Sıvı Kromatografi / Kütle Spektrometresi zehirlidir pufferfish Geliştirilmiş Polimeraz Zincir Reaksiyonu-kısıtlama Parça Uzunluk Polimorfizmi Genotiplemesi

Genetics
 

Summary

sıvı kromatografisi / kütle spektrometresi ile pufferfish türleri genotipleme için geliştirilmiş bir polimeraz zincir reaksiyonu restriksiyon parça uzunluk polimorfizm yöntemi tarif edilmektedir. Ters-faz silis yekpare kolonu sindirilmiş amplıkonları ayırmak için kullanılır. Bu yöntem, baz bileşimi tanımlamak için yararlıdır oligonükleotidlerin Monoizotopik kitleleri aydınlatmak olabilir.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Miyaguchi, H. Improved Polymerase Chain Reaction-restriction Fragment Length Polymorphism Genotyping of Toxic Pufferfish by Liquid Chromatography/Mass Spectrometry. J. Vis. Exp. (115), e54402, doi:10.3791/54402 (2016).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

bir polimeraz zincir reaksiyonu (PCR) -restriction parça uzunluk polimorfizm (RFLP), sıvı kromatografisi / elektrosprey iyonizasyon kütle spektrometrisi (LC / ESI-MS) ile, toksik pufferfish türleri genotipleme için yöntemin geliştirilmiş bir versiyonu açıklanmıştır. DNA izolasyonu bir silis membran bazlı DNA ekstraksiyon kiti kullanılarak gerçekleştirilir. Bir deterjan içermeyen PCR tamponu kullanılarak PCR amplifikasyonu sonra restriksiyon enzimleri Reaksiyon çözeltisi arıtılması olmaksızın çözeltiye ilave edilir. Ters-faz silis yekpare kolonu ve bir Fourier değiştirilmiş Kingdon'un tutarak analiz sahip olan yüksek çözünürlüklü kütle spektrometresi, sırasıyla, ayırma ve saptama için kullanılır dönüşümü. 400 mM 1,1,1,3,3,3-heksafluoro-2-propanol 'den ibaret hareketli faz, 15 mM trietilamin (pH 7.9) ve metanol, 0.4 ml / dk'lık bir akış oranında verilmektedir. LC / ESI-MS analizi için devir süresi sütun dengeleme dahil 8 dakikadır. Bir izotop dağıtım modeli o sahip Dekonvolüsyonun yazılımoligonükleotidin f kütle spektrumu karşılık gelen monoizotopik kütle hesaplamak için kullanılır. Oligonükleotidler (aralık 26-79 nükleotid) analizi için, kitle doğruluk oldu 0.62 ± 0.74 ppm (n = 280) ve mükemmel doğruluk ve hassasiyet bir kilit kütle standardı kullanılmadan 180 saat boyunca devam etti.

Introduction

Kütle spektrometrisi (MS) iyonizasyon 1,2 için kullanılan nükleik asit, matris destekli lazer çıkarma / iyonlaşma (MALDI) ile elektrosprey iyonizasyon (ESI) arasında hızlı ve güvenli bir tanımlama için kabul edilen bir teknolojidir. MALDI tekniği genellikle bir süre-of-flight (TOF) analiz ile birleştirilir; Ancak, MALDI-TOF MS uygulaması kısa oligonükleotidler ile sınırlıdır (~ 25 nükleotid (nt)) sonraki parçalanma, adükt oluşumu ve düşük iyonlaşma verimliliği 1,2 sayesinde. Bunun aksine, ESI uzun oligonükleotidler (> 100 nt) için geçerlidir, ancak birden çok yük durumları ([M-NH] n-) biomacromolecules aynı anda üretilir ve bu nedenle de bir analit kütlesi üst aşabilir yüklü iyonlar spektrometre m / z aralığı sınırı. Bu karşılık gelen kütle içine kıvrık spektrumları yorumlanması, yani bir şarj durumu serisinin dönüşümünü gerektirirDekonvolüsyonun yoluyla.

Küçük molekül kütlesi ölçümü, monoizotopik kütle zirve, yani söz konusu olduğunda, her bir elemanın, sadece en yaygın izotop ihtiva eden bir molekül kütlesi en bol ve 3 doğal görülmektedir. Molekül ağırlığı arttıkça, daha yüksek, m / z ve monoizotopik tepe izotopik dağıtım değişimleri taban gürültü 3-5 kararmaktadır. Monoizotopik pik artık kDa 3, 10 daha büyük kitleler için tespit sonra, ortalama moleküler ağırlıklı monoizotopik kütle 5 yerine ölçülmesi için kullanılır. Bu gibi durumlarda, tek tek zirvelerin her biri 1 Da tarafından ayrıldığı izotopik dağılımı sadece gözlemlenebilir zaman TOF, Fourier Kingdon'un tutarak analiz 6 değiştirilmiş dönüşüm ya da bir Fourier dönüşümü iyon siklotron rezonans gibi yüksek çözünürlüklü kütle analizörü analiz analizi için kullanılır. Ancak, en bol zirve sometimes ortalama moleküler kütlesi 5 ile tutarlı değildir. Bu sorunlar doğru analitin belirlenmesi için zorluk yol açabilir.

Kararlı izotopların doğal bolluk içinde değişim ve ortalama molekül kütlesi belirlenmesinde zorluklar göz önüne alındığında, Monoizotopik kitle ölçüm biyomoleküllerin 3,4 kitle karakterizasyonu için idealdir. Pratikte, monoizotopik pik uygulanıp olup olmadığını, monoizotopik kütle model analit 4,7-10 hesaplanan teorik bir gözlenen izotopik dağılım modelini karşılaştırarak tahmin edilebilir. Uydurma algoritması 8 şimdi sahipli yazılım içine dahil edilmiştir.

ESI-MS bağlamında, bir DNA çift yönlü, saflaştırma ve tuzsuzlaştırma ayrışma nedeniyle iyon bastırılması ve adükt oluşumu 2,10-14 için iyonizasyon başarısızlığını önlemek için doğrudan ölçümü için gereklidir. Bu prosedürler troubl olanesome Ancak tam otomatik analitik sistemler patojenlerin 15-20 tespiti için polimeraz zincir reaksiyonu (PCR), numune hazırlama ve ESI-MS ile ilgili ticari olarak geliştirilmiştir. Başka bir yaklaşım ayrılması için sıvı kromatografisi (LC) sunuyor. LC eşlik eden maddelerden analitlerin bir on-line olarak ayrılmasına sunar ve 21,22 İyonizasyon öncesinde laboratuarda örnek hazırlama gerektirmez. Bununla birlikte, MS-uyumlu bir mobil faz kullanılarak nükleik asit ayrılması bu tür nükleotidlerin polianyonik doğası nedeniyle ilaç, peptidler ve proteinler gibi pek çok başka bileşikler için daha zordur. LC / ESI-MS en başarılı örnekler, ters fazlı LC iyon çifti kullanılmasını içerir. 1,1,1,3,3,3-heksafluoro-2-propanol, hareketli aşamada (HFIP) -triethylamine (TEA) -metanol ilk Apffel ve arkadaşları tarafından önerilmiştir. Ayırma ve kısa oligonükleotitler 23 tespit edilmesi için. differentiatio LC / ESI-MS genotipleme Uygulamapatojen türleri, tek nükleotid polimorfizm ve kısa tandem tekrarı n uzun oligonükleotitler 1,21,24-33 ayırabilen bir kılcal polimer yekpare kolonu kullanılarak rapor edilmiştir.

Japonya ve Amerika Birleşik Devletleri'nde, ciddi gıda zehirlenmesi hatalı tanımlama ve puffer uygunsuz hazırlanması nedeniyle oluştu ve bu puffer dağıtım ve hazırlık kesinlikle gıda güvenliği mevzuatı 34,35 tarafından kontrol edilir gerçeğine rağmen. Ayrıca, pufferfish ekstresi kullanarak kasıtlı cinayet Japonya'da 36 meydana geldi. Bu nedenle, pufferfish türlerin farklılaşması kamu sağlığı ve adli soruşturma açıdan hem de gereklidir. Takifugu rubripes puffer diğer türlü çok daha pahalı olduğu için, ayrıca, bir farklılaşma kabiliyeti de gıda dolandırıcılık araştırmaların kapsamında gereklidir.

Burada, m belirlemek için detaylı bir yöntemters-fazlı silika yekpare kolon ve yüksek çözünürlüklü kütle spektrometresi kullanılarak LC / ESI-MS ile bir PCR ürününün onoisotopic kütlesi tarif edilmektedir. Özellikle, bu yaklaşım MS kullanılarak hayvan türlerinin farklılaşması için ilk örnektir PCR restriksiyon parça uzunluk polimorfizm (RFLP) ile 37 kullanımına dayanmaktadır toksik pufferfish türlerinin farklılaşmasını izin vermek için geliştirilmiştir.

Protocol

1. DNA ekstraksiyonu

Not: jel elektroforez ve LC / ESI-MS gibi DNA ekstraksiyonu ve PCR sonrası sınavları için ayrı bir oda kullanın. tampon 1 (ihtiva guanidin hidroklorid) ve DNA ekstraksiyon kiti protokolüne göre, yıkama tamponu 2 (guanidin hidroklorid içeren olan) yıkama etanol ekleyin. Balık örnekleri Japonya'da balık toptancılar ve perakende pazarlar elde edilmiştir.

  1. 0.5 ml ya da 1.5 ml mikrosantrifüj tüpü içinde balık doku 30-50 mg yerleştirin. (Fin ve cilt için hariç), bir mikro-spatula kullanılarak doku Squash.
    Not: fin durumunda, ıslatılması için 0.5 ml'lik bir tüp kullanın.
  2. liziz tamponu 180 ul ve kısaca proteinaz K ve vorteks 40 ul ekle. 2 saat veya gece boyunca bir blok ısıtıcı üzerinde 56 ° C'de inkübe edin. kısaca inkübasyon sırasında her 15 dakikada bir vorteks ile karıştırın.
    Not: Tam lizis gerekli değildir.
  3. 13.000 x g'de 5 dakika boyunca santrifüje. Santrifüj işleminden sonra, eğer küçük amoyağ unt karaciğer gibi bir yağlı örnek durumunda yüzey üzerinde var, atın. yeni bir 1.5 ml mikrosantrifüj tüp süpernatant aktarın.
  4. guanidin hidroklorür içeren kaotropik tampon 200 ul ekleyin ve vorteks karıştırın. Yine vorteks etanol (% 99.5) ve karışımı 200 ul ekle.
  5. 2 ml'lik bir toplama tüpü içinde yerleştirilmiş spin kolon içine karışımı aktarın. 13.000 x g'de 1 dakika boyunca santrifüj. flow-through atın.
    Dikkat: Guanidin çamaşır suyu ile son derece reaktif bileşikler oluşturabilir çünkü atık çamaşır suyu katmayın.
  6. 13.000 x g'de 1 dakika için yıkama tamponu 1 (ihtiva guanidin hidroklorür) ve santrifüj 500 ul ekle. akışını ve toplama tüpü atın.
  7. kiti ile sağlanan yeni 2 ml toplama tüpü spin kolon yerleştirin. 20.000 x g'de 3 dakika boyunca yıkama tamponu 2 ile santrifüj 500 ul ekle. Flow-through ve toplama tüpü atın. Yeni spin kolon aktarın1.5 ml mikrosantrifüj tüp.
  8. Pipet spin kolon membranın merkezi elüsyon tamponu 200 ul. 1 dakika sonra, 6000 x g, 1 dakika süre ile santrifüjlenir.
  9. Pipet 50 tek kullanımlık bir UV küvete eluat ul 220-300 nm'de, sıyırma sıvısının UV spektrumu ve bir spektrofotometre kullanılarak 260 nm'de absorbans ölçümü.
  10. 260 nm'de zirve ile DNA'nın UV spektrumu edin. basit bir denklem kullanılarak yaklaşık DNA konsantrasyonu hesaplamak "DNA konsantrasyonu (ng / ml) 260 nm x 50 absorbans =".
    Not: puffer kanatlarına elde Tipik DNA konsantrasyonu 63 ± 30 ng / | il (n = 20) 'dir.
  11. DNA konsantrasyonu daha yüksek 10 ng / | il ise, / ml, 5 ng Tris-EDTA (TE) tampon çözeltisi (pH 8) ile birlikte DNA örnekleri seyreltin.
  12. -20 ° C'de örnek Mağaza ya da PCR büyütmesi (bölüm 2) geçin.

2. PCR

  1. Her extr için 25 ul PCR kurmakDNA örneği, pozitif kontrol kirlenmesini önlemek için temiz bir bankta Tablo 1 ve 2'ye uygun olan buz üzerinde ve negatif kontrol (DNA yerine örnek ultrapurified su) (TE tamponu pH 8.0 içinde, hedef dizisine sahip olan oligonükleotid sentezlenmiş 0.2 um) vermiştir.
    Not: Kolay kullanım için, şablon DNA olmadan tüm reaktifleri içeren kokteyl yeterli miktarda yapmak ve dağıtmak. PCR ürününün 3 'A çıkıntılar eklenmesini önlemek için DNA polimeraz olan redaksiyon aktivitesini kullanın.
  2. Tablo 3'te gösterilen döngü programı kullanılarak, bir termal döngü PCR yürütmek.

3. Enzimatik Sindirim

  1. PCR çözeltisi 100 mM Tris-HCl (pH 7.5), 100 mM MgCl2, 10 mM ditiotreitol ve 500 mM NaCl içeren çözeltinin 2 ul ekle.
  2. her biri, sınır enzimi 1 ul (DRA I ve Msp I) ekleyin ve yavaşça karıştırın. th 37 ° C sıcaklıkta 30 dakika boyunca inkübe edinErmal cycler.
  3. Msp I tarafından üretilen yapışkan ucunu doldurur diğer DNA polimeraz, aktive etmek için 72 ° C'de 5 dakika süreyle inkübe
  4. İsteğe bağlı: 15 3.33 (ağırlıkça%) bir çapraz bağ oranı (% C, bisakrilamid yüzdesi) ve poliakrilamid jel konsantrasyonu (% T) ile poliakrilamid jel elektroforez ile reaksiyon çözeltisinin, her 2.5 ul analiz (% ağırlık / hacim) 38. floresan DNA leke kullanılarak jel Leke ve kehribar ekranını kullanarak bir mavi ışık transilluminator'de çift iplikli DNA gözlemleyin.
  5. Analitik sütun hasara sebep olabilir, tıkanmayı önlemek için 0.2-0.5 um santrifüj filtre cihazı ile, reaksiyon çözeltisi filtre.
  6. analize kadar -20 ° C'de, bir şevli polipropilen şişe ve saklamak için filtrat aktarın.

