla hizalanmış ve sarkomer myofibril diktir. Bu düzenleme gerilme karşı kumaş gövdesi ve formu temin edilmesine yardımcı olur tekstil 'çözgü ve atkı' benzer kasılma ve gevşeme döngüleri sırasında uygulanan karşı etkili deformasyonlar, kalp yapısını korumak yardımcı olmak için uygundur.

fo: keep-together.within-page = "1"> Şekil 1
Şekil 1:. Bir Kullanılmayan İnsan Donör Kalpten elde edilen decellularized Sol Ventriküler Doku Ekstraselüler Matrix üç boyutlu Düzenlemenin Temsilcisi Taramalı Elektron Mikrografikleridir üst iki paneller, düşük büyütme (barlar = 500 mikron) en kesitte matris göstermek normal insan kalp dokusunun mimarisinin bir havadan görünümü sağlar. yüksek büyütmede, bir daha düzenli aralıklı myofibers için mekanik destek (orta sol ve sağ panel çubukları = 100 mikron ve 50 mikron, sırasıyla) sağlayan destekleyici liflerin tipik petek benzeri bir yapı gözlemleyebilirsiniz. Yakından incelenmesi üzerine, her 'petek' dik ikamet kardiyomiyositlere (sol alt ve sağ panel çubukları = sırasıyla 10 mm ve 5 um) birbirlerine süre ile paralel olarak düzenlenen liflerin oluşmaktadır.ttps: //www.jove.com/files/ftp_upload/54005/54005fig1large.jpg "target =" _ blank "> bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayınız.

yapısal bilgi sağlamasına ek olarak, hücresizleştirilmiş doku SEM yaralanma veya kardiyomiyopatinin zararlı olmayan formlara karşılık olarak hücre dışı matris değişiklikleri anlamlı, kalitatif olarak izin verir. Örneğin, bu teknik, en son sonrası enfarkte domuz kalp doku 43, hücre dışı matrislerin incelemek için kullanılmıştır. Bu büyük hayvan deney sırasında, kalp matris içinde değişiklikler çarpıcı sergiledi kalp yetmezliği, damar içi NRG-1β yönetimini alınan post-infarkt domuz için potansiyel bir terapötik olarak NRG-1 p GGF2 izoformunun etkinliğini değerlendirmek için özel olarak tasarlanmış post-infarkt hayvanların tedavi edilmemiş kalp dokulara göre. Bu sonuçlar daha sonra te 43 yayınlanmış edildi vechnique bu ilk, şans eseri keşif üzerine bina için değerli bir araç olarak kalmıştır. 2 tedavi edilmemiş ve NRG-1β ile tedavi edilen matrisler arasındaki şiddetli matris farklılıkları vurgulamak Bu çalışmanın seyri sırasında üretilen örnek mikrograflar, içerir Şekil.

şekil 2
Şekil 2:. İşlenmemiş ve NRG-1 β ile tedavi edilen Domuzlar Sol Ventrikül Ekstraselüler Matrix Temsilcisi Taramalı Elektron Mikrografikleridir NaOH yumuşatmadan sonra kesitte matris işlenmemiş sonrası miyokard infarktüsü liflerin düzenli mekansal düzenlemesini vurgular (post-MI) domuzlar (sol üst), post-MI NRG-1β ile tedavi edilen hayvanların (sağ üstte) karşılaştırıldı. boylam bakıldığında, işlenmemiş domuz matris NRG-1β ile tedavi edilen domuz matrisinin oysa kalın, mat benzeri bir görünüm (sol alt), sergilerlifler düzenli mekansal düzenlemesini (altta sağda) gösterir. Beyaz çubuk = 40 mikron (dört panel). Daha detaylı sonuçları ve rakamlar ilişkili yazıda 43 dahil edilmiştir. Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.

distrofik kalplerinde meydana matriks değişiklikleri Keşif ayrıca Duchenne kas distrofisi kardiyomiyopati (DMD) bir hayvan modelinde ilerlemesi geliştirmede ve niteliksel bilgiler sağlamıştır. MDX fareler, DMD yaygın olarak kullanılan bir fare modelinde, vahşi tip ve tespit ve NaOH tedaviden sonra SEM tarafından görüntülenen MDX kalpleri arasında önemli ve yaşa bağlı farklılıklar vardır. Şekil 3'te gösterildiği gibi, matris bileşenleri, normal farelere fonksiyonel distrofin göreli yoksun 6 haftalık MDX kalplerin nispeten normal idi. Daha interesting, hücre dışı matris kuruluş merkezinde DMD progresif doğasını gösterir, açık bir şekilde bozulduğu veya daha küçük MDX farelere kıyasla daha büyük distrofin eksikliği olan farelerde muhtemelen bozulmuş edildi. Mdx fareler nedeniyle onlar çok daha hafif kardiyomiyopati fenotip ve DMD 48 insanlarda daha yavaş mortalite oranı sergileyen gerçeğine insan DMD kardiyomiyopati kötü temsilcisini çünkü böyle derin farklılıklar beklenen değildi. Bu kalp fonksiyonları bile küçük değişiklikler Bu yazıda sunulan görselleştirme tekniği kullanılarak yakalanabilir düşündürmektedir. Bu metodoloji de yok şu anda aynı şekilde mevcut fibroz hedefleme tedaviler var olan diğer organların, hücre dışı matrislerin, kolayca adapte olmalıdır.

Şekil 3,
Şekil 3: Sol Ven Temsilcisi Taramalı Elektron MikrografikleridirMDX farelere karşı yabani-türde olduğundan ventriküler Ekstrasellüler matris. vahşi tip farelerde sol ventriküler kardiyak matrisi (üst panel) için diğer türler gözlenene benzemektedir. 6 haftalıkken de MDX farelerde matris görünüm (orta panel) her ne kadar biraz "hafif", nispeten normal görünüyor. Tersine, eski mdx farelerin kalp matris distrofik süreci niteliksel sabit NaOH-yumuşatılmış dokularda SEM kullanılarak yakalanabilir belirten, (alt panel) ciddi dejenere görünür. Beyaz çubuk = 10 mikron (her üç panel). Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Kesit yüzey hazırlama protokolü sırasında en kritik adımdır. kritik nokta Kurutma işlemi tanıtıldı kadar ince yapısını korumak için, susuz örnekleri her zaman% 100 etanol içinde kalmalıdır. Bu nedenle örneklerin dilimleme örnekleri sığ bir çanak etanol submersed ise EM muayene için yüzeyler yapılmalıdır elde etmek. Açıkta kalan yüzeyi, temas ya da daha sonraki işlem esnasında problanmış değildir de önemlidir. protokol SEM bölümü ne olursa olsun örnek kökenli temel elektron mikroskobu sorun giderme gerektirebilir, ancak hiçbir önemli değişiklikler, benzer matris gözlemler için diğer doku tiplerine Bu tekniğin uygulanması için öngörülmüştür. lifli örneklerinden derlenen Görüntüler ( "şarj") kötü şarj dağılımı ile getirilen eserler yatkındır. Şarj sorunlar genellikle, tarama hızının artması gerilimi hızlanan (de denir bekleme süresini azaltarak minimize edilebilir) Ve elektron ışınının nokta boyutunu küçültme. Birkaç taramalar entegrasyonu daha yavaş, daha kaliteli tek bir tarama görüntüde mevcut şarj eserler olmadan gürültü kalitesi karşılaştırılabilir sinyalin bir görüntü üretecek şarj eserler önlemek için yeterince hızlı bir şekilde toplandı.

Bu teknik doğası gereği nitel ve böylece kantitatif ölçümlerin (örneğin, Masson trikrom veya picoserius kırmızı boyama, hidroksiprolin içeriği, kütle spektrometresi ve RNASeq ölçümü) görüntülenmiştir yapısal farklılıklar çeşitli gelişimsel ya da hastalık durumlarıyla ilgili olabilir nasıl anlamak için birlikte değerlendirildiğinde tamamlar. hücre dışı matriks vücuttaki hemen hemen her organın önemli bir bileşeni olduğundan, ancak bu sınırlamaya rağmen, yöntem, özellikle kardiyak fibrozis ötesinde önemlidir. kalbinde, kalp matris def sürekli kompleksi ile karakterize pompalama germe, büküm, ve kritik mekanik destek sağlarOrtalama insan ömrü boyunca meydana gelen> 2,5 milyar atım için oksijenli ve oksijenden arındırılmış kan 49 optimal giriş ve akışını kazandıran ormation. Kalp dokusunun aşırı düşük rejeneratif kapasitesi göz önüne alındığında, bağlamsal ihtiyaçlara göre yenilenmiş olabilir dinamik bir matris mantıklı mantıklı. hayal sadece hafif bir streç ile, bir ters fibrozis sınırlarken, iyileşme sürecini geliştirmek için matris biçimlenme işlemek için terapötik hedefler olduğu konusunda sonucuna olabilir. en azından gösterdi tekniğin uygulanması kalp matrisinin sofistike ve güzelliği sergiliyor ve bunu yaparken de daha işlevsel önemini vurgulamaktadır.

nicel önlemlerin değeri hemen hemen tüm deneysel çalışmaların değerlendirilmesi için bir temel ilke iken, teknik burada standart matris ölçümleri tamamlayacak sadece bu nitel ultrastrüktürel varyasyonlarını ortaya çıkarmak için kullanılabilir vurgulananama niteliksel değişiklikleri altını temel biyokimyasal değişiklikler anlamak için alternatif soruşturma yolları önerebilir. Bu tekniğin gelecekte beklenen uygulamalar matris değişiklikleri hastalık sürecinin bir bileşeni olan diğer organları incelemek için onun kalp hastalığı modelleri ve matris değişiklikleri değerlendirmek için tamamlayıcı bir araç olarak insan dokularında kullanımı yanı sıra genişlemiş kullanımı vardır.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Calcium Chloride Electron Microscopy Sciences 12340 100 g
Carbon Adhesive Electron Microscopy Sciences 12664 30 g
Carbon Adhesive Tabs Electron Microscopy Sciences 77825 order to fit stubs
Double Edge Razor Blades Stainless Steel Ted Pella, Inc 121-6 250/pkg
Ethanol Electron Microscopy Sciences 15055 450 ml
Gluteraldehyde, 50% Solution Electron Microscopy Sciences 16310 EM grade, distillation purified
Hydrochloric Acid Electron Microscopy Sciences 16760 or 16770 100 ml
Monosodium Phosphate NaH2PO4 Sigma-Aldrich S9251-250G 250 g
Osmium Tetroxide Electron Microscopy Sciences 19100 1 g
Silver Conductive Adhesive Electron Microscopy Sciences 12686-15 15 g
Sodium hydroxide (NaOH) Sigma-Aldrich S8045-1KG 1 kg
Sodium Phosphate Dibasic (Na2HPO4) Sigma-Aldrich S3264-500G 500 g
Tannic Acid, 5% Aqueous  Electron Microscopy Sciences 21702-5 500 ml
Trihydrate Sodium Cacodylate Electron Microscopy Sciences 12300 100 g
Gold-palladium Alloy or Gold Refining Systems, Inc.  varies specific to the sputter coater make and model
Critical Point Dryer Electron Microscopy Sciences 850
Plain Wooden Applicators Fisher Scientific 23-400-102
Quanta 250 Environmental SEM FEI Q250 SEM
Sputter Coater Cressington Scientific Instruments Ltd. Model 108
Alluminum SEM Sample Stubs Electron Microscopy Sciences 75220-12 specific to the miscroscope

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Robinson, T. F., Cohen-Gould, L., Factor, S. M., Eghbali, M., Blumenfeld, O. O. Structure and function of connective tissue in cardiac muscle: collagen types I and III in endomysial struts and pericellular fibers. Scanning Microsc. 2, 1005-1015 (1988).
  2. Robinson, T. F., Geraci, M. A., Sonnenblick, E. H., Factor, S. M. Coiled perimysial fibers of papillary muscle in rat heart: morphology, distribution, and changes in configuration. Circ Res. 63, 577-592 (1988).
  3. Lunkenheimer, P. P., et al. The myocardium and its fibrous matrix working in concert as a spatially netted mesh: a critical review of the purported tertiary structure of the ventricular mass. Eur J Cardiothorac Surg. 29 Suppl 2, S41-S49 (2006).
  4. Wu, K. C., et al. Late gadolinium enhancement by cardiovascular magnetic resonance heralds an adverse prognosis in nonischemic cardiomyopathy. J Am Coll Cardiol. 51, 2414-2421 (2008).
  5. Kramer, C. M. The expanding prognostic role of late gadolinium enhanced cardiac magnetic resonance. J Am Coll Cardiol. 48, 1986-1987 (2006).
  6. Park, S., et al. Delayed hyperenhancement magnetic resonance imaging is useful in predicting functional recovery of nonischemic left ventricular systolic dysfunction. J Card Fail. 12, 93-99 (2006).
  7. Weber, K. T. Cardiac interstitium in health and disease: the fibrillar collagen network. J Am Coll Cardiol. 13, 1637-1652 (1989).
  8. Jalil, J. E., Janicki, J. S., Pick, R., Abrahams, C., Weber, K. T. Fibrosis-induced reduction of endomyocardium in the rat after isoproterenol treatment. Circ Res. 65, 258-264 (1989).
  9. Fidzianska, A., Bilinska, Z. T., Walczak, E., Witkowski, A., Chojnowska, L. Autophagy in transition from hypertrophic cardiomyopathy to heart failure. J Electron Microsc (Tokyo). 59, 181-183 (2010).
  10. Lopez, B., Querejeta, R., Gonzalez, A., Larman, M., Diez, J. Collagen cross-linking but not collagen amount associates with elevated filling pressures in hypertensive patients with stage C heart failure: potential role of lysyl oxidase. Hypertension. 60, 677-683 (2012).
  11. Gabbiani, G., Ryan, G. B., Majne, G. Presence of modified fibroblasts in granulation tissue and their possible role in wound contraction. Experientia. 27, 549-550 (1971).
  12. Lorell, B. H. Diastolic dysfunction in pressure-overload hypertrophy and its modification by angiotensin II: current concepts. Basic Res Cardiol. 87 Suppl 2, 163-172 (1992).
  13. Friedrich, S. P., et al. Intracardiac angiotensin-converting enzyme inhibition improves diastolic function in patients with left ventricular hypertrophy due to aortic stenosis. Circulation. 90, 2761-2771 (1994).
  14. Rosker, C., Salvarani, N., Schmutz, S., Grand, T., Rohr, S. Abolishing myofibroblast arrhythmogeneicity by pharmacological ablation of alpha-smooth muscle actin containing stress fibers. Circ Res. 109, 1120-1131 (2011).
  15. Yue, L., Xie, J., Nattel, S. Molecular determinants of cardiac fibroblast electrical function and therapeutic implications for atrial fibrillation. Cardiovasc Res. 89, 744-753 (2011).
  16. Rohr, S. Myofibroblasts in diseased hearts: new players in cardiac arrhythmias? Heart Rhythm. 6, 848-856 (2009).
  17. Coen, M., Gabbiani, G., Bochaton-Piallat, M. L. Myofibroblast-mediated adventitial remodeling: an underestimated player in arterial pathology. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 31, 2391-2396 (2011).
  18. Brilla, C. G., Janicki, J. S., Weber, K. T. Cardioreparative effects of lisinopril in rats with genetic hypertension and left ventricular hypertrophy. Circulation. 83, 1771-1779 (1991).
  19. Youn, H. J., et al. Relation between flow reserve capacity of penetrating intramyocardial coronary arteries and myocardial fibrosis in hypertension: study using transthoracic Doppler echocardiography. J Am Soc Echocardiogr. 19, 373-378 (2006).
  20. Warnes, C. A., Maron, B. J., Roberts, W. C. Massive cardiac ventricular scarring in first-degree relatives with hypertrophic cardiomyopathy. Am J Cardiol. 54, 1377-1379 (1984).
  21. Maron, B. J., Wolfson, J. K., Epstein, S. E., Roberts, W. C. Intramural ('small vessel') coronary artery disease in hypertrophic cardiomyopathy. J Am Coll Cardiol. 8, 545-557 (1986).
  22. Olivotto, I., et al. Microvascular function is selectively impaired in patients with hypertrophic cardiomyopathy and sarcomere myofilament gene mutations. J Am Coll Cardiol. 58, 839-848 (2011).
  23. Beltrami, C. A., et al. Structural basis of end-stage failure in ischemic cardiomyopathy in humans. Circulation. 89, 151-163 (1994).
  24. Factor, S. M., et al. Pathologic fibrosis and matrix connective tissue in the subaortic myocardium of patients with hypertrophic cardiomyopathy. J Am Coll Cardiol. 17, 1343-1351 (1991).
  25. Waller, T. A., Hiser, W. L., Capehart, J. E., Roberts, W. C. Comparison of clinical and morphologic cardiac findings in patients having cardiac transplantation for ischemic cardiomyopathy, idiopathic dilated cardiomyopathy, and dilated hypertrophic cardiomyopathy. Am J Cardiol. 81, 884-894 (1998).
  26. Schaper, J., Lorenz-Meyer, S., Suzuki, K. The role of apoptosis in dilated cardiomyopathy. Herz. 24, 219-224 (1999).
  27. de Leeuw, N., et al. Histopathologic findings in explanted heart tissue from patients with end-stage idiopathic dilated cardiomyopathy. Transpl Int. 14, 299-306 (2001).
  28. Yoshikane, H., et al. Collagen in dilated cardiomyopathy--scanning electron microscopic and immunohistochemical observations. Jpn Circ J. 56, 899-910 (1992).
  29. Marijianowski, M. M., Teeling, P., Mann, J., Becker, A. E. Dilated cardiomyopathy is associated with an increase in the type I/type III collagen ratio: a quantitative assessment. J Am Coll Cardiol. 25, 1263-1272 (1995).
  30. Pearlman, E. S., Weber, K. T., Janicki, J. S., Pietra, G. G., Fishman, A. P. Muscle fiber orientation and connective tissue content in the hypertrophied human heart. Lab Invest. 46, 158-164 (1982).
  31. Huysman, J. A., Vliegen, H. W., Van der Laarse, A., Eulderink, F. Changes in nonmyocyte tissue composition associated with pressure overload of hypertrophic human hearts. Pathol Res Pract. 184, 577-581 (1989).
  32. Rossi, M. A. Pathologic fibrosis and connective tissue matrix in left ventricular hypertrophy due to chronic arterial hypertension in humans. J Hypertens. 16, 1031-1041 (1998).
  33. Lopez, B., Gonzalez, A., Querejeta, R., Larman, M., Diez, J. Alterations in the pattern of collagen deposition may contribute to the deterioration of systolic function in hypertensive patients with heart failure. J Am Coll Cardiol. 48, 89-96 (2006).
  34. Krayenbuehl, H. P., et al. Left ventricular myocardial structure in aortic valve disease before, intermediate, and late after aortic valve replacement. Circulation. 79, 744-755 (1989).
  35. Schwarz, F., et al. Myocardial structure and function in patients with aortic valve disease and their relation to postoperative results. Am J Cardiol. 41, 661-669 (1978).
  36. Hein, S., et al. Progression from compensated hypertrophy to failure in the pressure-overloaded human heart: structural deterioration and compensatory mechanisms. Circulation. 107, 984-991 (2003).
  37. Brooks, W. W., Shen, S. S., Conrad, C. H., Goldstein, R. H., Bing, O. H. Transition from compensated hypertrophy to systolic heart failure in the spontaneously hypertensive rat: Structure, function, and transcript analysis. Genomics. 95, 84-92 (2010).
  38. O'Hanlon, R., et al. Prognostic significance of myocardial fibrosis in hypertrophic cardiomyopathy. J Am Coll Cardiol. 56, 867-874 (2010).
  39. Green, J. J., Berger, J. S., Kramer, C. M., Salerno, M. Prognostic value of late gadolinium enhancement in clinical outcomes for hypertrophic cardiomyopathy. JACC Cardiovasc Imaging. 5, 370-377 (2012).
  40. Frankel, K. A., Rosser, R. J. The pathology of the heart in progressive muscular dystrophy: epimyocardial fibrosis. Hum Pathol. 7, 375-386 (1976).
  41. Otto, R. K., Ferguson, M. R., Friedman, S. D. Cardiac MRI in muscular dystrophy: an overview and future directions. Phys Med Rehabil Clin N Am. 23, 123-132 (2012).
  42. Finsterer, J., Stollberger, C. The heart in human dystrophinopathies. Cardiology. 99, 1-19 (2003).
  43. Galindo, C. L., et al. Anti-remodeling and anti-fibrotic effects of the neuregulin-1beta glial growth factor 2 in a large animal model of heart failure. J Am Heart Assoc. 3, e000773 (2014).
  44. Caulfield, J. B., Borg, T. K. The collagen network of the heart. Lab Invest. 40, 364-372 (1979).
  45. Ohtani, O. Three-dimensional organization of the connective tissue fibers of the human pancreas: a scanning electron microscopic study of NaOH treated-tissues. Arch Histol Jpn. 50, 557-566 (1987).
  46. Rossi, M. A., Abreu, M. A., Santoro, L. B. Images in cardiovascular medicine. Connective tissue skeleton of the human heart: a demonstration by cell-maceration scanning electron microscope method. Circulation. 97, 934-935 (1998).
  47. Icardo, J. M., Colvee, E. Collagenous skeleton of the human mitral papillary muscle. Anat Rec. 252, 509-518 (1998).
  48. McGreevy, J. W., Hakim, C. H., McIntosh, M. A., Duan, D. Animal models of Duchenne muscular dystrophy: from basic mechanisms to gene therapy. Dis Model Mech. 8, 195-213 (2015).
  49. Buckberg, G., Hoffman, J. I., Mahajan, A., Saleh, S., Coghlan, C. Cardiac mechanics revisited: the relationship of cardiac architecture to ventricular function. Circulation. 118, 2571-2587 (2008).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics