诱导麻痹及视觉系统损伤小鼠 T 细胞特异的视神经脊髓炎抗原水通道蛋白-4

* These authors contributed equally
Immunology and Infection
 

Summary

在这里,我们提出一项议定书,引起瘫痪和视神经炎症反应的水通道蛋白 4 (AQP4) 转让-具体从 AQP4-/-小鼠到 WT 小鼠的 T 细胞。此外,我们演示了如何使用串行光学相干层析成像技术来监视视觉系统功能障碍。

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Sagan, S. A., Cruz-Herranz, A., Spencer, C. M., Ho, P. P., Steinman, L., Green, A. J., Sobel, R. A., Zamvil, S. S. Induction of Paralysis and Visual System Injury in Mice by T Cells Specific for Neuromyelitis Optica Autoantigen Aquaporin-4. J. Vis. Exp. (126), e56185, doi:10.3791/56185 (2017).

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Abstract

虽然它承认那水通道蛋白 4 (AQP4)-特定的 T 细胞和抗体参与发病的视神经脊髓炎 (NMO),人类中枢神经系统 (CNS) 自身免疫性脱髓鞘疾病,有针对性的 AQP4 与两个模型的建立中枢神经系统自身免疫的临床和病理表现已证明具有挑战性。野生型 (WT) 小鼠与 AQP4 肽免疫引起 T 细胞增殖,虽然那些 T 细胞不能转移疾病到天真收件人小鼠。最近,两个小说 AQP4 T 细胞抗原表位肽 (p) 135-153 鉴别、 p201-220,当学习 AQP4 AQP4 缺陷 (AQP4-/-) 小鼠,建议对这些抗原的 T 细胞活性的免疫应答通常由胸腺消极的选择。AQP4-/- Th17 极化引到 p135 153 或 p201-220 瘫痪收件人 WT 在小鼠中,这与主要软脑膜发炎的视神经和脊髓的 T 细胞。炎症周围视神经和视网膜内层 (IRL) 参与主要表现为串行的光学相干断层扫描 (OCT) 的变化。在这里,我们说明用于创建此新体内模型 AQP4 针对中枢神经系统自身免疫反应 (ATCA),现在可以用来研究允许发展他们可能怎样配合 B 与致病性 AQP4 特异性 T 细胞的机制的途径NMO 发病机制中的单元格。

Introduction

视神经脊髓炎 (NMO) 是中枢神经系统 (CNS) 自身免疫性炎症脱髓鞘疾病导致的瘫痪和视觉丧失导致永久性的神经功能障碍1反复发作。NMO 目前被认为主要是体液的自身免疫性疾病2 ,因为它是与抗体 (Igs) 针对水通道蛋白-4 (AQP4) 表达在星形胶质细胞34水通道相关联。然而,中枢神经系统炎症是中枢神经系统条目的 AQP4 Ig56的先决条件。因此,已不可能建立模型 NMO 由反 AQP4 Igs 单独转让。结果 (1) 致病 AQP4 特定 Igs NMO 患者为 IgG112,NMO 病变89 (3) NMO 中确定了子类7 (2) T 细胞 T 细胞依赖 Ig 是关联与某些 m h C ⅱ 基因 (如 HLA DR17 (DRB1 * 0301年))10和 (4) 炎性 AQP4 无功博士-限制的 Th17 细胞扩大 NMO 患者1112所有表明 AQP4 特异性 T 细胞起着关键作用在 NMO 发病机制。因此,它是重要的是建立动物模型,来确定如何 AQP4 特异性 T 细胞可能有助于 NMO 发病机制。

几年前,在野生型 (WT) 小鼠1314 ,大鼠15确定了多个 AQP4 T 细胞抗原表位。虽然有人认为 AQP4 反应性 T 细胞能诱导视神经炎症的天真收件人大鼠1516,不观察中枢神经系统疾病的显著临床症状。同样,直接 WT 小鼠免疫与含 AQP4 T 细胞抗原表位1417,肽或转移的促炎症反应 T 细胞靶向这些决定因素17,没有引起临床症状或组织学中枢神经系统自身免疫的证据。

最近,它与高亲和力18观察那免疫 C57BL/6 AQP4 缺 (AQP4-/-) 小鼠 AQP4 肽 (p) 135-153 或 p201-220,预测要绑定 MHC II (-A 和b) 的两个决定因素,引起了强烈的 CD4+ T 细胞反应17。与此相反的是,这些两个肽引起 WT 小鼠只谦虚的增殖反应。此外,用于识别这些行列式的 AQP4-/-小鼠 T 细胞的 T 细胞受体 (TCR) 曲目是独一无二的。总的来说,这些研究结果表明 T 细胞识别的 AQP4 受胸腺阴性选择。AQP4 p135-153-p201-220-特定或 AQP4-/-捐助小鼠 Th17 细胞诱导瘫痪近 100%的天真收件人的 WT 小鼠;这是与视神经浸润的 T 细胞、 B 细胞和单核细胞。串行视神经相干断层成像 (OCT) 表明动态视觉系统的参与。小鼠 T 细胞介导 AQP4 针对中枢神经系统自身免疫 (ATCA) 从瘫痪和视觉系统损伤恢复。与 EAE 诱导髓鞘少突胶质细胞糖蛋白 (MOG) p35-55-特定于 T 细胞,从而导致持续性的临床疾病,ATCA 诱导 T 细胞单独不是与轴突损失或减少的视网膜神经节细胞 (视网膜神经节细胞) 相关联的。我们的研究结果清楚地表明,有多个致病 AQP4 T 细胞决定因素。ATCA 这个新模型是用于控制致病 AQP4 特异性 T 细胞,学习如何这些细胞诱导中枢神经系统炎症和如何他们可能配合 AQP4 特异性 B 细胞和抗体促进 NMO 发病机制发育的机制研究.

在本报告中,我们描述了用于诱导和评价 T 细胞诱导 ATCA 的协议。我们开始与用于免疫、 T 细胞培养和 Th17 极化产生致病性 AQP4 特异性 T 细胞,流式细胞分析以确认极化和那些 T 细胞过继转移的技术。然后,我们描述用于评价临床和病理疾病和串行 OCT 监测视觉系统小鼠损伤的收件人使用的方法。

Protocol

所有动物手术均符合由加利福尼亚大学、 旧金山体制动物护理和使用委员会核准的试验准则。C57BL/6 (H-2 b) 雌性小鼠,8 周大的时候,被购买和 C57BL/6 AQP4 -/- 小鼠由 A.Verkman.

1.免疫的小鼠与 AQP4 肽

  1. 准备完全弗 ' s 佐剂 (CFA) 工作股票。
    1. 细磨干燥的制备的 结核分枝杆菌 (H37Ra) 用研钵和杵。
    2. 添加地面对不完全佐剂 H37Ra ' s 佐剂对终浓度为 4 毫克/毫升。终审法院可以存储在 4 ° C,长达 6 个月。
  2. 溶解冻抗原 (Ag) AQP4 肽在磷酸盐缓冲液 (PBS) 至终浓度为 1 毫克/毫升。保持在 4 ° C 或在冰面上
  3. 准备大会 2 针头锁注射器,与旋塞阀,加入含终审法院/多肽乳液。
    1. 附加不到 2 个男性 luer-锁连接的 3 种方式尼龙旋塞阀柱塞的玻璃针头锁注射器。通过切换对注射器杠杆关闭旋塞阀。注射器,允许注射器作为测试管的开口端的位置。放在管架,增加稳定性。
    2. 涡终审法院工作股票和 Ag 解决方案。加 1:1 体积的肽 / 打开注射器的终审法院。200 µ L 的终审法院/Ag (4 x 50 µ L) 每个都需要鼠标。
      注意: 通常情况下,大约 1 毫升的制备是迷失在旋塞阀,这将减少可用免疫的金额。因此,它是重要的是融入到所需的总体积的计算.
      示例: 为 5 小鼠免疫: (200 微升/动物 x 5 动物) + 1 毫升额外容量 = 总终审法院/Ag 所需的 2 毫升。
    3. 插入玻璃柱塞进入注射器和同时举行的地方,以便旋塞阀是面向向上反转注射器。切换到未使用的螺纹连接旋塞阀杠杆。仔细按压玻璃柱塞以从注射器中删除多余的空气。液体填充第二个男性 luer-锁连接旋塞阀。
    4. 旋塞阀的第二个男性 luer-锁连接到附加第二玻璃注射器 (柱塞完全插入)。这应该是一个封闭的系统 2 玻璃注射器与包含作为尽可能小过量空气旋塞阀连接。
    5. 创建的乳液,混合推动柱塞传给液体交替之间大约 2 分钟寒意在大约 10 分钟冰上的注射器重复 2 注射器令人不寒而栗的和搅拌直至有明显是改变了粘度的制备导致非常僵硬,白色的乳液。冷藏的注射器包含在 4 ° C 的乳胶或维持在冰面上
  4. 将所有的乳状液转移到一个玻璃注射器针头锁、 删除空的玻璃注射器和替换 1 毫升注射针头注射器。用乳液填充新的注射器、 删除从旋塞阀和附加一根针 (25 x 5/8)。
  5. " 水测试 " 乳液的一致性。一个小碟子里面的水驱逐一滴乳液性能的影响。乳液应该不能分散,指示它适合于注射。
    1. 乳液分散,如果它不是准备注射; 转移液体回玻璃注射器并继续混合,然后再放松,直到乳液是僵硬。
    2. 再次测试乳液,直到取得了适当的浓度。
  6. 注入捐助 AQP4 -/- 小鼠皮下注射 (南卡罗来纳州) 与含 AQP4 肽乳液。每个鼠标接收 4 x 50 µ L s.c.注射 (200 µ L 总 (100 微克肽))。4 网站包括双方的下腹部,漏入腹股沟淋巴结 (LN) 及两侧胸壁内侧到每个腋下漏入腋生巷过继转会需要 1-2 免疫的捐助小鼠每个收件人的老鼠。

2。T 细胞培养及炎性 T 细胞极化

  1. 10-12 天后免疫,从小鼠收集 LN。
    1. 在冰盘,准备 60 毫米的培养皿装有一个细胞过滤器 (网格大小 70 µ m) 和含冰鲜含 10%热灭活的胎牛血清 (FBS) 的 RPMI 媒体和 100 U/mL 青霉素 100 微克/毫升链霉素 (钢笔-链球菌) (RFP)。
    2. Euthanize 小鼠暴露于 CO 2,其次是颈椎关节脱位。沉浸小鼠中 70%的乙醇,然后寄到夹层板每个于拦路贼。
    3. 从腹股沟切正中皮肤切口,脖子和到每条腿。拉肌肤远离腹膜和别针把它拉紧地向董事会。解剖腹股沟和腋窝 LN 和放入培养皿中 RFP,在冰上。 19
    4. 过继转移实验,结合 LN 从相同的免疫接种组内的所有动物。Vβ 使用流流式细胞仪分析,分开个别动物的 LN。
  2. 放置包含到含 RFP 50 毫升离心管 LN 的细胞过滤器。使用无菌 5 毫升注射器柱塞平端按 LN 细胞通过过滤器,用 20-30 毫升的 RFP,以便恢复单元格的清洗。维持在加工过程中,文化的时间直到冰上 LN 细胞。
  3. 洗两次,离心在 393 x g 5 分钟。后第二次洗,重悬 LN 细胞的 T 细胞媒体 (TCM)。中医包含用 RPMI 10%热灭活胎牛血清、 292 微克/毫升 L-谷氨酰胺、 110 微克/毫升丙酮酸钠,和 55 µ M 2-巯基乙醇和笔链球菌。通常情况下,使用的 5 毫升中医捐助鼠标每卷。
  4. LN 单元格进行计数。预期收益率是大约 3-6 x 10 7 LN 细胞免疫的小鼠捐精者。留出 3-4 x 10 6 增殖测定 (见下面第 3 节)。
  5. 设置偏光文化为过继转移 (6 节)。
    1. 准备 Th17 偏光文化 5 x 10 6 LN 细胞每毫升 10 微克/毫升 Ag,20 吴/mL 重组小鼠白细胞介素 (IL)-23 和 10 吴/mL 重组小鼠白细胞介素-6 在中医。
    2. 另外,Th1 两极化,准备文化 5 x 10 6 LN 细胞每毫升 10 微克/毫升 Ag 和 10 吴/mL 重组小鼠白细胞介素-12 在中医。
    3. 加入 12 孔板每两极化的文化混合井 2 毫升 (1 × 10 7 细胞)。LN 小鼠细胞的 2-4 捐助将填补一个 12 孔板。保持文化在湿的孵化器在 37 ° C,5%CO 2 为 72 h.
    4. 目视检查 LN 细胞培养的激活在 48 小时和 72 h.活化细胞会形成广泛的集群和 T 细胞将增加规模,成为更多形性。代谢的增加将导致在媒体上,改从桃橙 ph 值降低。如果 pH 值低到足以变黄了媒体,添加 1 毫升新鲜中医防止对在其余 24 h.细胞毒性的
    5. 节 6 继续为过继转移。极化效率可核实染色 (ICS) 的细胞内细胞因子作为描述第 5 节中的部分。
  6. 设置文化流流式细胞术分析的表面 Vβ 表达 (节 4) 从个别老鼠使用 LN。
    1. 准备 5 x 10 6 每毫升 10 微克/毫升 Ag 在中医与 LN 细胞。
    2. 加入 12 孔板 2 毫升 (1 × 10 7 细胞) 的每口井的文化。文化应维持在一个湿的孵化器,在 37 ° C,5%CO 2 10 天。第 4 节继续。

3。增殖

注: 这种情况继续从 2.4 节。

  1. 准备的 LN 细胞在管中,在 2 × 10 3 4 毫升每毫升中医 6 细胞。
  2. 轻轻的逆变管多次,混合细胞,然后换乘不育槽。
  3. 使用到板 100 μ L 细胞每口井的多通道滴入 96 孔板圆底细胞培养板。通常情况下,板 15 口井,一式三份和试验的 4 种 Ag 浓度没有 Ag 参考。
  4. 稀释 Ag 在中医在不同浓度,通常 80、 20、 5、 1 和 0 微克/毫升 (2 x 股票)。在一式三份的终浓度为 40,10,2.5 中添加每个浓度 100 μ 的 L。0.5 和 0 微克/毫升。孵化为大约 72 小时 37 ° C.
    注: 步骤通过 3.7 3.5 涉及放射性材料。正确使用方法、 监测和处置放射性材料应进行,按照体制和政府规定。
  5. 准备工作 3 H-胸苷股票溶液 (40 µCi/mL) 1 mCi 3 H-胸苷加入 25 毫升 RPMI,而存储这在 4 ° C.吸管 0.5 毫升的工作解决方案不育的槽里。
  6. 添加 25 µ L 的 3 H-胸苷 (1 µCi) 每好使用多通道的吸管。孵育额外 18 h 在 37 ° C.
  7. 收获细胞到使用 96 孔板细胞收割机玻璃过滤器垫子上,用 70%乙醇冲洗。干燥后,进用 5 毫升闪烁液的塑料样品袋密封过滤垫。在每个好使用闪烁计数器测量放射性。

4。细胞表面 TCR Vβ 表达的流式细胞分析

注: 这种情况继续从第 2.6 节。抗体的鼠标 TCR Vβ 2,3,4,5.1 和 5.2、 6、 7、 8.1 和 8.2、 8.3,9、 10b、 11、 12、 13、 14、 及 17a 条是商业上供测试 TCR Vβ 表达。

  1. 的 TCR Vβ 检测,取出 T 细胞培养板从吹打几次和细胞转移到一个管。
  2. 用流式细胞仪缓冲区 (FB) 含 2%胎牛血清,0.1%叠氮化钠和 2 毫米在 PBS 中 EDTA 清洗。
  3. 细胞转移到 V 形底 96年孔板,密度为 1 × 10 5 至 3 x 10 6 细胞每口井。这些细胞进入多个井 (Vβ 正在测试每一个井) 分布的整个 Vβ 小组正在进行测试,如果。
  4. 通过染色用活死可行性染料,与自由胺暴露的坏死细胞的反应,从流式细胞术分析排除死细胞。按照制造商 ' s 说明离心和再悬浮在可行性染料。10-20 分钟,整个细胞染色程序冰上孵育,保护细胞免受光和保持在冰面上
  5. 后孵化,洗板一次在 FB。若要检测 TCR Vβ,暂停在 100 μ L 的 FB 包含抗体 1: 100 稀释的 CD4 细胞 (克隆 RM4 5) 和 TCR Vβ。孵育 15-60 分钟在冰面上
  6. 在 FB 一次洗板和固定细胞通过添加 200 微升 4%多聚甲醛在 PBS 稀释。孵育 20 分钟在冰上。洗板在 FB 和流式细胞分析。

5。流流式细胞仪分析细胞内细胞因子生产

  1. 为细胞内细胞因子染色 (ICS),对待 T 细胞文化与蛋白质运输抑制剂试剂 (例如,GolgiPlug) 1: 1000 稀释中医,ICS,防止前 4 h分泌细胞因子。在那个时候,激活 T 细胞与 50 吴/mL 佛 12-肉豆蔻 13-乙酸酯 (PMA) 和 500ml 吴 ionomycin 为了诱导蛋白生产。
  2. 后的文化在 37 ° C 的 4 h,取出细胞培养板吹打向上和向下,并将转移到离心管 (15 或 50 毫升)。
  3. 用 FB 洗净。重悬细胞在 FB 和转移到 V 形底 96年孔板,密度为 5 × 10 5 3 x 10 6 细胞每井。
  4. 染色细胞与可行性染料作为上述 (第 4.2 节)。孵育后洗板一次在 FB。
  5. 添加抗体检测的表面标记,如下所示:
    1. 的表面标志物的检测,暂停在 100 μ L 的 FB 包含抗体 1: 100 稀释的 CD4 细胞 (克隆 RM4-5)。
    2. (可选) 包括抗体为 B220 (克隆 30 F11) 和 CD11b (克隆 M1/70) 1: 100 稀释,采用提高浇注的 B 细胞和单核细胞/巨噬细胞,分别。一般来说,PE Cy7 抗 CD4、 FITC 抗 B220 和 PerCP Cy5.5 抗 CD11b 工作好。抗体/荧光复合物的选择应遵循的流式细胞仪分析,用于配置和最优的抗体浓度应可根据经验确定。
    3. 孵育 15-60 分钟上冰。
  6. FB 用洗板和重悬 200 微升的在冰上 20 分钟的固定/通透解决方案中的单元格。这将修复细胞和通透细胞细胞膜。
  7. 为了维持细胞膜在细胞内染色,通透而不是 FB 使用烫发/洗涤缓冲液 (PW) (稀释 1:10 从 10 X 股票)。洗井的 PW 200 微升。
  8. 为 ICS,制备抗体的 1: 100 稀释液干扰素 (IFN)-γ 和 IL-17A 使用 1 x PW。一种选择是 APC 抗 IFN-γ (克隆 XMG1.2) 和 PE 抗-IL-17A (克隆 eBio17B7),效果很好。悬在 100 μ L 的鸡尾酒的胞内抗体的细胞,然后孵育至少 15 分钟。它也是可能继续染色一夜之间在 4 ° C.
  9. 洗井的 PW 200 微升和再悬浮在 FB 为流式。
  10. 并行,准备污泥而不染的样品 (FB 没有抗体细胞) 对优化检测器电压和单染色样品为每个个别的荧光染料 (即细胞或补偿珠沾上只有一个抗体/荧光)确定补偿溢出值。
  11. 使用流式细胞仪,获得 ≥ 一万个细胞 (事件),浇注上可行 (活/死-阴性) CD4 + 细胞。为了确保准确浇注的 T 细胞,排除 B220 + 和 CD11b + 细胞 (B 细胞和单核细胞/巨噬细胞,分别)。在 CD4 + T 细胞亚群、 确定细胞表达 IFN-γ (Th1 血统) 或 IL-17A (Th17 沿袭) 的百分比。

6。过继转移致病 AQP4 特异性 T 细胞

注: 此步骤如下从第 2.5 节: T 细胞文化和炎性 T 细胞极化。

  1. 恢复极化 12 孔板细胞吹打向上和向下取出,并将它们传送到 50 毫升管。马要保持直到注射冰上的。
  2. 单元格进行计数,两次在冷的 PBS,洗净,准备暂停 PBS 1 x 10 8 细胞/毫升。一般来说,在一个小时内注入细胞。
  3. 轻轻的旋转混合细胞和转移到 1 毫升注射器注射次。静脉内管理的细胞 (2 x 10 7) 200 微升 (静脉注射) 向每个鼠标,通过尾静脉。
  4. 注入每个收件人小鼠腹腔与 200 吴 B.百日咳 毒素稀释 200 µ L 的 PBS 在那一天和 2 天后。监测小鼠每日为临床疾病的迹象。

7。临床评估 ATCA

  1. 检查收件人小鼠每日为中枢神经系统自身免疫的临床症状。一般情况下,小鼠将显示中枢神经系统自身免疫的迹象后 AQP4 特异性 T 细胞过继转移 5-8 天。老鼠会显示神经功能障碍的临床症状。它有利于对天真鼠标来定义鼠标的正常能力进行评价。
  2. 评价小鼠尾巴损失的语气。轻轻握住小鼠尾基部,直立提起。枯萎不断是称为损失的尾巴尾巴音 (1 分)。尾巴的语气损失通常是临床疾病的第一迹象。
  3. 通过将鼠标放在一个平面上背上的
  4. 测试为扶正反射。缓慢的纠正是躯干共济失调的标志 (2 分)。天真的鼠标会完全抵制任何企图将它放在它的后面,所以任何缓慢的权利能力得分为功能障碍。它是典型的测试鼠标这反射 3-4 倍。
  5. 评估姿势和移动。老鼠开始显示变化导致降低或拖动的臀部在行走的姿势 (2.5 分)。进一步疾病结果在单瘫,一个后完全陷于瘫痪肢体 (3.0 分) 和截瘫,两后肢完全瘫痪肢体 (3.5 分)。适度四肢轻瘫为,所有的四肢,弱点会导致非常缓慢的向前移动 (4 分)。严重四肢轻瘫为允许几乎没有向前移动 (4.5 分)。最后,严重的疾病,他们可能成为垂死或死 (5 分)。
  6. 管理对小鼠失去的能力或者,获得流体或固体食物 1 毫升的生理盐水腹腔 5%葡萄糖液使用补充凝胶杯,高热量的凝胶和培根软弱来抵消脱水和剥夺食物。安乐死垂死老鼠。

8。组织编制和组织学

  1. 麻醉小鼠 100 毫克/公斤氯胺酮和甲苯噻嗪 10 毫克/公斤,然后销到夹层板每个于拦路贼。
  2. 开放了胸,暴露心脏。切开肝允许血液流出。附加到单独的储水槽用 PBS 和 10%的福尔马林 miniflow 变速泵油管的蝴蝶针。将针插入到心脏的左心室和灌注配合 5 毫升的 PBS,其次是 25 毫升 10%福尔马林。
  3. 删除头部,然后眼睛。过程的眼睛和视网膜前面所述 20。抄近路穿过眼窝、 插入剪刀在鼻子和每个侧面切开前-后头骨。
    1. 删除头骨、 揭露视神经、 切断视神经交叉置于之间 2 泡沫垫卡带。
    2. 在 10%福尔马林 (24 小时),然后 50%乙醇 (24 小时),然后转账到 70%的乙醇浸没。
  4. 移除大脑和脊柱,并将在 10%福尔马林。连续的部分大脑在冠状面;节脊髓索在矢状面 (大约一半) 和串行冠状面 (大约每次鼠标 20 截面)。
  5. 过程 CNS 样品常规石蜡包埋。染色 8 µ m 厚截面与苏木精和曙红 (视神经) 或勒快速蓝苏木精和曙红 (脑和脊髓)。
  6. 评价视神经炎症神经和周围脑膜 (视神经炎) 内或主要地在周围脑膜 (光纤 ③) 的存在。
  7. 计数脑膜和实质的炎症病灶 (> 10 聚集外周血单个核细胞) 在脑和脊髓样品,每个鼠标。

9。在体内视网膜成像的光学相干断层成像 (OCT)

注: 频域 OCT 视网膜成像的小鼠进行使用商用设备 (例如,Spectralis 与 TruTrack 眼动仪) 以实现一致的眼定位和减少运动伪影。

  1. 五分钟前成像,瞳孔与托吡卡胺 1%(每只眼睛看到一滴) 和放置鼠标成像在麻醉诱导室,提供源源不断的 2 升 / 分钟 (1.5%异氟醚)。打开热垫和准备麻醉后恢复笼。
  2. 将鼠标放置在成像滚筒上,因此麻醉流重定向。保护眼睛与 0.3%羟丙基甲基纤维素,保持眼睛湿润,确保折射连续性。眼要检查上放置自定义的隐形眼镜。
  3. 红外眼底图像,作指导直接激光对眼睛,确保梁中心视神经头上。垂直和水平 OCT 扫描应确认,视网膜激光奠定了垂直。
  4. 执行 25 B 扫描在高分辨率模式和栅格化从 30 平均 A 扫描。
  5. 后成像两只眼睛,取隐形眼镜,并涂眼用凝胶。在温暖的恢复笼子里离开鼠标。

10。处理和分析的 OCT

  1. 使用模块化成像软件的自动分割。
    1. 手动正确段对应内界膜 (ILM) 和内网状层 (IPL),代表的限制内视网膜层 (IRL) 21.
    2. 验证视网膜神经纤维层 (RNFL) 和神经节细胞层 (GCL) 驻留在 IRL 范围内并不重叠。
  2. 计算 IRL 厚度与直径的 1、 2 和 3 毫米围绕视盘和导出到电子表格文件使用早期治疗糖尿病视网膜病变的研究 (ETDRS) 2 网格。软件计算每个视网膜层厚度由平均每个网格的部门。因此,中央部分,对应于视神经头,排除。
  3. 分析组在每个时间点的统计差异。分析对于每个鼠标,用两只眼睛广义估计方程与交换相关矩阵和调整内部学科间眼相关 21.

Representative Results

在此协议中,我们使用来自 C57BL/6 AQP4-/-小鼠 T 细胞。皮下免疫 AQP4 p135-153 或 p201-220,含有致病性 T 细胞表位,这些小鼠诱发强增生性 T 细胞反应在引流区淋巴结 (图 1),而这些两个肽诱导多较弱的 T 细胞WT 小鼠增殖。相比较而言,AQP4 p91-110,接种含有非致病性 AQP4 T 细胞行列式13或激活 T 细胞,造成实验性自身免疫性脑脊髓炎 (EAE)2223 髓鞘肽 MOG p35 55 24,诱发类似规模 AQP4-/-及 WT 小鼠 T 细胞增殖。TCR 利用流染色流式细胞术分析为单个 Vβ 或 Vβ 的家庭,证明 p135-153-和 p201-220-异性 T 细胞从 AQP4-/-小鼠利用独特的 TCR 演奏曲目。选择性超扩散 AQP4 p135 153 和 p201-220 AQP4-/-小鼠,以及独特的 TCR 利用率 (图 2),表明这些决定因素致病性 T 细胞的反应通常受胸腺负选择,强调使用 AQP4-/- T 细胞在本议定书的重要性。

之前的 ATCA 引产的过继转移,AQP4 肽引小鼠淋巴结细胞进行体外 Th17 或 Th1 极化条件下的连续三天。程度的极化捐助 CD4+ T 细胞是由细胞内细胞因子染色 (ICS) 确认和计量的流式细胞术 (图 3)。2 x 107捐助 AQP4 肽特异性 T 细胞与天真收件人小鼠静脉注射注射。大约六天后,几乎 100%的收件人小鼠开发临床症状的中枢神经系统的自身免疫性疾病,包括无力的尾巴和后肢瘫痪 (图 4)。更严重的临床疾病比 Th1 极化 AQP4 特异性 T 细胞诱导 Th17 极化 AQP4 特异性 T 细胞。代表性的鼠标,收到特定于肽-AQP4 的 Th17 和开发完整的后肢麻痹 (截瘫) 如视频 1所示。与开发 EAE MOG 特定 Th17 细胞给药后的小鼠,收件人小鼠痊愈 AQP4 特定 Th17 细胞诱导的临床疾病。至于 MOG p35-55-特定 Th17 细胞诱导 EAE,临床疾病致 AQP4 p135-153-特定或 p201-220-异性 Th17 细胞与中枢神经系统实质和脑膜 (图 5) 外周血单个核细胞浸润。病变在中枢神经系统的自身免疫性 AQP4 特定 Th17 细胞诱导为薄壁细胞中比脑膜更丰富。

视神经参与证明通过组织学的评估和由串行 10 月 AQP4 特定和 MOG 特定 Th17 细胞外周血单个核细胞的存在,以两个诱导的视神经炎症。而 AQP4 特定 Th17 细胞引起视神经 ③,MOG 特定 Th17 细胞诱导严重视神经炎 (图 5)。使用串行 OCT,视神经炎症明显的肿胀和增加视网膜内层 (IRL) 厚度为临床疾病致 AQP4 特定或 MOG 特定 Th17 细胞 (图 6)。对于 AQP4 Th17 致中枢神经系统自身免疫有关,IRL 厚度恢复至基线作为小鼠恢复从临床疾病。相比之下,持久性的 EAE 诱导 MOG 特定 Th17 符合 IRL 细化,并正如我们先前表明17,伴视网膜神经节细胞的损失。

Figure 1
图 1: AQP4 p135-153 和 p201-220 引出强健的 T 细胞增殖中 AQP4-/-小鼠,但不是 WT 小鼠。免疫小鼠 s.c.与指示肽在终审法院。11 天后,淋巴结被删除,并且然后培养与要么没有抗原,或用于免疫肽。扩散法测定3H-胸苷纳入 (平均 ± SEM,代表 5 实验)。请点击这里查看此图的大版本。

Figure 2
图 2: 从 AQP4-/-小鼠 AQP4 特异性 T 细胞利用独特的 TCR 演奏曲目。AQP4-/-和 WT 小鼠接种与指示肽。11 天后,淋巴结被删除和与肽用于免疫接种培养。细胞收获。通过流式细胞仪分析了 TCR Vβ 利用 (意思是 ± SEM,n = 5)。请点击这里查看此图的大版本。

Figure 3
图 3: 捐助 AQP4 特异性 T 细胞的促炎症极化。AQP4 p135-153 或 p201-220,免疫后十一天收获、 培养与用于非极化条件、 Th1 或 Th17 偏振免疫肽淋巴结细胞。Th17 或 Th1 极化进行了检查 ICS 和流式细胞白细胞介素-17 或 IFN-γ,分别。请点击这里查看此图的大版本。

Figure 4
图 4: Th17 极化 AQP4 特异性 T 细胞诱导 WT 收件人小鼠瘫痪。WT 受鼠收到 AQP4-/-小鼠 2 x 107捐助 Th17 极化 AQP4 p135-153 或 p201-220-异性 T 细胞。Th17 极化 MOG 特异性 T 细胞作为阳性对照。结果具有代表性的 8 组实验数据 (n = 5/组)。* p < 0.05,* * p < 0.01,* * * p < 0.001。请点击这里查看此图的大版本。

Figure 5
图 5: AQP4 特定 Th17 细胞诱导视神经小鼠炎症的 WT。收件人的小鼠收到 2 x 107捐助 Th17 AQP4 p135-153-或 p201-220-引 Th17 细胞从 AQP4-/-小鼠或 Th17 MOG p35-55-特定细胞和牺牲了 10 天后。脊髓和视神经组织编制并沾有 H & E/LFB 评价为炎症和脱髓鞘的证据分别。结果是 5 小鼠/组的代表。条码秤 =请点击这里查看此图的大版本。 50 µ m。

Figure 6
图 6: AQP4 特定 Th17 细胞诱导的视神经炎症可以监控的纵向视网膜-10-WT 受鼠 0 日收到 2 x 107捐助 Th17 极化 AQP4 p201-220-特定或 MOG p35-55-异性 T 细胞。他们检查 oct (前政府的 T 细胞) 的第 0 天开始然后在天 4,7,8,9 10 11 14 和 21。IRL 厚度是测量的 (平均 ± 扫描电镜)。统计数据表明与天真控制的比较。结果具有代表性的 3 个实验 (5 小鼠/组)。* p < 0.05,* * p < 0.01,* * * p < 0.001。请点击这里查看此图的大版本。

Discussion

AQP4 被认定为 NMO IgG 20053中的主要目标。然后,它承认必须建立 AQP4 针对性的中枢神经系统自身免疫动物模型。这种模式可能有用,探讨 AQP4 特异性 T 细胞和 B 细胞如何参与发展的中枢神经系统自身免疫测试候选人疗法为 NMO。虽然 AQP4 特异性 T 细胞抗原表位在野生型小鼠首次报道 2010年13,回应这些抗原的 T 细胞识别并没有造成临床或病理疾病1417。无法生成基于免疫反应性对 AQP4 的中枢神经系统自身免疫模型仍然是个谜,直到 2015年当琼斯,等.25发现捐助 AQP4 p135 153 引物从 AQP4-/-小鼠 T 细胞能够 WT 小鼠引起的中枢神经系统自身免疫的临床和组织学迹象。感兴趣,AQP4 p135-153 预计将与高亲和力17绑定 MHC II (-A 和b)。只有一个其他 AQP4 的氨基酸序列,201-220,预计要绑定-Ab与类似的高亲和力。确实,我们观察到那 AQP4 p135 153 和 p201-220 两引出 AQP4-/-,但不是 WT,小鼠的鲁棒性扩散。在这里,我们展示了如何一个人可以隔离和扩大 encephalitogenic Th17 AQP4 p135-153-和 p201-220-反应性 T 细胞从 AQP4-/-小鼠。当转入 WT 受鼠,捐助 AQP4 无功 Th17 细胞诱导麻痹,陪同外周血单个核细胞浸润在脊髓和视神经。传入的视觉系统损伤患者 AQP4 阳性 NMOSD26而闻名。在这里,我们观察到视神经炎 AQP4 无功,MOG 无功 Th17 细胞诱导显著。而 AQP4 特定 Th17 细胞诱导光纤 ③,MOG 特定 Th17 细胞诱导严重视神经炎。我们还描述了用于串行 oct 监测视神经炎 AQP4 特定和 MOG 特异性 T 细胞诱导的技术。其他研究者现在应该能够应用在这里描述来推进自己的研究侧重于 ATCA 的发病机制的协议。

人很容易能避免我们的协议中的三个潜在缺陷。第一,收养转让 ATCA 要求 AQP4-/-捐助小鼠 AQP4 特异性 T 细胞的使用。具体来说,捐助 WT AQP4 p135-153-异性 T 细胞并没有造成 ATCA 收件人 WT 小鼠。其次,它是重要执行与前 AQP4-/-小鼠 (协议步骤 1.5) 免疫肽/终审法院乳液一滴"水测试"。当它是适合 s.c.注射,乳液不应在水中分散。如果乳液分散,一个人应该混合乳液再一次、 再冷静,重复水测试。最后,激活的捐助中枢神经系统抗原特异性 T 细胞比休息 T 细胞更有效地诱导中枢神经系统自身免疫。一应目测检查那些前收获过继转移捐助者 T 细胞的光镜下的文化。快速分裂的细胞可能形成集群,容易识别。此外,当文化包含许多活化的 T 细胞,媒体可能从过渡粉红色到橙色或甚至到黄色,由于 ph 值下降。一个还可以评估捐助 AQP4 引淋巴结 T 细胞增殖活化3H-胸苷纳入协议步骤 3 中所述。

我们发现,两种致病 AQP4 T 细胞抗原表位 (1) 预计将与高亲和力结合 MHC II 和 (2) 引出 AQP4-/-,但不是 WT 有力增殖反应,小鼠建议针对这些决定因素的 T 细胞通常是由胸腺阴性选择17控制。用于识别 AQP4 p135-153 和 p201-220 AQP4-/-小鼠 TCR 剧目是独特的 (图 2),这也是符合介导胸腺髓质上皮细胞的克隆删除。其他耐受机制通常可能抑制 AQP4 的免疫应答。之后我们初次报告17,另一组也表明 AQP4 p201-220 包含 encephalitogenic T 细胞行列式27。当 α/β (TCRα-/-) T 细胞缺陷小鼠被重组与 AQP4-/- CD4+ T 细胞,它有可能引起 encephalitogenic AQP4 特异性 T 细胞的反应,但不是 AQP4 特异性体液免疫反应,言外之意就是在WT 小鼠 AQP4 特异性 B 细胞反应,类似于 AQP4 特异性 T 细胞反应,是受消极的选择。事实上,不观察 WT 小鼠与 ATCA AQP4 特异性 T 细胞单独诱导脊髓轴突和视网膜神经节细胞,损失可能需要参与致病 AQP4 特异性抗体。很显然,AQP4 针对中枢神经系统自身免疫的小鼠模型将继续随着我们了解更多关于通常控制 AQP4 特异性 T 细胞和 B 细胞免疫耐受机制。

其它型号的 AQP4 针对中枢神经系统自身免疫也正在开发的616282930。每一个可能会带来好处的研究与 NMO 发病机制相关的特定方面。AQP4 特异性 T 细胞已在 WT 大鼠61629。这些 AQP4 特异性 T 细胞引起的中枢神经系统自身免疫的组织学变化,但是,类似于小鼠观察,WT 大鼠 AQP4 特异性 T 细胞不会造成显著的临床疾病的迹象。因此,限制在 WT 小鼠的 T 细胞和 B 细胞 AQP4 特异性免疫反应机制的也是耐受的业务在大鼠中的。不管怎么说,人们不应低估利用小鼠模型研究机制所涉及的疾病的发病机制中的权力。淘汰赛,转基因和记者小鼠的财富可以是有利的。此外应该认识到,在自体免疫的几个基本发现了使用鼠标 EAE 模型。举个例子,示范认为 T 细胞克隆特定的自身抗原可以调解自身免疫性疾病3132,识别和发挥的作用的 T 细胞聚集在自身免疫性33的发现发展通路的 Th17 分化34首先介绍了使用鼠标 EAE 模型。使用我们已经开发的 ATCA 小鼠模型,现在就研究发展及其致病性 AQP4 特异性免疫反应在体内,调控的手段,应该提供与 NMO 发病机制相关的重要见解。

Disclosures

S.A.萨根、 A.克鲁兹-Herranz,C.M.斯宾塞,皮皮岛何、 L.斯坦、 A.J.绿色和 R.A.索贝尔报告没有披露。S.S.Zamvil 是神经病学、 神经免疫学和神经炎症的副主编,是神经免疫学国际社会咨询委员会的成员。他曾在神经科学杂志临床研究 》 杂志上免疫学杂志编辑部和一直为国立的补助金审查委员会宪章成员卫生研究院 (NIH) 临床神经免疫学和脑肿瘤 (CNBT) 研究部分和国家多发性硬化症社会 (NMS)。他曾担任顾问,所得酬金从生物 Idec、 EMD 雪兰、 健赞公司、 诺华、 罗氏/基因泰克,Teva 制药股份有限公司,并已送达或为礼来公司、 BioMS、 梯瓦公司和 Opexa 疗法服务在数据安全监测委员会。目前,博士 Zamvil 从美国国立卫生研究院、 NMS、 Maisin 基金会、 生物和 Celgene 接收研究赠款支持。

Acknowledgements

提供了对 S.S.Z.国家卫生研究所 (RO1 AI073737 和 RO1 NS092835-01),多发性硬化症协会 (RG 4768、 RG 5179 和 RG 5180)、 Maisin 基金会和 Guthy 杰克逊慈善基金。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
M. tuberculosis H37Ra BD Difco 231141 Dessicated, killed M. tuberculosis
Incomplete Freund's Adjuvant BD Difco 263910
AQP4 peptide p135-153 Genemed Custom Synthesis Peptide sequence: LVTPPSVVGGLGVTMVHGN
AQP4 peptide p201-220 Genemed Custom Synthesis Peptide sequence: HLFAINYTGASMNPARSFGP
MOG peptide p35-55 Genemed / Auspep Custom Synthesis Peptide sequence: MEVGWYRSPFSRVVHLYRNGK
3-way Stopcock Kimble 420163-4503
HyClone Fetal Bovine Serum (Characterized) GE Healthcare Life Sciences SH30071
Recombinant Mouse IL-23 R&D Systems (BioTechne) 1887-ML
Recombinant Mouse IL-6 R&D Systems (BioTechne) 406-ML
Recombinant Mouse IL-12 R&D Systems (BioTechne) 419-ML
Thymidine [Methyl-3H] PerkinElmer NET027
Glass Fiber Filtermats PerkinElmer 1450-421
Anti-mouse antibodies eBioscience (Affymetrix) [various]
Anti-mouse TCR Vβ Screening Panel BD Biosciences 557004
LIVE/DEAD Fixable Dead Cell Stain ThermoFisher Scientific [various]
Paraformaldehyde (16%) Electron Microscopy Sciences 15710
Fixation/Permeabilization Solution Kit with GolgiPlug BD Biosciences 555028
Phorbol 12-myristate 13-acetate (PMA) Sigma-Aldrich P8139
Iomomycin (calcium salt) Sigma-Aldrich I0634
Pertussis Toxin from B. pertussis List Biological Laboratories 181
10% Formalin VWR 89370-094
Variable-Flow Peristaltic Pump Fisher Scientific 13-876-2
Foam Biopsy Pads, Rectangular Fisher Scientific 22-038-221
Isothesia (isoflurane, USP) Henry Schein Animal Health 050033 NDC : 11695-0500-2
Tropicamide Ophthalmic Solution, USP (1%) Akorn NDC: 17478-102-12
Spectralis Diagnostic Imaging Platform Heidelberg Engineering

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References

  1. Hardy, T. A., et al. Atypical inflammatory demyelinating syndromes of the CNS. Lancet Neurol. 15, (9), 967-981 (2016).
  2. Lennon, V. A., et al. A serum autoantibody marker of neuromyelitis optica: distinction from multiple sclerosis. Lancet. 364, (9451), 2106-2112 (2004).
  3. Lennon, V. A., Kryzer, T. J., Pittock, S. J., Verkman, A. S., Hinson, S. R. IgG marker of optic-spinal multiple sclerosis binds to the aquaporin-4 water channel. J Exp Med. 202, (4), 473-477 (2005).
  4. Zamvil, S. S., Slavin, A. J. Does MOG Ig-positive AQP4-seronegative opticospinal inflammatory disease justify a diagnosis of NMO spectrum disorder. Neurol Neuroimmunol Neuroinflamm. 2, (1), 62 (2015).
  5. Bennett, J. L., et al. Intrathecal pathogenic anti-aquaporin-4 antibodies in early neuromyelitis optica. Ann Neurol. 66, (5), 617-629 (2009).
  6. Bradl, M., et al. Neuromyelitis optica: pathogenicity of patient immunoglobulin in vivo. Ann Neurol. 66, (5), 630-643 (2009).
  7. Nurieva, R. I., Chung, Y. Understanding the development and function of T follicular helper cells. Cell Mol Immunol. 7, (3), 190-197 (2010).
  8. Lucchinetti, C. F., et al. The pathology of an autoimmune astrocytopathy: lessons learned from neuromyelitis optica. Brain Pathol. 24, (1), 83-97 (2014).
  9. Zekeridou, A., Lennon, V. A. Aquaporin-4 autoimmunity. Neurol Neuroimmunol Neuroinflamm. 2, (4), 110 (2015).
  10. Brum, D. G., et al. HLA-DRB association in neuromyelitis optica is different from that observed in multiple sclerosis. Mult Scler. 16, (1), 21-29 (2010).
  11. Varrin-Doyer, M., et al. Aquaporin 4-specific T cells in neuromyelitis optica exhibit a Th17 bias and recognize Clostridium ABC transporter. Ann Neurol. 72, (1), 53-64 (2012).
  12. Vaknin-Dembinsky, A., et al. T-cell responses to distinct AQP4 peptides in patients with neuromyelitis optica (NMO). Mult Scler Relat Disord. 6, 28-36 (2016).
  13. Nelson, P. A., et al. Immunodominant T cell determinants of aquaporin-4, the autoantigen associated with neuromyelitis optica. PLoS One. 5, (11), 15050 (2010).
  14. Kalluri, S. R., et al. Functional characterization of aquaporin-4 specific T cells: towards a model for neuromyelitis optica. PLoS One. 6, (1), 16083 (2011).
  15. Pohl, M., et al. Pathogenic T cell responses against aquaporin 4. Acta Neuropathol. 122, (1), 21-34 (2011).
  16. Zeka, B., et al. Highly encephalitogenic aquaporin 4-specific T cells and NMO-IgG jointly orchestrate lesion location and tissue damage in the CNS. Acta Neuropathol. 130, (6), 783-798 (2015).
  17. Sagan, S. A., et al. Tolerance checkpoint bypass permits emergence of pathogenic T cells to neuromyelitis optica autoantigen aquaporin-4. Proc Natl Acad Sci U S A. 113, (51), 14781-14786 (2016).
  18. Vita, R., et al. The immune epitope database (IEDB) 3.0. Nucleic Acids Res. 43, Database issue 405-412 (2015).
  19. Harrell, M. I., Iritani, B. M., Ruddell, A. Lymph node mapping in the mouse. J Immunol Methods. 332, (1-2), 170-174 (2008).
  20. Ivanova, E., Toychiev, A. H., Yee, C. W., Sagdullaev, B. T. Optimized protocol for retinal wholemount preparation for imaging and immunohistochemistry. J Vis Exp. (82), e51018 (2013).
  21. Cruz-Herranz, A., et al. The APOSTEL recommendations for reporting quantitative optical coherence tomography studies. Neurology. 86, (24), 2303-2309 (2016).
  22. Mendel, I., Kerlero de Rosbo, N., Ben-Nun, A. A myelin oligodendrocyte glycoprotein peptide induces typical chronic experimental autoimmune encephalomyelitis in H-2b mice: fine specificity and T cell receptor V beta expression of encephalitogenic T cells. Eur J Immunol. 25, (7), 1951-1959 (1995).
  23. Shetty, A., et al. Immunodominant T-cell epitopes of MOG reside in its transmembrane and cytoplasmic domains in EAE. Neurol Neuroimmunol Neuroinflamm. 1, (2), 22 (2014).
  24. Molnarfi, N., et al. MHC class II-dependent B cell APC function is required for induction of CNS autoimmunity independent of myelin-specific antibodies. J Exp Med. 210, (13), 2921-2937 (2013).
  25. Jones, M. V., Huang, H., Calabresi, P. A., Levy, M. Pathogenic aquaporin-4 reactive T cells are sufficient to induce mouse model of neuromyelitis optica. Acta Neuropathol Commun. 3, 28 (2015).
  26. Oertel, F. C., et al. Microstructural visual system changes in AQP4-antiboby-seropositive NMOSD. Neurol. Neuroimmunol. Neuroinflamm. 4, 72 (2017).
  27. Vogel, A. L., et al. Deletional tolerance prevents AQP4 directed autoimmunity in mice. Eur J Immunol. (2017).
  28. Zhang, H., Verkman, A. S. Longitudinally extensive NMO spinal cord pathology produced by passive transfer of NMO-IgG in mice lacking complement inhibitor CD59. J Autoimmun. 53, 67-77 (2014).
  29. Zeka, B., et al. Aquaporin 4-specific T cells and NMO-IgG cause primary retinal damage in experimental NMO/SD. Acta Neuropathol Commun. 4, (1), 82 (2016).
  30. Felix, C. M., Levin, M. H., Verkman, A. S. Complement-independent retinal pathology produced by intravitreal injection of neuromyelitis optica immunoglobulin G. J Neuroinflammation. 13, (1), 275 (2016).
  31. Zamvil, S., et al. T-cell clones specific for myelin basic protein induce chronic relapsing paralysis and demyelination. Nature. 317, (6035), 355-358 (1985).
  32. Zamvil, S. S., et al. Encephalitogenic T cell clones specific for myelin basic protein. An unusual bias in antigen recognition. J Exp Med. 162, (6), 2107-2124 (1985).
  33. Kuchroo, V. K., et al. B7-1 and B7-2 costimulatory molecules activate differentially the Th1/Th2 developmental pathways: application to autoimmune disease therapy. Cell. 80, (5), 707-718 (1995).
  34. Bettelli, E., et al. Reciprocal developmental pathways for the generation of pathogenic effector TH17 and regulatory T cells. Nature. 441, (7090), 235-238 (2006).

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