טיהור של biotinylated Cell חלבונים משטח מ

Published 7/23/2017
0 Comments
  CITE THIS  SHARE 
Biochemistry

Your institution must subscribe to JoVE's Biochemistry section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

Welcome!

Enter your email below to get your free 10 minute trial to JoVE!





By clicking "Submit", you agree to our policies.

 

Summary

צפיפות שונה צנטריפוגה מבוססי מתודולוגיה שיפוע מבוסס נוצל לבודד תאים אפיתל מ רקמה Rhipicephalus רקמת microplus . משטח חלבונים הקשורים היו biotinylated ו מטוהרים באמצעות חרוזים מגנטיים streptavidin עבור יישומים במורד הזרם.

Cite this Article

Copy Citation

Karbanowicz, T. P., Lew-Tabor, A., Rodriguez Valle, M. Purification of Biotinylated Cell Surface Proteins from Rhipicephalus microplus Epithelial Gut Cells. J. Vis. Exp. (125), e55747, doi:10.3791/55747 (2017).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Rhipicephalus microplus - תווית בקר - הוא ectoparasite משמעותי ביותר במונחים של השפעה כלכלית על בעלי חיים כמו וקטור של מספר פתוגנים. המאמצים הוקדשו לשלוט בקר בקר כדי להפחית את ההשפעות המזיקות שלה, עם דגש על גילוי של מועמדים חיסון, כגון BM86, הממוקם על פני השטח של תאים מעיים לתאי אפיתל. המחקר הנוכחי מתמקד בשימוש של cDNA וגנום ספריות, כדי המסך עבור מועמדים חיסון אחרים. הבידוד של תאים מעיים לתקתק מהווה יתרון חשוב בחקירת הרכב של חלבונים פני השטח על קרום תאים בטן קרום. מאמר זה מהווה שיטה חדשנית וראוי לבידוד של תאי אפיתל, מן התוכן מעיים לתקתק של מיקרופלוס חצי רתומה למחצה . פרוטוקול זה מנצל TCEP ו EDTA לשחרר את התאים אפיתל מן הרקמות תמיכה subepithelial ו צפיפות רציפה צנטריפוגה gradieNt לתאי אפיתל נפרדים מסוגי תאים אחרים. חלבונים משטח התא היו biotinylated ומבודדים מן התאים בטן אפיתל בטן, באמצעות חרוזים מגנטיים streptavidin מקושר המאפשר עבור יישומים במורד FACS או LC-MS / MS- ניתוח.

Introduction

Rhipicephalus microplus , סמן בקר, הוא ectoparasite משמעותי ביותר במונחים של השפעה כלכלית על תעשיית הבקר של אזורים טרופיים תת טרופיים כפי שהוא נוקט קדחת הבקר קדחת (babesiosis), anaplasmosis ו piroplasmosis סוס 1 , 2 , 3 , 4 . המאמצים הוקדשו לבקרת סמן בקר, כדי להפחית את ההשפעה המזיקה, אולם לשיטות קונבנציונליות כגון שימוש בחומרי אקריצידים כימיים יש חסרונות משתמעים, כגון נוכחות של שאריות כימיות בחלב ובבשר, ועלייה בשכיחות של קרציות עמידות כימית 5 , 6 , 7 . כתוצאה מכך, פיתוח שיטות חלופיות של בקרת טיקים נחקרו, כגון שימוש בבקר התנגדות טבעי, בקרה ביולוגית (biopesticides) וחיסוןInes 4 , 5 , 6 , 7 , 8 , 9 .

במרדף אחר חלבונים המסוגלים לשמש מועמדים לחיסונים, המחקר הנוכחי מתמקד במעי הגס. קיר midgut בנוי משכבה אחת של תאים אפיתל מנוחה על לאמידה בסיסית דקה, עם החיצוני של הלמידה הבסיסית להרכיב רשת של שרירים. אור ותצפיות מיקרוסקופ אלקטרונים מציינות כי midgut מורכב משלושה סוגים של תאים: מילואים (לא מובחנים), הפרשה, ומערכת העיכול. מספר סוגי התאים משתנה במידה ניכרת בהתאם לשלב הפיזיולוגי. תאי הפרשה ותאי העיכול מקורם בתאי מילואים 18 , 19 , 20 .

בניית ספריות cDNAכדי לבחון את ההרכב של המעיים סמן גרמה לזיהוי של חלבונים אנטיגניים, כגון Bm86, כמו מועמדים חיסונים פוטנציאליים 2 , 3 , 4 . Glycoprotein Bm86 הוא מקומי על פני השטח של תאים מעיים לתקתק וגורם תגובה חיסונית מגן נגד סמן בקר ( ר microplus ) בבקר מחוסן. Anti-Bm86 IgGs המיוצר על ידי המארח החוסן הם ingested על ידי סמן, לזהות אנטיגן זה על פני השטח של תאים מעיים לתקתק, ולאחר מכן להפריע לתפקוד רקמות המעיים ואת היושרה. חיסונים המבוססים על אנטיגנים Bm86 הראו שליטה אפקטיבית של ר ' microplus ו Rhipicephalus annulatus, על ידי הקטנת מספר, משקל ויכולת הרבייה של נקבות נקבות, וכתוצאה מכך הפחתת הזחל מופחת בדורות דלקת הבאים 4 . עם זאת, חיסונים המבוססים על Bm86 אינם יעילים כנגד כל שלבי הסימוןהוכיחו יעילות משביעת רצון נגד כמה זנים גיאוגרפיים של ר 'microplus , וכתוצאה מכך את בשר בקר תעשיות חלב אימצו כראוי חיסונים אלה 2 , 4 .

היכולת לבודד תאים אפיתל מן המעיים סמן הוא חידוש משמעותי אשר יאפשר את התקדמות המחקר כדי לקבוע הרכב חלבון חלבון כולל מורפולוגיה ופיזיולוגיה בתנאים סביבתיים שונים. השיטה המתוארת כאן מנצל את הסוכן chelating ethylenediaminetetraacetic חומצה (EDTA) ואת הסוכן הפחתת tris (2-carboxyethyl) פוספין (TCEP) לשחרר את האפיתל מן הרקמות תמיכה תת אפיתל שלה 10 . אפיתל הוא התאושש בעקבות שיבוש מכני של הרקמות על ידי רועד, ואחריו צנטריפוגה שיפוע רציפה Percoll. מאמר זה מתאר טכניקה ריאלי ו אפשרי לבידוד של מעי גס epiהתאים. חלבונים משטח התא biotinylated, מבודדים מפני השטח של תאים אלה אפיתל ניתח לאחר מכן ביישומים במורד הזרם כגון FACS ו / או LC-MS / MS- ניתוח.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1. דיסקציה של אפיתל גוט מ ר microplus

  1. איסוף קרציות חצי מבושל מן הבקר ביום הניסוי. לנתח מתקתק בתוך 24 שעות לאחר הסרת מן המארח.
  2. לדבוק רצועת סרט דביק לתחתית של צלחת פטרי 92 מ"מ x 16 מ"מ פטרי. הוסף טיפה של דבק סופר לקלטת. מניחים את סמן, בצד הגחון על הדבק סופר, לאפשר יבש במשך 2 דקות.
  3. יוצקים 100 מ"ל של פוספט שנאגרו מלוחים (PBS) לתוך צלחת פטרי, או עד הקופסה הוא שקוע לחלוטין.
  4. ניצול בגודל 11 אזמל, לחתוך מן החלק העליון של העיניים אל התחתונים התחתונים, משני צידי הקופסה.
  5. בעזרת מלקחיים סטרילית, להסיר לחלוטין את כיח ואת alloscutum , כדי לחשוף את האיברים הפנימיים.
  6. הסר את החוט הלבן כמו אברים (קנה הנשימה) ו ממברנות אחרות כדי למנוע זיהום.
  7. הסר את המעיים באמצעות מלקחיים, על ידי צובט את האזור העליון ומשוך מפֶּגֶר. הסר את כל רקמות הבטן הנותרים, להבטיח כי לא רקמות אחרות כבר גזור.
  8. חנות gut ב קר קרח קר של תמיסת מלח מאוזן (HBSS) ללא סידן כלורי ו מגנזיום גופרתי עם קוקטייל מעכב proteinase (PIC). הצמד להקפיא את האומץ בקרח יבש לאחסן ב -20 מעלות צלזיוס.
    הערה: כדי לסייע לנתיחה בטן ופרטים של האיברים הפנימיים של תפר עיין בפרק 3.1 של ד 'Sonenshine, "ביולוגיה של קרציות" 19 .

2. דיסוציאציה תא אפיתל

  1. יוצקים את המעיים גזור על מסנן תא 70 מיקרומטר בתוך צינור 50 מ"ל.
  2. שטפו את רקמת הבטן עם 50 מ"ל קר HBSS קר עם PIC עד הפתרון פועל ברור, ואת האומץ לקחת על המראה לבן / ברור.
  3. Re- להשעות האומץ ב 30 מ"ל קר HBSS קר עם PIC, מערבבים בעדינות צנטריפוגה ב XG 500 ב 4 מעלות צלזיוס למשך 10 דקות כדי גלולה המעיים. הסר את supernatant וחזור על תהליך לשטוף שלוש פעמים.
  4. מסנן את ההשעיה באמצעות מסננת תא 250 מיקרומטר, מערבולת הזרימה דרך ומסנן דרך מסננת 70 מיקרומטר התא לאסוף את זרימת הנותרים דרך.
  5. צנטריפוגה ההשעיה ב XG 500 ב 4 מעלות צלזיוס למשך 20 דקות כדי גלולה תאים בודדים.

3. בידוד של תאים אפיתל יחיד באמצעות שיפוע צנטריפוגה שיפוע

  1. הכן צפיפות צנטריפוגה שיפוע ( למשל , Percoll) על ידי סינון באמצעות נייר AP15 מראש מסנן. הכן 40% ו Percoll 20% ב mqH 2 0 (V / V) ו מגניב על 4 מעלות צלזיוס למשך 1 שעות לפני שכבת שיפוע.
  2. שימוש peristalticהמשאבה להגדיר את המהירות הנמוכה ביותר, שכבת 3 מ"ל של 40% צפיפות צנטריפוגה צנטריפוגה צינור 16 ultracentrifuge, ומאפשר לה להתיישב על קרח במשך 15 דקות. המהירות של המשאבה צריכה להוביל <1 מ"ל לכל שיעור הזרימה המינימלית.
  3. הטיית הצינור ל זווית 45 °, להשתמש המשאבה peristaltic שכבת 20% צפיפות צנטריפוגה שיפוע על גבי השכבה 40%. מהירות המשאבה צריכה להוביל ל <1 מ"ל לכל שיעור הזרימה המינימלית. אפשר השכבות להתיישב על קרח במשך 15 דקות.
  4. השתמש המשאבה peristaltic ב <1 מ"ל לכל שיעור הזרימה המינימלית לשכבה 3 מ"ל של DMEM בינוני המכיל תאים בטן לתקתק מעל 20-40% צפיפות צנטריפוגה שיפוע.
  5. תוכנית צנטריפוגה להאצת מקסימלית האטה מינימלית. צנטריפוגה ב XG 600 במשך 10 דקות. איסוף interphases בין DMEM: 20% צפיפות צנטריפוגה שיפוע, ואת 20%: 40% צפיפות צנטריפוגה gradients לבודד תאים בודדים אפיתל. חנות שנאספו interphases ב 4 מעלות צלזיוס עבור ניתוחים הבאים.

4. הערכת בידוד התא

  1. המיאצטומטר
    1. לנקות את שקופית hemacytometer עם אלכוהול.
    2. . Re- להשעות את התאים על ידי pipetting בעדינות את התאים למעלה ולמטה. פיפטה 100 μL ההשעיה התא במקום צינור microcentrifuge 1.5 מ"ל.
    3. הוסף 400 μL של 0.4% Trypan כחול. בעדינות לערבב על ידי לחיצה על הצינור.
    4. פיפטה 100 μL של ההשעיה תא כחול Trypan מטופלים לאט למלא שני החדרים של hemocytometer.
    5. מניחים את hemocytometer תחת מיקרוסקופ אור, תוך התמקדות קווי הרשת של hemocytometer עם מטרה 10X.
    6. באמצעות מונה ידית יד, לספור את התאים חיים ללא כתם בתוך קבוצה של 16 ריבועים. בתוך אותו ריבוע, ספור את התאים הכחולים המתים. המשך לספור עד שייספרו ארבע קבוצות של 16 ריבועים.
    7. חישוב התאים הכולל לכל מ"ל באמצעות הנוסחה:
      47eq1.jpg "/>
    8. חישוב אחוז הכדאיות התא באמצעות הנוסחה:
      משוואה 2
  2. תא מבודד ויזואליזציה
    1. לדלל 1 μL של תאים מבודדים μL 9 של HBSS בצינור microcentrifuge 1.5 מ"ל. קפיצי microcentrifuge את הצינור בעדינות כדי לערבב.
    2. פיפטה 5 μL של תאים מבודדים ב HBSS באמצע שקופית זכוכית. החל שלוש טיפות של המדיום גובר עם 4 ', 6-diamidino-2-phenylindole (DAPI).
    3. דגירה את השקופית בטמפרטורת החדר למשך 5 דקות. בזהירות במקום להחליק להחליק על ההכנה, הימנעות בועות אוויר.
    4. דמיינו תאים מוכתמים DAPI ב עירור 360 ננומטר פליטה ב 460 ננומטר תחת מיקרוסקופ פלואורסצנטי.

5. Cell Cell חלבון Biotinylation

  1. Biotinylate 100 μL של תאים תא אפיתל יחיד באמצעות Biotin (סוג A) הצמידהKit, על יחס טוחנת של 1: 1 חלבון פני השטח כדי מצומד, בהתאם להוראות היצרן
  2. עבור תמוגה התא, להוסיף 100 μL של PBS, 1% Triton X-100, גליצרול 10%, 100 מיקרומטר גלוטתיון חמצון PIC לתאים biotinylated. דגירה על קרח במשך 1 שעות עם ערבוב עדין כל 10 דקות.
  3. צנטריפוגה תאים biotinylated ב XG 20,000 ב 4 מעלות צלזיוס למשך 20 דקות כדי גלולה חומר מסיס. איסוף supernatant המכיל cytoplasmic, חלבונים הממברנה biotinylated.
  4. לקבוע את ריכוז החלבון באמצעות assay Bradford.

6. בידוד של חלבונים פנימיים Biotinylated

  1. הוסף 50 μL של חרוזים מגנטיים Streptavidin לתוך צינור microcentrifuge 1.5 מ"ל.
  2. מניחים את הצינור לתוך מעמד מגנטי, איסוף חרוזים כנגד הצד של הצינור. הסר וזורקים את supernatant.
  3. הוסף 1000 μL של TBS, 0.1% Tween-20 לצינור. מערבבים בעדינות ולאסוף את החרוזים עם סטן מגנטיד. הסר וזורקים את supernatant.
  4. שלב 40 מיקרוגרם של חלבונים משטח התא biotinylated, מדולל μL 300 ב 1x PBS עם חרוזים מגנטיים שטף. לדגור על 2 שעות בטמפרטורת החדר עם תסיסה.
  5. לאסוף את החרוזים עם מעמד מגנטי, להסיר ולזנוח supernatant.
  6. הוסף 300 μL של TBS, 0.1% Tween-20 לצינור, בעדינות ערבוב כדי להשעות מחדש את החרוזים. איסוף חרוזים, להסיר ולזנוח supernatant. חזור על צעד זה לשטוף פעמיים.
  7. הוסף 100 μL של 0.1 M גליצין pH 2.0 חרוזים מגנטיים, ו דגירה בטמפרטורת החדר למשך 5 דקות. איסוף חרוזים ולהסיר supernatant המכיל eluted biotinylated חלבונים פני השטח.
  8. דמיינו חלבונים משטח מבודד על ג'ל 4-20% Tris-MOPS SDS-PAGE

7. הערכה של חלבונים פנימיים Biotinylated

  1. נקודה כתם
    1. חותכים 7 ס"מ x 3 ס"מ רצועה של קרום nitrocellulose.
    2. החל 10 מיקרוגרם סך הכל סמןתוכן (מ 1.8 לעיל), ו 10 מיקרוגרם של חלבון פני השטח biotinylated על הממברנה. אפשר ייבוש במשך 15 דקות בטמפרטורת החדר.
    3. העברה למכל ו לצלול ב 100 מ"ל של חיץ חסימה. דגירה בטמפרטורת החדר עם תסיסה במשך שעה. מחק חסימת חיץ.
    4. לשטוף nitrocellulose קרום μL 100 μL, 0.05% Tween-20 במשך 5 דקות עם תסיסה. בטל לשטוף חיץ לחזור על שוטף שלוש פעמים.
    5. דגירה ב 1/5000 Streptavidin חזרת peroxidase (HRP) ב 100 μL PBS, 0.05% Tween-20 עבור 2 שעות עם תסיסה בטמפרטורת החדר, ולבטל כל פתרון שנותר.
    6. לשטוף nitrocellulose קרום μL 100 של PBS, 0.05% Tween-20 במשך 5 דקות עם תסיסה. מחק חיץ לשטוף וחזור לשטוף שלוש פעמים.
    7. לזיהוי, להמיס 1 טבליה של 4-chloro-1-napthol ב 10 מ"ל של מתנול קר כקרח. הוסף 4 מ"ל של מלאי מתנול ל 20 מ"ל של כפות. הוסף 10 μL של מי חמצן טריים 30% ו immediaTely להחיל על קרום nitrocellulose.
    8. דגירה עם תסיסה בטמפרטורת החדר עד המצע מייצר מוצר סוף כחול מסיס. פעולה זו עשויה להימשך בין 2-15 דקות.
    9. מחק פתרון איתור לשטוף את הממברנה שלוש פעמים μl 100 μL 2 O.
  2. אסאי ELISA
    1. לדלל 200 ng של כל מדגם עם 400 μL של 100 מ"מ חיץ ציפוי קרבונט מעיל 2 נתיבים של השורה הראשונה (A #) של צלחת אליסה (בארות תחתית שטוחה)
    2. הוסף 100 μL של חיץ ציפוי 100 מ"מ קרבונט לכל בארות המתאימים אחרים בשורות (BH).
    3. הכנת דילולים סדרתי של כל מדגם על ידי pipetting 100 μL מכל טוב בשורה A, והעברת לתוך שורה ב לערבב בעדינות על ידי pipetting ולהימנע בייצור בועות. חזור על דילולים למטה כל שורה, להשליך את 100 μL הסופי מכל טוב בשורה H.
    4. מכסים את הצלחת עם parafilm ו דגירה על 4 מעלות צלזיוס למשך הלילה.
    5. לשטוף את platדואר עם 200 μL PBS, 0.05% Tween-20 לכל טוב שלוש פעמים.
    6. הוסף 200 μL של חיץ חסימת על בארות מצופה, לכסות עם Parafilm ו דגירה על 4 מעלות צלזיוס למשך הלילה.
    7. לדלל 1 / 15,000 Streptavidin-HRP לחסום חיץ ולהוסיף 100 μL היטב כל צלחת. כיסוי עם parafilm ו דגירה על 4 מעלות צלזיוס למשך הלילה.
    8. לשטוף את הצלחת 200 μL PBS, 0.05% Tween-20 לכל טוב חמש פעמים.
    9. כדי לזהות, להוסיף 100 μL של מגיב TMB לכל טוב. לאחר פיתוח צבע מספיק, בדרך כלל בין 10-15 דקות, להוסיף 100 μL של 1 M חומצה זרחתית לעצור את התגובה.
    10. קרא את ספיגת כל טוב ב λ = 450nm.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

תאים אפיתל היו מבודדים מרקמות המעיים של ר microplus לפי סכימה הציג באיור 1 . נציג מיקרוסקופ פלואורסצנטי הקרינה של תאים מעיים לתאי אפיתל מוכן באמצעות פרוטוקול זה מוצגים בתרשים 2A ו 2 ב. כמו בידוד התא מתבצע על רבעי מחורץ מיקרופלוס חצי , תאים מופיעים כמו יחיד, כדורית, משטח מורפולוגיה חלקה גודל עקבי לאורך המדגם. הבדלים בגודל ובסוג של אוכלוסיות תאים המעיים, הם ניכרים יותר לאחר הטיק ממשיך להיות מבוגרים מלאות.

מכתים פלואורסצנטי של גרעין של תאים אפיתל מבודד עם DAPI מסייע לדמיין את התאים. בידוד גרוע הם דמיינו כדי להכיל דיסוציאציה חלקית של epithתאים אליאליים עם אוכלוסיות תאים משתנים המזוהים באמצעות גדלים התא משתנה מורפולוגיות ( איור 2 ג ו 2 ד )

ניצול פרוטוקול זה, כ 1.2 x 10 7 תאים לכל / מ"ל ​​מ 50 ניתוחים קרביים בטן, עם הכדאיות 75-80% היו מבודדים בהצלחה ר 'מיקרופלוס בטן. זיהום צולבות של חלבונים המארחת ( איור 3 א ) ניתן למזער על ידי שטיפת כראוי האומץ לתקתק עד שיש להם מראה לבן כי התוצאה לבן / בהיר Percoll שיפוע ( איור 3 ב ).

חלבונים על פני השטח היו מבודדים באמצעות biotinylation של חלבונים הקשורים בחלל, הרס של ממברנות הסלולר ואת טיהור חלבונים פנימיים biotinylated עם חרוזים streptavidin מגנטי. סך של 20-24 מיקרוגרם של biotiny מטוהריםחלבונים משטח מאוחסנים יכול להיות מבודד עבור הזרם יישומים למטה מ דיסקציה ראשונית של 50x קרביים האומץ באמצעות פרוטוקול זה. השוואה של חלבונים על ידי SDS-PAGE ( איור 4 ), כתם כסף ( איור 4 ב ), נקודה כתם ( איור 5 ) ו ELISA ( איור 6 ) עולה כי המתודולוגיה המתוארת בהצלחה מטוהרים חלבונים פנימיים biotinylated תאים אפיתל מבודדים מ R. מְעִי.

איור 1
איור 1 : ייצוג סכמטי לבודד חלבונים biotinylated נוכח פני השטח של תאים microgut R. microplus . נא clIck כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של דמות זו.

איור 2
איור 2 : הדמיה מיקרוסקופ פלואורסצנטי (100x) של תאים מיקרו אפלוס midprout midgut מוכתם DAPI. התוכנה שימשה כדי לנהל את שכבת הקרינה. A & B) מייצגים תאים אפיתל בהצלחה מבודד מן midgut R. microplus . C / D) תאים אפיתל מבודדים מן המעיים microplus R. מזוהמים עם רקמות לתקתק גדול.

איור 3
איור 3 : שיפוע Percoll המכיל DMEM: 20% Percoll: 40% Percoll. שכבות תא אפיתל נוצרו בין DMEM: 20% PErcoll ואת 20: 40% Percoll. ( א ) בטן לנתיחה לנתיחה ללא צעד שטיפה נאותה. ( ב ) טקט לנתיחה לנתיחה עם צעד שטיפה נאותה. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של דמות זו.

איור 4
איור 4 : הפרדות אלקטרופורטי של חלבונים פנימיים biotinylated לרוץ על 4-20% Tris-MOPS ג'ל, ב 140 V עבור 55 דקות עם 10 מיקרוגרם של המדגם מנוצל. (L) סולם חלבון PageRuler prestained (1) ללא תווית ר microplus כולו מדגם בטן (2) חלבונים Biotinylated שחולצו מן הבטן ר microplus שלם לפי צעד 6. (3) חלבונים מתאי האפיתל שחולצו מן הבטן microplus נטולות-תווית ר (4 ) חלבונים Biotinylated שחולצו מ R. microplusתאים אפיתל לפי צעד 6. ( א ) SDS-PAGE מוכתמים על ידי כתם כסף כחול קומסי ( B ).

איור 5
איור 5 : ניתוח כתם נקודה. Streptavidin-HRP מצומדות מדולל 1 / 5,000. ( A ) סך של 10 מיקרוגרם של חלבון גלם לחלץ חלבון תמצית ( B ) חלבונים פנימיים Biotinylated שחולצו תאים אפיתל מטוהרים (10 מיקרוגרם).

איור 6
איור 6 : הערכה של חלבונים פנימיים biotinylated פני השטח באמצעות ELISA. ELISA של חלבונים פני השטח פותחה על ידי נוגדנים Strep-HRP מצומדות בדילול 1 / 15,000 נגד ריכוזים שונים של טיק biotinylatedK gut חלבונים (מ 0.7 ng ל 100 ng). Unlabeled תירס בטן חלבונים ו אלבומין בסרום שור (BSA) שימשו שליטה שלילית של ELISA. אנא לחץ כאן כדי להציג גרסה גדולה יותר של דמות זו.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

התפשטות בקר קרים מהווים בעיה רצינית עבור תעשיית הבקר באזורים טרופיים וסובטרופיים של העולם, עם השיטה הנפוצה ביותר של שליטה להסתמך על שימוש אקריצידים 1 , 4 . Bm86 זוהה בעבר בתוך השטח האפיתל במעיים לתקתק כמו אנטיגן המגן נגד ר microplus שריצה 10, עם הצלחה מוגבלת כאסטרטגיה חיסון עקב וריאציה רצף גיאוגרפי Bm86 ואת הדרישה קבוע לחיזוק 4.

פרסומים קודמים המתמקדים במתודולוגיות בידוד אפיתל התמקדו בעיקר בחוליות או חרקים , 9 , 11 , 12 , 13 , 14 . לדוגמה, שבירה מוקדמת מנסה לבודד midgutתוך שימוש בטכניקות יונקים, נמצא כי אותה מתודולוגיה לא ניתן להחיל על חרקים בשל מבנה התא וארגונים שונים 12 . יתר על כן, טכניקות יונקים להסתמך על השימוש או dipase או collagenase, כדי לעכל את התא תא צומת חלבונים 9 , 13 . דיפאז ו collagenase להשפיע באופן משמעותי על פני התא חלבונים חלבונים, ולכן טכניקות התלויים בשימוש שלהם אינם מתאימים למחקר חלבונים פני התא 15 . בידוד חרקים midgut תא כרגע להתמקד בשתי טכניקות. הראשון מנצל הפרעה מכנית של midgut דרך אולטראסאונד ואחריו הפרדה על מעבר רציף סוכרוז ליניארי 8 , 11 , 12 , 14 . טכניקה מכנית זו מייצרת דגימות כמעט ברורה של מזהמים, Howeור מייצרת תשואה נמוכה של microvillarmembranes 14 . הטכניקה השנייה מסתמכת על טריס הפרעה של ממברנות לשחרר ממברנות microvillar 8 .

הטכניקה המתוארת במאמר זה מאפשרת בידוד של תאים אפיתל, biotinylation של חלבונים פנימיים ובידוד שלהם 16 , המאפשרים מחקרים נוספים באמצעות יישומים במורד הזרם כגון ספקטרומטריית מסה או FACS. השיטה המתוארת כאן מנצל את הסוכן chelating EDTA ואת הפחתת סוכן TCEP. פונקציות EDTA כדי להשריש יונים סידן, מעכב cadherins, שבירת cadherin בתיווך צמתים תא תא ואילו TCEP מקטין את הקשר דיסולפיד אשר מעניקה צמיגות של גליקן עשיר דמויי רירית מטריקס רירית המפריד בין לומן המעיים מן האפיתל. אפיתל הוא התאושש בעקבות שיבוש מכני של הרקמות על ידי רועד, ואחריו צנטריפוגה שיפוע רציפה ב densitY צנטריפוגה שיפוע. תאים אפיתל מבודדים בין DMEM: 20% צפיפות צנטריפוגה שיפוע, ו 20%: 40% צפיפות צנטריפוגה שכבות שיפוע.

ניצול של טמפרטורה גבוהה במהלך דיסוציאציה תא אפיתל יגרום רקמות גדולות כדי לנתק מן המעיים, מה שמוביל לכישלון לבודד תאים אפיתל. הבטחת כי דיסוציאציה תא אפיתלי מתבצע מיד לכתוב לנתיחה לנתיחה; ניצול של buffers קר כקרח והימנעות מהירויות צנטריפוגה גבוהות הוא קריטי בשמירה על תאים חיים קיימא. למרות זאת, הפירוק של תאים גדולים מן הלמידה הבסיסית יכול לספק קצת זיהום. יתר על כן, אפיתל midgut של טיק משתנה באופן דרמטי בזמן מארוחת הדם האחרונה 18 , 19 , 20 .

ככזה, פרוטוקול זה תוכנן וגישה על ר microplus איור 1 ) הם בעלי אופי אחיד.

לסיכום, שיטות המשמשות במחקר זה בהצלחה מבודדים תאים אפיתל מן המעיים כולו של ר microplus . חלבונים מפני השטח של תאים אפיתל R. מיקרופלוס התקבלו לניתוח נוסף ומחקרים. לבסוף, פרוטוקול פיתחה הוכיח את התשואה הפוטנציאלית של תאים אפיתל מן המעיים סמן, ואת היעילות של חלבונים פנימיים biotinylated של התא. פרוטוקול שפותח יכול להיות מנוצל בכל מינים סמן של משמעות כלכלית במאמץ לחקור טאק: אינטראקציות מארח על ידי לימוד חלבון הממברנה comמיקום המעיים.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

למחברים אין מה לחשוף.

Acknowledgements

המחברים מבקשים להודות ל Biosecurity המושבה הטיקאית (מחלקת קווינסלנד לחקלאות ודיג באוסטרליה) על אספקת Rhipicephalus microplus קרציות מנוצל עבור מחקר זה, ו לוקאס Karbanowicz לעזרה עם צילומי וידאו.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
0.4% Trypan Blue ThermoFisher Scientific 15250061
1.5 mL microcentrifuge tube Eppendorf 3322
100mM Carbonate Buffer 3.03 g Na2CO3, 6.0 g NaHCO3 1000 ml distilled water pH 9.6
16 mL centrifuge tubes with sealing cap Thermo Scientific 3138-0016 Cool in ice prior to gradient
250 µM cell strainer Thermo Fisher 87791
3,3′,5,5′-Tetramethylbenzidine (TMB) Liquid Substrate System for ELISA Sigma T0440 Stored at 4C
30% Hydrogen Peroxide Labscene BSPA5.500
4-20% Tris-MOPS Gel Gen Script M42015
4-Chloro-1-naphthol tablet Sigma-Aldrich C6788
50 mL Falcon Tube Corning Blue 30 x 115mm style. Polyproplyene conical tube.
70 µM cell strainer BD Falcon 352350
AP15 filter paper Millipore AO1504200
Biotin (Type A) Conjugation Kit Abcam Ab102865
Dissection microscope Olympus SZX7
DP Manager  Olympus 2.2.1.195 Cell imagery software
Duct Tape Home Handyman 48mm x 25mm Duct Tape
Dulbecco’s Modified Eagle Medium Gibco 11995-065 DMEM - ice cold for protocol
EDTA Amresco 0105-500G
F96 Maxisorp Immuno Plate Nunc 439454
Fetal Bovine Serum Sigma-Aldrich 12003C FCS
Fluorescence microscope   Olympus  BX51
Fluoroshield with DAPI Sigma-Aldrich F6057-20ML DAPI
Forceps Dumont #9 Dumont - Switerzland
Glycerol Sigma-Aldrich G5516 Glycerol for molecular biology >99%
Glycine Sigma-Aldrich 410225
Hand-Held Counter Officeworks JA0376230
Hank’s Balanced Salt Solution Sigma Life Sciences H9394 HBSS – ice cold for protocol
Hemacytometer Optik Lakor - -
L-Glutathione oxidized Sigma-Aldrich G4376
Magnetic Separation Stand Novagen - 4-Tube Magnetic Separation Rack
Methanol Sigma-Aldrich 179337
Milli-Q Water Millipore ZRXQ003WW Integral Water Purification System for Ultrapure Water
Nitrocellulose Membrane Life Sciences 66485 30cm x 3M pure nitrocellulose membrane
PageRuler Prestained protein Ladder Thermo-Fisher SM0671
PBS 1.16 g Na2HPO4, 0.1 g KCl, 0.1 g K3PO4, 4.0 g NaCl (500 ml distilled water) pH 7.4
Percoll Sigma-Aldrich P1644-500ML
Peristaltic Pump Masterflex 7518-10
Phosphoric Acid Sigma-Aldrich P6560
Pierce Protein-Free T20 PBS Blocking Buffer Thermo-Scientific 37573 Stored at 4C. Blocking Buffer
Protease Inhibitor Cocktail Sigma-Aldrich P8215-5ML PIC – stored at -20 °C
Quick Start Bradford Dye Reagent 1x Biorad 500-0205 For Bradford Assay
Quick Start BSA Standards Biorad 500-0207 BSA standards for Bradford Assay
Scalpel Lab. Co Size 11 Scalpel
SilverQuest TM Staining Kit Invitrogen LC6070
Simply Blue TM Safe Stain  Invitrogen LC6060
Sorvall C6+ Ultracentrifuge Thermo Scientific 46910
Streptavidin (HRP) Abcam AB7403
Streptavidin Magnetic Beads New England Biolabs S1420S
Super Glue - Ultra Fast Mini UHU UHU Super Glue 1mg. Ultra Fast mini
Table-top Centrifuge Eppendorf 22331
TCEP Thermo Fisher 20490
Triton X-100 Biorad 161-0407
Tween-20 Sigma P2287-500ML
Vortex Mixer Ratek VM1
Water Bath Grant GD100

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Rodriguez-Valle, M., et al. Efficacy of Rhipicephalus (Boophilus) microplus Bm86 against Hyalomma dromedarii and Amblyomma cajennense tick infestations in camels and cattle. Vaccine. 30, 3453-3458 (2012).
  2. De Rose, R., et al. Bm86 antigen induces a protective immune-response against Boophilus microplus following DNA and protein vaccination in sheep. Vet. Immunol. Immunopathol. 71, 151-160 (1999).
  3. García-García, J. C., et al. Sequence variations in the Boophilus microplus Bm86 locus and implications for immunoprotection in cattle vaccinated with this antigen. Exp. Appl. Acarol. 23, 883-895 (1999).
  4. Abbas, R. Z., Zaman, M. A., Colwell, D. D., Gilleard, J., Iqbal, Z. Acaricide resistance in cattle ticks and approaches to its management: The state of play. Vet. Parasitol. 203, 6-20 (2014).
  5. Kearney, S. Acaricide (chemical) resistance in cattle ticks. AgNote No. K58. (2013).
  6. Foil, L. D., et al. Factors that influence the prevalence of acaricide resistance and tick-borne diseases. Vet. Parasitol. 125, 163-181 (2004).
  7. Rodriguez, M., et al. High level expression of the B. microplus Bm86 antigen in the yeast Pichia pastoris forming highly immunogenic particles for cattle. J Biotechnol. 33, 135-146 (1994).
  8. Rodriguez, M., et al. Effect of vaccination with a recombinant Bm86 antigen preparation on natural infestations of Boophilus microplus in grazing dairy and beef pure and cross-bred cattle in Brazil. Vaccine. 13, (18), 1804-1808 (1995).
  9. Lew-Tabor, A. E., Rodriguez Valle, M. A review of reverse vaccinology approaches for the development of vaccines against ticks and tick borne diseases. Ticks Tick Borne Dis. 7, 573-585 (2016).
  10. Capella, A. N., Terra, W. R., Ribeiro, A. F., Ferreira, C. Cytoskeleton removal and characterization of the microvillar membranes isolated from two midgut regions of Spodoptera frugiperda (Lepidoptera). Insect Biochem. Mol. Biol. 27, 793-801 (1997).
  11. Cioffi, M., Wolfersberger, M. G. Isolation of separate apical, lateral and basal plasma membrane from cells of an insect epithelium. A procedure based on tissue organization and ultrastructure. Tissue Cell. 15, 781-803 (1983).
  12. Koefoed, B. M. A simple mechanical method to isolate the basal lamina of insect midgut epithelial cells. Tissue Cell. 17, 763-768 (1985).
  13. Roche, J. K. Isolation of a purified epithelial cell population from human colon. Methods Mol. Med. 50, 15-20 (2001).
  14. Terra, W. R., Costa, R. H., Ferreira, C. Plasma membranes from insect midgut cells. An. Acad. Bras. Ciênc. 78, 255-269 (2006).
  15. Vargas, A. E., Markoski, M. M., Cañedo, A. D., Helena, F., Nardi, N. B. Identification, isolation and culture of intestinal epithelial stem cells from murine intestine. Stem Cells. 879, 479-490 (2012).
  16. Autengruber, A., Gereke, M., Hansen, G., Hennig, C., Bruder, D. Impact of enzymatic tissue disintegration on the level of surface molecule expression and immune cell function. Eur. J. Microbiol. Immunol. 2, 112-120 (2012).
  17. Karhemo, P. R., et al. An optimized isolation of biotinylated cell surface proteins reveals novel players in cancer metastasis. J. Proteomics. 77, 87-100 (2012).
  18. Obenchain, F. R., Galun, R. Physiology of Ticks. Current Themes in Tropical Science Volume 1. Pergamon Press. 201-205 (1982).
  19. Sonenshine, D., Roe, R. Chapter 3.1. "Biology of Ticks". 1, Two, Oxford University Press. (2014).
  20. Raikhel, A. S., Balashov, Y. S. "An Atlas of Ixodid Tick Ultrastructure" (English Translation). Entomology Society of America Entomological Society of America. (1983).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Video Stats