Author Produced

Een Rat Model van Orthotopic met behulp van een roman magnetische Anastomosis techniek voor Suprahepatic Vena Cava wederopbouw levertransplantatie

* These authors contributed equally
Medicine

Your institution must subscribe to JoVE's Medicine section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

De wederopbouw van de suprahepatic vena cava (SHVC) blijft een moeilijke stap in rat orthotopic lever transplantatie. In dit artikel tonen we een stapsgewijze protocol voor SHVC wederopbouw in ratten met behulp van een roman magnetische wapendrager-techniek.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Yang, L., Lu, J., Wang, Y., Zhang, M., Shi, Y., Wei, S., Liu, P., Wu, Z., Lv, Y., Wu, R. A Rat Model of Orthotopic Liver Transplantation Using a Novel Magnetic Anastomosis Technique for Suprahepatic Vena Cava Reconstruction. J. Vis. Exp. (133), e56933, doi:10.3791/56933 (2018).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Het model van de rat van orthotopic lever transplantatie (OLT) is essentieel voor transplantatie-onderzoek. Het is een zeer geavanceerde diermodel en vereist een steile het leren kromme. De invoering van de techniek van de manchet voor wapendrager van de portal vein (PV) en infrahepatic vena cava (IHVC) heeft de haartransplantatie procedure bij ratten aanzienlijk vereenvoudigd. Echter, als gevolg van de korte voorste muur van de ontvangers suprahepatic vena cava (SHVC), de manchet techniek is zeer moeilijk te gebruiken voor de wederopbouw van de SHVC. De meeste onderzoekers in dit veld gebruiken nog steeds de hand-hechtdraad techniek voor de wederopbouw van de SHVC, waardoor het de stap knelpunt in rat orthotopic lever transplantatie. De techniek van de magnetische wapendrager (dat wil zeggen, magnamosis) is een methode voor het verbinden van twee schepen met behulp van de aantrekkelijke kracht tussen twee magneten. Onze recente studie heeft aangetoond dat de magnetische wapendrager techniek superieur aan de hand-hechtdraad techniek voor SHVC wederopbouw bij ratten is. In dit artikel tonen we een stapsgewijze protocol voor SHVC wederopbouw in ratten met behulp van de roman magnetische wapendrager-techniek. In dit model, werd de wederopbouw van de PV en IHVC uitgevoerd door de standaard manchet techniek, terwijl de wederopbouw van de gal buis (BD) werd uitgevoerd door een stent-techniek. De hepatische re arterialization werd niet uitgevoerd. De magnetische wapendrager techniek SHVC wederopbouw gemakkelijker gemaakt en aanzienlijk verkort de anphepatic fase. Na een redelijke leercurve, kunnen zelfs onderzoekers zonder geavanceerde microchirurgische vaardigheden produceren betrouwbare en reproduceerbare resultaten met behulp van dit model van de rat van OLT.

Introduction

Het model van de rat van orthotopic lever transplantatie (OLT) is essentieel voor transplantatie onderzoek1,2. De eerste rat OLT werd beschreven door Lee et al. in 19733. In dat model, werden alle vaartuigen gereconstrueerd door de techniek van de hand-hechtdraad. De hand-hechtdraad techniek vereist geavanceerde microchirurgische vaardigheden, die aanzienlijk beperkt het gebruik. Sindsdien zijn er verschillende wijzigingen in het oorspronkelijke protocol van rat OLT gemeld. Onder hen, de techniek van de manchet voor wapendrager van de portal vein (PV) en infrahepatic vena cava (IHVC) gemeld door Kamada et al. in 1979 wordt beschouwd als een belangrijke verbetering van dit model, aangezien het aanzienlijk vereenvoudigd de wederopbouw procedures4 . Echter, als gevolg van de korte voorste muur van de ontvangers suprahepatic vena cava (SHVC), de manchet techniek is zeer moeilijk te gebruiken voor de wederopbouw van de SHVC. De meeste onderzoekers in dit veld gebruiken nog steeds de hand-hechtdraad techniek voor de wederopbouw van de SHVC, waardoor het de stap knelpunt in rat OLT5,6,7.

De techniek van de magnetische wapendrager (dat wil zeggen, magnamosis) is een methode voor het verbinden van twee schepen of andere buisvormige structuren met behulp van de aantrekkelijke kracht tussen twee magneten8,9,10,11. De magnetische kracht geleidelijk comprimeert en hervormt het weefsel in een sterke, sutureless anastomosis12,13. Deze compressie wapendrager heeft bewezen effectief te zijn in de mens14,15. Wij hebben een paar van magnetische ringen specifiek voor de anastomose van de SHVC bij ratten ontworpen. Onze recente studie heeft aangetoond dat de magnetische wapendrager techniek superieur aan de hand-hechtdraad techniek voor de wederopbouw van de SHVC van de rat OLT16 is. Het doel van dit artikel is een gedetailleerde, stapsgewijze protocol voorzien in SHVC wederopbouw in ratten met behulp van de roman magnetische wapendrager-techniek.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Het protocol werd uitgevoerd overeenkomstig de richtsnoeren voor de zorg en het gebruik van proefdieren en werd goedgekeurd door de Commissie op de ethiek van dier experimenten van Xi'an Jiaotong University, Xi'an, Shaanxi Province, China.

Opmerking: Geen van de procedures in dit protocol was uitgevoerd onder een chirurgische Microscoop.

1. preoperatieve voorbereiding

  1. Het ontwerp en de vorm van de magnetische ringen (Figuur 1)
    1. Monteer het magnetische wapendrager-apparaat door te vergelijken een paar van neodymium-ijzer-borium magnetische ringen.
    2. Het ontwerp van de ringen volgens de parameters van rat SHVC met een diameter van de hoofdas, secundaire as diameter, dikte en gewicht van 8 mm, 5.5 mm, 1 mm, 0,5 g, respectievelijk.
    3. Kromme van de ringen in de gewenste vorm door een draad-elektrode snijden techniek, en vervolgens de verkregen ringen met een titanium-oxide airbrush jas en steriliseren met 500 mg/L ethyleenoxide bij 55-60 ° C gedurende 6 uur.
  2. De manchetten (Figuur 2)
    1. De manchet voorbereiden door wapendrager van de IHVC en PV door het snijden van de polyethyleen buis. Zorg ervoor dat het lichaam van de manchet 5 mm lang met de extensie manchet 2 mm.
      Opmerking: De binnenste en buitenste diameters van de PV-manchet zijn 1,8 en 2,1 mm, terwijl die van de manchet IHVC 2.6 en 2.8 mm, respectievelijk.
  3. De Stent (Figuur 2)
    1. Voorbereiden op de stent wapendrager van de BD door snijden 24-G intraveneuze canule met een lengte van 5 mm tot inslag aan beide uiteinden.
  4. Proefdieren
    1. Gebruik mannelijke Sprague-Dawley ratten met een gewicht van tussen de 250 en 280 g als donoren en ontvangers. Zorg ervoor dat de ontvanger de hetzelfde gewicht of iets zwaarder (< 10 g) dan de donor.
    2. Houd de ratten in klimaat-gecontroleerde kamers met vrije toegang tot voedsel en water voor de operatie.

2. donor operatie

  1. Injecteren buprenorfine (0,05 mg/kg) subcutaan als pijnstiller 1 uur voor de operatie.
  2. Anesthetize de donor rat Isofluraan inademing. Gebruik 5 vol % Isofluraan op een debiet van 1,5 L/min in een doosje van de Plexiglas voor de inductie van de anesthesie en 2 vol % Isofluraan aan een stroomtarief 0.6-0.8 L/min op een kegel masker voor het onderhoud van anesthesie. Diepte van de verdoving bevestigen door het uitvoeren van een teen-knijp- en een snuifje van de huid.
  3. Scheren van de gehele buikhuid van de rat met behulp van een elektrisch scheerapparaat te voorzien in schonere blootstelling. Desinfecteer de overeenkomstige huid met een Povidon-jodium oplossing.
  4. Open de buikholte via een kruisvormige incisie met behulp van chirurgische schaar uit de wortel van de penis uit te breiden tot 1 cm boven de xiphisternum langs linea alba, uitbreiding van het middelpunt van de longitudinale incisie aan de midaxillaire lijn. Exteriorize van het maag-darmkanaal naar links en bedek het met natte gaas.
  5. Klem en trek de xiphisternum naar het hoofd met behulp van een verlostang hemostatische. Het ontleden van het ligamentum conoideum en het bindweefsel rond de lever. Isoleren en de linker inferieur phrenic ader met een 6-0 zijde hechtdraad afbinden.
  6. Plaats de stent in de koker van de gal.
    1. Klem de BD net boven het punt waar de gastroduodenal ader sluit zich aan bij de portal ader en trek hem om te houden van een beetje spanning met behulp van een microforceps. Voer een "V"-incisie van 1 mm lengte op de voorste muur ongeveer 5 mm proximale tot de biliaire samenkomst door een micro schaar.
    2. De stent in het lumen van het kanaal van de gal met behulp van een gebogen microforceps invoegen. Zorg ervoor dat ten minste de helft van de stent ligt buiten de buis van de gal.
    3. Beveilig de stent met een 6-0 zijde hechtdraad. Knip één uiteinde van de hechtdraad. Houd de andere die houden tijdens latere anastomose. Transect de gal duct onder de stent en ervoor te zorgen dat de gal kan komen van de stent.
  7. Isoleren van de IHVC tot op het niveau van de linker nier ader. Gratis de IHVC van het voorste en laterale omliggende weefsels van katoen bud dissectie totdat de IHVC is skeletonized. Scheiden en afbinden het recht suprarenal ader en de recht nier ader met een 6-0 zijde hechtdraad.
  8. Heparinize de rat door injecterend 50 U van heparine verdund in 2 mL zuiver normale zoutoplossing via de dorsale ader van de penis.
  9. Perfuse van de lever.
    1. Isoleren van de abdominale aorta onder de linker nier ader. Een 22-G-katheter invoegen in de aorta.
    2. Uitvoeren van een Thoracotomie, klem van de thoracale aorta met behulp van een microforceps.
    3. Perfuse de donor lever via de katheter in de aorta met 20 mL van de normale zoute oplossing 25 U van heparine (4 ° C) met de snelheid van 3 mL/min met een infusiepomp. In de tussentijd, snijd de vena cava onder de recht nier ader zodat de perfusie-oplossing te stromen uit de lever.
    4. Transect de SHVC samen met deel van het middenrif en IHVC op het niveau van de linker nier ader toen de donor lever werd pallid.
  10. Het ontleden van het bindweefsel rond de PV door twee micro pincet. Afbinden en verdeel de pyloric aderen met een 8-0 prolene hechtdraad. Transect van het PV op het niveau van de milt ader. De donor lever accijnzen en spoelen met koud normale zoutoplossing. Plaats het in een koude saline Bad 4 ° C.

3. enten van de voorbereiding

Opmerking: Alle procedures voor de bereiding van de lever graft worden uitgevoerd in een koude saline bad bij 4 ° C.

  1. Een manchet sluit aan op de donor IHVC (Figuur 3).
    1. Plaats de IHVC in de manchet met de extensie van de manchet wijst naar de lever. Plaats de manchet-extensie op de achterste muur van de IHVC. Fix de manchet-uitbreiding en de IHVC met een gebogen microforceps zelf aangesloten met behulp van een bestand clip naar de bad-container.
    2. Evert de distale einde van de IHVC over het lichaam van de manchet met behulp van twee micro pincet.
    3. Beveilig de rand met een 6-0 zijde hechtdraad. Zorg ervoor dat de IHVC niet is gedraaid tijdens het proces.
  2. Herhaal stap 3.1 op de PV een manchet om aan te koppelen van de donor PV.
  3. Een magnetische ring hechten aan de donor SHVC (Figuur 4).
    1. Haal het middenrif door de vier verlostang en versiering van de SHVC.
    2. Doorgeven van de SHVC door de magnetische ring met behulp van de micro-titaanlegering-Tang.
    3. Evert de distale einde van de SHVC over de ring.
    4. Beveilig de ring met een 6-0 zijde hechtdraad. Zorg ervoor dat de SHVC niet is gedraaid tijdens het proces.
    5. Verwijder het overtollige middenrif rond de lever.
  4. De lever van de donor in een koude normale saline Bad onderdompelen en bewaren bij 4 ° C.

