Grande Volume, iluminação comportamentalmente relevantes para Optogenetics em primatas não-humanos

Behavior

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Summary

Um protocolo para construir um iluminador penetrante de tecido para entregar a luz sobre grandes volumes com diâmetro mínimo é apresentado.

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Acker, L. C., Pino, E. N., Boyden, E. S., Desimone, R. Large Volume, Behaviorally-relevant Illumination for Optogenetics in Non-human Primates. J. Vis. Exp. (128), e56330, doi:10.3791/56330 (2017).

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Abstract

Este protocolo descreve um iluminador de grande volume, que foi desenvolvido para manipulações de optogenetic do cérebro de primatas não humanos. O iluminador é uma fibra óptica de plástico modificada com ponta gravada, tal que a área de superfície de emissores de luz é > 100 x de uma fibra convencional. Além de descrever a construção do iluminador de grande volume, este protocolo detalha a calibração de controle de qualidade usada para assegurar a distribuição de luz mesmo. Além disso, este protocolo descreve técnicas para inserir e retirar o iluminador de grande volume. Estruturas superficiais e profundas podem ser iluminadas. Este iluminador de grande volume não precisa ser fisicamente acoplado a um eletrodo, e porque o iluminador é feito de plástico, vidro, não, ele simplesmente se curvará em circunstâncias quando destruía tradicionais fibras ópticas. Porque este iluminador oferece luz sobre volumes de tecido comportamentalmente relevantes (≈ 10 mm3) sem dano de penetração maior do que uma fibra óptica convencional, ele facilita estudos comportamentais usando optogenetics em primatas não-humanos.

Introduction

Ferramentas de Optogenetic, que permitem controle neuronal milissegundo de precisão, luz-driven são amplamente utilizadas para estudar a fisiologia funcional e comportamento em roedores e invertebrados. No entanto, os desafios técnicos limitaram-se a utilização de optogenetics no cérebro de primatas não humanos, que tem um volume de ~ 100 x maior do que o cérebro de roedor 1.

Para facilitar estudos de optogenetics em primatas não-humanos, um iluminador foi projetado para atender a dois objetivos concorrentes: iluminação de grande volume e dano mínimo de penetração. Tentativas anteriores de endereço dentre estas preocupações vir no cara do outro. Feixes de fibras iluminar volumes maiores, mas com diâmetro maior e, assim, danos2,3. Fibras de vidro cônico reduzem danos de penetração, mas por pouco o foco de luz emitindo áreas de superfície < 100 µm2 4,5. Iluminação externa do cérebro através de uma janela na dura-máter contorna o desafio dos danos de penetração e pode permitir a iluminação de grande volume, mas ele só pode ser usado para algumas áreas de cérebro superficial6.

Para criar um iluminador de grande volume, pequeno diâmetro (Figura 1a), a ponta de um plástico óptico de fibra é calor afilado e o núcleo e o revestimento são gravadas (Figura 1bc). Ao contrário de outras fibras afiladas que focam a luz para um ponto estreito, a gravura permite que a luz uniformemente escapar para fora dos lados da ponta, assim, distribuir luz amplamente sobre uma grande área (Figura 1 de). Porque o dano de penetração é proporcional ao diâmetro de penetração, este iluminador não tem nenhum dano de penetração mais do que uma fibra convencional, ainda tem > 100 x a luz emitindo luz superfície de área e oferece mais amplamente com 1/100 o poder da luz densidade em um cérebro fantasma (1,75% do agarose) (Figura 1e). Um modelo de Monte Carlo (Figura 1f) ilustra a diferença na propagação de luz entre uma fibra convencional e o iluminador de grande volume, quando eles têm densidades de energia de luz igual como sua superfícies de emissores de luz. Cada iluminador é calibrado individualmente usando uma esfera de Ulbricht (Figura 2a, b) para assegurar a distribuição de luz até ao longo da ponta (Figura 2C).

Este iluminador de grande volume foi validado com manipulação de optogenetic de comportamento e de disparo neuronal em primatas não-humanos. O comprimento da ponta de fibra pode ser personalizado para qualquer área do cérebro e mapa de campo receptivo individual de cada animal. O iluminador pode ser emparelhado com um eletrodo penetrante para gravações neuronais que abrangem o período de iluminação. Além disso, porque a fibra pode carregar qualquer cor de luz visível, pode ser emparelhado com qualquer das moléculas optogenetic disponível disponíveis.

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Protocol

Nota: todos os procedimentos de animais estavam em conformidade com as diretrizes do NIH e foram aprovados pelo Instituto Massachusetts de tecnologia Comissão no cuidado Animal.

1. fabricação de iluminador

  1. usar um par de tesouras afiadas para cortar uma parte de 250 µm de diâmetro plástico fibra óptica que é maior que o comprimento desejado iluminador total pelo menos 10 cm.
  2. Remover de revestimento de polietileno de 15-20 cm de uma extremidade da fibra óptica plástica usando um descascador de fios de 22 calibre.
  3. Segura o distal mais 3-5 cm da extremidade despojada da fibra em uma pinça de torno tabela.
  4. Estique encamisada final da fibra em uma mão com uma tração constante constante. A fibra deve estar paralela ao chão, perpendicular aos narcóticos. Manter esta tensão constante sobre a fibra ao longo de aquecimento e arrefecimento (etapas 1.5 e 1.6 abaixo) para que a fibra permanece reta e tenso como ele dilui.
  5. Usando a configuração mais baixa de um soprador térmico de temperatura duplo (1.000/570 ° F), aqueça a seção despojada da fibra até que é diluída com um diâmetro de 60-100 μm, ou sobre o diâmetro de um cabelo humano.
  6. Manter a tensão constante sobre a fibra, permitindo que a fibra esfriar. Para manter a tensão pode causar a fibra encaracolar.
  7. Confirmar o diâmetro da ponta diluído sob um microscópio de dissecação. Como alternativa, pode utilizar pinças em vez disso.
    1. Se a fibra não é fina o suficiente, repita as etapas de 1.4 com 1.6 conforme necessário para atingir o diâmetro desejado dica.
    2. Opcional se re-puxar, colocar a uma pequena marca na parte mais estreita da fibra se ele será aquecido novamente para que o centro da arma calor destina-se a parte mais estreita da fibra.
    3. Se a fibra é muito fina, começar de novo.
  8. Uma vez que a fibra completo esfriou e o diâmetro desejado foi alcançado, belisque a fibra 3 cm do ponto mais estreito em ambos os lados. Com uma rápida, afiada puxe ao longo do eixo da fibra, separar os lados para criar uma ponta afunilada.
  9. Examinar a ponta cónica sob uma baixa potência (por exemplo, 4 X) em microscópio de dissecação. Se a ponta é bifurcada ou enrolada ( Figura 1f), descartar a fibra.
  10. Preparar-se para o etch a ponta cónica, colocando um pedaço de fita de laboratório perto do fim da ponta, deixando o último 5 mm exposto. A fita protege a fibra da gravura acima o comprimento desejado da emissão de luz. Este comprimento da ponta foi selecionado com base na espessura do córtex do primata na região de destino. Um comprimento mais longo ou mais curto pode ser exposto dependendo o comprimento desejado da iluminação. Se for desejado um etch diferentes comprimento de ponta, a borda da fita laboratório pode ser movida mais perto para ou longe a ponta cónica.
  11. Dobre um quadrado pequeno (~ 1 polegadas x 2 polegadas) de 5 μm folha de polimento de carboneto de silício entre o polegar e o indicador. Colocar a ponta da fibra entre os dois lados da folha de polimento e etch suavemente a fibra com pequenos movimentos circulares, como se um BB de rolamento entre o polegar e o indicador. Frequentemente rode a fibra para todos os lados estão gravados uniformemente. A ponta de fibra aparecerá “ áspera ” a olho nu em áreas que têm sido gravadas, enquanto áreas un-gravadas normalmente aparecem suaves.
  12. Repita o passo 1.11 com um óxido de alumínio de 3 μm lapidação folha.
  13. Apor um conector na extremidade do iluminador oposta à ponta entalhada. Isso permite que o iluminador para se conectar a um cabo ótico ou a laser.
    Nota: Esse método difere do método preferencial para fixação de vidro / fibra óptica de sílica em virolas. Porque a virola de metal é mais difícil do que a fibra óptica plástica, polimento da fibra e a virola como uma unidade após colagem pode danificar a fibra óptica plástica como minúsculos fragmentos de metal produzido durante o processo de polimento pode incorporar-se em fibra apartamento fendida.
    1. Remover cerca de 5 mm do revestimento de polietileno da extremidade oposta do iluminador usando um descascador de fios de 22 calibre.
    2. Corte a extremidade oposta plana, com uma faca quente para suavizar a superfície.
    3. Polonês a extremidade oposta apartamento com lapidação sucessivamente mais finas folhas: 5 µm, 3 μm, 1 μm e 0,3 µm.
    4. Inserir o apartamento em frente ao final em uma virola de aço inoxidável de diâmetro interno de 260 µm até que ela esteja alinhada com o fim do ferrolho.
    5. Confirmar visualmente que a extremidade oposta é suave e uniformemente polida com um microscópio de fibra.
    6. Remover a fibra do ferrolho e a virola verticalmente sobre a borda de uma mesa de fita com a fibra apontando para baixo.
    7. Encher uma seringa de 1 mL com epóxi de plástico e coloque uma agulha de 18 calibre contundente a seringa.
    8. Use a agulha para aplicar epóxi para baixo para a virola. Encha o ferrolho completamente com epóxi.
    9. Inserir a fibra a virola.
    10. Limpe qualquer excesso da cola epoxy da superfície polida da fibra com uma limpeza toalhetes molhada antes da secagem, se necessário. Caso contrário, o epóxi em excesso pode ser removido após 12-24 h.
    11. Armazenar a fibra suavemente até a calibração e coloque uma capa de pó sobre o ferrolho.

2. Iluminador de calibração e controle de qualidade

Nota: esses métodos para calibração avaliar para luz de saída não-linearidade a diferentes distâncias da ponta da fibra. Distribuição desigual de luz normalmente resulta de uma “ acidentada ” ou “ ondulado ” do atarraxamento.

Diafragma
  1. criar uma blindagem leve para a parte superior da integração esfera usando luz absorvente da folha ( Figura 2).
    Nota: Use luvas sempre que a manipulação de luz absorvendo a folha para evitar pele óleos criando manchas refletindo luz.
    1. Dobra por 2 ” por 4 ” pedaço de luz absorvendo da folha sobre si mesmo para formar um 2 ” x 2 ” praça. um método alternativo é cortar um 2 ” x 2 ” praça com uma absorção de lado e um luz refletindo o lado (ou seja, um lado da folha de alumínio padrão); no entanto, o método dobrável é mais seguro porque fornece uma incômoda ponta para manipulação do diafragma na próxima etapa.
    2. Dobre a fita de laboratório ou fita isolante ao longo das bordas do quadrado para vincular as arestas não-dobrado. Isto tanto une os lados e protege contra cortes de arestas.
    3. Perfurar um buraco no centro da Praça, usando uma agulha de 26 calibre.
    4. Remover o parafuso grande na tampa da esfera integradora e cobrir a abertura com o diafragma. Coloque o orifício sobre o centro. Se o diafragma foi criado com uma luz absorvente e uma luz refletindo o lado, coloque o lado de absorção acima e a luz refletindo o lado para baixo, voltados para dentro da esfera de integração.
      Nota: Para impedir a poeira e detritos entre a esfera de Ulbricht e para manter o furo centralizado, seguro o diafragma para fora da esfera integradora com fita de lab.
  2. Medida luz de saída ao longo da ponta em 500 µm incrementos usando um micromanipulador ou braço estereotáxica e uma esfera de Ulbricht.
    Nota: Óculos de segurança, de comprimento de onda apropriado devem ser usados sempre que o laser está na.
    1. Conectar a extremidade oposta da fibra a um laser ou a luz da fonte, mas não acionam luz saída ainda.
    2. Segura o iluminador para um titular estereotáxica (preferably com fita de laboratório) com a ponta de 7-10 mm abaixo da parte inferior do suporte.
    3. Parafuso o titular estereotáxica para o braço estereotáxica
    4. Alinhe a ponta do iluminador com o buraco no centro do diafragma. Zero o micromanipulador quando a ponta é a exata mesmo nível como o diafragma.
    5. Ligar desligar as luzes da sala e zero a esfera de Ulbricht.
    6. Disparar o laser (ou outra fonte de luz) e medir a potência de luz total de saída usando a esfera de Ulbricht.
      Nota: Usar a saída de luz mais baixa possível para calibração teste.
    7. Baixar a fibra 500 µm até integrando esfera e repita etapa 2.2.6.
    8. Continuar reduzindo a fibra na esfera integradora e medir a saída de luz total em incrementos de 500 µm até a folga de níveis de potência luminosa total
      Atenção: Potência total de luz deve estabilizar uma vez que a ponta inteira está na esfera. Não continue a diminuir a fibra mais de 1-2 mm além do gravado ponta de comprimento. Se a ponta em contato com a parte inferior da esfera de integração, pode derreter e/ou estragar a esfera de Ulbricht.
  3. Confirmar uma fibra uniformemente gravada por plotagem total poder luz de saída como uma função da distância da fibra foi reduzida para a esfera de integração para confirmar a linearidade.

3. iluminação na Vivo

Nota: aqui, esses métodos são mostrados usando um modelo de plástico ao invés de um primata não humano.

  1. Implante uma câmara de gravação de 25 mm de diâmetro foi implantada sobre a área do cérebro de interesse antes da experimentação.
  2. Executar anatômica ressonância magnética (MRI) antes da experimentação. Coloque uma grade de gravação personalizada na câmara e preenchê-lo com um lubrificante cirúrgico estéril para permitir a visualização de grade e determinação do nível das estruturas cerebrais dura-máter e alvo.
  3. Preparar uma torre microunidade antes de cada sessão de teste.
    1. Apor um 25 calibre tubo de guia com ponta chanfrada para o meio e inferior grampos na unidade. Dois grampos são usados para garantir que o tubo de guia permanece reta. Ambos estes grampos podem ser movidos manualmente, se desejado.
      Nota: O tubo de guia pode ser epoxied ou soldado para as pinças.
    2. Segura o iluminador de grande volume na braçadeira superior na mesma unidade. Essa pinça é anexada para o motor.
    3. o iluminador de grande volume através do tubo de guia da linha totalmente e confirmar que a ponta do iluminador ultrapassa a ponta do tubo guia.
      Nota: O comprimento do iluminador que estende passado a ponta do tubo guia é igual a distância entre a dura-máter para a margem inferior da região alvo do cérebro, como determinado através de MRI.
    4. Mergulhe o tubo guia e iluminador em solução anti-séptica (por exemplo, chlorohexidine) para esterilizar.
  4. Colocar uma grade Personalizada esterilizada dentro da câmara limpa e fixá-lo em uma orientação predeterminada com um parafuso na parte lateral da câmara. A grade mostrada aqui tem espaçamento de 1 mm; no entanto, o espaçamento pode ser personalizado conforme necessário.
    Nota: Isto deve ser idêntico para a grade e a orientação usada no MRI anatómico.
  5. Segura o titular microunidade estereotáxico na câmara de gravação em uma orientação pré-determinada.
  6. Retrair o iluminador esterilizado do tubo guia puxando o iluminador usando pinça estéril, sem corte. A ponta do iluminador deve ser de 5-10 mm acima da ponta do tubo guia.
    Nota: O iluminador se curvará para fora entre o tubo de guia e a pinça. Isto não danificará o iluminador flexível.
  7. Apor a microunidade para o titular e colocar o tubo de guia no orifício de grade alvo.
  8. Baixar o estágio micro-drive até o tubo de guia é apenas através do nível da dura-máter.
    Nota: Se desejado, uma segunda unidade de micro com um eletrodo pode ser colocada no palco e abaixada no buraco grade diferente. O campo local potencial sobre este eletrodo mostrará um artefato luz dependente da distância, que pode ser usado para confirmar a colocação do iluminador.
  9. Tentativa menor o iluminador manualmente com Pinças esterilizadas.
    1. Se houver alguma resistência, retrair o iluminador 5 - 10 milímetros, esperar 10 minutos para permitir que o tecido se estabelecer e tente novamente.
    2. Se ainda houver resistência na segunda tentativa, recolher a dica do iluminador dentro do tubo guia, baixo o guia tubo de 0,25 mm e tente novamente.
    3. Repetir até os slides iluminador através do tubo de guia sem qualquer resistência.
    4. Baixar o iluminador até é tenso.
      Atenção: Não empurre o iluminador com força contra uma resistência. Nestes casos o tubo guia normalmente não penetrou a dura-máter totalmente. A fibra a empurrar com força fará com que a dobrar-se sobre si mesmo, impedindo que a fibra de entrar no cérebro e possivelmente destruindo a ponta ( Figura 1G).
  10. Se conectem a virola no extremo oposto o iluminador a maior óptica configurar ou laser.
  11. , Certifique-se de que nenhuma luz é visível para os primatas não humanos.
    1. Use blindagem opacas ou folha para abranger totalmente as gravação torres de absorção de luz.
    2. Coloque todas as conexões ópticas em envelopes blindados feitos de luz, absorvendo folha.
    3. Proteger todos os cabos de remendo com qualquer luz absorvendo a folha ou fita isolante preta.
    4. Como uma precaução extra, coloque um banco do diodo emissor de luz (LED) de isca da mesma cor luz usado no experimento para trás os primatas não humanos e os LEDs pisquem continuamente a 2,5 Hz. Isto impede que os olhos totalmente ajustando à escuridão. Se houvesse Vazamento de luz inadvertido, esta luz piscando ajudaria a evitar o vazamento de servir como um gatilho comportamental.

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Representative Results

A iluminação dos volumes de cérebro grande em primatas não-humanos permite manipulação optogenetic comportamentalmente relevantes. Et al . Acker (2016) usado este iluminador de grande volume com o Halorhodopsin avermelhado, Jaws 7 para estudar a contribuição temporal do campo de olho frontal (FEF) para memória guiadas sacadas em dois macacos rhesus. Especificamente, FEF neurônios foram injetados com um vetor viral contendo garras e depois iluminados com luz vermelha-usando o iluminador de grande volume durante a apresentação de destino, período de atraso ou período de preparação de motor de uma tarefa de memória guiadas saccade 8. a Figura 3 mostra as condições do experimento. Taxas de erro (por exemplo, falhas para executar sacadas memória guiada ao local de destino adequado) aumentou significativamente com iluminação para alvos no campo receptivo injetado, mas não para alvos em frente ao local da inactivação / iluminação (Figura 4a).

Além das alterações comportamentais induzidas por optogenetics, o iluminador de grande volume permitido para inactivação dos neurônios sobre a extensão cheia de 2,5 mm de córtex (Figura 4C) e luz entrega mais de 4,5 mm (figura 4b), como evidenciado pelo opticamente induzida campo local potencial artefato 8.

Figure 1
Figura 1 . Iluminador de grande Volume amplamente distribui luz
um) interface de manga/iluminador de fibra ótica/acasalamento. b) esboçado núcleo e revestimento espalharam a luz em geral. c) emissores de luz 5 mm de comprimento gravado ponta. d) formas de comparação de ponta para uma fibra convencional e um iluminador de grande volume. e) iluminador e convencional fibra óptica com poderes iguais de luz totais entradas em 1" cúbico cérebro fantasma (1,75% de ágar). f) plano de Monte Carlo modelos de seção transversal média de um iluminador de grande volume com 3 mm de comprimento de ponta (esquerda) e uma convenção clivada fibras de diâmetro igual com densidades de igual poder de luz em sua superfícies de emissores de luz. Ver métodos complementares de et al. Acker, 2016 para os detalhes deste modelo. g) defeituoso iluminador de grande volume com ponta enrolada. h) dica de grande volume iluminador Damaged emergentes do tubo guia. Esta figura foi modificada e reproduzida em parte da Acker et al, 2016 8. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Figure 2
Figura 2 . Calibração de iluminador de grande Volume
Esta figura é reproduzida a partir et al. Acker, 2016 com pequenas modificações. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Figure 3
Figura 3 . Tarefa orientada por memória Saccade com iluminação ou Sham em momentos diferentes.
Esta figura é reproduzida a partir Acker et al, 2016 8Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

Figure 4
Figura 4 . Efeitos comportamentais e eletrofisiológicos de inibição de Optogenetic com iluminação de grande Volume
um) taxas de erro aumentaram significativamente com a iluminação. b) terrenos Raster mostrando inibição dos neurônios que mede a espessura de 2.5 mm de córtex. c) potencial Local campo mostrando um artefato luz mede 4,5 mm. Para b) e c), os contatos são afastados espaçadas de 0,5 mm sobre a profundidade do córtex, n = 426 julgamentos. Esta figura é adaptada e reproduzida de Acker et al, 20168Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.

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Discussion

Enquanto optogenetic ferramentas são amplamente utilizadas para estudar a doença e fisiologia em roedores, o desafio técnico de volumes de cérebro grande iluminante limitou o uso de optogenetics em primatas não-humanos. Pioneira estudos em macacos usadas densidades de grande poder de luz (~ 100 mW/mm2 a 20 W/mm2) para iluminar a volumes pequenos, talvez < 1 mm3e relatados efeitos comportamentais modestos com opsins excitatórios no córtex4, 9,10,11 e uma opsina inibitória no colículo superior12.

Portanto, um grande volume de iluminador foi desenvolvido para permitir a entrega de luz para volumes grandes de tecido. Com este iluminador e o halorhodopsin avermelhado, Jaws, robusto, comportamento optogenetically-drive foi observado em primatas não-humanos8.

O protocolo descrito aqui pode ser alterado dependendo do propósito do experimento e a geometria da região de tecido alvo. Por exemplo, a ponta entalhada da fibra pode ser alongada ou encurtada dependendo do tamanho da área a ser iluminada. A ponta pode ser puxada com uma ponta mais espessa do que o descrito, ou uma fibra de diâmetro maior poderia ser usada para criar um iluminador mais robusto. Enquanto este protocolo descreve uma ponta de fibra gravado, é viável para o etch a fibra na ponta e em um segmento mais distal para a iluminação não-contíguas.

Verificações de controlo de qualidade são uma parte crítica do presente protocolo. A ponta de um iluminador de grande volume pode tornar-se bifurcada ou ondulada (Figura 1 g), particularmente se mecanicamente está danificado ou se inicialmente é puxado muito fino. Para puxar a fibra com a quantidade adequada de força consistente, a maioria dos experimentadores precisam de algumas horas de prática. Dado o baixo custo de fazer fibras (a fibra óptica plástica recomendo custa menos de US $ 0,03/metro), muitos experimentadores apor apenas fibras com perfeito dicas para virolas e, portanto, descartar pelo menos 30% de fibras para as imperfeições menores de ponta. Distribuição desigual de luz descoberta durante a calibração pode ser corrigida por re-polimento a ponta de fibra e re-calibrar a fibra.

Além disso, a ponta do iluminador deve ser verificada após cada experimento. Se o experimentador forças o iluminador através do tubo de guia antes do tubo de guia penetrou a dura-máter, o iluminador vai dobrar volta sobre si mesmo e não entrará no cérebro. Normalmente, a dica do iluminador é destruída nestes casos (Figura 1-h). Além da resistência à inserção de iluminador, o potencial de campo local serve como uma verificação no experimento para colocação adequada do iluminador. Se o iluminador é amassado acima a dura-máter, o potencial de campo local não mostrará o artefato característico de luz, que serve como um cheque para a colocação apropriada iluminador durante o experimento.

Enquanto o iluminador de grande volume destina-se à luz de entrega para múltiplas camadas corticais simultaneamente, não é well-suited para iluminar as camadas corticais mais superficiais, poupando a camadas mais profundas ou para iluminar uma única camada de córtex individualmente. Se iluminação muito espacialmente específica é desejada, fibras tradicionais que têm como foco de luz mais restrito ou iluminação superficial através de janelas na dura 6 pode ser mais apropriada. Além disso, a flexibilidade do iluminador grande volume é tanto uma vantagem e uma limitação. Ao contrário de fibras ópticas de vidro, este iluminador não pode quebrar-se no tecido cerebral, no entanto, esta flexibilidade também dificulta a avançar o iluminador sobre grande distância cortical (por exemplo, 10 mm ou mais). Portanto, para atingir uma estrutura muito profunda do cérebro (por exemplo, pulvinar), um tubo de guia precisaria ser avançado após a dura-máter e no tecido cerebral para fornecer reforço mecânico adicional.

Em geral, esse método oferece uma vantagem substancial sobre os métodos anteriores porque permite a iluminação de volumes de cérebro comportamentalmente relevantes em primatas não-humanos, uma chave para a adaptação optogenetics para estudos de primatas não humanos. Enquanto este método tem sido demonstrado na FEF de macacos rhesus, resultaria em muitas outras áreas do cérebro e mesmo em outras espécies de cérebro da mesma forma grande.

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Disclosures

Nenhum

Acknowledgements

LCA reconhece o financiamento de uma bolsa NDSEG, a NSF GRFP e os amigos do Instituto McGovern. EP reconhece financiamento o Harry e Eunice Nohara UROP fundo, o MIT, turma de 1995 UROP fundo e fundo UROP MIT. ESB reconhece financiamento do NIH 2R44NS070453-03A1, o prêmio Harvey de deixar e o prêmio de fundação-Robertson NY células-tronco. RD reconhece financiamento de NIH EY017292. Michael Williams ajudou a equipe a organizar e recolher suprimentos antes da filmagem.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Plastic optical fiber Industrial fiber optics SK-10 250 micron diameter, Super Eska line
Wire stripper Klein Tools 11047 22 gauge
Vise Clamp Wilton 11104 Generic table mount vice clamp
Dual temperature heat gun Milwaukee 8975-6 570 / 1,000 °F
Lab marker VWR 52877
Dissection microscope VistaVision 82027-156 Stereo microscope w/ dual incandescent light, 2X/4X magnification, available from VWR
Lab tape VWR 89097-972 4 pack of violet color; however, tape color does not matter
Silicon carbide lapping sheet ThorLabs LF5P 5 micron grit, 10 pack
Aluminum oxide lapping sheet ThorLabs LF3P 3 micron grit, 10 pack
Aluminum oxide lapping  sheet ThorLabs LF1P 1 micron grit, 10 pack
Calcined alumina lapping sheet ThorLabs LF03P 0.3 micron grit, 10 pack
Hot knife Industrial fiber optics IF370012 60 Watt, heavy duty
Fiber inspection scope ThorLabs FS201 optional
Stainless Steel Ferrule Precision fiber optics MM-FER2003SS-265 265 micron inner diameter
1 mL syringe BD 14-823-30 Luer-lok tip is preferable to reduce risk of leakage, but not strictly needed
Plastic epoxy Industrial fiber optics 40 0005
18 gauge blunt needle BD 305180 1.5 inch length
Lint-free wipe (KimWipe) ThorLabs KW32 available from many vendors
Light absorbing foil ThorLabs BKF12
Electrical tape 3M Temflex 1700 Optional, may substitute other brands / models
26 gauge sharp needle  BD 305111 0.5 inch length
Micromanipulator Siskiyou 70750000E may substitute other brands/models
Steretactic arm Kopf 1460 may substitute other brands/models
Laser safety goggles KenTeK KCM-6012 must be selected based on the color of laser used, example given here
Laser or other light source vortran Stradus 473-50 example of blue laser
Integrating sphere ThorLabs S142C Attached power meter, also available from ThorLabs, item #PM100D
Ultem recording chamber Crist instrument company 6-ICO-J0 Customized with alignment notch
Tower microdrive with clamps NAN DRTBL-CMS
Guide tube Custom N/A Made from 25 gauge spinal needle (BD) or blunt tubing
NAN driver system NAN NANDrive
Custom grid design custom custom plans available upon request
Blunt forceps FischerScientific 08-875-8A generic stainless steel blunt forceps
Digital calipers Neiko 01407A available on amazon.com. May select a finer resolution caliper for more precise measurements.
Patch cable ThorLabs FG200LCC-custom This is one example of many possible patch cables. As long as the fiber diameter is less than or equal to the fiber diameter of the large volume illuminator and as long as the connectors interface, any patch cable (glass or plastic, vendor purchased or made in the lab) is fine for this application.
Clear plastic dust caps ThorLabs CAPF Package of 25
ceramic split mating sleeve Precision Fiber Products, Inc. SM-CS1140S

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

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