En lukket-bryst Model til at fremkalde tværgående aorta konstriktion i mus

* These authors contributed equally
Medicine

Your institution must subscribe to JoVE's Medicine section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

Vi præsenterer her, en protokol af tværgående aorta konstriktion (TAC) via en lateral torakotomi. Denne teknik er en minimalt invasiv, lukkede brystet kirurgisk procedure med henblik på at simulere pres overbelastning og hjertesvigt i mus udnytte TAC laboratorium standardindstillinger.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Eichhorn, L., Weisheit, C. K., Gestrich, C., Peukert, K., Duerr, G. D., Ayub, M. A., Erdfelder, F., Stöckigt, F. A Closed-chest Model to Induce Transverse Aortic Constriction in Mice. J. Vis. Exp. (134), e57397, doi:10.3791/57397 (2018).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Forskning på Hjertehypertrofi og hjertesvigt er ofte baseret på pres overbelastning musemodeller induceret af TAC. Den normale procedure er at udføre en delvis torakotomi for at visualisere den tværgående aortabuen. Men den Kirurgisk traume forårsaget af torakotomi i åben kiste modeller ændringer den respiratoriske fysiologi som ribbenene er dissekeret og forlod løstliggende efter bryst lukning. For at forhindre dette, etableret vi en minimalt invasiv, lukkede brystet tilgang via lateral torakotomi. Heri nærmer vi os den aortabuen via 2nd interkostale rum uden at indtaste brystet hulrum, forlader musen med en mindre traumatisk skade at tilbagesøge. Vi udføre denne handling ved hjælp af standard laboratorium indstillinger for åben bryst TAC procedurer med lige overlevelsesrater. Bortset fra vedligeholdelse af fysiologiske vejrtrækning mønstre på grund af den lukkede kiste tilgang, synes musene at drage fordel ved at vise hurtig genopretning, som de mindre invasive teknik synes at lette en hurtig helingsproces og reducerer immunrespons efter traumer.

Introduction

Musemodeller bruges ofte til at efterligne menneskelige sygdomme1. Tværgående aorta konstriktion (TAC) bruges til at fremkalde pres overbelastning og venstre ventrikel Hjertehypertrofi2. Open-bryst TAC model i mus blev valideret af Rockman et al. 3 og den kirurgiske procedure er beskrevet i detaljer af DeAlmeida et al. 4. anvendelse af værdiområde for den tværgående aorta er mere gunstige i forhold til abdominal aorta konstriktion, fordi en større del af omsætning kan kompensere negative virkninger af denne sidstnævnte procedure2.

Striber af tværgående aorta fører til et øget arterielt tryk i opstigende aorta og brachiocephalic arterie men efterlader tilstrækkelig perfusion af organer via de distale fartøjer (dvs. den venstre fælles halspulsåren, venstre subclavia arterie, og faldende aorta). Dette fører til en øget hjerte afterload og en forhøjet hjerte væg stress. Wall stress falder efterfølgende på grund af fiber fortykkelse5. Den kroniske ændring i hjertets Hæmodynamik resultater i uhensigtsmæssig tilpasning og dilatation af venstre ventrikel. Denne måde TAC skaber en reproducerbare model af Hjertehypertrofi i sidste ende fører til hjertesvigt.

Den normale procedure for TAC som beskrevet af DeAlmeide et al. 4 tilgange aortabuen via en delvis øverste torakotomi via dissektion af ribbenene eller brystbenet og ind i mediastinum samt den pleural hulrum. Dette giver et godt overblik over aortabuen og dens sidegrene. Desværre dissekeret ribbenene kan ikke være påsættes igen, hvilket efterlader dem flyder frit og dermed ændre vejrtrækning dynamics.

Vi har derfor fastsat et minimalt invasiv lukket brystet tilgang til aortabuen ved hjælp af en lateral kirurgisk tilgang via 2nd interkostale rum. Den største fordel ved denne model er evnen til at udføre TAC uden selv skære igennem ribbenene. Den Kirurgisk traume er begrænset til indsnit i huden og dissektion af den interkostale muskulatur. Denne procedure minimerer traumet, sig selv og bidrager til at opretholde tilstrækkelig brystet stabilitet.

Her beskriver vi en detaljeret, trinvis fremgangsmåde for at udføre TAC kirurgi i mus uden at udføre samlet eller den øverste torakotomi. Højfrekvente Doppler blev brugt til at sikre succes for TAC som tidligere beskrevet 6,7.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Denne protokol blev godkendt af den etiske komité for animalsk eksperimenter LANUV Recklinghausen (#84-02.04.2016.A374). Generelt, denne procedure er udført på voksne mus > 10 uger gammel. Det er dog muligt at udføre denne operation på yngre dyr så godt. Kirurgiske værktøjer skal steriliseres inden brugen, og alle trin skal udføres under aseptiske forhold.

1. induktion af anæstesi og Intubation

  1. Injicere buprenorphin 0,1 µg/g kropsvægt intraperitoneal for smertelindring. Gentag de intraperitoneal injektioner af 0,1 mg/kg buprenorphin hver 8 h for de næste tre dage efter operationen.
  2. Til induktion, skal du placere musen i en anæstesi induktion boks, som er tilsluttet vaporizer indstillet til 3,0 Vol % af isofluran med en ilt flow 1 L/min.
  3. Sikre dyb narkose ved at inducere en taktil stimulering.
    Bemærk: Stigning Vol % af isofluran op til 5%, hvis anæstesi induktion fejler eller narkose er ikke dyb nok.
  4. Hugge halen af musen til at sikre refleks fravær. I tilfælde af fuldstændig manglende reflekser, vejer mus nemlig optimal ventilator setup (Se 1,12).
  5. Flytte musen til en temperatur-kontrolleret operationsbordet at opretholde en kropstemperatur på 37 ° C under hele proceduren.
  6. Sted for næsen af musen i en plastik kegle, som er forbundet med boksen anæstesi induktion at opretholde narkose.
  7. Fastsætte de øverste fortænder af musen med en nylon sutur. Fiksere ekstremiteterne med en selvklæbende tape.
  8. Lægge pres på bagben pote med spidsen af pincet til at sikre en passende narkose igen. I mangel af en tilbagetrækning refleks fortsætte med følgende trin.
    Bemærk: Øge volumen % af isofluran, hvis anæstesi induktion fejler eller narkose er ikke dybt nok og vente på manglen tilbagetrækning refleks.
  9. Placer sterile oftalmologiske smøremiddel på hornhinder til at forhindre udtørring under anæstesi.
  10. Smøre for at undgå rektal traume rektal sonden. Indsæt en rektal temperatur sonde for at sikre en kernetemperatur på 37 ° C.
  11. Depilate i halsen og øvre brystet med depilatory creme efter fabrikantens anvisninger. Aftørre cremen efter 1 min. Hvis det er nødvendigt, Gentag dette trin indtil vellykket.
    Bemærk: Brug bomuld tippes svaberprøver i tilfælde af blødning.
  12. Ren området skrabet med 70% ethanol. Derefter anvende povidon-jod for lokale huden desinficeres 3 gange og mindst 3 min.
  13. Justere ventilator indstillinger til fysiologiske parametre. Angiv den respirationsfrekvens til 150/min og tidal diskenheder til 8-10 µL/g kropsvægt (BW).
  14. Sætte på en par nye sterile handsker. Placer musen under en kirurgisk mikroskop og placere en steril fenestrated drapere over musen.
  15. Incise huden på midterlinjen ca 3 mm under den mandibular ned til 2nd rib. Identificere midterlinjen og bindevævet af submandibulære kirtel. Brug derefter vinklet intracapsular pincet til forsigtigt at opdele kirtel på midterlinjen rent ud med to pincet og udforske trakeal musklen.
  16. Forberede luftrøret forsigtigt ved at trække de para-trakeal muskler fra hinanden rent ud med intracapsular pincet.
  17. Trække på tungen med pincet til at rette hals for lettere intubation betingelser og forsigtigt indsætte en intubation kanyle (OD 1,2 mm) inde i luftrøret. Bekræfte intubation ved direkte visualisering af tube i luftrøret og ved at kontrollere for ordentlig bryst bevægelse.
  18. Justere isofluran koncentration efter intubation til 2% isofluran med en strøm af 1,0 L/min. og 100% O2.
    Bemærk: Hvis vejrtrækning bevægelser ikke stopper eller mus starte bevæger sig, først øge respirationsfrekvens op til 180/min. Hvis det er nødvendigt, øge isofluran koncentration op til 3,5% sekundært indtil musen stopper vejrtrækning på egen hånd. Evaluere udsivning eller utilstrækkelig fyldning af vaporizer som de mest almindelige problemer.
  19. Alternativt kan du udføre intubation som foreslået i følgende sub trin.
    1. Placer musen på et bord på en 60° vinkel.
    2. Fiksere yderpunkterne af mus med tape og læne sig tilbage i hovedet.
    3. Placer en kold lyskilde direkte på huden over strubehovedet.
    4. Træk tungen forsigtigt med pincet til at visualisere stemmebåndene.
    5. Indsætte et plastik rør af en IV-kanyle (24 G) gennem stemmebåndene og forbinde de plastrør til ventilator indstillinger.
    6. Tilslut ventilator til kanyle at bekræfte intubation ved synchrone brystet bevægelser.
      Bemærk: Hvis vejrtrækning bevægelser ikke stopper eller mus starte bevæger sig, først øge respirationsfrekvens op til 180 pr. min. Hvis det er nødvendigt, øge sekundært isofluran koncentration op til 3,5% indtil musen stopper vejrtrækning på egen hånd. Evaluere udsivning eller utilstrækkelig fyldning af vaporizer som de mest sandsynlige problemer.

2. Præoperative Doppler måling

  1. Forbered begge halspulsårer som lå supplement til luftrøret ved forsigtigt at trække bindevæv fra hinanden med pincet.
  2. Placer spidsen af 20 MHz Doppler sonden med nogle sterile ultralyd gel på højre og venstre halspulsåren på en vinkel på mindst 45°.
  3. Langsomt dreje sonde til at flytte det lateral og mediale til at finde en Doppler signal og vippe sonde for at optimere signalet.
  4. Bruge en Doppler software til at vise og gemme flow hastigheder i højre og venstre fælles carotis arterierne på en computer.

3. torakotomi

  1. Bruge et sæt af sterile handsker for hver enkelte mus til at forhindre operationssår.
  2. Udvide hud indsnittet ned til 2nd interkostale rum med en saks.
  3. Identificere 2nd interkostale rum visuelt ved optælling af ribbenene og derefter ligeud trænge denne plads med intracapsular pincet.
    Bemærk: 1st ribbenet er placeret under kravebenet og er derfor ikke synlig fordi 2nd interkostale rum er fundet mellem første synlige (dvs. 2nd ribben) og 3rd ribbenet.
  4. Åbn 2nd interkostale rum ved hjælp af pincet tips og Indsæt retraktorer.
  5. Justere retraktorer med en elastik, der er knyttet til operationsbordet at have et klart billede af thymus.
  6. I tilfælde af blødning bruger en bomuld-tip og tryk på de overfladiske fartøjer i 2 min.

4. banding af tværgående Aorta

  1. Juster forstørrelsen til 200% for at identificere midterlinjen og bindevævet. Brug derefter vinklet pincet til at forsigtigt opdele thymus. Fjern fedtvæv, indtil aortabuen kan ses tydeligt.
  2. Forberede en tunnel med vinklet binde pincet under den tværgående aorta mellem brachiocephalic arterie og venstre fælles halspulsåren (Se figur 1). Hold årets en 6,0 sutur ved hjælp af fine pincet og passere tråden under aortabuen.
  3. Tage tråden med den anden pincet fra anden siden af buen.
  4. Skåret af en 3 mm langt stykke længde af en 27 G at bruge nålen som en spacer for TAC-ligatur for mus vejer mellem 19-25 g kropsvægt og en 26 G kanyle som en spacer for mus > 25 g BW.
  5. Omhyggeligt placere spacer parallelt med tværgående aorta.
  6. Forberede en løs dobbelt knude på spacer og sikre optimal placering af spacer parallelt til aorta. Derefter binde første kast, og hurtigt udføre en anden modsætning kast. Fjerne spacer straks.
  7. For at udføre sham mus kontrol, Følg den samme protokol udelade ligatur af aorta.
  8. Luk 2nd interkostale rum med en 6,0 polypropylen sutur. Betale særlig opmærksomhed for subclavia fartøjer, når ligating.
  9. Sutur i huden ved hjælp af en 6,0 polypropylen sutur i en fortløbende sutur mønster.

5. bekræftelse af vellykket ligatur af den tværgående Aorta

  1. Placer en 20 MHz Doppler sonden på begge sider af halsen i en 45° vinkel som i punkt 2.
  2. Dokumentere flow hastigheder på hver side.
    Bemærk: En vellykket TAC kan valideres af Doppler flow hastighed, som vist i figur 2. En flow hastighed forholdet mellem 4-10 mellem højre og venstre carotis arterie normalt sikrer tilstrækkelig TAC (Se figur 2).

6. hjertet høst

  1. Fremkalde narkose ifølge trin 1.2. og 1,3.
  2. Placere musen i en aktiv dødshjælp kammer og justere kuldioxid flow for at fortrænge 10-30% af volumen/minut.
  3. Fiksere musen på en tabel, kirurgi. Åbn maven med saks og høst blod fra den ringere vena cava med en kanyle til yderligere analyse.
  4. Skær mellemgulvet og brystbenet knoglen med stærk saks og fjern hjertet.
  5. Fjerne alle arteriel og bindevævet foer vejning hjertet.
  6. Adskille højre hjertekammer og septum fra venstre hjertekammer og vejer begge prøver.
  7. Fryse begge vævsprøver i flydende kvælstof.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

En vellykket TAC garanterer induktion af pres overbelastning og venstre ventrikel hypertrofi. En ad hoc-validering af pres overbelastning kan opnås ved hjælp af Doppler flowmåling hastighed som vist i figur 2. Mens præoperativ blod flow hastighed er lig i begge halspulsårer, TAC medfører en augmented blod hastighed i lige halspulsåren på grund af forhøjet tryk i venstre hjertekammer og aorta mens forårsager post stenotic svækkede blod strømningshastighed i den venstre halspulsåren.

Effekten af TAC'EN og dens resulterende hypertrofi blev valideret ved beregning af hjertet vægten/body vægt nøgletal (HW/BW; mg/g) af C57BL/6J mandlige mus på dag 3, 6 og 21 dage efter operationen. HW/BW nøgletal steget betydeligt i TAC mus i forhold til ikke-stribede mus 6 dage efter operationen (4.78 ± 0,18 vs7.66±1,43 mg/g, p < 0,0001). Dette forhold var næsten konstant efter 21 dage (4,8 ± 0,11 vs7.81 ± 0,65 mg/g, p < 0,0001) (Se figur 3). Overlevelsesraten er primært afhængig af intra-operative blødning: det kan reduceres til under 5% gennem regelmæssig praksis. Overlevelsesraten efter 21 dage afhænger hovedsageligt af genotypen. For mus ikke lider af funktionel hjertesygdomme overlevelse sats beløb > 85%. Overlevelsesraten i præsenteres C57BL/6J mus efter 21 dage udgjorde 88%.

Systolisk blodtryk og hjertefunktion blev målt i intubation anæstesi og udført med en 1,4 fransk pres konduktans kateter8 , som beskrevet af andre. 9 puls (HR) har en betydelig effekt på venstre ventrikel (LV) kontraktilitet. Der var ingen forskel i hjertet priser (HR) af aorta stribede og ikke-aorta stribede mus (p = 0.1456) efter 21 dage (Se figur 4A). En konstant banding af aorta (p = < 0,0001) blev bevist af en øget systolisk blodtryk målt efter 21 dage (Se figur 4B).

Som har været diskuteret i litteraturen, er C57BL/6J mus almindeligt kendt at udvikle excentrisk hypertrofi med systolisk dysfunktion10 efter TAC. En forøgelse af venstre ventrikel diameter blev fundet, som også synes betydelige i pres volumen målinger. Ende-systolisk volumen steg fra 16,25 µL (± 1.935 µL) til 23.31 µL (± 1.617µL). Denne ændring var signifikant (p = 0.0131) (Se figur 4 c). Ende-diastoliske volumen steg fra 25.81 µl (± 1.852 µL) til 31.24 µl ± (1.093 µL). Denne ændring var signifikant (p = 0.0268) (Se figur 4D).

En-vejs ANOVA efterfulgt af Bonferroni's posthoc test blev udført for at sammenligne TAC og humbug grupper. I tilfælde af pres volumen målinger, blev grupper sammenlignet ved hjælp af en uparret t-test med welchs korrektion. Alle data er blevet præsenteret som betyder ± SEM (fejllinjer).

Figure 1
Figur 1: den kirurgiske tilgang via 2nd interkostale rum på 200% forstørrelse. Dette billede blev taget med kirurgisk mikroskop og viser aortabuen med en tråd mellem brachiocephalic arterie og venstre fælles halspulsåren. Venligst klik her for at se en større version af dette tal.

Figure 2
Figur 2: repræsentative pulserende bølge Doppler afbildning fra begge halspulsårer (sham vs TAC mus). A) impuls-bølge Doppler afbildning af den venstre halspulsåren før TAC. B) impuls-bølge Doppler afbildning af den lige halspulsåren før TAC. C) Image ofPulsed-bølge Doppler af den venstre halspulsåren efter TAC. Blood flow hastighed er reduceret i forhold til figur 2A. D) impuls-bølge Doppler af lige halspulsåren efter TAC. Blood flow hastighed er øget i forhold til figur 2B. Venligst klik her for at se en større version af dette tal.

Figure 3
Figur 3: hjerte vægten / body vægtforhold. Hjertehypertrofi er induceret på grund af TAC. Det fremgår af en betydelig stigning i hjertet vægten/body vægtforhold. Mus uden aorta banding (dvs. sham mus; hvid barer) blev sammenlignet med TAC drives mus (sorte bjælker) efter 3, 6 og 21 dage. 6 dage efter TAC hjerte vægt /body vægtforhold steg betydeligt i TAC mus. Denne effekt er kun lidt udtales efter 21 dage. Betydning var indstillet til p = < 0,05. NS = ikke betydeligt; p < 0,0001. Data præsenteres som betyder ± SEM (fejllinjer). n = 6-9 pr. gruppe. Venligst klik her for at se en større version af dette tal.

Figure 4
Figur 4: hæmodynamiske parametre måles via tryk-volumen kateter i mus (C57BL/6J) med og uden TAC 21 dage efter operation: A) Heart rate (HR) i slag pr. minut (bpm). Der var ingen forskel i HR i begge grupper, der angiver en sammenlignelig narkose under de invasive målinger. B) systolisk blodtryk i den højre fælles halspulsåren (SBP'et). Den betydelige forøgelse af sBP efter 21 dage angiver en konstant konstriktion af aortabuen. C) ende-systolisk diskenheder (ESV) er steget betydeligt (p = 0.0131) efter 21 dage, og Vis et øget afterload på grund af TAC'EN induceret dilatation af ventriklen. D) ende-diastoliske volumen (ESV) er steget (p = 0.0268 procentmålpunkt Betydning var indstillet til p = < 0,05. NS = ikke betydeligt; * p < 0,05; p < 0,0001. Data præsenteres som betyder ± SEM (fejllinjer); n = 8-13 pr. gruppe. Venligst klik her for at se en større version af dette tal.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Hypertension som følge af TAC hurtigt indsættende adskiller sig fra klinisk relevante hypertrofi forårsaget af aorta stenose eller hypertension. Ikke desto mindre brug af små dyremodeller for at fremkalde hjertesvigt har mange fordele og vælges derfor af mange efterforskere11. Denne lukkede bryst-model forbedrer de allerede eksisterende modeller af den kirurgiske teknik til at fremkalde tværgående aorta konstriktion i mus4.

Den mest kritiske trin er passage under aortabuen. En for stram sutur omkring aorta kan forårsage en alvorlig reduktion af blodgennemstrømningen til vigtige organer som nyrer. Ifølge loven i Hagen-Poiseuille er flow hovedsageligt afhængige af radius. Derfor blev nogle vægt-tilpasset afstandsstykker brugt i vores protokol. Denne procedure gør denne model mere universelt gældende, navnlig med hensyn til meget unge eller gamle mus, afhængigt af den enkelte eksperimentel opsætning.

Kirurgisk traume, selve inducerer en immunrespons og bør reduceres til et absolut minimum at forhindre konkurrenceforvridende virkninger. Hurtig genopretning og høj overlevelsesrate er obligatorisk, især i komplekse dyremodeller. Historisk set, i modsætning til torakotomi i menneskelige patienter gendannes brystkassen i mus ikke efter TAC kirurgi. Derfor er tilbagelevering til fysiologiske vejrtrækning bevægelser begrænset på grund af de frie flydende ribben, som ikke tilsluttes igen til brystbenet.

Minimalt invasive teknikker for TAC er også bruges af andre12,13. I begge modeller, er aortabuen nået gennem en midterlinjen indsnit og en øvre delvis sternotomi. Selv om begge modeller er mindre invasiv end åben bryst modeller, har Kirurger fjerne ribben eller dele af brystbenet til aorta. Vi mener, at opretholde fysiologi af hele brystkassen aids hurtigere helbredelse. Derfor, denne protokol forbedrer allerede eksisterende protokoller og hjælper med at minimere den kirurgiske traume, selv.

På grund af de mere apikale kirurgisk adgang er en post-kirurgiske hyperinflation i lungerne for forebyggelse af atelektase eller pneumothoraces, som det har været nogle gange beskrevet4,14, ikke påkrævet. Denne adgang forhindrer en barotrauma i lungerne, som kan være fremkaldt af fastspænding ekspiratorisk røret at åbne atelektase i eksisterende modeller. Denne protokol indeholder også en individualiseret fysiologiske ventilation strategi. Det er fristende at spekulere, at en individuelt tilpasset ventilation hjælpemidler til at reducere respirator-associeret komplikationer såsom barotrauma. En vægt tilpasset ventilation strategi blev brugt til at undgå virkninger for systemisk cytokin produktion af ventilationen sig15.

Afslutningsvis, repræsenterer disse teknikker en alternativ og bedre model for inducerende Hjertehypertrofi i mus.

Selv om traumer er minimeret ved at undgå torakotomi, er den overlegne effekt med hensyn til reduktion af inflammation ikke vist i denne publikation. Desværre, begrænsninger af dyrebeskyttelsen love ikke tillade os at udføre åben bryst TAC parallelt med minimal invasiv TAC for sammenligning, fordi denne minimalt invasiv model har været etableret i år allerede. Derfor, disse udtalelser er baseret på de tidligere erfaringer med vores gruppe.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Forfatterne har ikke noget at oplyse.

Acknowledgments

Vi takker Stilla Frede og Susanne Schulz for deres tekniske bistand. Denne undersøgelse modtog ingen midler.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Pressure-volume catheter Millar Instruments, USA SPR-839
Mouse ventilator Harvard Apparatus GmbH, Germany Minivent - TYPE 845
Mouse ventilator Harvard Apparatus GmbH, Germany Y-connection with intubation cannula OD 1.2mm 73-2844
Vaporizer Dräger Medical AG&CO.KG, Germany 19.3 Isofluran-Vaporizer (a newer version is available under catalog number  D-877-2010)
Microscope  Leica Microsystems, Germany MZ 7.5
Light source  Schott AG, Germany KL 1500 LCD
6-0 Prolene Ethicon, USA Polypropylene suture BV-1 9.3 mm 3/8c suture for surgery
Seraflex Serag Wiessner, Germany USP 5/0 schwarz;  IC108000  suture for constriction
Homoeothermic Controlled Operating Tables Harvard Apparatus GmbH, Germany Typ 872/3 HT with tripod stand and homoeothermic controller Type 874; 73-4233
Flexible Rectal Probe Harvard Apparatus GmbH, Germany 1.6 mm OD; 55-7021
Doppler Signal Visualisation Instrument Indus Instruments, USA Doppler Signal Processing Workstation (DSWP) with 20MHz Pulsed Doppler Module
Arruga Intracapsular Forceps Altomed, UK A5400
Doppler Probe Indus Instruments, USA 20MHz Tubing-mounted Probe
Jaffe Lid Retractor Altomed, UK A3513

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Tarnavski, O. Mouse surgical models in cardiovascular research. Methods Mol Biol Clifton NJ. 573, 115-137 (2009).
  2. Tarnavski, O., McMullen, J. R., Schinke, M., Nie, Q., Kong, S., Izumo, S. Mouse cardiac surgery: comprehensive techniques for the generation of mouse models of human diseases and their application for genomic studies. Physiol Genomics. 16, (3), 349-360 (2004).
  3. Rockman, H. A., et al. Segregation of atrial-specific and inducible expression of an atrial natriuretic factor transgene in an in vivo murine model of cardiac hypertrophy. Proc Natl Acad Sci U S A. 88, (18), 8277-8281 (1991).
  4. deAlmeida, A. C., van Oort, R. J., Wehrens, X. H. T. Transverse Aortic Constriction in Mice. J Vis Exp JoVE. (38), (2010).
  5. Grossman, W., Jones, D., McLaurin, L. P. Wall stress and patterns of hypertrophy in the human left ventricle. J Clin Invest. 56, (1), 56-64 (1975).
  6. Hartley, C. J., Reddy, A. K., Madala, S., Michael, L. H., Entman, M. L., Taffet, G. E. Doppler estimation of reduced coronary flow reserve in mice with pressure overload cardiac hypertrophy. Ultrasound Med Biol. 34, (6), 892-901 (2008).
  7. Reddy, A. K., et al. Pulsed Doppler signal processing for use in mice: applications. IEEE Trans Biomed Eng. 52, (10), 1771-1783 (2005).
  8. Shioura, K. M., Geenen, D. L., Goldspink, P. H. Assessment of cardiac function with the pressure-volume conductance system following myocardial infarction in mice. Am J Physiol - Heart Circ Physiol. 293, (5), H2870-H2877 (2007).
  9. Zhang, B., Davis, J. P., Ziolo, M. T. Cardiac Catheterization in Mice to Measure the Pressure Volume Relationship: Investigating the Bowditch Effect. JoVE J Vis Exp. (100), e52618 (2015).
  10. Barrick, C. J., Rojas, M., Schoonhoven, R., Smyth, S. S., Threadgill, D. W. Cardiac response to pressure overload in 129S1/SvImJ and C57BL/6J mice: temporal- and background-dependent development of concentric left ventricular hypertrophy. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 292, (5), H2119-H2130 (2007).
  11. Patten, R. D., Hall-Porter, M. R. Small animal models of heart failure: development of novel therapies, past and present. Circ Heart Fail. 2, (2), 138-144 (2009).
  12. Zaw, A. M., Williams, C. M., Law, H. K. W., Chow, B. K. C. Minimally Invasive Transverse Aortic Constriction in Mice. J Vis Exp JoVE. (121), (2017).
  13. Tavakoli, R., Nemska, S., Jamshidi, P., Gassmann, M., Frossard, N. Technique of Minimally Invasive Transverse Aortic Constriction in Mice for Induction of Left Ventricular Hypertrophy. J Vis Exp. (127), (2017).
  14. Kim, S. -C., Boehm, O., Meyer, R., Hoeft, A., Knüfermann, P., Baumgarten, G. A Murine Closed-chest Model of Myocardial Ischemia and Reperfusion. J Vis Exp JoVE. (65), (2012).
  15. Veldhuizen, R. A., Slutsky, A. S., Joseph, M., McCaig, L. Effects of mechanical ventilation of isolated mouse lungs on surfactant and inflammatory cytokines. Eur Respir J. 17, (3), 488-494 (2001).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics