Aniônico polimerização de um copolímero anfifílicas para Preparação de copolímero em bloco As micelas estabilizada por interacções de empilhamento π-¸

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Summary

Os principais passos da vida polimerização aniônica de éter fenil glicidílico (PheGE) sobre metoxi-polietileno glicol (MPEG-b -PPheGE) são descritos. As micelas de copolímero em bloco resultante (SGCN) foram carregados com doxorrubicina 14% (% em peso) e de libertação sustentada de fármaco durante 4 dias sob condições f isiologicamente relevantes foi obtido.

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Le Dévédec, F., Houdaihed, L., Allen, C. Anionic Polymerization of an Amphiphilic Copolymer for Preparation of Block Copolymer Micelles Stabilized by π-π Stacking Interactions. J. Vis. Exp. (116), e54422, doi:10.3791/54422 (2016).

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Abstract

Neste estudo, um copolímero anfifílico que inclui um bloco de formação de núcleo, com grupos fenilo foi sintetizado por polimerização aniónica vivo de éter fenil glicidílico (PheGE) em metoxi-polietileno-glicol (MPEG-b -PPheGE). Caracterização do copolímero revelou uma distribuição estreita molecular (PDI <1,03) e confirmado o grau de polimerização de mPEG 122 - b - (PheGE) 15. A concentração crítica de micelas de copolimero foi avaliada usando um método de fluorescência estabelecida com o comportamento de agregação avaliada por dispersão dinâmica de luz e microscopia electrónica de transmissão. O potencial do copolímero para o uso em aplicações de distribuição de droga foi avaliada de uma forma preliminar, incluindo biocompatibilidade in vitro, o carregamento e a libertação da doxorrubicina hidrofóbico de drogas anti-cancro (DOX). Uma formulação micelar estável de DOX foi preparado com níveis de carga de fármaco até 14% (% em peso), carga de fármaco efficiacetatos> 60% (w / w) e de libertação sustentada de fármaco durante 4 dias sob condições f isiologicamente relevantes (pH ácido e neutro, a presença de albumina). O nível de carga elevada de droga de libertação sustida e é atribuída a estabilizar as interacções entre π ¸-DOX e o bloco de formação de núcleo das micelas.

Introduction

Em meios aquosos, copolímeros em bloco anfifílicos montar para formar micelas de copolímeros de blocos de tamanho nano (SGCN) que consistem de um núcleo hidrófobo rodeado por uma camada hidrófila ou corona. O núcleo da micela pode servir como um reservatório para a incorporação de fármacos hidrófobos; enquanto, a coroa hidrofílica fornece uma interface entre o núcleo e o meio externo. Poli (etileno glicol) (PEG) e seus derivados são uma das mais importantes classes de polímeros e um dos mais amplamente utilizados na formulação de fármaco. 1-3 BCMs provaram ser uma plataforma de entrega de droga digno com várias formulações contando com este tecnologia agora em desenvolvimento clínico de fase tardia. 4 Mais vulgarmente, o bloco hidrofóbico do copolímero é constituído por poli-caprolactona, poli (D, L-lactido), poli (óxido de propileno) ou poli (β-benzil-L-aspartato). 5 -9

O grupo de Kataoka investigado micelas esféricas formadas a partir de b PEO- b -. (Doxorrubicina conjugado-ácido poliaspártico) para entrega da doxorrubicina (DOX) 10,11 Em seus relatórios, eles dizem que as interações π-¸ entre a droga polímero conjugado ou PBLA e DOX livre actuar para estabilizar o núcleo micelar resultando em aumentos da carga e retenção da droga. É estabelecido que a compatibilidade ou interações entre uma droga e o bloco formando-core são determinantes de parâmetros-chave relacionados com o desempenho 12 Além de DOX., Uma série de cancro terapêutica incluem anéis aromáticos dentro da sua estrutura de núcleo (por exemplo, metotrexato, olaparib, SN -38).

Como resultado, existe um interesse significativo na síntese de copolímeros que incluem anéis de benzilo em seus blocos de formação de núcleo. Polimerização de PEG e os seus derivados aniónicos de abertura de anel permitir o controlo sobre o peso molecular e resulta em materiais de baixa polidispersão com um bom rendimento. 13,14 éthyleóxido de ne com éter fenil glicidílico (PheGE) ou óxido de estireno (SO) pode ser (co) polimerizado para formar copolímeros em bloco que formam micelas para a solubilização de fármacos hidrofóbicos. 15-18 O presente relatório descreve os passos necessários para viver polimerização aniônica de fenil glicidil monómero de éter em mPEG-OH como macroiniciador (Figura 1). O copolímero em bloco resultante e seus agregados são então caracterizados em termos de propriedades relevantes para a utilização na entrega da droga.

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Protocol

figura 1
Figura 1. Diagrama esquemático mostrando os nove passos fundamentais na preparação do copolímero b -PPheGE MPEG. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

1. Preparação dos reagentes sob condições secas

  1. Preparação dos reagentes.
    1. Pesar 15 g de mPEG-5K (Mn = 5400 g / mol, 1,03 PDI) e colocar a 50 ° C num forno sob vácuo durante 48 horas antes da utilização.
    2. Secas 200 ml de sulfóxido de dimetilo (DMSO) sobre hidreto de cálcio (CaH2) (~ 1 g), coloca-se sob vácuo durante 30 min, purga de árgon e sob agitação durante 48 h antes da utilização.
    3. Colocar 50 ml do monómero PheGE num balão limpo e seco (100 ml), adicionar 1 g de CaH 2, selo sob vácuo durante 15 minutos em gelo, sob atmosfera de árgon purgae deixar a agitar durante 24 hr sob árgon antes do uso.

2. Preparação do naftaleno de potássio

  1. Cuidadosamente, cortou pequenos pedaços de sódio (~ 1,5 g) secou-se com hexano para remover o óleo mineral e o excesso de adicionar ao balão de fundo redondo contendo o tetra-hidrofurano (THF) (V = 500 ml).
    NOTA: Os pedaços de sódio não deve ser exposto ao ar por muito tempo devido ao risco de incêndio.
  2. Adicionar benzofenona (~ 5 g), purga com árgon e selar o frasco redondo (2 pescoços) de rolhas de vidro.
  3. Após agitação sob árgon durante 24 h, ligar o balão de fundo redondo com um aparelho de destilação (Figura 2), destilar a solução escura ao refluxo, sob árgon, enquanto (por exemplo, refluxo durante cerca de um período de 2 horas após a solução torna-se azul). Comece a recolher o volume pretendido ~ 150 ml de THF, fechando a válvula esquerda (encontrada no meio do aparelho de destilação).
    NOTA: Se esta solução não ficar azul, parar a destilarlação, arrefecer à temperatura ambiente (RT) e adicionar mais benzofenona ou sódio e reiniciar a destilação. Esta é uma indicação de que THF ainda contém água.
  4. Em um Erlenmeyer seco, adicionar THF destilado (V = 100 ml) e dissolvem-se 3,9 g de naftaleno.
    NOTA: Pare a destilação, arrefecer à temperatura ambiente e abra a válvula direito de transferir o volume de THF.
  5. Conforme descrito no ponto 2.1, cortar pequenos pedaços de potássio (1,1 g) e adicionar à solução contendo o naftaleno (concentração final ~ 0,3 mol / L). Selar o Erlenmeyer com um adaptador de flushing (T) (on / off) com um septo no topo e purgar com árgon.
  6. Após agitação sob árgon durante 24 h, observar a solução resultante da base de naftaleno de potássio como uma cor verde escura homogénea.
  7. Sob condições inertes, remover uma alíquota de 5 ml da solução de base a partir do frasco com uma seringa e adicionar 10 ml de água destilada. Subsequentemente adicionar 1-2 gotas de indicador fenolftaleína, a esta solução,que transforma a solução uma cor fúcsia.
  8. Use uma bureta para titular a solução de naftaleno de potássio com uma solução padrão de ácido clorídrico (0,1 N) até que a solução se torne incolor.

3. Materiais e precauções necessárias para a efetiva estar Aniônicos Polimerização

  1. Sistema de árgon / colector de vácuo.
    NOTA: Como descrito na Figura 2, um colector de vidro duplo com torneiras de vidro oco é usado para alternar entre as condições de entrega de argônio e de vácuo no vidro.
    1. Conecte o tanque de árgon (com manómetro) a uma coluna dessecante seco e para a linha de colector utilizando tubos de borracha inerte. Na outra extremidade da tubagem de árgon, ligar um borbulhador (contendo óleo mineral).
    2. Para as torneiras de vidro, conecte tubos inertes flexíveis e agulhas. Para a outra linha do colector, ligar uma armadilha de vidro imerso num frasco de Dewar frio (cheio com gelo / água ou azoto líquido) a uma bomba de alto vácuo.
    3. Aparelho de destilação de monómero e DMSO.
      NOTA: Um conveniente (isto é, todos em um) aparelho para destilação sob vácuo elevado é empregue (Figura 2). O material de vidro seco é feita com válvulas de alto vácuo e condensadores built-in com uma cabeça refrigerado interior.
      1. Ligue o fluxo de água através da entrada (A) e de saída (B) da unidade de arrefecimento (carta). Ligue a outra entrada / saída (C) para o colector de dupla por árgon / vácuo. Adicionar e selar um septo (fios de metal) no orifício de distribuição / extracção e conectar de uma cânula de aço inoxidável para a transferência de líquidos sensíveis ao ar (D) (no topo / ciclo).
      2. Antes da polimerização, destilar PheGE e DMSO em mantos de aquecimento hemisféricas a 100 ° C e 70 ° C, respectivamente, durante 2 horas sob vácuo com agitação. O ponto de ebulição do monómero PheGE é 254 ° C, enquanto que o ponto de ebulição de DMSO é de 189 ° C a (1 atm).
    4. Copos para polymerizat aniônicaíon.
      1. Em adição ao sistema de destilação, utilizar apenas alta artigos de vidro resistente ao vácuo incluindo rodada balões de fundo (autenticadas pelo fabricante), formou-se cilindros (para a transferência de volumes de solvente, de base e de monómeros), cânulas, septos e fios de metal para selar a septos.
        NOTA: Para a polimerização, o calor de estar cuidadosamente (sob vácuo) e arrefecer o material de vidro sob fluxo de árgon antes de ser utilizado. Manter a pistola de ar quente a uma distância de 10 cm ~ a partir do material de vidro.

    Figura 2
    Figura 2. Montagem e principais etapas de destilação / transferência. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

    4. Descrição das principais etapas de estar Aniônicos Polimerização: Destilação e Transferência

    1. Pesar-mPEG 5K (2 mmol, 10 g) em um F secolask / Schlenk (forno), contendo uma barra de agitação e selar o adaptador de flushing (T) (on / off) com um septo no topo.
    2. Ligar o balão ao colector e purgar o balão durante 2-3 min com ondas de argônio. Girar a válvula para a posição de vácuo para purgar o balão.
    3. Rodar o balão manualmente e secar o recipiente de reacção de forma homogénea com um secador de sopro (pistola de calor) até mPEG 5K-derrete.
      NOTA: Manter a pistola de ar quente a uma distância ~ 10 cm do balão.
    4. Após 1 min, quebrar o vácuo, rodando a válvula do distribuidor na direcção da posição de árgon com vários fechos rápidos.
      NOTA: Um fluxo de árgon contínua tem de ser observado no borbulhador. Quando o fluxo é contínuo, a válvula fica na posição de árgon. aquecimento e refrigeração Repita os passos duas vezes para remover todos os vestígios de humidade.
    5. Manter o macroiniciador polimérico sob vácuo durante ~ 2 horas e sob atmosfera de árgon antes da reacção começar.
    6. Mount dois aparelhos de destilação de alto vácuo sob o capô (Figure 2); uma para a destilação de DMSO e um para a destilação do monómero (PheGE).
    7. Ligar os frascos separados contendo o DMSO e o monómero para os dois aparelhos e instalar cada um em uma manta de aquecimento hemisférica (ou em um banho de óleo). Ligação de água fria à parte superior do aparelho (entrada / saída) e ao colector (árgon / vácuo).
    8. Certifique-se de que cada aparelho é seguro e bem selada. Envolver o vácuo através da válvula.
      NOTA:. Conforme descrito na etapa 3.3, repita os passos de aquecimento e arrefecimento duas vezes para remover todos os vestígios de humidade.
    9. Definir o aquecimento por meio de um controlador de temperatura e iniciar agitação as soluções. Após 2 horas de circulação / destilação de DMSO, fecha a válvula de vácuo elevado (que se encontra no meio do aparelho de destilação) para recolher cerca de 20 ml de solução (para lavar o interior do aparelho). Em seguida, libertar a fracção para o balão e repetir a operação mais uma vez para assegurar a pureza da fracção desejada que é collected mais tarde.
    10. Aquecer o balão contendo o mPEG-5K (sob vácuo) com a pistola de calor até que o polímero (mPEG-5K) derrete. Purga-se com árgon novamente.
      Nota: O procedimento irá ajudar a a dissolução, após a transferência do DMSO.
    11. Após 2 h, fechar a válvula de alto vácuo e recolher o volume de solvente (DMSO V = ~ 100 ml). Parar o aquecimento e quebrar o vácuo do colector. Libertar árgon (por encaixe) para dentro da câmara, como descrito acima.
    12. Sob uma pressão positiva de árgon, ligar um lado da cânula (preensão na torneira de passagem do dispositivo) para um cilindro graduado ou directamente para o balão contendo o mPEG-5K (se o aparelho de destilação tem graduação) e, mergulhar a outra extremidade cuidadosamente na fracção de destilado de fresco.
    13. Usando a pressão de árgon, a unidade de DMSO através da cânula para o balão de reacção. Ligue um bubbler extra para o frasco (ou cilindro se necessário para a medição) e, feche a torneira de vidro conectado ao the borbulhador, no lado oposto da conduta de distribuição.
      NOTA: Quando um lado de uma cânula é retirada para a transferência, certifique-se de que a pressão de árgon positiva é aplicada.
    14. Para evitar acidentes causados ​​por pressão de árgon, abrir a torneira de vidro durante 1-2 segundos e religar para continuar o fluxo de DMSO (repetido uma vez por cada 0,5 min) até à transferência completa é concluída. Reabrir a torneira quando terminar.
      NOTA: O mesmo procedimento deve agora ser seguido para destilação e recolha do monômero. O solvente e o monómero não pode ser recolhida ao mesmo tempo.
    15. Transferência de 5 ml de potássio 0,3 M naftaleno via canulação em um cilindro graduado selado por um septo com cânula inserida (loop).
      NOTA: A mesma precaução conforme descrito na nota 4.13. pressão de árgon positiva deve ser mantido primeiro a partir do balão de naftaleno de potássio, para o cilindro e, em seguida, a partir do cilindro para o balão de reacção para evitar a contaminação de ar / água.
    16. Insira outro agulha do manifold para dentro do cilindro (árgon). Remover a cânula ligada ao sistema de destilação cuidadosamente e inserir-se rapidamente no balão de reacção.
      NOTA: Use esta técnica para a transferência de base e monômero.
    17. Adicionar gota a base de a gota, até a solução torna-se escura. Seguindo o lento desaparecimento de cor, adicionar uma outra parte até que a cor escura aparece novamente, e repita até que a transferência total.
    18. Transferir o volume desejado de monómero (V PheGE = 5 mL) para atingir um grau de polimerização de PPheGE ~ N = 18-20.
    19. Deixar a mistura reaccional durante 48 h a 80 ° C sob atmosfera de árgon, com agitação constante para assegurar uma polimerização completa.
    20. Extingue-se a reacção por adição de gotas de HCl 1 N em metanol (medido usando papel de tornassol (pH neutro)) e observadas por um desaparecimento de cor.
    21. Extrair o naftaleno a partir da solução de DMSO com hexano (3 x 50 ml). Remover o DMSO por destilação a vácuo ~ 70 ml (mesmo aparelho). arrulharl para baixo a solução pasta e adicionar 50 ml de THF.
    22. Remover o sal a partir da solução de lama por centrifugação a 5000 xg durante 10 min. Transferir o sobrenadante e adicionar gota a gota a 500 ml de éter dietílico frio.
    23. Recolhe-se o precipitado por filtração ou centrifugação (repetir duas vezes) e seco sob vácuo a 30 ° C durante 24-48 horas (rendimento de 85%).
      NOTA: O copolímero está agora pronto para caracterização.

    5. Caracterização dos copolímeros

    1. Pesar 5-10 mg de copolímero (registro a massa real) em um prato de amostra de alumínio e selar hermeticamente com a tampa de alumínio. prato de amostra de carga e pan de referência (vazia) na calorimetria exploratória diferencial.
    2. Programa de um método ( "calor / frio / calor") ciclo: 1) aquecimento de 40 ° C a 100 ° C a 10 ° C / min, 2) arrefecer a -70 ° C a 10 ° C / min, 3) de calor a 100 ° C a 10 ° C / min. Repetir 2) e 3) duas vezes. Determinar o ponto de fusão (T m), crystallization (T C) e temperaturas de transição vítrea (Tg), e calor de fusão (AH f) a partir de vestígios térmica a partir do terceiro ciclo (se aplicável).
    3. Dissolver os polímeros em THF (2 mg / ml) e filtrar através de um filtro de PTFE de 0,2 mm. Injectar a amostra num sistema de cromatografia de permeação em gel (50 ul) e usar o tempo de retenção para a amostra e uma curva de calibração produzida usando uma variedade de padrões de poliestireno para determinar o peso molecular do polímero. 19
    4. Dissolve-se os (co) polímeros (15 mg / ml) em DMSO d 6 para uma análise de espectroscopia de H-RMN. 19
    5. Determinar a concentração micelar crítica (CMC) do copolímero utilizando 1,6-difenil-1,3,5-hexatrieno (DPH) como uma sonda de fluorescência 9.
      1. Prepara-se uma solução stock de DPH em THF (2,32 mg / L) no escuro e adicionar 100 ul desta solução de estoque de cada um de uma série de tubos de ensaio.
      2. Prepare uma solução de copolímero em THF e adicionar aliquotas de volume igual (2 ml) para a série de tubos de ensaio (cada uma contendo uma alíquota da solução-mãe DPH), resultando em concentrações finais que variam de copolímero de 0,01 a 1000 ^ g de copolímero / ml.
      3. Subsequentemente, o copolímero de vórtice-DPH soluções e adicionar gota a gota a 10 ml de água duplamente destilada com agitação bar. As soluções devem ser, em seguida, agitou-se vigorosamente no escuro durante 48 h sob uma corrente de azoto para permitir evaporação lenta de THF. A concentração final de DPH em cada solução é 0,232 mg / L.
      4. Medir a emissão de fluorescência das amostras a 430 nm (λ ex = 350 nm) utilizando um espectrofluorómetro de microplacas dupla de varrimento de trama e de fluorescência em função de log [polímero]. A intercepção entre as duas pistas lineares fornece o valor de CMC para o copolímero.

    6. procedimento para carregar doxorrubicina em BCMs

    1. Dissolve-se 12 mg de DOX em 1 ml de acetonitrile, adicionar 10 ul de trietilamina e deixar a agitar solução no escuro durante 2 horas.
    2. Dissolve-se o copolímero (45 mg) em 1 ml de THF e agita-se durante o mesmo período de tempo. Adicionar a solução de copolímero à solução de DOX e enxaguar o frasco contendo copolímero residual com um volume adicional de THF (0,5 ml).
    3. Adicionar a mistura de copolímero-medicamento (2,5 ml) gota a gota a um frasco (20 ml) contendo 15 ml de solução salina a 0,9% (NaCl) com agitação.
    4. Transferir a solução para um saco de diálise (3,5 kDa cortado) e diálise contra solução salina a 0,9% (500 ml).
      NOTA: Alterar a solução salina externo depois de 6 horas e deixou a diálise continuar durante 24 horas com agitação no escuro a RT.
    5. Transferir o dialisado para um tubo de 50 ml e centrifugar a 5000 xg durante 15 min.
    6. Transferir o sobrenadante para um sistema de ultraf iltração (com uma capacidade de 10 ml) que contém uma membrana de diálise (cut off 10 kDa). Coloque o adaptador mexendo no sistema de ultrafiltração, feche a tampa e aberta ao maiortream de nitrogênio.
    7. Concentra-se a solução de BCM para um volume de 4 ml e adicionar 6 mL de solução salina fresca e repetir o procedimento duas vezes.
    8. Concentra-se a solução de BCM para 4 ml, lavar a câmara com 0,5 ml de soro fisiológico e adiciona-se à solução. Loja em frascos castanhos a RT no antes de posterior utilização escuro.

    7. Avaliação da doxorrubicina Carregando no DOX-BCMs

    1. Dissolve-DOX BCM em dimetilformamida (100 uL em 400 uL) para romper as micelas e dilui-se em solução aquosa de HCl (0,1 N) antes da avaliação (100 uL em 900 uL de HCl 0,1 N).
    2. Medir a carga de droga a 490 nm, utilizando um sistema de bancada de microplacas espectrofotométrico. Use as seguintes equações para determinar a capacidade de carga de fármaco (DLC) e a eficiência de carga de fármaco (DLE):
      DLC (% em peso) = (peso de droga carregada / peso total de BCMs) x 100%
      DLE (%) = (peso de droga carregada / peso de droga na alimentação) x 100%

    8. Avaliaçãode libertação in vitro de DOX de DOX-BCMs

    1. Investigar a libertação de DOX do BCMs a 37 ° C em solução salina 0,1 M tamponada com fosfato (PBS, pH 7,4) contra PBS pH 7,4 contendo 0,1% (w / v) de Tween 80, BCMs + BSA (50 mg / ml) contra PBS pH 7,4, e acetato-tampão a pH 0,1 H = 5,5. 20,21
    2. Dilui-se a formulação BCM-DOX (700 ul) em tampão escolhido (2,3 ml) para resultar numa quantidade total de 0,6-0,7 Å mg de DOX no saco de diálise.
    3. Colocar a solução no saco de diálise, selar com clipes e mergulhar o saco em 200 ml de os respectivos meios externos.
    4. Retirar 2 ml da solução do lado de fora do saco de diálise em pontos de tempo predeterminados e substituir com o mesmo volume de tampão fresco.
    5. Armazenar as alíquotas retiradas a -20 ° C antes da análise por espectrometria de UV-Vis (Abs 490 nm). A percentagem cumulativa de fármaco libertado (E R) pode ser calculada usando a seguinte equação:
      "Equação1" NOTA: Onde m DOX representa a quantidade de DOX nas BCMs, V 0 é o volume total do meio de libertação (200 ml), V t é o volume dos meios de comunicação substituídos (Vt = 2 ml), Ci é a concentração antes da correcção, e C N representa a concentração de DOX na amostra.

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Representative Results

Figura 3
Figura 3. Ilustração da polimerização aniónica de éter de glicidilo de mPEG fenil macroiniciador para produzir MPEG-b - (PheGE) 15 para a preparação de micelas de copolímero em bloco para o carregamento de doxorrubicina O esquema ilustra a desprotonação do grupo hidroxilo de mPEG utilizando naftaleno de potássio. como um radical-anião, seguido pela polimerização do monómero de éter fenil glicidílico (PheGE). Imagem microscopia eletrônica de transmissão Representante (TEM) das BCMs coradas com acetato de uranilo (1% w / v) e distribuição de tamanho das micelas, conforme determinado pelo espalhamento de luz dinâmico (DLS). Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Figura 3, a polimerização aniónica de éter de glicidilo de mPEG fenil macroiniciador foi utilizado para preparar micelas de copolímero em bloco (DOX-MPEG-b - (PHGE) 15 para retenção de doxorrubicina uma distribuição de peso molecular estreita para o MPEG-b -. (PHGE) 15 copolímero foi confirmada por GPC (PDI = 1,03) e o grau de polimerização foi determinado por uma análise da 'H-RMN (Figura 4) [σ = 7,2 ppm (m , 2H meta, fenil 2 (= CH -)), σ = 6,8 ppm (d, 3H, 2 orto e 1 para (- CH -), σ = 3,95 ppm (m, 2H, O-CH2-CH-) ] com o grupo terminal do mPEG de metilo utilizado como um pico de referência (σ = 3,22 ppm (s, 3H).

Figura 4
Figura 4. Caracterização e análise. A) A análise de GPC de mPEG e o copolímero em THF. B) 1 HOs espectros de RMN mPEG5K (espectro superior) e MPEG-b -. (PheGE) 15 (espectro inferior) em d 6 DMSO Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

tabela 1
Tabela 1. Características da copolímero.

Em meios aquosos, copolímeros em bloco anfifílicos tais como MPEG-b - (PheGE) 15 reúnem-se para formar micelas compostas por um núcleo hidrófobo rodeado por uma camada hidrófila. A CMC do copolímero foi medida usando um método de fluorescência estabelecidas. A CMC de MPEG-b - (PheGE) 15 foi determinada como sendo ~ 9 ng / ml (Figura 5A inserção). Microscopia eletrônica de transmissão confirmou uma morfologia esférica para os agregados copolímero e, portanto, dinâmicadispersão de luz (Figura 3 e Tabela 2) foi utilizado para avaliar o diâmetro hidrodinâmico (D h ~ 25 nm). Como mostrado na Figura 6-A, as células L929 de fibroblasto de ratinho foram expostos a MPEG-b - (PHGE) 15 BCMs e nenhuma citotoxicidade foi observado a seguir ao período de incubação de 24 h.

Figura 5
Figura 5. A intensidade de fluorescência e caracterização de CMC. A) Lote de a intensidade de fluorescência da DPH como uma função da concentração de MPEG-b - (Phe) 15 copolímero de bloco. Inserção mostra a fase inicial da agregação de o copolímero em bloco a 0,1-10 ng / ml. B) Lote de CMC valores obtidos a partir da literatura para uma série de copolímeros com grupos pendentes fenilo no bloco de formação de núcleo. quadrados vermelhos representam os valores calculados para a energia de Gibbs de ratosllization dos copolímeros correspondentes (± 0,5 kJ / mol). 22,25-28 Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

mesa 2
Tabela 2. Caracterização das BCMs preparados pelo método de diálise.

A solubilização de drogas em BCMs é influenciado pela solubilidade aquosa do fármaco, bem como a propensão para a interacção entre o fármaco e em si e / ou o bloco de formação de núcleo das micelas. Na sua forma de sal, DOX é relativamente solúvel (~ 10 mg / ml) em água. Assim, para o seu carregamento no BCMs, DOX foi dissolvido em acetonitrilo e neutralizou-se com TEA para obter a base livre (3 eq.). Com um pKa de 8,5, DOX torna-se relativamente insolúveis sob condições básicas de condução encapsulamento nos BCMs com estabilizazação por interações de empilhamento π-¸ (MPEG-b - (PHGE) 15). Como descrito na literatura, para capacidades de carga semelhantes DOX em DOX-MPEG-b -. (PHGE) 15 foram relatadas com um valor médio de 14% (w / w) 21-24 Após ultrafiltração, verificou-se que as concentrações do copolímero tão baixa quanto 10 mg / ml solubilizadas com sucesso até 1,6 mg de DOX / ml. A eficiência de carga de droga era de até 52% (w / w) para o MPEG-b - (PHGE) 15 BCMs (Tabela 2). Os perfis de libertação de DOX das BCMs em diferentes meios de comunicação foram investigados (Figura 6c).

Figura 6
Figura 6. citotoxicidade e de liberação do fármaco cinética. A) EVALUAção de citotoxicidade em células L929 de fibroblasto de rato MPEG-b -. (PheGE) 15 de micelas de copolímero, tal como determinado utilizando o ensaio de MTS, após um período de incubação de 24 horas (n = 3 experiências individuais, SD <10%) B) espectro de emissão normalizada de DOX livre e micelas DOX-carregadas em PBS, pH 7,4 a 10 ug / ml de concentração de DOX. O comprimento de onda de excitação é de 480 nm e o espectro de emissão é coletado de 500-700 nm C) Os perfis de libertação de DOX do bloco MPEG-b -. (PHGE) 15 copolímero de micelas (quadrados) em PBS 0,1 M pH 7,4, (círculos) em PBS 0,1 M, pH 7,4, contendo BSA a 50 mg / ml (no saco) e (triângulos) em acetato de na + tampão de 0,1 M de pH 5,5 e (para baixo triângulos) DOX livre (n = 2) em PBS pH 7,4. (Para cada condição, n = 3 experiências individuais, SD <10%). Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figure.

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Discussion

Devido a um bom controlo de polimerização aniónico que proporciona sobre o peso molecular, é um dos processos mais utilizados na indústria para a preparação de polímeros à base de monómeros oxirano (PEG e PPG). As condições óptimas e rigorosas deve ser utilizado para a polimerização com êxito para ser conseguida. purificação rigorosa de todos os reagentes e aparelhos adequados são essenciais para o personagem vivo da síntese. Limitações da configuração atual está geralmente associada à técnica de transferência que depende de canulação. Usando a pressão apropriada, punção é uma técnica de escala de laboratório seguro para o ambiente acadêmico. Aplicando essas precauções irá proporcionar uma melhor reprodutibilidade e controle durante o processo de polimerização (baixo PDI). Além disso, estes processos de transferência e a purificação pode ser utilizado para a preparação de copolímeros, tais como MPEG-b -PCL, MPEG-b -PLLA, e MPEG-b -Página. 19,29 No entanto, esta Proc convenienteedure pode não ser adequado para a polimerização de alguns monómeros que requerem condições mais severas (por exemplo, estireno). Alternativamente, a técnica de separação de vedação é geralmente preferido para a polimerização aniónica. 30 Para controlar estes passos na indústria, sistemas similares (inoxidável / vidro) são ligados uns aos outros por meio de válvulas herméticos.

Para monómeros oxirano, o mecanismo geral é um ataque nucleófilo do oxiani�o (ião livre ou par iónico) no anel de oxirano, o que leva a abertura do anel de polimerização. No entanto, dependendo da natureza dos monómeros oxirano substituídos, alguns monómeros não podem polimerizar ou que não pode ser polimerizado com o peso molecular elevado. Este tipo de polimerização não tolera componentes ácidos ou básicos, incluindo o monómero de si, a espécie de solvente ou outras reacções que conduzem à terminação e / ou de transferência de cadeia no meio (perda de controlo da reacção). Para produzir um fenil copolímero em bloco PEGylated rolamentogrupos por polimerização aniónica, alternativas aos fenil glicidílico monómero de éter pode ser encontrado: estireno, óxido de estireno ou o éter de glicidilo de alilo seguido por uma reacção de Michael radical de mercaptano de benzilo são opções. mPEG pode ser preparado por condensação do monómero de óxido de etileno e, em seguida polimerizado sob as mesmas condições tal como descrito no presente documento, utilizando um iniciador de hidroxilado (por exemplo, metanol). No entanto, mPEG de diversos pesos moleculares, com baixo PDI está disponível comercialmente.

Para evitar resíduo de água, o macroiniciador (por exemplo, mPEG-OH), deve ser bem seca por meio de pré-secagem em estufa, seguido pelo procedimento de calor pistola de secagem. As reacções podem ser realizadas em solventes apróticos polares, solventes de coordenação, ou em grandes quantidades. Quando a polimerização requer condições específicas, tais como alta temperatura, solventes com uma polaridade mais forte do que o THF deve ser utilizado, tal como DMSO, HMPA ou diglima. Tal como descrito no protocolo (4 secção 2). DMSO é higroscópico e se a destilação não é bem realizada, traços de água podem inactivar as espécies activas. Outros solventes podem ser usados, mas DMSO tem uma capacidade de solvatação para catiões alta, baixa capacidade de solvatação para aniões e permite alta temperatura de polimerização. 31,32 DMSO é um excelente solvente para a base catalisada polimerização de epóxidos e olefinas com substituintes de remoção de electrões fortes. A iniciação da polimerização pode ser conseguida por geração in situ de iniciadores alcóxido de potássio por meio de titulação de mPEG-OH com uma solução diluída de naftaleno de potássio. 33 É importante preparar-se cuidadosamente a solução de naftaleno de potássio e para titular a solução com ácido antes da sua utilização. Com efeito, se a concentração de naftaleno de potássio é sob ou sobrestimada, o macroiniciador pode formar agregados ou falhar para activar completamente oiniciador e por sua vez a polimerização pode ser comprometida. Quando o naftaleno de potássio é adicionado, gota a gota, o desaparecimento lento da cor fornece o controlo visual sobre o consumo da base pelo iniciador. Sob estas condições, a troca de protões rápida entre os grupos hidroxilo (latente) e alcóxidos (activos) assegura uma polimerização controlada do monómero 13.

O comportamento de agregação de copolímeros em bloco de composição semelhante ao MPEG 122 - B -. (15) PHGE foram investigados em vários grupos com valores reportados CMC variando de 1 a 10 ug / ml de CMC para valores 25,27,28,34-36 um copolímero específico pode variar dependendo do método específico utilizado para a determinação. Neste estudo, um método baseado em fluorescência de DPH foi empregue com a sonda escolhida como dado que apenas resulta em um sinal de fluorescência, uma vez incorporada nas BCMs (Figura 5A inset). A Figura 5Binclui os valores de CMC obtidos para vários copolímeros de bloco com grupos pendentes fenilo. Como se mostra, os valores de CMC dos copolímeros variam dependendo da natureza do esqueleto de polímero tendo os grupos fenilo e grau de polimerização. 25,27,28,34-36 A troca de cadeias de copolímero entre as micelas e o meio externo depende o estado do núcleo micelar, bem como o parâmetro de interacção de Flory-Huggins entre os dois blocos e o solvente. A temperatura de transição vítrea (Tg) do homopolímero PPheGE a granel é conhecida a ser menor do que a de PS a granel. 37 Devido à natureza vítrea de PS, copolímeros com um elevado grau de polimerização de PS (n> 35) possuir um núcleo vítreo à TA (T g ~ 80 ° C). 38

Termodinamicamente, duas abordagens principais têm sido propostas para descrever o processo micelização, ou seja, o modelo de separação de fases (separação de fases na CMC), eo modelo de ação de massa (association-equilíbrio de dissociação micelar / unimers). 39 De acordo com ambas as abordagens, a energia padrão de Gibbs mudança (ΔG ◦) para a transferência de 1 mol de composto anfifílico a partir de solução para a fase micelar (ΔG energia livre de micelização), na ausência de interacções electrostáticas, é dada por ΔG = RT ln (CMC). 39 Como mostrado na Figura 5B, os valores de CMC e ΔG estão de acordo com os valores obtidos para os copolímeros que são semelhantes em composição (em termos de total de copolímero W M e relação de comprimento de bloco hidrofóbico para hidrof ílico) para MPEG-b - (PHGE) 15. Como se mostra na Tabela 1, a análise de DSC do MPEG-b - (PHGE) 15 copolímero de material a granel confirmada uma única T m a 51 ° C, que é atribuída ao bloco hidrofílico e é deprimida em relação aomPEG sozinho (60 ° C). Em solução, presume-se que os núcleos de MPEG-b -PS micelas de copolímero, com blocos de poliestireno de comprimento semelhante ao da PHGE em MPEG-b - (PHGE) 15, começa a tornar-se móvel à temperatura fisiológica (isto é, 37 ° . C) 38,40 Portanto, o MPEG-b - (PHGE) 15 BCMs provavelmente possuem um núcleo relativamente móvel que permite a movimentação local no quarto e temperaturas fisiológicas.

Neste estudo de diálise e ultraf iltração foram usadas como um meio conveniente para remover a droga livre e para aumentar a concentração do fármaco / copolímero para subsequente em aplicações in vivo. Alternativamente, secagem por congelação pode ser utilizada para concentrar a formulação; No entanto, isto requer optimização incluindo a possível adição de estabilizadores (por exemplo, PEG, dextrose) para melhorar a molhabilidade para reconstituição. A resultante DOX-MPEG-b - (PHGE) 15 BCMs mostrou s semelhantesperfis de libertação ustained (PBS 7,4) para sistemas de BCM desenvolvidos por Kataoka e colegas de trabalho. 21 em PBS a pH 7,4, menos do que 10% do fármaco total foi libertado dentro de seis horas ao passo que mais de 95% do livre DOX é libertado a partir da diálise saco dentro desse mesmo período de tempo. liberação sustentada em pH neutro indica boa estabilidade da formulação ao longo do período de quatro dias.

Soro sanguíneo humano é composta por proteína, aproximadamente, 7%, dois terços dos quais é a albumina. 41 Por conseguinte, a fim de simular as condições in vivo na libertação da droga é comumente avaliado em soluções tampão contendo concentrações fisiologicamente relevantes desta proteína. No presente estudo, a BSA foi incluído no saco de diálise numa concentração de 50 mg / ml. Na presença de albumina, a libertação de DOX do BCMs aumentada para cerca de 30%, após 4 dias de incubação a 37 ° C. Liberação de DOX das BCMs em tampão a pH 5,5 confirmou que protonatião de DOX sob estas condições resulta em um aumento na libertação do fármaco após 72 horas e este aumenta até 60% após 4 dias. Em geral, as resultantes de DOX-BCMs têm mostrado resultados promissores in vitro, semelhante ou equivalente a outras formulações de BCM DOX apresentados na literatura, e, assim, promover a avaliação adicional in vivo.

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Materials

Name Company Catalog Number Comments
DMEM/HAMF12 Gibco, Life Technologies 12500 Supplemented with 10% FBS. Warm in 37 °C water bath.
Trypsin-EDTA (0.25%) Sigma-Aldrich T4049 Warm in 37 °C water bath
Fetal bovine serum (FBS) Sigma-Aldrich F1051 Canada origin
MDA-MB-468 cell line ATCC HTB-132
MTS tetrazolium reagent PROMEGA G111B
Phenazine ethosulfate (PES) Sigma-Aldrich P4544 >95%
mPEG5K (Mn 5,400 g/mol) Sigma-Aldrich 81323 PDI=1.02
Dimethylsolfoxide (DMSO) Sigma-Aldrich D4540 >99.5%
Naphthalene Sigma-Aldrich 147141 >99%
Phenyl glycidyl ether Sigma-Aldrich A32608 >85%
Benzophenone Sigma-Aldrich 427551 >99%
Potassium Sigma-Aldrich 451096 >98%
Tetrahydrofuran Caledon Laboratory Chemicals 8900 1 ACS
Hexane Caledon Laboratory Chemicals 5500 1 ACS
Calcium hydride (CaH2) ACP C-0460 >99.5%
Diethyl Ether Caledon Laboratory Chemicals 1/10/4800 ACS
Microplate reader BioTek Instruments
Differential scanning calorimetry (DSC) TA Instruments Inc DSC Q100
Gel permeation chromatography (GPC) Waters 2695 separation moldule / 2414 detector  2 Columns: Agilent Plgel 5 µm Mixed-D
NMR spectroscopy Varian Mercury 400MHz
Chloroform-d Sigma-Aldrich 151858 99.96%
DMSO-d Sigma-Aldrich 156914 99.96%
Vaccum pump Gardner Denver Welch Vacuum Tech, Inc. Ultimate pressure 1x10-4 torr
Drierit with indicator, 8 mesh Sigma-Aldrich 238988 Regenerated at 230 °C for 2 hr

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