4. LC / ESI-MS analizi

  1. HFIP 67.2 g (yaklaşık 42 mL) ve bir 1 L şişe içinde TEA, 1.52 gr (yaklaşık 2.0 mi) tartılır. ultrapurified su (LC / MS gra 955 ml ilave edilirReaktifler tamamen eriyene kadar de) ilave edin ve manyetik bir karıştırıcı kullanılarak. çözeltisinin bir bölümü almak ve pH kontrol (7.85 ve 7.95 arasında, ideal pH = 7.9) bir pH metre kullanılarak.
    Not: metal iyonları ile kirlenmesini önlemek için şişeye kısım iade etmeyin. pH değildir 7.9 ise, pH'ı ayarlamak ve yeniden pH ölçmek için HFIP veya çay küçük bir miktar ilave edin.
  2. buharlaşmasını önlemek için (ev kullanımı için) doğrudan soğutma taşınabilir buzdolabı kullanarak şişe soğutma sıvı kromatograf A hattına şişe bağlayın. B hattına metanol ile dolu bir şişe bağlayın
  3. koruma sütunu ve sıvı kromatografı analitik kolon (2.0 x 50 mm, mezogözeneklere size = 30 nm) bağlayın. Sütunları dengelemek için ilk mobil faz (% 95 A ve% 5 B) akmaya başlar.
  4. Kalibran 39 olarak 0.5 mg / ml sodyum trifloroasetat (pH 3.5) hazırlayın.
    1. Trifluoroasetik ac 50 mg (yaklaşık 34 ul) tartılırBir beher id.
    2. ultrapurified 30 mL su ilave edin ve bir pH ölçer yardımıyla, 10 mM sodyum hidroksit ile pH 3.5'e titre edilir.
    3. ultrapurified su ile 50 ml'ye kadar doldurun. 50 ml asetonitril (LC / MS grade) ilave et ve karıştır.
    4. çalışma çözeltisinin bir kısmını almak ve oda sıcaklığında saklayın. 4 ° C'da, çözelti geri kalanını saklayın.
  5. aşağıdaki gibi C-tuzak azot basıncını azaltın.
    Not: Son Fourier, bozulmamış protein analizi için uygun olan kütle spektrometre, dönüşümü basıncını kontrol etmek için kontrol yazılımı.
    1. kütle spektrometresi sol üst kapağını çıkarın. C-tuzak valf sol ön planda köşesinde yer almaktadır.
    2. kontrol yazılımı alet durum penceresinde yüksek vakum basınç değerini kontrol edin.
      Not: değer tipik olarak, 3 x 10 -8 bar.
    3. Kilidi açmak ve yüksek vakum basın azaltmak amacıyla çok yavaş Düğmeyi saat yönünün tersine çevirmek için düğmeyi çekin1/3 (tipik olarak 1 x 10 -8 bar) ure. belirtilen basınç gecikmeli bir şekilde yavaş yavaş değişmelidir. Alçak basınç hakkında uyarı mesajını görmezden. kilitlemek için düğmeyi itin.
    4. güvenliği için üst kapağı geri yükleyin.
  6. Sodyum trifloroasetat 39 kullanılarak kütle spektrometresi ayarlayın.
    Not: Günlük kitle kalibrasyon bu protokol ile değiştirilebilir, ancak üretici tarafından önerilen önerilen kalibrasyon Bu kalibrasyon öncesinde tamamlanmış olması gerekir.
    1. aşağıdaki gibi tarama parametreleri ve ayar yazılımı enstrüman kontrol kutusu ısıtmalı ESI kaynak parametrelerini ayarlayın: Tarama tipi tam MS; tarama aralığı m / z 500-4,000; parçalanma (in-kaynak çarpışma kaynaklı ayrılma (CID) gerilim 60 eV, polarite negatif, kılıf gaz akış hızı 5;; aux gaz akış hızı 0; süpürme gazı otomatik kazanç kontrolü (AGC) 1 x 10 6, maksimum enjekte süresi 50 msn hedef hızı 0 akış, gerilimi sprey 3 kV kılcal sıcaklık 320 ° C; S lens radyofrekans (RF) seviyesi 100; Isıtıcı sıcaklığı 30 ° C.
      1. Negatif iyon girişi listesi m / z 792,85908, 1064,80870, 1336,75832, 1608,70794, 1880,65755, 2152,60717, 2424,55679, 2696,50640, 2968,45602, 3376,38045 olarak izlenecek.
    2. kütle spektrometresi (pozisyon B) arayüzüne yakın ısıtılmış ESI probu hareket ettirin. prob ve bir boru ile bir şırınga bağlayın.
    3. Gömülü şırınga pompası kullanılarak 10 ul / dk'lık bir akış hızında, sürekli kalibrant infüze. Özelleştirilmiş kalibrasyon tablosunda sadece 6 alt kitle iyonları (m / z 792,85908-2152,60717) kontrol edin.
      1. sinyallerin yoğunluğu stabilize edildikten sonra kalibrasyon ile devam edin. Kalibrasyon sonra, sadece altı yüksek kütle iyonları (m / z 1.880,65755-3376,38045) kontrol ve kalibrasyon ile devam edin. başarısızlığı önlemek için bir kerede tüm iyonları kullanılarak kalibre kaçının.
  7. ÖDENEK probu taşı0.4 ml / dk (pozisyon D) bir akış hızı için te konumu nötr bir metal boru ile sıvı kromatografı bağlanabilir.
  8. aşağıdaki gibi ayar yazılımı enstrüman kontrol kutusu ısıtmalı ESI kaynak parametrelerini ayarlayın: kılıf gaz akış hızı 50; aux gaz akış hızı 15; gaz akış hızı 1 süpürme; gerilimi 2.5 kV sprey; kılcal sıcaklığı 350 ° C; S-lens RF seviyesi 100; Isıtıcı sıcaklığı 350 ° C'dir.
  9. enstrümantal ayar penceresinde kütle spektrometresi ayarlayın edinimi parametreleri aşağıdaki gibi: yöntem süresi 8 dakika; vana, kütle spektrometresi 3,5-6 dakika, 0-3,5 ve atık 6-8 dk aktarma; 6 dk çalışma zamanı 3.5; negatif polarite; Kaynak CID geriliminin 15.0 eV olarak; microscans 3; Nominal çözünürlük gücü (m / z 200) 140000; AGC hedef 1 x 10 6; Maksimum iyon süresi 50 msn; taramaları 1 sayısı; tarama aralığı m / z 700-3,500; spektrum veri türü profili.
  10. sıvı kromatografı Set parametreleri aşağıdaki gibi: kolon fırını sıcaklığı 20 ° C; sample tepsi sıcaklığı 10 ° C; gradyan programı 0-0.5 dakika% 5 B, 0.5-1 dakika% 5-30 B, 1-3,5 dakika% 30-40 B, 3.5-5 dakika 40-98% B, 5-6 dk% 98 B, 6- 6.05 dakika 98-5% B, 6,05-8 dakika% 5 B; oranı 0.4 ml / dk akış.
  11. Boşaltma şişeleri dipleri dokunarak kabarcıklar. Numune raf örnek şişeleri ayarlayın ve analiz başlatmak için otomatik numune alıcı kullanarak bir örnek 1.0 ul enjekte edilir.
  12. tarayıcı yazılımı ile ham veri dosyaları açmak ve tüm satın almalar başarıyla pozitif ve negatif kontroller de dahil olmak üzere, bitmiş olduğunu onaylayın.
    Not: Genellikle, iki ya da üç adet tepe noktası 4-5,5 dakikalık bir alıkonma zamanında, toplam iyon akımı kromatogramda görülmektedir olur pufferfish DNA, başarılı bir şekilde yükseltilir ve hazmedildiginde.

5. Dekonvolüsyon ve Yorumlama

  1. Dekonvolüsyonun yazılımını başlatın. "(Izotopik çözüldü) oto özü" Select deneme türü.
  2. Aşağıdaki parametreleri kullanarak bir yöntem düzenleyin: çıktı kütle M; S / N threshold3, göreceli bolluk eşiği 0; negatif yük evet; Geçerli kromatogram (XIC) iyon çıkarılan hesaplamak evet; m / z aralığı 700-3,500; Taşıyıcı H + şarj; tespit edilen ücret 3 minimum sayıda; izotop oranı nükleotid; uygun faktör% 80; kalan eşiği% 0; evet çakışmalar düşünün; aralığı 3-50 ücret; Minimum yoğunluğu 1 'dir; beklenen yoğunluk hatası 3.
    1. yeni bir yöntem olarak kaydet ve onu seçin.
  3. Ham veri dosyaları mevcut dizini seçin. analiz edilecek ham veri dosyaları seçin ve düğmesine tıklayın 'Sıraya Ekle'.
  4. dekonvulasyon başlatmak için 'Run Queue' sekmesinde 'Çalıştır' düğmesine tıklayın.
  5. Sıra tamamlandıktan sonra, bir satır seçin ve Dekonvolüsyonun sonuçlarını elde etmek için üst başlık olarak 'Aç Sonuç tıklayın.
  6. Tablo 4 kullanılarak 4-5,5 dakikalık bir retansiyon zamanında zirvelerinden elde edilen Monoizotopik kitlelerden sonuçları yorumlama.

Representative Results

Üç ticari olarak temin edilebilen sütun 100-400 ul / dakika akış hızlarında, uzun oligonükleotitlerin ayrılması için değerlendirildi. Geniş gözenekli oktadesil karbon zinciri (C18) n-bağlı parçacık silika kolon (a) ticari olarak temin edilebilen poli (stiren-divinilbenzen) (PS-DVB) yekpare kolonu (b) ve bir C18-bağlı silika monolit kolonu ( c)) (Şekil 1 karşılaştırıldı. DNA duplekslerine (26, 37 ve 53 bp) üç çift tüm sütunları kullanılarak ayrıldı ve C18-bağlı silika monolit sütunu daha sonraki çalışmalarda kullanılmıştır.

T. kas özü Bir DNA analizi için Örnek sonuç rubripes Şekil 2 'de gösterilmiştir. izotopik çözüldü zirveleri, Şekil 2a'da gösterildiği gibi, başarılı bir şekilde monoizotopik kütle hesaplamak için gereklidir. Teorik ve ölçümT. edili- monoizotopik kütle rubripes Şekil 2B'de gösterilmiştir. endonükleazlar ile sindirim saflaştırılmadan hemen PCR amplifikasyonundan sonra yapıldığından, Msp I endonükleaz tarafından oluşturulan 3'-yapışkan ucu Kalan DNA polimerazı ile doldurulur. Sentetik DNA şablonları türetilen amplikonların analizine göre, kütle hassasiyeti -2.48 den 2.40 ppm (ortalama 0.62 ± 0.74 ppm, n = 280) arasında değişmektedir. Bu nedenle, 3 ppm'lik bir kütle tolerans türleri (Tablo 4) ayırt etmek için kullanıldı. Tabloyu kullanarak, marketler ve mağazalar alınan pufferfish örneklerinin tamamı düzgün spesifik türlerin 37 olarak ayırt edildi.

T. sentetik DNA şablonundan elde edilen numunenin periyodik analizine göre Chrysops, analitlerin tüm Monoizotopik kütleleri başarıyla de le için ± 3 ppm içinde belirlenmiştirherhangi bir kitle kalibrasyon olmadan ast 180 saat (Şekil 3). Bu kütle kalibrasyonu haftalık olarak gerekli olduğu anlamına gelir.

Şekil 1
Şekil 1: T. sentezlenen DNA şablonundan elde edilen PCR-RFLP ürününün toplam iyon akımı kromatogramları PARDALIS bir C18-bağlı parçacık halindeki silis kolonu (a, 3 x 250 mm, parçacık büyüklüğü 3 um), bir poli (stiren-divinilbenzen) kullanılarak (PS-DVB) yekpare kolonu (B, 1.0 x 250 mm) ve bir C 18 n-bağlı monolit silika kolon (Cı, bu yöntem,) (a) için şartlar:. akış hızı, 0.2 ml / dakika; metanol oranı, 0-2 dakika% 5, 2-5 dakika% 5% 25, ​​5-20 dakika% 25 -40%, 20-35 dakika% 40 -98,% 35-50 dakika% 98, 50- 51 dk% 98% -5, 51-65 dakika% 5. Koşulları (b):oranı 0.1 ml / dk; metanol oranı, 0-2 dakika% 5, 2-5 dakika% 5% 25, ​​5-35 dakika% 25 -40%, 35-40 dakika% 40 -98,% 40-55 dakika% 98, 55- 56 dk% 98% -5, 56-70 dakika% 5. Her iki sütun için sıcaklığı 20 ° C idi. Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.

şekil 2
Şekil 2: T. ham kas analiz etmek için Temsilcisi sonuçlar rubripes. (a) Tipik toplam iyon akımı kromatogramlar ve kütle spektrumu. (B) T. sentezlenen DNA örneğinin elde edilen PCR-RFLP ürünlerinin teorik ve ölçülen Monoizotopik kitleler rubripes. Büyük görmek için buraya tıklayınızBu rakamın r sürümü.

Şekil 3,
Şekil 3:. T. sentetik DNA elde edilen Stabilite testi Sindirilmiş amplikonlarının Chrysops her 10 saat analiz edilmiştir. Kütle kalibrasyon testi sırasında yapılmadı. Bu rakamın büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.

isim Sıra
lago86F 5'-CCATGTGGAATGAAAACACC-3'
taki114F 5'-AAAAACAAGAGCCACAGCTCTAA-3'
fugu86-114R 5'-CCCTAGGGTAACTCGGTTCG-3'

Tablo 1: PCR primerleri.

PCR reajan Cilt kullanılan Nihai konsantrasyon
Ultrapurified su 15.75 ul
Deterjan içermeyen 5x Tampon 5,0 ul 1x
dNTP karışımı (10 mM) 0.5 ul 0.2 mM
Primer karışımı (TE tamponu pH 8.0 içinde 10 uM lago86F, taki114F ve fugu86-114R her) 1.0 ul 0.4 uM her
DNA polimeraz (2.5 birim / ul), 0,25 ul 0.1 ünite / ul
TE tamponu pH Şablon DNA, 8.0 (5,0-10 ng / ekstre örnek uL, pozitif kontrol olarak, sentetik DNA 0.2 uM) 2.5 ul 0.5-1.0 ng / ekstre DNA ul, sentetik DNA için 20 nM
Toplam: 25 ul

Tablo 2: 25 ul ölçek PCR bileşenleri.

devir Şart işlev
1 95 ° C'de 2 dakika ilk denatürasyon
2 95 ° C'de 30 saniyelik denatürasyonu
3 56 ° C'de 30 saniyelik tavlama
4 72 ° C'de 30 saniyelik Uzama
5 2-4 (toplam 30 kez) tekrarlayın
6 72 ° C'de 7 dakika nihai uzama
7 Numunenin çıkarılana kadar 12 ° C'de tutun

Tablo 3: PCR programı.

4,0-5,5 dakika tutma süresi zirve sayı aralığında bir üçüncü zirvenin monoizotopik kütle (dA) aralığında, ikinci tepe monoizotopik kütle (dA) pufferfish türler
küçük şerit büyük iplik küçük şerit büyük iplik
2 15890,707-15890,803 16177,531-16177,629 L. inermis
15921,702-15921,797 16146,537-16146,634 L. gloveri
15930,713-15930,809 16137,525-16137,622 L. lunaris
15937,697-15937,792 16131,537-16131,634 L. wheeleri
24173,034-24173,179 24566,905-24567,053 T. Chrysops
3 16295,706-16295,804 16467,610-16467,709 11341,851-11341,919 11466,875-11466,944 T. pardalis
T. snyderi
T. ocellatus
T. xanthopterus
T. stictonotus
11654,908-11654,978 11770,920-11770,991 T. niphobles
16296,701-16296,799 16468,605-16468,704 T. rubripes
16311,701-16311,799 16452,610-16452,709 T. poecilonotus
T. exascurus
16320,713-16320,811 16443,599-16443,697 T. porphyreus
T. obscurus
16599,751-16599,851 16780,667-16780,767 T. vermicularis

Tablo 4: LC / ESI-MS türetilmiş Monoizotopik kitlelerden puffer Farklılaşma.

tablo 5
Tablo 5: Amplifiye DNA sekansı: (a) sırası ile aynıdır.Bu Tablo 4'te açıklandığı gibi diğer balon balıkları türlerinin. Bu tablonun büyük halini görmek için lütfen buraya tıklayınız.

Discussion

DNA elde etmek için, kan ve doku DNA elde etmek için bir ticari kit küçük değişiklikler (proteinaz K miktarına ve lizis çözeltisinin santrifüj) ile üreticinin protokolüne uygun olarak kullanılır. Bununla birlikte, herhangi bir ekstraksiyon kiti sürece hücresel DNA, PCR için uygun geri kazanım ve saflıkta elde edilebilir olarak kullanılabilir. Bu yöntem kas, fin, karaciğer, yumurtalık ve cilt 37 kullanılarak test edilmiştir. Fin için, dondurulmuş, kurutulmuş kaynatıldı ve pişmiş pufferfish örnekleri başarılı 37 test edildi proteinaz K Fresh ile hızlı bir lizis geniş bir yüzey alanına, özellikle uygundur.

PCR primer seti (Tablo 1) puffer için tasarlanmış ve puffer mitokondrial 16S ribozomal RNA geni güçlendirir edilir. Yükseltmek için hedef DNA 114-115 bp'lik (cinsi Takifugu) ve 86 bp'lik (cinsi Lagocephalus) (Tablo 5). yöntem, developme kolaylaştırmaknt hedef sekansları olan sentez oligonükleotitler yerine özgün pufferfish numuneleri toplamak ve referans olarak kullanılmıştır. primer seti amacı yanıt olarak başka bir primer dizisi ile ikame edilmiş olabilir, bununla birlikte, enzimatik sindirimden sonra nihai DNA uzunluğu başarılı dekonvolüsyon için gerekli olan kütle spektrumu kalitesini koruma açısından nt az 100 olmalıdır. Buna ek olarak, C-tuzak azot basıncı hedef oligonükleotid uzun yaklaşık 75 nt uzun olduğunda azalır ve kütle spektrum kalitesi başarılı Dekonvolüsyonun için yetersiz olmalıdır. Bu tür sınırlamalar protokolü bölümünde tarif edildiği gibi başka bir kasa içinde Cı-trap valf ayarlı olması gerekir, gösterge yazılım son gelişmeler ile kontrol edilebilir. Numune hazırlama için olduğu gibi, deterjan içermeyen reaktiflerin kullanılması uygun pik şekli, yeterli bir tepe şiddetine ve sabit tutma süresi 31 açısından daha sonra LC için önemlidir.

21,24-33, bir C18 ters-faz parçacık silika kolon 23,40,41 ve bir hidrofobik etkileşim kromatografisi (HILIC) sütunu 42 LC kullanılmıştır / oligonükleotidlerin ESI-MS analizi. Bunlar arasında, kılcal monolit sütun ayırma kapasitesi açısından diğerlerinden üstün olduğunu, ancak, geçmiş çalışmalarda kullanılan kılcal monolit sütun in-house yaptı ve enstrümantasyon gerektiren düşük akış hızı (2 ul / dak), işletilmiştir mikro LC adanmış. Kolay işlemini kolaylaştırmak için, ticari olarak temin edilebilen sütun daha yüksek akış oranları (100-400 ul / dakika) uzun oligonükleotitlerin ayrılması için değerlendirildi. DNA dubleksleri (26, 37 ve 53 bp) üç çift yukarıda belirtilen sütunları kullanılarak ayrıldı, ancak, C18-bağlı partikül silika kolonu ve PS-DVB monolit sütun çevrim süreleri sırasıyla 65 ve 70 dk idi , C oysa (Şekil 1). Dikkate hızlı analiz alarak, C18-bağlı silika monolit sütun sınırlı ayırma kapasitesine rağmen bizim amaçlarımız için seçildi; Bununla birlikte, geliştirilmiş ayırma gerekli olduğunda, kalan iki sütun kullanılabilir. Teorik olarak, bir monolit kolonu durumunda, hiçbir geçiş hacmidir ve mobil faz, böylece etkili bir ayırma 27 etkinleştirme tutarlı yol uzunluğuna korurken katı faz gözenekleri boyunca akmaya zorlanabilir olacaktır. Bu tür işlemler, büyük moleküller yavaş difüzyonu gibi, böyle bir oligonükleotidin özellikle biomacromolecules analizinde, ortaya olacaktır. Bir monolit sütun pratik yararları bir tane arka basınç, bir parçacık halinde silika kolonu 27 daha düşük olmasıdır. yüksek akış hızı (400 ul / dak) ve düşük kolon sıcaklığı (20 ° C), maksimum geri basınç rağmenSistem MPa 37 12.5 idi. Bu, uzun bir oligonükleotidin hızlı analizi için bir C18-bağlı silika monolit sütunun avantajı ilk örnek bu olmuştur. Yüksek akış hızı sayesinde, ara yüzeyde mikro LC tam bir bağlantı için özel bir alet gerekli değildir. Bunun yerine, bir ısıtılmış ESI prob, DNA dubleks ayırmak, daha sonra tarif edildiği gibi DNA iyonizasyonu yardımcı olmak için gereklidir.

İyon çifti kromatografisi yaygın oligonükleotid MS uyumlu ayrılması için kullanılır. Bununla birlikte, bir iyon çifti reajanı genellikle ESI işlemi ile karışır ve ESI-MS duyarlılığını azaltır. Bu nedenle, HFIP sık oligonükleotidin hassasiyetini artırmak için mobil faz için kullanılır. Bununla birlikte, HFIP (kaynama noktası 59 ° C) metanol (kaynama noktası 65 ° C) ve bu nedenle, çözgen ve bu kayıp pH artar ve iyon çifti ayıracı ayrışmasını teşvik (örneğin, çay) önce, ara yüzeyde hızlı buharlaşanoligonükleotidden. Mevcut buluş, 350 ° C 'de sıcak azot gazı ile eluatın nebulizes ısıtılmış ESI sonda kullandığı için, bu etki aşırı önem olabilir. Çünkü eser metal iyonları 33, adükt oluşumunun bir azalma genotipleme analizi için, bunun yerine HFIP TEA tampon maddesi, Erb ve Oberacher cyclohexyldimethylammonium asetat (pH 8.4 CycHDMAA) önerilir. Yazarlar CycHDMAA kendisini metal ilave maddesinin oluşumunun bastırılması çıkarılabilir. Literatürde rağmen, önemli bir adükt oluşumu, bu yöntemde gözlenmemiştir. Buna ek olarak, HFIP TEA-metanol sistemi kayda değer faydası HFIP TEA-metanol sistemi ile elde edilen tepe alanı T. 86 bp'lik bir amplikon analiz ederken CycHDMAA asetonitril sistemi elde edilenden 17 kat daha fazla olmasıdır poecilonotus (veriler gösterilmemiştir). HFIP TEA-metanol sisteminin bir dezavantajı, CycHDMAA asetonitril sistemine artan maliyet göredir.

monoizotopik kütle hesaplanması çok yüklü iyonların izotopik tepe ayrılmasını gerektirir. Bu nedenle, çözünürlük, bu analiz için kritik önem taşır. gerekli çözünürlük gücü analitin baz çifti uzunluğuna bağlıdır, ancak bin onlarca bir çözünürlük gücüne sahip olan geleneksel TOF analiz, kısa oligonükleotidlerin analizi için sınırlanabilir.

Tablo 4'te gösterilen teorik monoizotopik kütleler analitlerin karşılık gelen baz bileşimlerinin hesaplandı. Seçenek olarak ise, Muddiman ve ark. Doğru kütle 43 baz bileşimin hesaplanması için bir yazılım uygulaması geliştirilmiştir. Benzer bir program otomatik ESI-MS sisteminde 16-18 entegre edildi. ölçülü monoizotopik kütle her zaman özel bir baz bileşimi o karşılık gelmez, çünkü bu algoritmaların kullanımı, bu yöntemin sağlamlığını artırabilirkaçınılmaz ölçüm hatasından kaynaklanan 3 ppm kitle tolerans kanat. Ne yazık ki, biz bu çalışmada bu yazılım ürünleri elde edemezler.

Bu yöntem temel bileşimi üzerine kurulmuştur ve özellikle de puffer için tasarlanmış bir işlem ile ilgili değildir, bu monoizotopik kütle bazlı türler belirlenmesi puffer farklılaşması için değil, aynı zamanda diğer DNA polimorfizmlerinin tespiti için de uygun olabilir. DNA polimorfizmi tespit edilmesi için de, özel bir ESI-MS sistemi, patojenlerin 15,17,18,20,30 tespiti gibi tanısal kullanım için uygun olabilir, tam otomatik ve kullanımı kolaydır. Bunun aksine, mevcut metot, bir araştırma kullanımları için uygun olan, bu nedenle ortak araştırma aletleri ve cihaz ve, ile mümkündür. ESI-MS önce bu tip bir tekli nükleotid polimorfizm 13,28,32, kısa tandem tekrarı 26 insan DNA polimorfizmi uygulanmıştır, Ve mitokondriyal DNA 16,19 ANALİZİ. Mikro RNA da kılcal LC / ESI-MS 44 ile analiz edildi. Bu yayınlanmış başvurular da mevcut yöntem ile gerçekleştirilebilir. Buna ek olarak, bu yöntem, düşük sıcaklık ayrılmasına bağlı antibiyotik etkileşim ve ribozomal RNA 45'e oligonükleotid ve düşük molekül ağırlıklı bileşikler arasındaki etkileşiminin izlenmesi için de uygun olabilir. Bu gibi durumlarda, oligonükleotitlerin ve düşük molekül ağırlıklı bileşikler LC / ESI-MS kullanılarak bir avantaj olduğu, aynı zamanda tespit edilmelidir.

Aletler örneğin Sanger sekanslama ve gerçek zamanlı PCR gibi geleneksel tekniklerle olarak paralel bir analiz gerçekleştirmek için uygun olmayan bir sınırlama yoktur. Ek olarak, mevcut yöntem, yalnızca baz bileşim ve aynı molekül içinde bir baz ikame ayırt edilemez tanımlar. Ancak, burada açıklanan MS tabanlı DNA analizi hâlâ dönemde hak olabilirjel elektroforezi ve gerçek zamanlı PCR gibi boya bazlı teknikler DNA bağlama ile karşılaştırıldığında doğruluğu s.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
DNeasy Blood & Tissue Kit (50) Qiagen 69504 DNA extraction kit
Proteinase K Qiagen 19131
Ethanol (99.5+ vol%) Wako 054-07225 For dilution of wash buffers
TE buffer (pH 8.0) Wako 310-90023 For dilution of DNA sample
PCR primer Fasmac NA Purified with reverse-phase cartridge column by the supplier
Template DNA Eurofins Genomics NA Purified by HPLC by the supplier
Ultrapurified water NA NA Generated with a Milli-Q Direct water purification system (Merck Millipore), used for sample preparation
Detergent Free 5x Phusion HF Buffer Thermo Fisher F-520L Use instead of the provided buffer of DNA polymerase
Pfu-X DNA polymerase Jena Bioscience PCR-207S
dNTP mix (20 mM each) Jena Bioscience NA Supplied with the DNA polymerase
10× Universal buffer M Takara Bio NA Containing 100 mM Tris-HCl (pH 7.5), 100 mM MgCl2, 10 mM dithiothreitol and 500 mM NaCl
Dra I Thermo Fisher FD0224 Restriction enzyme
Msp I Thermo Fisher FD0544 Restriction enzyme
1,1,1,3,3,3-hexafluoro-2-propanol (HFIP) Fluka 42060-50ML Eluent additive for LC-MS grade.
Triethylamine (TEA) Fluka 65897-50ML Eluent additive for LC-MS grade.
Trifluoroacetic acid Sigma-Aldrich T6508 For preparation of calibrant.
Sodium hydroxide (1.0 M) Fluka 72082 Dilute to 10 mM with ultrapurified water and use for titration of trifluoroacetic acid.
Acetonitrile Fluka 34967 For preparation of calibrant, LC/MS grade.
Methanol Kanto 25185-76 For mobile phase, LC/MS grade.
Water Thermo Fisher W6-1 For mobile phase, LC/MS grade.
Microcentrifuge tube (0.5 ml) Eppendorf 0030123301 PCR clean grade
Microcentrifuge tube (1.5 ml) Eppendorf 0030123328 PCR clean grade
UVette Eppendorf 0030106300 Disposable UV cuvette.
Gel Green Biotium 41004 Fluorescent DNA stain
Cosmospin filter G (0.2 μm) Nakalai Tesque 06549-44 Made of hydrophilic polytetrafluoroethylene (PTFE) membrane. Any centrifugal filter unit (pore size, 0.2–0.5 μm) made of hydrophilic PTFE or another low-binding membrane is applicable.
300 μl PP screw vial American Chromatography Supplies V0309P-1232
Preassembled screw cap and septa Finneran 5395-09R
Monobis C18 analytical column (2.0×50 mm, mesopore size = 30 nm) Kyoto Monotech 2050H30ODS Outside Japan, available for purchase from GL Sciences via its distributors. (http://www.glsciences.com/distributors/)
Monobis C18 guard column Kyoto Monotech GCSET-ODS3210 Holder included.
Cadenza CW-C18 (3.0×250 mm) Imtakt CW036 C18-bonded particulate silica column
ProSwift RP-4H (1.0×250 mm) Thermo Fisher 066640 Poly(styrene-divinylbenzene) monolith column
Themo Mixer C Eppendorf 5382 000.023 For digestion of fish tissues.
Spectrophotometer Shimadzu UV-3150 Quantification of DNA concentration.
Thermal cycler Bio-Rad T100
Portable refrigerator Twinbird D-CUBE For aqueous mobile phase to avoid evaporation of HFIP. This can be replaced by an ice box.
Ultimate 3000 liquid chromatograph Thermo Fisher NA
Q Exactive mass spectrometer Thermo Fisher NA Fourier transform mass spectrometer equipped with the modified Kingdon trap analyzer.
Protein deconvolution 3.0 Thermo Fisher NA Use version 3.0 or higher having an isotopic patter model of nucleotide.

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Oberacher, H. On the use of different mass spectrometric techniques for characterization of sequence variability in genomic DNA. Anal. Bioanal. Chem. 391, 135-149 (2008).
  2. Banoub, J. H., Miller-Banoub, J., Jahouh, F., Joly, N., Martin, P. Chapter 1, Overview of recent developments in the mass spectrometry of nucleic acid and constituents. Mass spectrometry of nucleosides and nucleic acids. Banoub, J. H., Limbach, P. A. 1, CRC Press. 1-90 (2010).
  3. Yergey, J., Heller, D., Hansen, G., Cotter, R. J., Fenselau, C. Isotopic distributions in mass spectra of large molecules. Anal. Chem. 55, 353-356 (1983).
  4. Zubarev, R. A., Demirev, P. A. Isotope depletion of large biomolecules: Implications for molecular mass measurements. J. Am. Soc. Mass Spectrom. 9, 149-156 (1998).
  5. Null, A. P., Muddiman, D. C. Determination of a correction to improve mass measurement accuracy of isotopically unresolved polymerase chain reaction amplicons by electrospray ionization Fourier transform ion cyclotron resonance mass spectrometry. Rapid Commun. Mass Spectrom. 17, 1714-1722 (2003).
  6. Hu, Q., Noll, R. J., Li, H., Makarov, A., Hardman, M., Cooks, R. G. The Orbitrap: a new mass spectrometer. J Mass Spectrom. 40, 430-443 (2005).
  7. Senko, M. W., Beu, S. C., McLaffertycor, F. W. Determination of monoisotopic masses and ion populations for large biomolecules from resolved isotopic distributions. J. Am. Soc. Mass Spectrom. 6, 229-233 (1995).
  8. Horn, D. M., Zubarev, R. A., McLafferty, F. W. Automated reduction and interpretation of high resolution electrospray mass spectra of large molecules. J. Am. Soc. Mass Spectrom. 11, 320-332 (2000).
  9. Frahm, J. L., Mason, C. J., Muddiman, D. C. Utility of accurate monoisotopic mass measurements to confidently identify lambda exonuclease generated single-stranded amplicons containing 7-deaza analogs by electrospray ionization FT-ICR mass spectrometry. Int. J. Mass Spectrom. 234, 79-87 (2004).
  10. Frahm, J. L., Muddiman, D. C. Nucleic Acid analysis by fourier transform ion cyclotron resonance mass spectrometry at the beginning of the twenty-first century. Curr. Pharm. Des. 11, 2593-2613 (2005).
  11. Null, A. P., George, L. T., Muddiman, D. C. Evaluation of sample preparation techniques for mass measurements of PCR products using ESI-FT-ICR mass spectrometry. J. Am. Soc. Mass Spectrom. 13, 338-344 (2002).
  12. Null, A. P., Benson, L. M., Muddiman, D. C. Enzymatic strategies for the characterization of nucleic acids by electrospray ionization mass spectrometry. Rapid Commun. Mass Spectrom. 17, 2699-2706 (2003).
  13. Manduzio, H., Ezan, E., Fenaille, F. Evaluation of the LTQ-Orbitrap mass spectrometer for the analysis of polymerase chain reaction products. Rapid Commun. Mass Spectrom. 24, 3501-3509 (2010).
  14. Manduzio, H., Martelet, A., Ezan, E., Fenaille, F. Comparison of approaches for purifying and desalting polymerase chain reaction products prior to electrospray ionization mass spectrometry. Anal. Biochem. 398, 272-274 (2010).
  15. Hofstadler, S. A., et al. TIGER: the universal biosensor. Int. J. Mass Spectrom. 242, 23-41 (2005).
  16. Eduardoff, M., et al. Mass spectrometric base composition profiling: Implications for forensic mtDNA databasing. Forensic Sci. Int. Genet. 7, 587-592 (2013).
  17. Tang, Y. W., et al. Clinical accuracy of a PLEX-ID flu device for simultaneous detection and identification of influenza viruses A and B. J. Clin. Microbiol. 51, 40-45 (2013).
  18. Legoff, J., et al. Broad-range PCR-electrospray ionization mass spectrometry for detection and typing of adenovirus and other opportunistic viruses in stem cell transplant patients. J. Clin. Microbiol. 51, 4186-4192 (2013).
  19. Kiesler, K. M., Coble, M. D., Hall, T. A., Vallone, P. M. Comparison of base composition analysis and Sanger sequencing of mitochondrial DNA for four U.S. population groups. Forensic Sci. Int. Genet. 8, 226-232 (2014).
  20. Bacconi, A., et al. Improved sensitivity for molecular detection of bacterial and Candida infections in blood. J. Clin. Microbiol. 52, 3164-3174 (2014).
  21. Huber, C. G., Oberacher, H. Analysis of nucleic acids by on-line liquid chromatography-mass spectrometry. Mass Spectrom. Rev. 20, 310-343 (2001).
  22. Pourshahian, S., McCarthy, S. M. Chapter 4, Analysis of oligonucleotides by liquid chromatography and mass spectrometry. Handbook of Analysis of Oligonucleotides and Related Products. Bonilla, J. V., Srivatsa, G. S. CRC Press, Chapter. 137-166 (2011).
  23. Apffel, A., Chakel, J. A., Fischer, S., Lichtenwalter, K., Hancock, W. S. Analysis of Oligonucleotides by HPLC-Electrospray Ionization Mass Spectrometry. Anal. Chem. 69, 1320-1325 (1997).
  24. Premstaller, A., Oberacher, H., Huber, C. G. High-performance liquid chromatography-electrospray ionization mass spectrometry of single- and double-stranded nucleic acids using monolithic capillary columns. Anal. Chem. 72, 4386-4393 (2000).
  25. Oberacher, H., Oefner, P. J., Parson, W., Huber, C. G. On-Line Liquid Chromatography Mass Spectrometry: A Useful Tool for the Detection of DNA Sequence Variation. Angew. Chem. Int. Ed. Engl. 40, 3828-3830 (2001).
  26. Oberacher, H., Parson, W., Muhlmann, R., Huber, C. G. Analysis of polymerase chain reaction products by on-line liquid chromatography-mass spectrometry for genotyping of polymorphic short tandem repeat loci. Anal. Chem. 73, 5109-5115 (2001).
  27. Oberacher, H., Huber, C. G. Capillary monoliths for the analysis of nucleic acids by high-performance liquid chromatography-electrospray ionization mass spectrometry. Trends Anal. Chem. 21, 166-174 (2002).
  28. Oberacher, H., et al. Re-sequencing of multiple single nucleotide polymorphisms by liquid chromatography-electrospray ionization mass spectrometry. Nucleic Acids Res. 30, e67 (2002).
  29. Oberacher, H., Parson, W., Holzl, G., Oefner, P. J., Huber, C. G. Optimized suppression of adducts in polymerase chain reaction products for semi-quantitative SNP genotyping by liquid chromatography-mass spectrometry. J. Am. Soc. Mass Spectrom. 15, 1897-1906 (2004).
  30. Mayr, B. M., et al. Identification of bacteria by polymerase chain reaction followed by liquid chromatography-mass spectrometry. Anal. Chem. 77, 4563-4570 (2005).
  31. Oberacher, H., Niederstatter, H., Casetta, B., Parson, W. Some guidelines for the analysis of genomic DNA by PCR-LC-ESI-MS. J. Am. Soc. Mass Spectrom. 17, 124-129 (2006).
  32. Beer, B., et al. CYP2D6 genotyping by liquid chromatography-electrospray ionization mass spectrometry. Anal. Bioanal. Chem. 400, 2361-2370 (2011).
  33. Erb, R., Oberacher, H. Comparison of mobile-phase systems commonly applied in liquid chromatography-mass spectrometry of nucleic acids. Electrophoresis. 35, 1226-1235 (2014).
  34. Cohen, N. J., et al. Public health response to puffer fish (Tetrodotoxin) poisoning from mislabeled product. J. Food Prot. 72, 810-817 (2009).
  35. Cole, J. B., et al. Tetrodotoxin poisoning outbreak from imported dried puffer fish--Minneapolis, Minnesota 2014. MMWR Morb. Mortal. Wkly. Rep. 63, 1222-1225 (2015).
  36. Ohno, Y., et al. The influence of tetrodotoxin on the toxic effects of aconitine in vivo. Tohoku J. Exp. Med. 167, 155-158 (1992).
  37. Miyaguchi, H., Yamamuro, T., Ohta, H., Nakahara, H., Suzuki, S. Genotyping of Toxic Pufferfish Based on Specific PCR-RFLP Products As Determined by Liquid Chromatography/Quadrupole-Orbitrap Hybrid Mass Spectrometry. J. Agric. Food Chem. 63, 9363-9371 (2015).
  38. Sambrook, J. F., Russell, D. W. Neutral polyacrylamide gel electrophoresis. in: Molecular Cloning: A Laboratory Manual. 1, 3rd, Cold Spring Harbor Laboratory Press. 40-46 (2001).
  39. Moini, M., Jones, B. L., Rogers, R. M., Jiang, L. Sodium trifluoroacetate as a tune/calibration compound for positive- and negative-ion electrospray ionization mass spectrometry in the mass range of 100-4000 Da. J. Am. Soc. Mass Spectrom. 9, 977-980 (1998).
  40. Fountain, K. J., Gilar, M., Gebler, J. C. Analysis of native and chemically modified oligonucleotides by tandem ion-pair reversed-phase high-performance liquid chromatography/electrospray ionization mass spectrometry. Rapid Commun. Mass Spectrom. 17, 646-653 (2003).
  41. Chen, B., Bartlett, M. G. Evaluation of mobile phase composition for enhancing sensitivity of targeted quantification of oligonucleotides using ultra-high performance liquid chromatography and mass spectrometry: application to phosphorothioate deoxyribonucleic acid. J. Chromatogr. A. 1288, 73-81 (2013).
  42. Gong, L., McCullagh, J. S. Analysis of oligonucleotides by hydrophilic interaction liquid chromatography coupled to negative ion electrospray ionization mass spectrometry. J. Chromatogr. A. 1218, 5480-5486 (2011).
  43. Muddiman, D. C., Anderson, G. A., Hofstadler, S. A., Smith, R. D. Length and base composition of PCR-amplified nucleic acids using mass measurements from electrospray ionization mass spectrometry. Anal. Chem. 69, 1543-1549 (1997).
  44. Kullolli, M., Knorf, E., Arampatzidou, M., Tewari, M., Pitteri, S. J. Intact MicroRNA analysis using high resolution mass spectrometry. J. Am. Soc. Mass Spectrom. 25, 80-87 (2013).
  45. Cummins, L. L., Chen, S., Blyn, L. B., Sannes-Lowery, K. A., Drader, J. J., Griffey, R. H., Hofstadler, S. A. Multitarget affinity/specificity screening of natural products: finding and characterizing high-affinity ligands from complex mixtures by using high-performance mass spectrometry. J. Nat. Prod. 66, 1186-1190 (2003).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics