Avaliação simultânea de Cerebral Hemodinâmica e de espalhamento de luz Propriedades do

Neuroscience

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Summary

A avaliação simultânea da hemodinâmica cerebral e das propriedades de dispersão da luz do tecido in vivo do cérebro de rato é demonstrada utilizando um sistema de imagem de reflexão difusa multiespectral convencional.

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Nishidate, I., Mustari, A., Kawauchi, S., Sato, S., Sato, M. Simultaneous Evaluation of Cerebral Hemodynamics and Light Scattering Properties of the In Vivo Rat Brain Using Multispectral Diffuse Reflectance Imaging. J. Vis. Exp. (123), e55399, doi:10.3791/55399 (2017).

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Abstract

Introduction

A técnica de reflexão difusa multicêntrica é a técnica mais comum para obtenção de um mapa espacial de sinais ópticos intrínsecos (IOSs) no tecido cortical. Os IOS observados no cérebro in vivo são atribuídos principalmente a três fenômenos: variações na absorção de luz e propriedades de dispersão devido à hemodinâmica cortical, variação na absorção dependendo da redução ou oxidação de citocromos nas mitocôndrias e variações nas propriedades de dispersão da luz induzidas por alterações morfológicas 1 .

A luz na gama espectral visível (VIS) para infravermelho próximo (NIR) é efetivamente absorvida e dispersa pelo tecido biológico. O espectro de reflectância difusa do cérebro in vivo é caracterizado por espectros de absorção e dispersão. Os coeficientes de dispersão reduzidos μ s ' do tecido cerebral na faixa de comprimento de onda VIS-para-NIR resultam numa exposição de espectro de dispersão monótonaMagnitudes menores em comprimentos de onda mais longos. O espectro do coeficiente de dispersão reduzido μ s '(λ) pode ser aproximado para estar na forma da função de lei de potência 2 , 3 como μ s ' (λ) = a × λ -b . O poder de dispersão b está relacionado com o tamanho dos dispersores biológicos no tecido vivo 2 , 3 . Alterações morfológicas do tecido e redução da viabilidade do tecido cortical vivo podem afetar o tamanho dos dispersores biológicos 4 , 5 , 6 , 7 , 8 , 9 .

Um sistema ótico para a imagem de reflexão difusa multiespectral pode ser facilmente construído a partir de uma lâmpada incandescenteFonte óptica, componentes ópticos simples e um dispositivo monocromático carregado acoplado (CCD). Portanto, vários algoritmos e sistemas óticos para a imagem de reflexão difusa multiespectral foram utilizados para avaliar a hemodinâmica cortical e / ou a morfologia do tecido 10 , 11 , 12 , 13 , 14 , 15 , 16 , 17 , 18 .

O método descrito neste artigo é utilizado para visualizar tanto a hemodinâmica como as propriedades de dispersão da luz do tecido cerebral de rato in vivo utilizando um sistema de imagem de reflexão difusa multiespectral convencional. As vantagens deste método em relação às técnicas alternativas são a capacidade de avaliar alterações espaciotemporais tanto na hemodinâmica cerebral como no tecido corticalmorfologia, assim como a sua aplicabilidade para vários modelos animais para a disfunção cerebral. Portanto, o método será adequado para investigações de lesão traumática cerebral, ataque epiléptico, acidente vascular cerebral e isquemia.

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Protocol

cuidados com os animais, preparação e protocolos experimentais foram aprovados pelo Comitê de Pesquisa Animal da Universidade de Tóquio de Agricultura e Tecnologia. Por esta metodologia, o rato é alojado num ambiente controlado (24 ° C, 12 h ciclo de luz / escuro), com comida e água disponível ad libitum.

1. Construção de um sistema convencional Multispectral reflectância difusa imagem

  1. Montagem nove filtros de interferência de banda estreita ópticos com comprimentos de onda centrais de 500, 520, 540, 560, 570, 580, 600, 730, e 760 nm para os orifícios de filtro do filtro roda motorizada.
  2. Construir um sistema de imagem multi-espectral usando uma fonte de luz branca de banda larga, uma roda de filtro motorizado com o conjunto de cima de filtros de interferência de banda estreita, uma guia de luz, uma lente de recolha, uma lente zoom de vídeo, e uma câmara CCD monocromática. A disposição de elementos ópticos, mostrado na Figura 2, pode ser referido para thé um procedimento de construção.
    NOTA: O ângulo de iluminação é de aproximadamente 45 ° em relação à superfície da amostra.
  3. Ligar a fonte de luz de lâmpada de halogéneo para iluminar a superfície da amostra através de um filtro de interferência, o guia de luz, e a lente de recolha.
  4. Abra o software de operação da câmera CCD.

2. Preparação de animais

NOTA: Neste protocolo, o rato não foi utilizado para as futuras experiências e foi sacrificado imediatamente após as medidas de imagens multiespectrais.

  1. Ligar o orifício de entrada de uma câmara de indução para o orifício de saída de uma máquina de anestesia com um tubo. Conectar o orifício de saída da câmara de indução para o orifício de entrada da máquina de anestesia com um segundo tubo.
  2. Colocar o rato para a câmara de indução e induzir a anestesia com 5,0% de isoflurano. Manter a anestesia, a uma profundidade tal que o rato não responde a pitadas dedo do pé. euower a 2,0% de isoflurano utilizando um botão rotativo na máquina de anestesia.
  3. Fixar a cabeça do rato em um quadro estereotáxico. Anexar um bocal para anestesia à armação estereotáxica.
  4. Ligar o orifício de entrada do bocal para a porta de saída do aparelho de anestesia com um tubo. Conectar o orifício de saída do bocal até o porto de entrada da máquina de anestesia com um tubo.
  5. Raspar a região da cabeça além do local da incisão prospectivo usando cortadores de cabelo até a superfície da pele aparece.
  6. Fazer uma incisão longitudinal de aproximadamente 20 mm long ao longo da linha média da cabeça, usando um bisturi cirúrgico (Figura 1 (a)) e expor os tecidos conjuntivos subcuteos (Figura 1 (b)).
  7. Remover os tecidos conjuntivos subcuteos utilizando uma cureta afiada ou uma pinça e puxá-lo para ambos os lados da cabeça para expor o crânio de osso (Figura 1 (c)).
  8. Escavar uma vala elipsoidal sobre o osso do crânio no interior do sutur cranianaES (sutura coronal, sagital de sutura e sutura lambdóide) utilizando uma broca de alta velocidade (Figura 1 (d)).
  9. Lenta e homogeneamente escavar o osso do crânio dentro da vala usando a broca de alta velocidade.
  10. Pressione levemente na superfície do crânio afinada com a ponta da pinça para estimar a espessura e força óssea depois de um vaso sanguíneo cerebral aparece. Se a região adelgaçada crânio deprime facilmente, terminar a redução do osso do crânio com a broca de alta velocidade.
  11. Cortar a linha de fronteira elipsoidal do crânio diluído fragmentada utilizando a ponta da pinça ou pequenas tesouras cirúrgicas.
  12. Remover o crânio diluído a partir da superfície do cérebro lenta e suavemente usando a pinça.
  13. Suavemente banhar a janela craniana com solução salina fisiológica e cobri-lo com uma placa de vidro transparente, aproximadamente, 0,1 mm de espessura.

3. Regulamentação da fração inspirada de oxigênio

NOTA: O condi respiratóriação pode ser alterada através do controlo da fracção de oxigénio inspirada (FiO 2).

  1. Usando um tubo, ligar o primeiro porto de um conector de tubo em forma de Y (conector 1) para a primeira porta de outro conector de tubo em forma de Y (conector 2).
  2. Ligar o orifício de entrada do bocal para a segunda porta de conector do tubo 1.
  3. Usando um tubo, ligar a terceira porta de conector do tubo 1 para um dispositivo de oxigénio monitor de concentração.
  4. Com um tubo, ligar a segunda porta de ligação de tubo 2 para a porta de saída de um aparelho de anestesia.
  5. Usando um tubo, ligar a terceira porta de ligação de tubo 2 para a porta de saída de um dispositivo de mistura de gás.
  6. Conectar um orifício de entrada do dispositivo de mistura de gás a uma alta pressão de 95% de O2 - 5% de CO 2 do cilindro de gás, utilizando um tubo.
  7. Ligue a outra porta de entrada do dispositivo de mistura de gás a uma alta pressão de 95% de N 2 - 5% cilindro de gás de CO 2 usando um tubo.
  8. Alterar as taxas de fluxo de gás Sf O 2 e N 2, utilizando os botões rotativos no dispositivo de mistura de gás.
  9. Verificar e regular a FiO 2, utilizando o dispositivo de oxigénio monitor de concentração.

4. Aquisição das Multispectral de reflectância difusa Imagens

  1. Aquisição de imagens de referência
    NOTA: Os componentes ópticos utilizados nesta experiência, tais como a fonte luminosa, de fibra óptica, e os detectores têm as suas próprias características espectrais. Portanto, a intensidade da luz que passou através destes componentes deve ser gravado como uma imagem de referência. A imagem de referência é uma imagem tirada com um difusor branco padrão iluminado com a luz da fonte de luz.
    1. Coloque o difusor branco padrão no palco horizontalmente.
    2. O foco da lente da câmara sobre a superfície do difusor branco, rodando o anel de zoom no barril.
    3. Ajustar o tempo de integração da câmera selecionando o valor apropriado nadrop-down lista de tempos de integração no software de operação da câmara para que a maior quantidade de luz produz um sinal que é aproximadamente 75% das contagens máximas. Enquanto observa o histograma de valores de pixel, ajustar o tempo de integração até que o nível de intensidade de sinal é de aproximadamente 75% das contagens máximas.
    4. Selecione o comando "salvar" no menu arquivo para salvar uma imagem em um arquivo.
    5. Alterar a localização do filtro, rodando a roda de filtro.
    6. Guardar uma imagem aos outros comprimentos de onda de acordo com o processo descrito acima. O nome do arquivo deve identificar a amostra e o comprimento de onda utilizado (por exemplo, W500, W520, W540 ... W760).
  2. Aquisição de imagens de exemplo
    Nota: Imagens da intensidade da luz difusa refletida de cérebro de rato expostos em nove comprimentos de onda são capturados e salvos no disco rígido de um computador pessoal utilizando as mesmas condições de aquisição.
    1. Delicadamente, coloque o rna no palco e, lentamente, ajustar o nível do palco para que a câmara pode focar na superfície do cérebro de rato.
    2. Selecione o comando "salvar" no menu arquivo para salvar uma imagem em um arquivo.
    3. Alterar a localização do filtro, rodando a roda de filtro.
    4. Guardar uma imagem aos outros comprimentos de onda de acordo com o processo descrito acima. O nome do arquivo deve identificar a amostra e o comprimento de onda (por exemplo, R500, R520, R540 ... R760).
  3. Aquisição de imagens escuras
    NOTA: A câmara CCD pode gerar uma intensidade de luz em resposta a um sinal eléctrico. No entanto, existe alguma saída menor devido ao ruído nos circuitos elétricos e detectores, mesmo se a luz não entra no detector; isso é chamado de ruído atual escuro. Para medir com precisão a intensidade espectral da luz, a componente de corrente escura deve ser gravado como uma imagem escura e então subtraído a partir do sinal medido. A imagem escura é uma tomada de imagemn com o percurso da luz bloqueada.
    1. Desligue a fonte de luz lâmpada de halogéneo.
    2. Bloquear o caminho da luz ao sistema de câmera CCD usando uma placa de blindagem.
    3. Selecione o comando "salvar" no menu arquivo para salvar uma imagem em um arquivo. O nome do arquivo deve identificar a amostra (por exemplo, Escuro).

5. Visualizando o conteúdo de hemoglobina eo espalhamento de luz Parâmetro

NOTA: Um conjunto de imagens por reflexão multiespectrais é salva no disco rígido de um computador pessoal e analisados ​​offline. Uma análise de regressão múltipla auxiliado por uma simulação de Monte Carlo 19 das imagens de reflectância difusa multi-espectrais em nove comprimentos de onda (500, 520, 540, 560, 570, 580, 600, 730, e 760 nm) é então realizada para visualizar o bidimensional mapas de concentração de hemoglobina oxigenada, a concentração de hemoglobina desoxigenada, a concentração total de hemoglobina, saturação de oxigénio cerebral regional, e fezestering poder. O algoritmo detalhada foi publicada nas literaturas 17, 18.

  1. Subtrair a imagem escura de ambas a imagem de referência e a imagem da amostra em cada comprimento de onda.
  2. Normalizar a imagem da amostra pela imagem de referência em cada comprimento de onda λ. Tratar a imagem normalizada, tal como a imagem de reflectância difusa R.
  3. Calcular a absorvância (ou densidade óptica) uma imagem, tendo o logaritmo do recíproco da imagem reflectância difusa R em cada comprimento de onda λ:
    equação 1 (1)
  4. Gerar uma matriz tridimensional por empilhamento das imagens de absorvância na ordem dos seus comprimentos de onda, onde o x - plano y mostra a informação estrutural obtida para a superfície do cérebro e o z -axis mostra a informação espectral.
  5. PERuma análise de regressão múltipla para o espectro de absorvância A ( λ ) em cada coordenada xy.
  6. Utilize o espectro de absorvância A ( λ ) como variável dependente e os espectros de coeficiente de extinção molar da hemoglobina oxigenada ε HbO ( λ ) e da hemoglobina desoxigenada ε HbR ( λ ) como variáveis ​​independentes para o passo 5.5 (valores publicados para ε HbO ( λ ) E ε HbR ( λ ) são fornecidos na Tabela 1 ).
  7. Verifique os mapas bidimensionais (imagens) dos três coeficientes de regressão múltipla a HbO , a HbR e a 0 .
  8. Gere uma matriz tridimensional empilhando as imagens dos coeficientes de regressão múltipla na ordem de um HbO , um HbR , e um 0 , onde o y plano mostra a informação estrutural obtida para a superfície do cérebro e o z -axis mostra os vários coeficientes de regressão.
  9. Calcule a concentração de hemoglobina oxigenada C HbO, a hemoglobina desoxigenada concentração C HBr, e o poder de dispersão b a partir do conjunto de regressão múltipla coeficientes a HbO, um HBr, e um 0 em cada coordenada xy usando as seguintes fórmulas empíricas (ele valores de β HbO, i, β HBr, i, e β 0, i (i = 0,1,2,3) são fornecidos na Tabela 2):
    equação 2 (2)
    equação 3 (3)
    equação 4 (4)
  10. Verificar os mapas bidimensionais (imagens) da concentração de hemoglobina oxigenada C HbO, a concentração de hemoglobina desoxigenada C HBr, e o poder de dispersão b.
  11. Calcular um mapa bidimensional do C HBT concentração total de hemoglobina pela soma C e HbO C HBr em cada x - y de coordenadas.
  12. Calcular um mapa bidimensional da saturação de oxigénio cerebral regional RSO 2 dividindo a concentração de hemoglobina oxigenada C HbO pelo C HBT concentração total de hemoglobina em cada x - y de coordenadas.

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Representative Results

Imagens espectrais representativas de reflectância difusa adquirido a partir de cérebros de rato in vivo são apresentados na Figura 3. As imagens em 500, 520, 540, 560, 570, e 580 nm visualizar claramente uma rede densa de vasos sanguíneos no córtex cerebral. A deterioração do contraste entre os vasos sanguíneos e o tecido circundante observadas nas imagens em 600, 730, e 760 nm reflecte a diminuição da absorção de luz pela hemoglobina no mais longo e comprimentos de onda de NIR.

A Figura 4 mostra imagens estimadas representativos de um cérebro de rato expostos para concentração de hemoglobina oxigenada, a concentração de hemoglobina desoxigenada, a concentração total de hemoglobina, saturação de oxigénio cerebral regional, e poder de dispersão. Como esperado a partir das imagens de reflectância difusa em comprimentos de onda mais curtos na Figura 3, a concentração total de hemoglobina no sangue vesregião sel é mais elevada do que na região do tecido circundante. Por outro lado, as concentrações de hemoglobina oxigenada em arteríolas são mais elevados do que aqueles em vénulas devido à hemoglobina no sangue arterial, sendo muito mais oxigenado do que no sangue venoso. Portanto, a distribuição das arteríolas e vênulas podem ser claramente distinguidos na imagem estimada de saturação de oxigênio regional.

Imagens estimadas representativos de um cérebro de rato expostos durante mudanças em FiO2 de reflectância difusa a 500 nm r (500), a concentração de hemoglobina oxigenada C HbO, concentração de hemoglobina desoxigenada C HBr, concentração de hemoglobina total C HBT, saturação de oxigénio cerebral regional RSO 2, e dispersando poder b são mostrados na Figura 5. O valor de RSO 2 aumentou sob condições hiperóxicase diminuiu notavelmente após a indução de condições anóxicas. O valor de b foi ligeiramente aumentado durante o período compreendido entre o início da anóxia até paragem respiratória, ao passo que diminuiu continuamente durante o período de 5 min a 30 min após o início da anoxia. Estas alterações no valor de b foram indicativos de alterações morfológicas, tais como o inchamento e o encolhimento de estruturas celulares e subcelulares, induzidas pela perda de viabilidade do tecido no cérebro.

figura 1
Figura 1: Passos na exposição cirúrgica do Rato Córtex Cerebral. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Figura 2
Figura 2: Diagrama esquemático do aparelho experimental para administrar anestesia e Alterando a fracção de oxigénio inspirada. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Figura 3
Figura 3: representativas Multiespectrais de reflectância difusa Imagens de 500, 520, 540, 560, 570, 580, 600, 730, e 760 nm, obtido a partir de um cérebro de um rato in vivo. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Figura 4
Figura 4: Imagens estimados representante de uma Rat cérebro exposto. <(B) concentração de hemoglobina desoxigenada C HbR , (c) concentração de hemoglobina C total HbT , (d) saturação regional de oxigênio cerebral rSO 2 e (e) poder de dispersão b . Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Figura 5
Figura 5: Resultados representativos de um cérebro de rato exposto durante alterações na FiO 2 . Imagens de tecido cortical in vivo de rato durante alterações na FiO 2 para reflectância difusa a 500 nm r (500), concentração de hemoglobina oxigenada C HbO , concentraçãode hemoglobina desoxigenada C HBr, concentração de hemoglobina total C HBT, regional de oxigénio cerebral saturação RSO 2, e dispersando poder b. Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

<Tr
Comprimento de onda λ nm ε HbO (λ) ε HBr (λ)
500 113,03712 112.6548
520 130,69296 170,58384
540 287.4744 251.5968
560 176,11128 290.4552
570 240.2784 243.3888
580 270.5616 199,908
600 17,28 79.25688
730 2.106 5,95188
760 3.1644 8.36201

Tabela 1: Valores de ε HbO e ε HbO utilizados para a Análise de Regressão Múltipla. Os coeficientes de extinção molar da hemoglobina oxigenada ε HbO e da hemoglobina desoxigenada ε HbR em cada comprimento de onda λ .

Eu Β HbO, i P HbR, i Β b, i
0 -8.3302 -5.85271 -0,76587
1 4405,877 -143,23 53,34134
2 2740.622 3798.067 124.4656
3 -4,40454 -2,81699 -1,36919

Tabela 2: Os valores de HbO β, i, β HBr, i, e p 0, i (i = 0,1,2,3), utilizada nas fórmulas empíricas de C HbO, C HBr, e b. Note-se que as unidades de HbO C e C HBr derivados destas fórmulas empíricas estão a concentração em volume, em que a concentração de hemoglobina de sangue inteiro com uma leitura de hematócrito de 44% é considerado como sendo a concentração de volume de 100% de hemoglobina. As fórmulas empíricas para concentr hemoglobinações podem ser derivados a partir dos espectros de reflectância difusa calculado pela simulação de Monte Carlo de transporte de luz 19. O processo detalhado para a derivação das fórmulas empíricas tem sido descrita na literatura 17, 18.

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Discussion

O passo mais importante neste protocolo é a remoção da região do crânio diluído para fazer a janela craniana; esta deve ser realizada com cuidado para evitar hemorragias inesperadas. Este passo é importante para a obtenção de alta qualidade multiespectrais difundir imagens de reflectância com alta precisão. O uso de um microscópio estereoscópico é recomendado para o procedimento cirúrgico, se possível. Pequenos pedaços de esponja de gelatina são úteis para hemostasia.

O sistema óptico descrito neste artigo passa uma luz monocromática através de um filtro de interferência localizado em frente da fonte de luz. Isto pode ser modificado, colocando o filtro roda em frente da lente da câmara de vídeo ou câmara CCD. Neste caso, no entanto, o plano focal pode ser variável, se forem utilizados filtros de interferência com diferentes espessuras, e isso irá conduzir a uma deterioração da qualidade da imagem. É necessário remover a placa de vidro da janela craniana se um eléctrodo de registo é inseridono tecido cortical para medições de electrofisiologia, tais como medições do potencial de campo local eléctrica. Neste caso, o sistema de imagiologia pode detectar a reflexão especular indesejável da superfície cortical. Este problema pode ser evitado pelo uso de um conjunto de placas de polarização com um alinhamento Nichols cruzado.

O aparelho de imagem multi-espectral convencional demonstrado neste artigo é um tanto demorado para utilizar, uma vez que as posições de filtro dentro da roda são alteradas mecanicamente. Isto significa que o sistema de imagens capta cada sequencialmente imagem reflectância difusa num comprimento de onda de ponto diferente. Devido a esta limitação, este sistema é inadequada para capturar rápido IOSS, tais como alterações no espectro de reflectância devido a actividades neuronais 20. Apesar de hemoglobina oxigenada e hemoglobina desoxigenada são os principais cromóforos no tecido cerebral vivo, os outros cromóforos, tais como o citocromo c oxidase, flavinaDinucleótido de adenina e nicotinamida adenina dinucleótido, também contribuem para o coeficiente de absorção na região de comprimento de onda visível. Portanto, os valores estimados de C HbO , C HbR , C HbT , rSO 2 e b podem ser afetados pelos cromóforos menores. Além disso, esta abordagem integra todas as informações ao longo da direção da profundidade, pois depende de reflexão difusa. Portanto, o sistema de imagem não executa medições com resolução de profundidade.

É vantajoso que o algoritmo utilizado para o presente sistema possa também ser aplicado a imagens de reflectância difusa multiespectrais capturadas por outras técnicas de formação de imagens espectrais rápidas, tais como um filtro sintonizável acústico-óptico 21 , uma matriz de objectivas multi-abertura com filtros de interferência 22 e As imagens de reconstrução espectral a partir de uma imagem RGB 17 , 23. Usando o algoritmo proposto e técnicas espectrais rápidas juntos é uma abordagem promissora para a avaliação de imagem IOS rápido, bem como para uso em situações clínicas.

A maioria das técnicas de imagem cerebral multiespectral até à data têm-se centrado principalmente na hemodinâmica corticais e metabolismo do tecido, como o volume sanguíneo cerebral, a saturação de oxigênio cerebral regional, e da taxa metabólica cerebral de oxigênio 10, 11, 12, 13, 14. Várias abordagens existentes avaliar a amplitude de espalhamento sob a suposição de que o poder de dispersão é constante 15, 16. No entanto, alterações morfológicas dos tecidos devido a alterações fisiopatológicas e uma redução da viabilidade de um tecido vivo cortical podem afectar o tamanho de dispersores biológicos 4, 5, 6, 7, 8, 9. Portanto, é importante para estimar o parâmetro de dispersão de b de avaliar quantitativamente as morfologias de tecido do cérebro. O significado da presente técnica em relação a métodos existentes é a sua capacidade para medir, simultaneamente, as alterações no espaço-temporais hemodinâmica cerebral e morfologia do tecido cortical.

Em termos de aplicações futuras, este algoritmo pode ser utilizado para monitorizar a função do cérebro, os sinais vitais, e na viabilidade no tecido cortical de vários modelos animais distúrbio do cérebro, como a lesão traumática cerebral, crise de epilepsia, acidente vascular cerebral, e isquemia.

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Materials

Name Company Catalog Number Comments
150-W halogen-lamp light source Hayashi Watch Works Co., Ltd, Tokyo, Japan LA-150SAE
Light guide Hayashi Watch Works Co., Ltd, Tokyo, Japan LGC1-5L1000
Collecting lens Hayashi Watch Works Co., Ltd, Tokyo, Japan SH-F16
Interference filters l@ 500 nm Edmund Optics Japan Ltd, Tokyo, Japan #65088
Interference filters l@ 520 nm Edmund Optics Japan Ltd, Tokyo, Japan #65093
Interference filters l@ 540 nm Edmund Optics Japan Ltd, Tokyo, Japan #65096
Interference filters l@ 560 nm Edmund Optics Japan Ltd, Tokyo, Japan #67766
Interference filters l@ 570 nm Edmund Optics Japan Ltd, Tokyo, Japan #67767
Interference filters l@ 580 nm Edmund Optics Japan Ltd, Tokyo, Japan #65646
Interference filters l@ 600 nm Edmund Optics Japan Ltd, Tokyo, Japan #65102
Interference filters l@ 730 nm Edmund Optics Japan Ltd, Tokyo, Japan #65115
Interference filters l@ 760 nm Edmund Optics Japan Ltd, Tokyo, Japan #67777
Motorized filter wheel  Andover Corporation, NH, USA FW-MOT-12.5
8-bit monochromatic CCD camera THE IMAGINGSOURCE, Germany DMK21BU618.H
Video zoom lens Edmund Optics Japan Ltd, Tokyo, Japan VZMTM300i
Spectralon white standard with 99% diffuse reflectance Labsphere Incorporated, North Sutton, NH, USA SRS-99-020

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

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