4. de ontvangende operatie

Opmerking: Het schema van de inplanting van de prothese in de ontvangende rat is afgebeeld in Figuur 5.

  1. Injecteren buprenorfine (0,05 mg/kg) subcutaan als pijnstiller 1 uur voor de operatie. Anesthetize de donor rat Isofluraan inademing. Gebruik 5 vol % Isofluraan op een debiet van 1,5 L/min in een doosje van de Plexiglas voor de inductie van de anesthesie en 2 vol % Isofluraan aan een stroomtarief 0.6-0.8 L/min op een kegel masker voor het onderhoud van anesthesie.
  2. Scheren van de gehele buikhuid van de rat. Desinfecteer de overeenkomstige huid met een Povidon-jodium oplossing.
  3. Open de buikholte via een incisie van de middellijn van 4 cm. Plaats de abdominale OPROLMECHANISMEN. Trek de ribben zo ver uit elkaar als mogelijk vanaf de middellijn.
  4. Klem en trek de xiphisternum naar het hoofd met behulp van een verlostang hemostatische. Het ontleden van het bindweefsel en de ligamenten rond de lever. Afbinden en verdeel het hepato-oesofageale ligament. Afbinden en verdeel de hepatische slagader met een 8-0 prolene hechtdraad.
  5. Isoleren van de Galgang vanaf de eerste hepatische portal. Plaats een 6-0 zijde hechtdraad rond de Galgang net onder de afdeling en de Galgang afbinden.
  6. Het ontleden van de IHVC tot de recht nier ader. Afbinden en verdeel de rechts bijnier ader. Plaats een band in de SHVC van de lever.
  7. Klem de IHVC net boven de recht nier ader met microvessel-clips. Klem het PV op het niveau van de pyloric ader met microvessel-clips.
    1. Het bloed uit de lever leeggemaakt, injecteren langzaam 2 mL van normale zout door de PV. Sleep naar beneden van de lever door te trekken van de eerder geplaatste riem. Klem de SHVC en een deel van het middenrif met een Satinsky klem.
    2. Transect de IHVC dicht bij de parenchym en de PV in de porta hepatis. Accijnzen de lever door het transecting van de SHVC net boven de lever. De ontvangende lever snel verwijderen.
  8. Een magnetische ring aan de geadresseerde SHVC koppelen.
    1. Plaats de geadresseerde resterende SHVC in een magnetische ring.
    2. Fix de magnetische ring op een Satinsky klem door magnetische aantrekkingskracht.
    3. Evert de SHVC over de magnetische ring totdat het schip heeft betrekking op de rand van de ring.
  9. Plaats de orthotopically van de donor lever graft en bedek het met een koude natte gaas.
  10. Vul het lumen van de donor en de geadresseerde SHVCs met normale zoutoplossing. Het verwijderen van luchtbellen grondig om te voorkomen dat de lucht longembolie. Voltooien van de wederopbouw van de SHVC door de magnetische ringen koppeling ingebed in de donor als de ontvanger de SHVC samen door middel van magnetische kracht.
  11. Reconstrueren de PV.
    1. Tract de rechter en linker tak van de geadresseerde PV door te trekken van een 8-0 prolene hechtdraad om de spanning van de PV.
    2. Verplaats de klem van geadresseerde PV naar beneden van de Maagportier ader naar de milt ader om de ader volledig bloot.
    3. Incise de voorste muur van de ontvanger. Vul het lumen van de PV met normale zoutoplossing.
    4. Houd de uitbreiding van de manchet van de donor PV met een gebogen pincet.
    5. Plaats de manchet lichaam van de donor PV in de geadresseerde PV blijven spoelen de PV lumen met normale zout terwijl.
    6. Veilig met een ze zijde ligatuur van de 6-0. Herstel van de bloedtoevoer naar de lever graft door het vrijgeven van de klemmen op de PV en SHVC.
  12. Herhaal stap 4.11 op het IHVC te reconstrueren van de IHVC.
  13. Reconstrueren de gal buis door een stent-techniek.
    1. Incise een "V" op de voorste muur van de ontvangende Galgang.
    2. De donor-stent in het lumen van de ontvanger BD invoegen en repareren met een 6-0 zijden ze hechtdraad. De hechtingen trekken op de twee galwegen samen en binden de hechtingen te brengen de BD dicht bij elkaar.
    3. Wikkel majus weefsel rond de anastomotic site om te voorkomen dat gal lek.
  14. Bevloeiing van de buikholte met warme normale zoutoplossing. Sluit de insnijding van de buik in twee lagen met een continue 3-0 niet-absorbeerbare chirurgische hechtdraad.
  15. Beheren 16 mg/kg cefuroxim (antibioticum) en 0,05 mg/kg buprenorfine (een analgeticum) onmiddellijk door subcutane injectie na de operatie.
  16. Plaats de rat in een schone kooi en toestaan dat voedsel en water ad libitum.
  17. Injecteren cefuroxim (16 mg/kg) en buprenorfine (0,05 mg/kg) in de buikholte elke 12 uur gedurende 3 dagen.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Na ongeveer 10 pogingen, de magnetische wapendrager techniek voor SHVC wederopbouw was met succes onder de knie door een onderzoeker die had geen voorafgaande microchirurgische opleiding. De wederopbouw van de SHVC nam minder dan 2 min. De fase van de anhepatic voor de ontvangende rats was ongeveer 10 min. Geen trombose, bloeden of angiostegnosis werd waargenomen op de SHVC anastomotic site op 1, 5 tot 30 dagen na reperfusie. De cavography inferior vena werd uitgevoerd op 2 weken na de transplantatie. Zoals aangegeven in Figuur 6, de magnetische ringen waren intact, en de bloedstroom was octrooi via de SHVC anastomosis. De overlevingskans na transplantatie was 95% op dag 1, dag 3, 90% en 85% dagen 7 tot en met 30 (Figuur 7).

