重组离子通道的相对细胞表面表达的总用流式细胞仪测定

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Biology

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Summary

继承心律失常通常是由改变一种或多种离子通道的表面上输送的突变引起的。在这里,我们适应流式细胞测定法,以提供在TSA-201细胞中表达的重组的离子通道的相对总和细胞表面蛋白表达的定量。

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Bourdin, B., Segura, E., Tétreault, M. P., Lesage, S., Parent, L. Determination of the Relative Cell Surface and Total Expression of Recombinant Ion Channels Using Flow Cytometry. J. Vis. Exp. (115), e54732, doi:10.3791/54732 (2016).

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Abstract

Introduction

本文提供了可靠的测定报告的膜蛋白如在使用现有的流式细胞仪技术的重组细胞中表达离子通道的相对细胞表面表达。离子通道是孔隙形成膜蛋白是负责通过门控离子穿过细胞膜的流控制的电信号。它们被激活的机制,性质和离子物质通过在那里它们被局部孔隙过渡的选择性分类。在细胞和组织水平,通过离子通道的宏观离子通量的生物物理(选通和渗透),生物化学(磷酸化),和生物合成(合成,糖基化,贩卖,和降解)特性1的产物。每个这些过程是唯一的每一种类型的离子通道,并且被优化以满足离子通道的生理作用。因此,在改变这些微调过程中通过继承或遗传修饰,通常被称为“离子通道”,可能是有害的细胞稳态。需要强调的是在细胞表面传递的离子通道的“正确”的金额为细胞稳态关键的是非常重要的。即使是很小的增加(增益的功能)和小下降(失函数)的离子通道活性有可能引起过一辈子了严重的病变的可能性。在成熟的离子通道的细胞表面输送的缺陷是在许多离子通道,如囊性纤维化(CFTR离子通道)2和长QT综合征形式(心脏钾通道)3的心律失常的重要决定因素。

离子通道与心脏猝死4有关。所有心脏离子通道的当前世界范围内流行被认为是至少为1:2,000-1:3000每个人5和负责一半左右突然心律失常心脏病死亡的CaSES 6。功能障碍在心脏的电压门控钠 - ,钾和钙 - 选择性离子通道已知在此过程中的关键作用。的L-型Ca V 1.2电压门控钙通道,需要发起同步心脏肌肉收缩。心脏L-型Ca V 1.2通道是α2δ1辅助亚基7-12的主孔形成的Ca Vα1亚单位和Ca V SS和Ca 的V组成的多亚基蛋白复合物。需要注意的是辅亚基的满装需要产生在质膜官能的Ca V 1.2通道和动态相互作用之间的这些亚基是必不可少的,以支持心脏13的正常电动功能。钙V SS促进钙的细胞表面表达通过非共价纳摩尔疏水相互作用14 1.2通道。钙Vα2δ1亚基无线的共表达次的Ca V SS结合的Ca Vα1刺激峰值电流表达式(5至10倍),并促进信道激活的更多负电压。增益的函数的孔隙形成亚基的Ca V 1.2已经用称为而形成L-型Ca V 1.2通道的三个主要亚单位的宿主点突变的长QT综合征15的室性心律失常的形式相关联的基因突变从短QT综合征形式16,17心律失常的受试者已经确定。离子通道是可以从生物化学观点(蛋白质化学)进行调查,或使用电的工具(电流产生的机器),并常常使用这些互补的方法膜蛋白。电生理学,特别是全细胞膜片钳,是阐明离子通道15的功能的合适的方法,但不能从它们的生物物理变化解决蛋白质运输的修改属性。蛋白质化学已然而,经常使用有限的,由于相对于较小的可溶性蛋白大的膜蛋白的相对低的表达。用荧光读数鲁棒高通量方法需要为了专门解决在蛋白质生物合成引起离子通道的细胞表面表达的变化的缺陷被开发。

流式细胞术是在细胞计数,分拣,生物标志物的检测,以及蛋白质工程18中采用的生物物理技术。当活细胞或颗粒的样品溶液被注入到流式细胞仪,细胞被排序成可由机器的检测系统( 图1)被探测的单个流。第一流式细胞仪1956 19产生仪器检测到只有一个参数,但现代的流式细胞仪具有多个激光器和荧光检测器,使超过30荧光参数20,21的检测。镜和反射镜(光学发射)指示细胞的光散射或荧光到按比例转换成光的强度的电子网络(光电二极管和探测器)。数字数据使用专门的软件分析和主输出显示为一个点图21。

图1
图1:流量生物物理学原理术分选的单细胞被通过喷嘴在高压下鞘流体的流,其通过一个或多个激光询问点移动他们内推。的光束被传递细胞偏转并在向前的方向(前向散射,FCS)的收集的光被发送到的光转换成成比例的小区的大小的信号的光电二极管。的光也收集在一个90°角的激光路径并传送到检测器(也称为光电倍增管(PMT))。如果激发荧光染料是存在于细胞中这个光透过分色镜允许侧向散射信号(SSC),这反映了细胞内的粒度的检测,和荧光发射路由。三个检测器(绿色,黄色和红色)被表示具有不同波长的带通滤波器,允许不同的荧光染料的同时检测。不同的信号被外部的计算机数字化并转换成将要分析量化细胞的特性数据。 请点击此处查看该图的放大版本。

流式细胞仪的高通量容量利用来量化重组野生型和贩卖缺陷电压门控L-型Ca V 1.2通道和在活细胞相关亚基的相对膜表达。 cDNA构建合作丁对蛋白双重标记同时进行,可以由一个不渗透的荧光缀合的抗体和细胞内的荧光团是组成型荧光来检测细胞外的非荧光的表位。两者胞外表位,插在该蛋白质的细胞外环,与细胞内荧光团,C末端后插入,被翻译的蛋白质。在这一系列的实验中,钙Vα2δ1蛋白质工程改造以表达一种细胞外血凝素(HA)表位(YPYDVPDYA)由一个不渗透的FITC(异硫氰酸荧光素)检测到的缀合的抗HA和mCherry作为固有细胞内荧光团。为了确定mCherry钙Vα2δ1HA标记的蛋白的相对细胞表面的表达水平,表达的融合蛋白的重组细胞转染后,收获,并用FITC-缀合的小鼠单克隆抗HA表位标签antibod染色Y( 图2)。 FITC是有机荧光化合物为比酶记者相当小,因此不作为可能与生物功能干涉。 mCherry-钙Vα2δ1-HA在TSA-201cells过表达时,产生在FITC荧光和mCherry荧光二维图22显著3-日志增加。鉴于该HA抗原决定基位于所述蛋白的细胞外部分,在完整细胞的存在下获得的FITC的荧光强度反映的HA标记的蛋白的细胞表面表达的相对指数。在结构的HA抗原决定基的可访问性系统通过测量细胞透后FITC信号验证。这项措施也有助于证实了标准化总蛋白的表达,因为对FITC荧光的相对强度在透细胞估计是定性相媲美的相对荧光值FOřmCherry透和非透化条件22,23下进行测定。要注意的是本征荧光光谱透后向更高值移位但相比于对照构建所报告的唯一值是在荧光强度的变化是很重要的。在荧光强度为测试构建体的相对变化所使用的ΔMean荧光强度(ΔMFI)值对于每个荧光团(mCherry或FITC)估算。实验设计用于测量相对于在相同条件下表达的对照构建的荧光强度测试构建体的荧光强度,以限制在所述荧光团共轭抗体的固有荧光实验的变化。使用该测定两膜蛋白被成功地研究了:在一个不同系列的L型电压门控钙通道的Ca V 1.2 14,22和孔形成亚基实验中,细胞外辅助的Ca Vα2δ1亚基22,23。以下方案用于测定1.2信道控制的条件下,影响离子通道的翻译后修饰的突变后的心脏L-型CaⅤ的钙Vα2δ1亚基的细胞表面表达。根据标准化的实验条件下,FITC的细胞表面的荧光增加的准线性的cDNA编码的mCherry钙Vα2δ1-HA蛋白质( 图5从参考22)的表达。

图2
图2:在流式细胞术实验方案的总流量和膜标签的示意图的方案概述了一些必要的主要步骤来量化由佛罗里达州的重组离子通道的相对总和细胞表面表达流式细胞仪。细胞在TSA-201细胞(1)用双标记的结构mCherry钙Vα2δ1-HA转染的和之前或透化后染色的(2)。多参数数据在流动收购仪(3)多因素分析(4)。 请点击此处查看该图的放大版本。

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Protocol

1.双标记的DNA构建

  1. 通过定点诱变( 3B)20插入在D676和R677之间的Ca Vα2δ1的胞外接头的HA抗原决定基(YPYDVPDYA)。使用正向引物gccggattatgcgGGAAAACTCCAAACAACC和反向引acatcatacggataTCAATAAATTCATTGAAATTTAAAAGAAATTC。
  2. 亚克隆被标记的HA的Ca Vα2δ1的cDNA序列为设计为表达融合到SacI和SalI位点( 3B)20之间mCherry的N-末端的蛋白质的哺乳动物pmCherry-N1表达载体。
    注意:适当的通道功能需要使用标准的电生理学方法24的控制结构进行测试。

2.脂质体介导瞬时转染(30分钟,所有的步骤中进行在层流罩)

  1. 第1天:板五十万TSA-201细胞(或HEKT)在35毫米培养皿用Dulbecco的2毫升的高葡萄糖的最低必需培养基(DMEM-HG)补充有10%胎牛血清(FBS)和1%青霉素 - 链霉素(PS)的培养基中。算使用标准血细胞计数器细胞。使用台盼蓝的细胞样品的一小部分评估细胞生存力。板足够的细胞在转染时达到90%汇合。
  2. 第2天:用2ml新鲜预热(37℃)培养液的无PS变化的培养基。
  3. 对于每一个转染样本,准备2个1.5 mL管。在管1,稀4微克DNA在250微升血清培养基降低。在管2,混合10微升用250微升血清减少培养基中脂质体介导的转染试剂。使用前轻轻混合转染试剂。
  4. 孵育在室温下5分钟。
  5. 结合管1和管2的内容,轻轻混匀孵育在室温下至少20分钟。
  6. 添加脂质体/ DN一个复合物培养的细胞,轻轻摇晃培养皿中混合。
  7. 在37℃孵育下,5%CO 2气氛 24小时。

3.细胞的流式细胞染色(3小时)

  1. 准备电池样品
    1. 第3天:小心地取出从培养皿中并用400μl的预热(37℃)0.05%胰蛋白酶-1X EDTA(乙二胺四乙酸)洗涤细胞。
    2. 添加400μl的胰蛋白酶-EDTA,并在5%的CO 2气氛中孵育在37℃下的菜5分钟以使细胞从培养皿中分离。
    3. 通过加入1毫升冷的培养基中无PS停止酶消化并吹打轻轻4-5倍洗出从表面所有的细胞。避免过度消化和过度吸液,减少细胞死亡。
    4. 收集细胞1.5毫升管,并立即置于冰上。使用冰冷的溶液,并保持细胞在4℃下,以防止内在化表面抗原。减少照明,以限制所述荧光信号的光漂白。
    5. 离心管,在400×g离心在4℃下5分钟。小心吸弃上清。
    6. 重悬在1ml磷酸盐缓冲盐水1X的粒料(PBS)中以制备单细胞悬浮液。
    7. 简而言之轻轻涡管并重复步骤3.1.5和3.1.6彻底清除培养基。
    8. 重悬在600微升1×PBS中的沉淀和调节细胞浓度至最小的3×10 6个细胞/ ml。
    9. 分裂细胞有两种新的1.5毫升管的细胞外和细胞内染色。包括适当的控制,以区分与非特异性染色特异性染色。
      注:同种型对照抗体有助于评估背景染色的水平和应该理想匹配每个初级抗体的宿主物种,同种型和荧光团。使用同种型对照和缀合的抗体在相同的蛋白质浓度。

表格1
表1: 流式细胞仪对于实验对照样品不透和透化的细胞的每个实验需要包括以下阴性对照:(1)未转染的细胞(无抗体,同种型或同偶联的抗体)。 (2)转染的细胞与感兴趣的质粒亚克隆而不构荧光细胞内荧光蛋白(pCMV-钙Vα2δ1-HA)或者与双重标记的结构(pmCherry钙Vα2δ1和无抗体温育,用同种型或同共轭抗体)。单一的色彩控制用于荧光发射重叠的赔偿。相同的控制将运行于非透化,并在各系列实验透条件。

  1. 的完整细胞表面染色活细胞
    1. 等分试样1×10 6细胞/100μl的在1.5ml管中。
    2. 添加FITC偶联的单克隆抗HA抗体以5微克/毫升和,涡流在4℃下孵育细胞上在黑暗中摇杆平台(200rpm)下进行45分钟前。
      注:在初步滴定实验测定抗体的最佳浓度( 图4)。
    3. 从黑暗中取出细胞,并添加900微升1×PBS /管。离心机在400×g离心在4℃下5分钟。
    4. 吸出上清液,并在400 xg离心重悬沉淀在1ml 1×PBS中,涡旋并离心在4℃下5分钟。
    5. 重复洗(步骤3.2.4)两次以去除任何未结合的抗体。如果使用未缀合的初级抗体,孵育用适当的二级抗体。
    6. 最后一次洗涤后,重悬细胞于500μl1×PBS中的和传送单细胞悬浮液在5毫升流式细胞术管。保持细胞S IN在4℃黑暗中直到运行样品。
    7. 在流式细胞仪上运行样本。为了达到最佳效果,分析仪上尽快但不迟于24小时后流的单元格。
  2. 细胞内染色:固定,通透和染色
    1. 等分试样1×10 6细胞/100μl的1.5毫升管和离心机在400×g离心在4℃下5分钟。
    2. 弃上清,悬浮细胞在100微升直接从股票注视通透的解决方案。
    3. 孵育在黑暗中在4℃下20分钟。
    4. 添加新鲜配制的1X通透,洗涤液100微升(稀释蒸馏水2 O 10倍通透,洗涤液)。使用在400×g离心5分钟一台离心机在4℃涡流和沉积物的细胞。
    5. 吸弃上清。
    6. 重复步骤3.3.4和3.3.5。
    7. 添加FITC偶联的单克隆抗HA抗体以5微克/毫升在100μl1×透洗涤缓冲液中,于4℃下30分钟在黑暗中温育细胞前涡流。
      注意:下面的相同的步骤,用于细胞表面染色的一种是进行细胞内染色。皂素介导的细胞透然而,一个快速可逆的过程,因此,用1×彼尔姆/洗涤缓冲液,以取代1×PBS中,以保持细胞的皂素的细胞内染色过程中恒定存在是重要的。
    8. 从黑暗中取出细胞,并加入100微升通透,洗涤液。离心机在400×g离心在4℃下5分钟。
    9. 吸小心上清,重悬在100μl透洗涤缓冲液,涡旋和离心沉淀,在400×g离心在4℃下5分钟。
    10. 重复洗(步骤3.3.9)1次,以去除任何未结合的抗体。
    11. 最后一次洗涤后,重悬细胞于500μl1×PBS中的和传送罪GLE细胞悬液5毫升流式细胞仪管。保持在黑暗中的细胞在4℃下直到样品注入流式细胞仪。
    12. 在流式细胞仪上运行样本。尽快但不迟超过1周染色后运行的流式细胞仪的固定样本。运行在同一天,非透化和透化的细胞。

4.流式细胞仪

  1. 流式细胞仪细胞分选日报安装
    1. 打开流式细胞仪软件。试验,标定和设置流式细胞仪细胞分选流程,以确保最佳的仪器性能之前使用的仪器设置珠( 激光和光学系统,满足规格,激光和流动池正确对齐)。
    2. 使用100微米的喷嘴以20 PSI鞘压力。
      注:该喷嘴不具有的长椅上改变流式细胞仪。
    3. 根据厂家专业设置流式细胞仪的流率呃规范。非常高的流速将在检测的荧光变化的降低的敏感度。
    4. 选择蓝色(488纳米激发荧光Isothiocayanate或FITC)和黄绿色(561纳米激发mCherry)激光器。收集FITC和mCherry荧光水平与530/30 nm和分别与二十零分之六百十纳米的带通滤波器。
    5. 获得前向散射(FCS)对侧向角散射(SSC)的点积用线性刻度未染色细胞。调整各检测器的放大的可视化的细胞中的点图的左下象限。
  2. 完整的非渗透细胞的样品读数
    1. 由划定游离形式围绕待分析的细胞不包括细胞碎片和细胞聚集体,从而限制了荧光信号以完整细胞设置P1gate活非透化的细胞。
      注:活/死排斥染料可以用来促进活细胞上闸门布置。设置10,000个事件记录在止动门P1。设置此向更高一些事件如果需要的话。
    2. 收购mCherry与FITC双参数等高线图来检测未染色细胞的自发荧光基线。使用双对数刻度显示负值,提高人口25之间的分辨率。调整各检测器的电压来设置所述第一10个单位的日志荧光强度曲线的下部分内的未染色的阴性细胞。
    3. 通过收购成立于4.1.5和4.1.6设置都完好无透样本和收集FSC,SSC和信号的荧光检测器。
    4. 出口和保存* .fcs文件被用于使用流式细胞分析软件分析。
  3. 透细胞样本解读
    1. 移动至P1栅极透样品中选择活细胞和所示4.1.5和4.1.6调整FSC和SSC电压。
    2. 收购全部透样本和收集FSC,SSC一在荧光检测第二信号。
    3. 出口和保存* .fcs文件被用于使用流式细胞分析软件分析。
  4. 数据分析
    1. 启动仪保存在4.2.4和4.3.3分析软件和进口* .fcs文件流。
    2. 单击工作区窗口中列出的第一个样本。一个管ID号命名的新窗口自动打开。在SSC的与FSC的情节开始浇注过程。绘制周围使用活细胞的椭圆图标栅极(P1)和消除任何碎片,死细胞,或聚集体具有比活细胞不同的前向散射和侧向散射
    3. 绘制mCherry(y轴)对FITC(x轴)的活细胞的荧光强度的双参数等高线图,点击首先在x轴和选择的FITC的信道,然后单击在y轴并选择PE-mCherry-A通道。点击“四”图标象限标记处的边缘位置utofluorescent细胞各荧光通道。
      注:门周围的FITC和mCherry阳性细胞集是P2大门。荧光阴性细胞群称为P3栅极。参见图5本文中所使用的典型门的方法。
    4. 选择P2和P3盖茨和点击原工作区窗口中的“添加统计信息”图标。点击“计数”(阳性细胞数的),然后点击“中庸”(平均荧光每个荧光强度)或“中间”(每个荧光染料的荧光强度中值)的选项列表中的统计信息。再次单击“添加统计信息”图标。所有这些值都自动转移到原来的工作区窗口。
      注:“平均”只有当荧光强度服从正态分布使用。在所有其他情况下,单击“中间”选项卡。因此,小额信贷机构可以参考平均荧光Intensity或中位数的荧光强度。
      注:下一步骤是栅极'参数和统计信息应用于通过流式细胞仪探测的所有样本。
    5. 在工作区窗口中,用鼠标拖放盖茨和统计参数上标出所有样本。
    6. 生成二维等值线图(mCherry VS FITC)和直方图(细胞计数与荧光强度)对非透化和透化的细胞( 图6A - B)的批处理报告。
    7. 从在步骤4.4.4生成的统计信息,计算每个荧光的染色的细胞的平均荧光强度(MFI)。从这个值,减去未染色的细胞获得的表面和感兴趣的蛋白质的总表达量化MFI值。
    8. 报告各荧光(mCherry和FITC)( 图6C - D)的ΔMFI值。规范化的钙测量的ΔMFI 注:荧光强度的绝对值可能大幅变化,这取决于批量的抗体和各实验室工作人员的技术能力,因此需要正常化使用WT构建体中的突变体构建体的荧光强度。

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Representative Results

本文介绍了一种可靠的协议通过双色流式细胞术测定法来量化TSA-201cells表达的重组的离子通道的总和细胞表面。作为一个例子,相对的细胞表面和总蛋白表达的钙Vα2δ1subunit定量。为了进行流式细胞术测定中两色流动,钙Vα2δ1被双重标记,以表示可被一个抗HA FITC缀合的抗体和组成型荧光灯内mCherry荧光团来检测一个细胞外的非荧光的表位的HA。对FITC和mCherry的激发和发射光谱表明,FITC被激发与488纳米的激光88%的效率,但效率下降到0%与561纳米的激光器。的mCherry显示其最大荧光的63.9%,当用561纳米激光,但只有7.6%的488纳米激光( 图3)激发。激发和发射SPECTRA两种荧光团表现出最佳的采光和最小的重叠与选定不同的激光器和过滤器。流式细胞仪分析可提供从一个大的细胞群大约膜蛋白的相对表达的定量信息只要MFI对于给定荧光染料成正比的Ca Vα2δ1对每个单元中的蛋白的表达,而不是荧光细胞的数目。这涉及到使用超出饱和荧光缀合的抗体的浓度。对于抗HA FITC缀合的抗体结合的Ca Vα2δ1( 图4)滴定曲线示出了三个阶段。虽然在第一阶段中没有检测到荧光,荧光强度与在第二阶段增加抗体浓度成倍增加。饱和度(第三阶段)的点之后,增加抗体的浓度对相对荧光INTEN没有影响减到的FITC(RFI)。的抗HA FITC缀合的抗体的饱和点在5微克/毫升成立,从而保证在实验过程中的共轭抗体的浓度不限制MFI。

加标签的Ca Vα2δ1was在TSA-201cells表达和流式细胞测定法中的FITC偶联的抗HA的存在下,在非透化的细胞( 图5)进行。适当的控制( 表1)上的流式细胞仪上的属性的xy值给每个小区通过激光束进行分析。细胞分布上观察点图( 图5A)。 FCS / SSC散点图确认细胞样品的制备提供了高存活率( 图5BA)的单细胞悬浮液。对活细胞(P1)的所选择的栅极代表分析的细胞的总数的75%。总蛋白表达Ø在TSA-201细胞˚F钙Vα2δ1被认为是成比例的mCherry荧光。正如mCherry FITC等高线图和直方图可见-与pmCherry钙Vα2δ1-HA转( 图5BB BC),47 2%TSA-201细胞被发现显著表达mCherry荧光以及显示由于显著FITC荧光的结合在非透化的细胞的Ca Vα2δ1的外部HA标签。无抗体或用同种型进行阴性对照实验表明,FITC仅或主要结合到正转染的细胞。

该协议被用来表征对Ca Vα2δ1的总和细胞表面的表达中TSA-201cells 23 N-糖基化的作用。实验是在非透化的细胞中进行,以评估细胞表面表达并在透化的细胞以评价总蛋白表达以及确认HA抗原决定基的可及性。基于计算出的Ca Vα2δ1的相对表达于MFI估计每个荧光团(mCherry或FITC)。对于突变体ΔMFI值标准化为测定当天为mCherry钙Vα2δ1-HA WT中的最大值相同的条件下表达。这在抗HA的FITC缀合的抗体的绝对荧光强度随时间占的变化是重要的。如在图6A中看到的,在非透化的细胞的ΔMFI为FITC强劲用于WT和4xNQ构造,但接近为16xNQ构建体的背景荧光水平表明该蛋白质是从质膜几乎不存在。测定细胞透之后进行的,结果表明,16xNQ构建体的总蛋白表达也显著降低它是否在透化的细胞,或从非透测定的构mCherry荧光和透化的细胞( - D 图6C)从FITC荧光推断。如在图6B中看到的,蜂窝的自发荧光水平细胞透,这防止完好非透和透化的细胞之间的绝对荧光值的比较之后增加。对于mCherry测量的ΔMFI荧光是两种不透和渗透细胞以表明通透的解决方案不会改变mCherry的相对荧光信号相似。的N-糖基化位点的突变与在mCherry的荧光强度支承公布观察该蛋白质生物合成/稳定性降低23下降有关。在这一系列的实验中,在透化的细胞测定FITC的相对荧光信号原来到bË比mCherry表明该蛋白的N-糖基化类型的状态可以影响由在胞外域的FITC偶联的抗HA抗体检测出的荧光强度的相对信号更小。共细胞透前后的变化FITC的相对荧光提供了可靠的指标来量化蛋白表达。

图3
图3:FITC和mCherry形成一对合适的荧光染料为双色流式细胞测定法激励(空曲线)和FITC标记的发射光谱(实心曲线)激发488nm的蓝色激光(AA)和mCherry兴奋561纳米黄光绿色激光(AB)。FITC和mCherry荧光收集用530/30 nm和一个二十零分之六百一纳米bandpasS表示过滤器。不同激光器(有色的垂直线)和滤波器(彩色矩形)的波长被选择为最佳的光收集和最小重叠。 (B)mCherry-Vα2δ1-HA蛋白的示意图。钙Vα2δ1倍加标记来表示,可以通过抗HA FITC标记的抗体和组成的荧光细胞内mCherry荧光检测到细胞外无荧光抗原HA。 请点击此处查看该图的放大版本。

图4
图4:抗HA FITC缀合的单克隆抗体结合的Ca Vα2δ1滴定 TSA-201细胞中瞬时与pmCherry钙的V&染 #945;2δ1-HA和与一系列抗HA FITC缀合或同种型的抗体的孵育。仅FITC信号在该面板被分析。 (A)的单参数直方图显示细胞在y轴的相对数量和在x轴为浓度的抗HA FITC缀合抗体的范围(0.01〜20微克/毫升)的FITC荧光强度。 (B)中的抗HA FITC缀合的抗体作为FITC的MFI的函数的半对数座标图。滴定曲线是使用一个网站绑定方程趋势线值R 2 = 0.99561装。对于同型抗体滴定进行显示无荧光预期。 0.001〜0.01微克/毫升的浓度从背景噪声区别。 请点击此处查看该图的放大版本。

1“> 图5
图5:代表流式细胞术pmCherry钙Vα2δ1-HA(A)的流式细胞仪分析样本用于浇注战略示意图转非透TSA-201cells的分析。采集与适当的软件后进行数据分析。第一门控策略利用了前向散射(FSC)和侧向散射(SSC)散点图来显示栅极(P1)围绕活细胞和消除任何碎片,死细胞,或聚集体具有比活细胞不同的前向散射和侧向散射。的mCherry(y轴) FITC(x轴)荧光强度的两参数等高线图中显示为P1的人口。长方形闸被放置在小区的自体荧光的边缘以选择阳性群P2(FITC和mCherry)和阴性群P3。在t荧光水平他在区域内的P2细胞和P3用随后的细胞计数 FITC或mCherry荧光强度的单参数柱状图进行可视化。在Y轴和X轴的荧光强度的转变分别提供的Ca Vα2δ1的总和膜表达的可靠指标。荧光信号的强度增加作为荧光分子数的函数。 (BA)代表FCS / SSC点图的是规定每个条件。一共有10,000个事件被收购进行分析。椭圆门(P1)是由眼周围排除低FSC(死细胞)或高SSC(聚合)的事件活细胞绘制。 (BB)代表双参数轮廓 FITC(x轴) 荧光强度盖茨的mCherry(y轴)的曲线图被放置在所述细胞偏析FITC-mCherry阳性细胞群的自体荧光的边缘(P2栅极)和负荧光的细胞(P3)。 (BC)单巴rameter相对数(或最大的百分比)细胞荧光强度(FITC或mCherry)的直方图。为P2栅极(荧光阳性细胞)内的细胞测得的荧光强度的分布示于灰色,和荧光强度的中存在的P3栅极(荧光阴性细胞)的细胞的分布显示为一个叠加透明的灰色情节 。可以看出,荧光强度强为mCherry和FITC表明钙Vα2δ1能很好地表达清楚地存在于细胞膜。 请点击此处查看该图的放大版本。

图6
图6: -glycosylation网站同时突变打乱了细胞表面的前Vα2δ1的PRESSION,稳定TSA-201钙Vβ3细胞中瞬时染pCMV钙V 1.2 WT和pmCherry钙Vα2δ1-HA WT或突变体转染同时进行。如上所述非透化(A)和透化的细胞(B)中,用抗HA FITC缀合抗体染色。对于抗HA的FITC缀合抗体染色(右图)的荧光强度的分布的mCherry FITC荧光(左小图)和直方图的代表两参数等高线图中示出用于后N个 -glycosylation突变体(NQ)四个位点的破坏(4xNQ:N92Q / N184Q / N468Q / N876Q)和16个网站(16xNQ:N92Q / N136Q / N184Q / N324Q / N348Q / N468Q / N475Q / N585Q / N594Q / N663Q / N769Q / N812Q / N876Q / N883Q / N973Q / N986Q)在完整的非透或NP细胞(A)和透化或P细胞(B)。该DISTRIB为P2栅极(荧光阳性细胞)内的细胞测得的荧光强度的ution示于灰色,和荧光强度的中存在的P3栅极(荧光阴性细胞)的细胞的分布是在一个透明显示为叠加灰色的情节 。如在(B)中看到的,自发荧光水平细胞透后增加。对于FITC指示所有转染HA标记的Ca Vα2δ1蛋白质进行染色并通过抗HA FITC抗体检测出的荧光强度为所有转染的透化的细胞增加测量(视为在x轴右移)。 (C)棒图显示FITC的完整的非透(表面表达)存在测量的标准化MFI或透细胞(共表达)。相对荧光密度一式三份测定各条件(30,000个细胞),并在细胞中的三个不同批次transfec泰德历时1个月,因此该数据被显示为平均值±SEM 90,000细胞为每个条件。峰荧光强度转染后24和36小时之间达成。在完整的非渗透细胞测定FITC的ΔMFI值被用作钙Vα2δ1-HA的细胞表面表达的索引,并在透化的细胞测定FITCΔMFI值反映了总蛋白表达(细胞表面和细胞内蛋白质表达)。 ΔMFI为FITC通过从FITC阳性细胞(P2)的荧光强度减去FITC阴性细胞(P3)的FITC荧光强度计算。用同样的方法来计算mCherry的ΔMFI。 MFI值标准化为测定当天为mCherry钙Vα2δ1-HA WT中的最大值。 (D)棒图显示的归ΔMFImCherry非透或透细胞(TOT测量人的表达)。结果表示为平均值±SEM 请点击此处查看该图的放大版本。

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Discussion

此术为基础的流量测定成功地应用于电压门控钙通道14,22,26的荧光标记的成孔和相关的亚基的相对总和细胞表面水平的测量。调查基因突变的影响时,最好使用,因此要求该荧光标记标记的野生型构建体的固有荧光强度为至少10至100倍的荧光标记未标记的构建体的荧光强度大。在这个特殊的情况下,在此描述的mCherry钙Vα2δ1-HA构建体产生了较大的信噪比和更大的动态范围比对于先前公布的Ca V 1.2-HA和Ca V 2.3-HA构建体测定的。这有很多原因可想而知。可以推测,HA抗原决定基中的钙的V&的胞外域的本地环境#945;2δ1蛋白质最大化信号到FITC偶联抗HA抗体的信噪比。

另外,它要记住,这种方法没有提供在细胞表面蛋白的数字的绝对值是重要的。可通过侧膜片钳进行侧和流式细胞仪的相同条件下的实验中所示的参考22 图7仍然获得,以获得功能性通道表达所需的标记构建体的相对表达。从这些数据,可以预计,峰值电流密度,离子通道活性的全局量度,通常随着标记的Ca Vα2δ1亚基的表面表达的功能。该电流细胞表面表达测定法的主要限制仍然是它不能在这个时候被应用到内源性离子通道的研究。这是由于这样的事实,即几个市售抗体已知特异性结合离子通道的预测外部域。因此它需要的蛋白质的一级序列的遗传操作在未分化重组细胞系进行研究表达如TSA-201细胞。

在测定的优化关键步骤:将适当对荧光团的鉴定,外部表位的选择和插入部位的定位是该方法的成功是至关重要的,因为所述表位的插入不应干扰蛋白质的功能。不同荧光团的组合进行了测试。两个外部表位:血凝素(HA)表位(YPYDVPDYA)和银环蛇毒素-结合位点的表位(WRYYESSLEPYPD)27和三个不可渗透的荧光标记的抗体进行评价,即FITC(异硫氰酸荧光素) -时,R-藻红蛋白- ,和在PE-Cy7-结合的抗体。此外,超过10个不同的插入网站外部HA抗原表位进行了钙Vα2δ1内进行测试。对于该表位的插入要求定点诱变和重组DNA技术,建议在同一区域内设计一个最小的三套引物。用9个残基,所述HA抗原决定基为其中存在市售的荧光标记的抗体,但在插入27个核苷酸的成功率比点突变下的小的表位中的一个。四半胱氨酸基序(残基半胱氨酸-半胱氨酸-Pro的基-Gly-半胱氨酸-半胱氨酸)比HA抗原决定基2个残基的长度,但荧光砷发夹粘合剂是膜透膜,不适合的膜结合蛋白28的分析。初步实验用两种细胞内的荧光团mCherry和绿色荧光蛋白(GFP)进行。三个标准被用来鉴别成功一对荧光团与离子通道:的荧光团需要1)发射光谱不重叠(详情请参阅参考资料20,21); 2)标记的构建体的表达产生在如通过标准电生理学方法验证重组细胞功能的离子通道; 3)控制构建体的表达产生一个强大的荧光读数。如果上述条件之一不满足,例如,如果标签或荧光的插入与通道功能的干扰,一个人回到了起点和修改外部表位和/或插入位点的插入任一网站的荧光。该蛋白质的C-末端和荧光团之间的5谷氨酰胺残基的连接物可有助于改善蛋白功能。此外,它可能有助于插入在未已知在蛋白的功能和/蛋白质糖基化的关键角色大环路外部的表位。人们还需要注意的小的技术问题。

脂质体介导TRANSF的成功率挠度在TSA-201细胞能钙Vα2δ1内的两个表位的插入后降低。因此,建议重新校准与新的DNA构建体的转染效率。这是因为一个30 k​​Da蛋白的插入改变了DNA的分子量。如有必要,3或孵育将细胞在37℃下在较长的时间段(24-72小时):一个可以修改的DNA的脂质体的比例为1:2至1。选择合适的制剂为透化细胞中,这是很重要的。评估该项目最自制的解决方案被证明导致细胞聚集和细胞仪堵塞的流动。

抑制光曝光而染色的荧光团共轭抗体的细胞是必不可少的,以限制光漂白和信号损失。为了最大限度地减少荧光背景,在使用前向离心过量缀合的抗体是很重要的。最后,这是在尽重要性来分析Ť他在细胞流式细胞仪尽快尽可能不迟于24小时后的流量。过夜保持染色的细胞在4℃下将有可能降低信号和损害细胞的存活。在批次的荧光团共轭抗体的固有荧光的变化决定了测试构建体的荧光强度需要作为对照构建体的荧光强度的函数相同的实验条件下表达进行报告。

以实现一个总体良好的信噪比,建议减少细胞移液以减少细胞死亡和轻轻重悬细胞,使得3×10 6个细胞/ ml在流动注射仪。要注意的是更高的细胞浓度会降低细胞流并可能仪堵塞的流动。另一方面,较低的细胞浓度将需要较长的处理时间。由此一可能需要调整取决于TY浓度细胞的PE进行分析。

备选测定法:部署以记录在四个大类别的离子通道的细胞表面质膜落入存在其他方法:1)共焦成像的方法利用荧光团共轭抗体和靶蛋白之间的高亲和力相互作用; 2)蛋白质化学技术搁在由生物素化的试剂的靶蛋白的共价修饰; 3)非稳态噪声分析的电措施;和4)用放射性探针靶蛋白的光亲和标记。在电压-门控钙通道,带氚化(±)光亲和标记的情况下- [3 H]的PN 200-100,二氢吡啶家族的高亲和配体进行了广泛的在20世纪80年代31使用。它仍然是一个高度敏感的检测,但涉及放射性物质31,这已经跟不上潮流的来临以下的操作高度敏感的荧光和发光探针尤其是年轻的研究者。此外,它不可能测量在拮抗剂,以使得表面的表达和功能之间的相关性超越了这种方法的范围的存在离子通道活性。在试验连续的另一端,离子通道的非稳态噪声分析需要高质量的千兆欧密封的膜片钳记录与分钟长的录音稳定的基线。用这种方法可以从图形绘制噪声方差为在任何给定电位32-34测定的平均电流的函数的斜率提取在单个小区开放的离子通道的数量。它显示的标准电方法相同的派头。这是除了需要与光谱分析32-34,而不是细胞生物学家的主食一个很好的熟悉劳动密集型和低通量方法。此外,这种类型的analysi的s标识这可能是比在膜总蛋白的数量不同活性离子通道(在打开状态)的数目。用生物素试剂的细胞表面蛋白的标记是一个相对有效的工具来确定存在于质膜的蛋白质。此方法利用由生物素和进一步的高亲和力和高特异性的非共价到膜不通透性的链霉抗生物素蛋白或分子的生物素结合的膜蛋白的共价修饰。这种方法是定性可靠,但受阻或定期使用免疫印迹法揭示蛋白质定量相关问题的限制。共焦成像和其衍生物广泛用于记录膜蛋白与细胞表面35的共定位。定性质膜隔离仍然可以使用差速离心技术,有或无蔗糖梯度36。如在上述流式细胞仪阿萨Y,它依赖于目标蛋白和荧光团共轭抗体之间的高度特异性的相互作用。特别是全内反射荧光成像,是一种有效的方法,可以在膜表面37,38报告单离子通道的分布和分子的行为。读出的绝对是抢眼,但仍低通量小批量的方式。所有这些试验的有其科学价值。高吞吐量流式细胞术为基础的测定是在读出的重现性和可量化指标方面优异,但需要方便地访问多激光流式细胞仪细胞分拣是在大型机构核心设施的一部分。基于荧光板阅读器更便宜,更容易获得,但信噪比与在相同的实验条件下,相同的构建体获得的测量在很大程度上为更高的荧光背景是显著降低。荧光团共轭的成本tibodies也可以在特别是由于因素来的具有与测试构建体来处理适当的控制实验的数目。同一主题的变化包括改变荧光染料标记的抗体以高性价比而酶的活性可以通过化学发光29,30进行测定辣根过氧化物酶或碱性磷酸酶记者抗体。

结论:双色荧光测定法开发来估计使用的流式细胞仪的培养细胞中表达的重组蛋白的相对细胞表面表达。虽然只有两个荧光参数在当前的试验中使用,流式细胞术是经得起超过30的荧光探针的在单个小区中的同时检测,证明该方法的高度灵活性。这种高通量超灵敏测定可适于调查基因突变22,26或翻译后modificati的冲击组件23,以及学习伴侣的药理学特征为膜蛋白的技术39的表面贩卖。这个协议背后的推动力从需要隔离,以评估基因突变对重组​​细胞离子通道的膜表达的影响引起的。要注意,在模型细胞系突变体通道功能障碍的严重程度并不总与在突变携带者5临床症状的严重程度,部分关联,因为在不同的等位基因的突变的组合可能需要触发心脏猝死40是但重要41。在这种情况下,该测定可以看作是提供在与失功能突变22相关联的单个基因研究的单个或多个突变的快速第一步近似。它是然而似是而非今后设想在cardiomyocy的分化的细胞相同的构建体的病毒介导的表达德血统。总体而言,与其他的成像或发光的技术相比,流式细胞仪分选机处理以均匀细胞群体的悬浮液和报告荧光强度的活细胞。这个过程是即使在温和的条件42,而不需要用多聚甲醛,诱导局部等离子体膜通透性的方法固定完成,。该法是快速,特异,并方便以达的分析,以每工作日几百样品。除了分析,细胞可以最终被流式细胞术分选来评估表达较高或较低的水平相同的膜蛋白的细胞的功能的潜力。

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Materials

Name Company Catalog Number Comments
Q5 Site-Directed Mutagenesis Kit New England Biolabs E0554S Can be substitute with QuickChange site-directed mutagenesis Kit (Agilent, #200523).
Tubes 1.5 ml Sarstedt 72-690-001
Tubes 15 ml  Sarstedt  62-554-002
Disposable graduated Tranfer Pipets  VWR 160001-192 
100 mm culture dish Corning 430167 For standard culture of HEKT cells.
35 mm culture dish Falcon 353001 For standard culture of HEKT cells.
Serological pipette 1 ml Sarstedt 86.1251.001
Serological pipette 5 ml Sarstedt 86.1253.001
Serological pipette 10 ml Sarstedt 86.1254.001
Serological pipette 25 ml Sarstedt 86.1285.001
Dulbecco's high-glucose medium Life Technologies 12100-046 Warm in 37 °C water bath before use.
Fetal Bovine Serum, qualified, heat inactivated, US origin Life Technologies 16140-071
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/ml) Life Technologies 15140-122
Lipofectamine 2000  Life Technologies 11668-019 For liposomal transfection. Can be substituted with calcium phosphate transfection.
Opti-MEM I Reduced Serum Medium Life Technologies 31985-070 Warm in 37 °C water bath before use.
Trypsin-EDTA (1x) 0.05%, phenol red Life Technologies 25300-062
1.5 ml microtubes Sarstedt 72.690.001
 Phosphate Buffered Saline 1x Fisher BP661-10 Can be "home-made".
Anti-HA FITC conjugated antibody Sigma H7411
IgG1−FITC Isotype Control antibody Sigma F6397
BD Cytofix/Cytoperm Fixation/Permeabilization Solution Kit BD Biosciences 554714 Fixation/Permeabilization. Permeabilization/Wash solution, store at 4 °C.
Hemacytometer Fisher 49105161
Trypan Blue Fisher 15250061 To access cell viability.
Refrigerated Microcentrifuge, 5430R Eppendorf  A14H172200
Forma Steri-Cycle CO2 Incubator Fisher 370
Laboratory Platform Rocker Fisher 545034
Water Bath VWR 89032-216
BD FACSARIA III  BD Biosciences 648282 Flow cytometer.
FlowJo Software v10 FlowJo FlowJo v10 Dongle For data analysis.

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