Figure 1
Figuur 1 : Het ontwerp (A) en (B) de foto's voor de magnetische ring voor wapendrager van de SHVC.
SHVC: suprahepatic vena cava.  Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.

Figure 2
Figuur 2 : De manchetten en de stent voor wapendrager van de IHVC (A), PV (B) en BD (C).
IHVC: infrahepatic vena cava; PV: portal vein; BD: Gal buis. Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.

Figure 3
Figuur 3 : Schema van de anastomose manchet voor de IHVC en de PV. De IHVC of de PV invoegen in een manchet (A); Evert van de distale uiteinde van de IHVC of PV over het lichaam van de manchet met behulp van twee microforceps (B); Beveiligen van de rand met een 6-0 zijde hechtdraad (C); Het lichaam van de manchet van de IHVC of het PV van de donor in de geadresseerde IHVC of PV (D) invoegen.
IHVC: infrahepatic vena cava; PV: portal vein. Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.

Figure 4
Figuur 4 : Schema van de magnetische wapendrager van de SHVC. Doorgeven van de SHVC via een magnetische ring met behulp van de titaanlegering microforceps (A); Evert de distale einde van de SHVC over de ring (B); Beveilig de ring met een 6-0 zijde hechtdraad (C). Koppel de magnetische ringen ingebed in de donor als de ontvanger de SHVC samen door middel van magnetische kracht (D).
SHVC: suprahepatic vena cava. Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.

Figure 5
Figuur 5 : Schema van de inplanting van de prothese in de ontvangende rat. Reconstructie van de SHVC: magnetische wapendrager; Wederopbouw van de IHVC en PV: manchet wapendrager; Wederopbouw van de BD: stent anastomose. Wederopbouw van de HA: niet uitgevoerd.
SHVC: suprahepatic vena cava; IHVC: infrahepatic vena cava; PV: portal vein; BD: Gal duct; HA: hepatische slagader. Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.

Figure 6
Figuur 6 : Inferior vena cavography van de rat op 2 weken na de transplantatie. Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.

Figure 7
Figuur 7 : Representatieve overleving genezen na de transplantatie. Klik hier voor een grotere versie van dit cijfer.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Veel klinische vordert in lever transplantatie kunnen worden toegeschreven aan dierproeven. Rat OLT is een veel gebruikte en goed aanvaard model in het onderzoek van orgel behoud, transplantatie-immunologie, fysiologie en pathologie. Echter het is ook een zeer ingewikkelde procedure en geavanceerde microchirurgische vaardigheid vereist. Ondanks vele verbeteringen in de procedure voor rat OLT bleef de SHVC anastomosis een uitdagende stap. In dit artikel beschrijven we een nieuwe magnetische wapendrager techniek voor de wederopbouw van de SHVC van de rat OLT. De toepassing van deze techniek beperkt de tijd voor de wederopbouw van de SHVC minder dan 2 min en de anhepatic fase van rat OLT aan ongeveer 10 min. Wij geloven dat deze techniek heeft grote gevolgen in transplantatie-onderzoek.

De kritieke stap in het gebruik van deze magnetische wapendrager-techniek voor de wederopbouw van de SHVC is de magnetische ringen om aan te koppelen van de donor en ontvanger van SHVC. Elke voorzichtigheid moet worden gebruikt om torsie van de SHVC te voorkomen. Bovendien, wanneer het verbinden van de twee magnetische ringen, luchtbellen in de SHVC moeten worden verwijderd grondig.

Er zijn enkele beperkingen bij het gebruik van deze techniek. Sommige stammen van ratten zoals Fischer-344 ratten en Buffalo ratten hebben een extreem korte SHVC. Het is onmogelijk om de magnetische ring hechten aan hun SHVC. Ze zijn dus niet geschikt voor deze techniek. Deze techniek kan echter worden gemakkelijk toegepast voor OLT in de meeste soorten ratten met inbegrip van Sprague-Dawley ratten, Lewis ratten en bruine ratten van Noorwegen. Magnetische ringen kunnen interfereren met de magnetische resonantie beeldvorming (MRI)-scan. Daarom kan deze magnetische wapendrager techniek niet worden gebruikt als een MRI-examen vereist voor het experiment is.

Kortom, de magnetische wapendrager techniek is eenvoudig en snel SHVC wederopbouw bij ratten mogelijk. Na een redelijke leercurve, kunnen zelfs onderzoekers zonder geavanceerde microchirurgische vaardigheden produceren betrouwbare en reproduceerbare resultaten met behulp van dit model van de rat van OLT.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

De auteurs hebben niets te onthullen.

Acknowledgements

Dit werk werd gesteund door subsidies van het ministerie van onderwijs innovatie Team ontwikkeling programma van China (nr. IRT16R57), National Natural Science Foundation van China (nr. 81470896), en een onderzoek financieren voor Jong Talent werven plannen van Xi'an Jiaotong University (RW).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Anesthesia Machine Harvard  tabletop Animal anaesthesia
PLX7000B HF Mobile Digital C-arm System Perlong Medical PLX7000B It is mainly used for the angiography and photography of various operations
Syringe Pump Mindray BeneFusion SP5 intravenous infusion
Isoflurane RWD life Science Co. anesthetic:for the induction and maintenanceof anesthesia
iohexol Shanghai General Pharmaceutical Co  intravascular contrast media  
heparin sodium injection SPH No.1 Biochemical & Pharmaceutical Co., LTD   prevent the formation of thrombosis 
cefuroxime  Glaxo Operations UK Limited  an antibiotic
buprenorphine  TIPR Pharmaceutical Responsible Co.,Ltd an analgesic
curved microforceps Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. W40350 surgical tool
hemostatic forceps(straight) Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. J31010 surgical tool
hemostatic forceps(curved) Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. J31020 surgical tool
Satinsky clamp Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. XEC050 surgical tool
needle holder Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. J32010 surgical tool
microneedle holder Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. WBA040 surgical tool
notched forceps Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. J42010 surgical tool
tissue forceps(with hook) Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. J41010 surgical tool
tissue scissor Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. Y00040 surgical tool
surgical scissors Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. Y00030 surgical tool
micro scissors Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. MR-S121T surgical tool
microvessel clips Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. XEC240 surgical tool
straight microforceps(titanium alloy) Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. WCC010 surgical tool
curved microforceps  (titanium alloy) Shanghai Medical Instruments (Group) Ltd., Corp. WCC020 surgical tool

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Aller, M. A., et al. A half century (1961-2011) of applying microsurgery to experimental liver research. World journal of hepatology. 4, 199-208 (2012).
  2. Aller, M. A., et al. The value of microsurgery in liver research. Liver international : official journal of the International Association for the Study of the Liver. 29, 1132-1140 (2009).
  3. Lee, S., Charters, A. C., Chandler, J. G., Orloff, M. J. A technique for orthotopic liver transplantation in the rat. Transplantation. 16, 664-669 (1973).
  4. Kamada, N., Calne, R. Y. Orthotopic liver transplantation in the rat. Technique using cuff for portal vein anastomosis and biliary drainage. Transplantation. 28, 47-50 (1979).
  5. Oldani, G., Lacotte, S., Morel, P., Mentha, G., Toso, C. Orthotopic liver transplantation in rats. Journal of visualized experiments : JoVE. (2012).
  6. Nagai, K., Yagi, S., Uemoto, S., Tolba, R. H. Surgical procedures for a rat model of partial orthotopic liver transplantation with hepatic arterial reconstruction. Journal of visualized experiments : JoVE. e4376 (2013).
  7. Liu, X., He, C., Huang, T., Gu, J. Development of a New Technique for Reconstruction of Hepatic Artery during Liver Transplantation in Sprague-Dawley Rat. PloS one. 10, e0145662 (2015).
  8. Jamshidi, R., Stephenson, J. T., Clay, J. G., Pichakron, K. O., Harrison, M. R. Magnamosis: magnetic compression anastomosis with comparison to suture and staple techniques. Journal of pediatric surgery. 44, 222-228 (2009).
  9. Pichakron, K. O., et al. Magnamosis II: Magnetic compression anastomosis for minimally invasive gastrojejunostomy and jejunojejunostomy. Journal of the American College of Surgeons. 212, 42-49 (2011).
  10. Gonzales, K. D., et al. Magnamosis III: delivery of a magnetic compression anastomosis device using minimally invasive endoscopic techniques. Journal of pediatric surgery. 47, 1291-1295 (2012).
  11. Wall, J., et al. MAGNAMOSIS IV: magnetic compression anastomosis for minimally invasive colorectal surgery. Endoscopy. 45, 643-648 (2013).
  12. Xue, F., et al. Choledochojejunostomy with an innovative magnetic compressive anastomosis: How to determine optimal pressure? World journal of gastroenterology. 22, 2326-2335 (2016).
  13. Yan, X., et al. Portacaval shunt established in six dogs using magnetic compression technique. PloS one. 8, e76873 (2013).
  14. Dorman, R. M., Vali, K., Harmon, C. M., Zaritzky, M., Bass, K. D. Repair of esophageal atresia with proximal fistula using endoscopic magnetic compression anastomosis (magnamosis) after staged lengthening. Pediatric surgery international. 32, 525-528 (2016).
  15. Russell, K. W., Rollins, M. D., Feola, G. P., Scaife, E. R. Magnamosis: a novel technique for the management of rectal atresia. BMJ case reports. (2014).
  16. Shi, Y., et al. Magnetic ring anastomosis of suprahepatic vena cava: novel technique for liver transplantation in rat. Transplant international : official journal of the European Society for Organ Transplantation. 28, 89-94 (2015).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics