Elementos clave de la prueba biológica de atracción foto insectos estudios o programas de monitoreo

Behavior

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Summary

Arenas de bioensayo de foto-la atracción se utilizan para determinar los colores de luz óptima para maximizar la atracción de insectos; sin embargo pruebas biológicas y los métodos son específicos de hábitat y comportamiento de insectos. Modificaciones y equipo adaptable se explican para insectos nocturnos o diurnos y terrestres o aéreos.

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Cohnstaedt, L. W., Disberger, J. C., Paulsen, E., Duehl, A. J. Key Elements of Photo Attraction Bioassay for Insect Studies or Monitoring Programs. J. Vis. Exp. (137), e57445, doi:10.3791/57445 (2018).

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Abstract

Optimizado atrayentes visuales serán aumentar la eficiencia de captura insectos mediante comportamientos naturales de los insectos blanco (foto-taxis positivos) como un medio para atraer a los insectos a un control de la población o trampa de monitoreo. Diodos emisores de luz (LED) han creado opciones de iluminación personalizable con longitudes de onda específicas (colores), intensidades y anchos de banda, todo lo cual puede ser personalizado a los insectos. Pruebas biológicas conductuales foto-atracción pueden utilizar LEDs para optimizar los colores atractivos para una especie de insecto hasta etapas de la historia de vida específica o comportamientos (apareamiento, alimentación o buscando refugio). Los investigadores luego deben confirmar los resultados de la prueba biológica en el campo y comprender la limitada distancia atractivo de atrayentes visuales.

La arena del cloverleaf prueba biológica es un método flexible para evaluar la atracción foto evaluar una gama de comportamientos de insectos naturales como escape y alimentación respuestas. La arena se puede utilizar para experimentos de insectos terrestres o aéreos, así como insectos diurnos y nocturnos. Técnicas de recogida de datos con la arena grabar, contar el contacto con las luces o recoger físicamente los insectos que son atraídos hacia las luces. Las cuentas de ensayo para los insectos que no elección y el arenas pueden ser solo (no competitiva) color o varios colores (competitivos). El diseño cloverleaf causa insectos con thigmotaxis fuerte para volver al centro de la arena donde puede ver todas las opciones en un competitivo LED pruebas. La arena cloverleaf presentada aquí se ha utilizado con mosquitos, chinches, mosca de Hessian, moscas domésticas, jejenes picadores, escarabajos de la harina roja y PSOCIDOS. Pruebas biológicas se utilizan para desarrollar precisión y trampas para insectos eficaces para orientar el desarrollo y optimización de trampas para insectos usado para controlar las fluctuaciones de población de plagas para evaluaciones del riesgo del vector de la enfermedad, la introducción de especies invasoras, o utilizarse para supresión de la población.

Introduction

Vigilancia entomológica casi todos depende del olfato o atrayentes visuales y a menudo ambos. Volátiles atrayentes olfativos pueden dispersarse en el medio ambiente dando como resultado un área atractivo. Sin embargo, atrayentes visuales pueden tener un rango más limitado debido a lo invertebrado ojo compuesto resolver imágenes1,2,3. Por lo tanto, deben optimizarse atrayentes visuales al insecto de interés para maximizar la atracción y la trampa diseñada para tomar ventaja de comportamientos naturales de los insectos blanco.

Atractivo visual se basa en longitudes de onda desde el sol u otras fuentes de luz que es absorbida o reflejada por la superficie de un objeto; los organismos consideran que esta absorción/refracción de longitudes de onda color. Visión de insectos se ha encontrado que incluyen azul, verde y ultravioleta (UV) a longitudes de onda1. Insectos utilizan su visión para ayudar en la búsqueda de compañeros, comida y vivienda4. Insectos visualmente pueden definir tamaños de objetos, colores, formas, movimientos y contrastes5,6. Insectos peces activos son generalmente atraídos por la luz de contraste diferentes y4de intensidad, mientras que insectos diurnos pueden resolver los colores e imágenes, además de contraste debido a una mayor disponibilidad del fotón durante el día. Trampas de monitoreo utilizan señales visuales de los insectos a su ventaja para optimizar la atracción y captura de7.

El método más común de evaluar foto atracción fue la observación de insectos movimiento hacia varias formas de colores como flores8 u objetos (como tarjetas adhesivas9,10). Visuales bioensayos con insectos colonizados pueden ayudar a identificar el óptimo rango de longitudes de onda o intensidades, que reduce el número de pruebas de campo. Pruebas biológicas visuales como el "túnel de luz de doble cara" fueron diseñados para probar moscas11. El problema con dos túneles de luz caras es que no cuenta para los insectos que no se recogen. Mayoría de los insectos se atranca en esquinas interiores y en los bordes de arenas. También sólo dos colores se pueden probar al mismo tiempo. Otros análisis incluyen los métodos de Steverding y Troscianko (2004)12, que se redujo la atracción de la mosca tse tse a grandes bandas (±50 nm) de colores claros. Diodos emisores de luz (LEDs) se han incorporado en trampas para mejorar la atracción de insectos mediante la optimización de las longitudes de onda de luz emitida1,13,14. Optimizar la atracción visual de estas trampas o dispositivos de control mejorará la eficiencia de colección de insectos mediante el uso de comportamientos naturales de los insectos para atraer insectos. De esta manera, resultados de la prueba biológica se utilizan para optimizar la tecnología de captura existentes. La "terrestre artrópodos trampa" que mejora la trampa tipo domo estándar de industria para la vigilancia de Escarabajo rojo de la harina (los E.E.U.U. patente # US8276314B2)) y el "método y composiciones para mejor luz trampas" que incorpora de diodos electroluminosos en antena trampas para insectos (los E.E.U.U. patente # US2009/0025275A1). Las dos patentes utilizan tecnología de LED que se optimizó utilizando los resultados de la prueba biológica para mejorar significativamente las trampas para insectos.

Este estudio describe un estadio de bioensayo de atracción foto y métodos que permiten a los investigadores a evaluar la respuesta de insectos para reducir las longitudes de onda como un color atractivo competitivo o individual. Equipo y modificaciones experimentales se presentan insectos nocturno, diurno, terrestre y aéreo.

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Protocol

1. prueba componentes

  1. Construcción de arena terrestre
    1. Bandas metálicas de uso intermitente material de 2,54 cm de longitud. Doble cada tira en un semicírculo con un diámetro de 15,24 cm (figura 1).
    2. Conecte los extremos de cada semi-círculo y forma cloverleaf de las cuatro piezas. Conectar una tuerca y un tornillo #10 a los extremos de cada semi-círculo para mantenerlos juntos.
    3. Perfore un agujero en el centro de cada semicírculo 0,79 cm desde la parte inferior de la arena. Fijar los titulares de 5 m m LED los agujeros perforados en el centro de cada semicírculo.
    4. Con el fin de reducir la reflexión, aerosol pintura en aerosol negro mate a lo largo de la arena14 para cubrir el tapajuntas de metal. Usar una textura líquida (e.g., Fluon) para evitar que insectos saliendo de la arena sobre la pintura en aerosol.
  2. Construcción de antena arena
    Nota: La arena aérea tiene una dimensión y tamaño similar a la arena terrestre; sin embargo, se utilizó material poliacrílico (figura 2). El plástico transparente permite que toda la luz pase a través. El plástico transparente previene la reflexión que interfiere con el experimento. El plástico transparente permite también el experimento para ser filmado.
    1. Lo más lejano de cada semicírculo para permitir contenedores roscar sobre la arena principal del hilo de rosca. La forma cloverleaf envía insectos hacia el centro. Sin esquinas externas animar a congregación de insectos; sin embargo, las tazas de la colección de insectos aéreos tienen todas las esquinas internas y sin esquinas externas.
    2. Para contenedores de arena aérea, utilice recipientes de polimetil penteno tapa de rosca (125 mL, diámetro exterior 64 mm, 74 mm de altura) y perfore los fondos (15 mm de diámetro).
    3. En cada uno de los fondos de los envases, pegar tubos de roscadas (diámetro de 15 mm, 60 mm de longitud).
    4. Conecte un soporte de LED de 5 mm para las tapas de cada contenedor. Cada tapa de la jaula de colección sobre el orificio grande de las jaulas de colección del hilo de rosca.
    5. Asiente el tubo roscado de la arena en el pequeño orificio en el lado opuesto de la jaula de la colección. Asegúrese de que el extremo del tubo roscado todo quede al ras con las paredes dentro de la arena y se ajusta firmemente a la estructura de la colección.
      Nota: El espárrago fue hecho de teflón. El teflón ilumina el color del LED que tiene su caja de colección. El espárrago era el único elemento que brilla con respecto a los insectos en el campo debido a una sustancia plástica gris en la base de cada jaula de colección.
  3. Preparación de electrónica
    Nota: Hay varios colores (longitudes de onda) de LEDs son dependientes en productos químicos utilizados para construir el LED y por lo tanto una amplia variedad de colores son posibles (tabla 1).
    1. Para todos los experimentos, utilizar LEDs de 5 mm estándar con cables de positivos y negativos. Los LEDs pueden ser estrechos en su rango de longitud de onda ± 5 nm o pueden ser grandes en su gama ± 50 nm de longitud de onda.
    2. Definir el ángulo de visión como el máximo ángulo cónico en el cual se puede ver una pantalla. Si no se conocen a través de agujero LED. A través del agujero LED requieren ya sea a través de las ranuras en un PCB, un arnés de cableado o los cables soldados a los terminales positivos y negativos. LEDs de montaje superficial requiere diseño PCB y soldadura para incorporarlas.
    3. Incorporar resistencias variables en la electrónica para controlar la ingesta de energía del LED (LED intensidad) (figura 3). Utiliza un espectrómetro de luz para comprobar la intensidad (W/m2) y la longitud de onda (nm) de los LEDs para cada experimento.

2. preparación de la arena

  1. Antes y entre cada repetición, con cuidado desmonte y limpie la arena usando un jabón no abrasivo, sin olor en agua tibia para eliminar olores o atrayentes no deseados. Use una esponja con un bajo nivel abrasivo para evitar rayar la arena.
    1. Completamente seca la arena y colóquelo a un lado para terminar en preparación para el próximo ensayo de secado por aire. Esto evitará manchas de agua de países en desarrollo. Arañazos y manchas de agua pueden provocar refracción en esos puntos en la arena. Distorsiones crean error en los resultados.
    2. Siempre debe manejarse la arena, guantes de nitrilo para evitar la introducción de olores humanos en las superficies de la arena.
  2. Registrar las siguientes condiciones ambientales: humedad, temperatura, presión barométrica, fecha, hora de inicio y fin, fuentes externas de luz y LED puestos en la arena. Registrar estos valores y vigilar sus tendencias de experimento a experimento. Esto asegura el correcto uniforme Replica experimental, registrar las condiciones ambientales antes y después de las repeticiones.
  3. Tipos de experimentos
    Nota: Esta configuración es capaz de la prueba luz único y competitivo.
    1. Para la prueba luz sola, utilice emitiendo luz uno en una sola hoja de trébol mientras que el resto de las hojas de trébol tienen nada emisión de ellos.
    2. Para experimento competitivo, emiten luz de cuatro cloverleafs todos con diferentes características en competencia con los demás.
      Nota: Otros experimentos pueden evaluar la importancia del estado insecto (alimentación, hambre, tenerales, acoplado, sangre alimentado, etcetera.) y etapa de la historia de la vida. Software de grabación y análisis conductual puede utilizarse para registrar y cuantificar el comportamiento. Para los experimentos nocturnos, cámaras de infrarrojos pueden utilizarse para ver los insectos, que brillan blanca en IR grabando en contraste con la arena oscura.
    3. Gire LED posiciones después de cada repetición para controlar el posible efecto de interferencia de la luz entre fuentes de luz opuestas y cualquier preferencia ambiental.
    4. Para contar el número de colecciones de insectos que no van en los orificios, utilice LEDs infrarrojos, una cámara infrarroja y software14. La grabación de vídeo se mostrarán que el número de escarabajo visitas a cada LED. Una colección no cuenta a menos que el insecto se mueve desde el centro de la arena hacia un LED en lugar de seguir un borde más allá de un LED.
  4. Instalación de arena
    1. Configurar un pedestal con cuatro tarros de mason idénticos y colocar un paño de lino negro encima de ellos. El lienzo es negro para evitar que la luz que refleja de la parte inferior de la arena.
    2. Coloque la placa base de la arena en la parte superior este pedestal. Armar cada pieza de la arena encima de esta placa base.
    3. Colocar la arena cloverleaf centralmente alrededor del punto de lanzamiento de la placa base. Manteniendo esta central permite que los insectos que emergen desde el centro de la experiencia, no dándoles preferencia inicial.
    4. Instale los diodos electroluminosos (LED) en los titulares de las cuatro recipiente LED.
    5. Configurar el equipo eléctrico para el control de las luces.

3. a partir de pruebas biológicas

  1. Coloque la tapa transparente de la arena sobre la arena paralela a la placa base. Si insectos se lanzan a través de la placa base, la tapa de la arena debe estar ya en la arena. Esto contiene insectos y permite grabación de vídeo (insectos terrestres) o evaluación visual.
    1. Si es necesario por las especies (insectos aéreos), inmovilizar temporalmente a los insectos para permitir la extracción de sus jaulas (aparición) y permitir la introducción de arena. Derribar los insectos se puede lograr con temporalmente con dióxido de carbono o a temperaturas frías (<-20 ° C para mosquitos a-4,00 ° C para los mosquitos).
    2. Usar un aspirador, extraer el sexo deseado y el conteo de insectos los insectos desmontados. Luego, introducir los insectos en la arena a través de la placa base. Use una tubería u otra herramienta de aspiración para la extracción de insectos. Demasiada manipulación o largas exposiciones reducirá la supervivencia.
    3. Comienzan grabaciones de prueba/evaluación antes de aclamación para confirmar que los insectos están respondiendo sólo a la luz y no exhibe una respuesta de escape. Para evitar la respuesta de escape, una proporciona un tiempo de aclimatación de 1 h a los insectos antes de encender la electrónica. Insectos se orientan hacia longitudes de onda específicas de luz durante la respuesta de escape cuando se coloca en un nuevo entorno.

4. conclusión y cuantificación de bioensayos

Nota: La duración de cada repetición experimental dependerá de comportamiento de insectos y tiempos de respuesta, en general una exposición más larga, más respuestas tienden a ser más informativo.

  1. Condiciones ambientales registro.
  2. Detener las grabaciones como la cámara infrarroja, si utiliza.
  3. En caso de utilizar cámaras de colección: después de cada repetición, lugar la arena cloverleaf en un congelador para matar los insectos para la cuantificación. La arena no debe dejarse en el congelador durante mucho tiempo porque el entorno de congelación puede causar el plástico se raje.
  4. Cuantificar el comportamiento de insectos por contar a insectos respondedores en jaulas de colección o análisis de video. Insectos que permanecían en la arena cloverleaf fueron contados como no haber hecho ninguna elección. Por ejemplo, Culicoides fueron encontrados para ser más atraídos a la luz UV en comparación con hacer ninguna opción7.

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Representative Results

La arena terrestre se ha utilizado para mejorar la plaga monitoreo trampas para rojo harina escarabajos14 y las arenas antenas para hessian moscas mosquitos picadores15 7. Aunque las arenas cloverleaf fueron similares, las condiciones para cada especie de insecto eran diferentes y acomodaron la evaluación de insectos nocturnos o diurnos que pueden arrastrarse o volar. Lo más importante estos estudios de laboratorio se traducen en aplicaciones de campo para monitorear los cambios de población de las plagas de insectos, introducción de especies invasoras, supresión de la población y evaluaciones de riesgo de enfermedad vector.

Los escarabajos de la harina rojo, una plaga de productos almacenados, se evaluaron en el ámbito terrestre y filmado con una cámara infrarroja de la14. Las respuestas fueron consideradas positivas para un color, si un escarabajo hacia y contacto con el LED. La configuración de arena era un estilo competitivo con luces de cuatro o tres luces y un oscuro espacio en blanco para el control. Los datos del estudio indican que los escarabajos fueron más atraídos a cerca de UV LED (390 nm) (figura 4). Esta información fue utilizada para hacer un escarabajo rojo de la harina mejor trampa utilizando una matriz de LED UV octogonal, que se tradujo en un aumento del 20% en colección en comparación con una tasa de 1% de captura con el atrayente de feromonas originales solo.

Moscas del hessian, cosecha de trigo campo plagas fueron evaluadas para la atracción de la foto usando la arena aérea con un diurno ajuste15. Moscas del hessian atrajeron más a longitudes de onda verdes con la altas intensidades (figura 5). Las hembras prefieren los espectros verdes de 502 y 525 nm. Sin embargo, ambos sexos preferían luz de alta intensidad (16 W/m2). Este es el primer informe de la atracción de la mosca de Hessian para seleccionar emitidas longitudes de onda e intensidades de LEDs bajo condiciones controladas. Estos resultados se utilizan para desarrollar una mejor trampa de detección de mosca de Hessian para campos de trigo no infestadas.

El vector enfermedad penetrante midge, Culicoides sonorensis puede transmitir el virus, que en bóvidos, cérvidos y ovids pueden resultar en enfermedad epizoótica hemorrágica o enfermedad de lengua azul. C. sonorensis fueron analizadas usando la arena aérea en condiciones nocturnas para determinar los colores óptimos que atrajo azúcar buscando mosquitos picadores7. Las proporciones más altas de jejenes picadores fueron atraídas a la luz ultravioleta (UV) y la intensidad de la luz era importante con las luces más brillantes siendo más atractivos (figura 6). Comportamientos de búsqueda de azúcar y escape fueron accionados por 355 nm y 365 nm de longitud de onda respectivamente y los mosquitos picadores distingue entre las luces de dos colores. Con estas longitudes de onda, puede mejorar el atractivo de C. sonorensis de trampas de luz y las luces se han incorporado al azúcar insecticida trampas16.

Figure 1
Figura 1: este dibujo refleja la dimensión de la arena terrestre. La liberación punto en medio de la arena, así como puntos de accesorios LED en el ápice de cada semi-círculo son etiquetados. También es un ejemplo de una proyección cónica luz de un LED. El ángulo de visión óptimo de los LEDs es de 45° aunque el diseño de arena permite más estrechos o amplios ángulos de visión como los semicírculos limitará crossover ligero excepto en el centro de la arena. La arena terrestre tiene un perfil más bajo en comparación con la arena aérea porque los insectos no necesitan espacio para volar, que ayuda a las grabaciones de vídeo a centrarse en los insectos. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figure 2
Figura 2: la arena de ensayo luz aérea construida de acrílico transparente tiene las mismas ventajas de diseño de la arena terrestre aunque permite más espacio vertical para la evaluación de insectos de vuelo. Cuatro contenedores cuentan con LED de distintas longitudes de onda, iluminando su respectivo ápice de la hoja de trébol. Esta figura muestra el campo configurar estilo de competencia con rojo, verde, azul y luces UV. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figure 3
Figura 3: el esquema eléctrico de una fuente de alimentación 6 V DC conectados a resistencias variables (potenciómetros) que controlan la energía de cada LED (diodo electroluminoso) así que la intensidad de cada LED puede ser ajustado independientemente. Puede utilizarse también papel de densidad neutra para reducir la intensidad sin alterar las longitudes de onda emitidas. Longitud de onda y longitud de onda se ajustan mediante la selección de diferentes productos químicos para LED. Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figure 4
Figura 4: (Top) Se evaluó el movimiento de diez escarabajos de harina roja durante 5 minutos en la arena cloverleaf. Una visita fue definida tendencia hacia un color resultante en contacto con el LED. Prueba los colores eran azul (410 nm) y UV (390 380 y 360 nm). Barras de error estándar se indican y diferencias significativas son denotadas por las letras (p < 0.0001), letras diferentes indican medios significativamente diferentes. (Parte inferior) La evaluación adicional de movimiento con los colores de intensidad más baja fue similar a la anterior, pero con los colores UV (390 nm), verde (555 nm), rojo (655 nm) y amarillo (587 nm). (Figura 4 fue reimpreso de Duehl et al 2011 con permiso). Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figure 5
Figura 5: machos y hembras moscas Hessian se evaluaron para que la atracción de la foto por separado evitar factores de cofinaciación. (A-C) son de sexo femenino (D-F) y respuestas mosca son hombres. Letras diferentes indican diferencias significativas (P < 0,05), letras diferentes indican medios significativamente diferentes. (A y D) Tanto machos como hembras fueron significativamente atraídas a verde (527 nm) en comparación con el rojo (624 nm), ámbar (590 nm) y azul (472 nm). (B y E) Dentro de los espectros verdes 502-525 nm era más atractivo y (C y F) intensidad de la luz era importante. (Figura fue reimpreso de Schmid et al. 2017 con permiso.) Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Figure 6
Figura 6: (Top) Culicoides sonorensis se atrajo significativamente más a Ultravioleta luz de azul, verde o rojo. Letras diferentes indican medios significativamente diferentes (P < 0,05), letras diferentes indican medios significativamente diferentes. Comidas de azúcar fueron proporcionadas antes de cada repetición. (Parte inferior) Atracción a la intensidad de la luz se evaluó mediante movimiento de Culicoides sonorensis hacia la misma luz UV, pero en distintas intensidades (4, 8 y 12 vatios) y una luz azul (24 vatios). (Figura fue reimpreso de Snyder et al. 2016 con permiso.) Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.

Suplemento tabla 1: tabla General LED para longitudes de onda. Existen más estrechos LED las longitudes de onda; Esta lista sólo muestra amplia gamas de LED que existen en espectros de visión de los insectos. Haga clic aquí para descargar este archivo.

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Discussion

Pruebas biológicas de foto-atracción son una herramienta importante para determinar los colores óptimos de atractivo y reducir al mínimo las opciones de pruebas de campo de estos colores. Sin embargo, varios factores deben ser considerados cuando optimizar la prueba biológica para un específico incluyendo insectos: sola luz vs. experimentos luz competitivos, brillo, gama espectral óptimo, interferencia de la luz ambiente, estado de los insectos y comportamientos naturales que pueden limitar las posibles respuestas.

Mayoría de los insectos tiene algunos phototaxis, que puede ser un innato escapar mecanismo que causa el insecto hacia la luz. Esto puede comprobarse mediante una sola fuente de luz en la arena y dejando los otros tres lados oscuros. Sin embargo, una prueba competitiva tendrá cuatro luces de colores y demuestra la preferencia de color basado en la respuesta del insecto para cada luz. Los usuarios de la prueba biológica deben determinar si son pruebas para atracción de luz o luz de preferencia. La arena competitiva se puede configurar para buscar así la repulsión. Recuerde que los insectos pueden todavía no hacer una elección de color de la luz, si quedarse en la arena y no orientan hacia una luz. Estos insectos opción no deben explicarse en los resultados.

Siempre debe considerarse brillo diodo electroluminoso, y luces de la arena deben aumentar o disminuir la intensidad del mismo; por lo tanto, es importante probar el brillo de los LEDs antes de cada ensayo con un espectrómetro de la foto. Los potenciómetros son importantes para el control de la tensión de cada LED, que a su vez ajusta el brillo. Producidos comercialmente LEDs varían en respuesta de la tensión por lo que incluso dentro de un grupo de LEDs con el mismo espectro, cada LED diferentes debe ser evaluado y el potenciómetro de ajuste antes de usar. Incluso con esta densidad neutra técnica filtros son necesarios a veces para reducir la intensidad de la bombilla muy brillante. Snyder et al. (2016) 8 y Schmidt et al. (2017) 10 encontrado brillo a ser un factor significativo en midge penetrante y mosca de Hessian colecciones con las luces más brillantes que recoge insectos proporcionalmente más, aunque la longitud de onda fue el factor más importante, seguido por luminosidad.

Prueba los usuarios se beneficiarán por espectros de longitud de onda estrecha LEDs de prueba. Snyder et al. (2016) 8 encontrar C. sonorensis capaces de diferenciar entre longitudes de onda (10 nm aparte) y esto produce respuestas conductuales muy diferentes. Estrecha longitud de onda LED por lo tanto será necesario para determinar la longitud de onda óptima estrecho de luz para un comportamiento determinado.

Luz externa puede interferir con la atracción ligera. Schmidt et al. (2017) 10 encontrado moscas Hessian mucho más atraídos por colores cuando una arena oscura que durante un iluminado. Sin embargo, en un ámbito crepuscular (parcialmente iluminado), las luces trabajaban mejor. Una arena oscura bloquea 100% de la luz externa y se utiliza para probar insectos nocturnos en su entorno visual más natural. Las arenas pueden usarse luz natural para simular el entorno visual de un insecto diurno, un factor importante para asegurar la atracción bajo condiciones de captura de reales.

Aunque la atracción visual es importante, olfativo atrayentes (feromonas, kairomonas) pueden añadirse como Duehl et al. (2010) 16. esta atracción sinérgica mayor colección de trampa. Un atrayente de larga distancia puede ayudar a que personas más cerca de la fuente de luz atractiva y enormemente aumento atrapará atracción14. Por ejemplo, la feromona utilizada para atraer a los escarabajos rojos de la harina era una feromona sexual femenina. Sin embargo, pruebas diversas etapas como la fed, fecundada, recién emergidas, las, alimentos/host que buscan u otros Estados pueden ser importantes porque tienen atracciones únicas como la de mayo las distintas etapas de la historia de la vida como larvas, pupas o adultos. El entorno de captura debe considerarse también, en entornos ricos alimentos como atrayentes de olores basado en harina molinos alimenticios será menos eficaz.

Arenas pueden alterar o influir en comportamientos de insectos incluso en condiciones controladas tales como fijadas los niveles de luz, humedad y temperatura. Las áreas pequeñas o aberturas pueden ser restrictivas a los movimientos naturales de insectos. Por ejemplo, en un ensayo tarsalis Culex mosquitos no entraron las aberturas estrechas en las jaulas de colección (LW Cohnstaedt, observación personal) y moscas domésticas no entrarían en las zonas oscuras11. En algunos casos, éstos pueden superarse usando papel pegajoso y captura de los insectos que van cerca de las luces pero no entrará en jaulas o grabar los comportamientos de insectos. Por lo tanto, los resultados de bioensayos de laboratorio necesitan ser confirmado con pruebas de campo.

La luz de prueba y protocolo descrito son únicos porque pueden ser adaptados a cualquier especie de insectos terrestre o aéreo. Las arenas diseño cuentas para actividad alta y baja actividad insectos (la forma del cloverleaf) y las luces son flexibles para varios ensayos competitivos y no competitivos. Por último este método puede también acomodar más cualquier rasgo de la historia de vida (tales como hambre, azúcar/host buscando, etapa de la historia de la vida, etcetera.). Estas razones ayudan a hacer esta prueba luz un protocolo universal y flexible para un mínimo tiempo o dinero invertido.

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Disclosures

Ninguno

Acknowledgements

Ninguno

Materials

Name Company Catalog Number Comments
metal flashing material
#10 stainless steel machine screw Stock
#10 stainless steel locking nut Stock
5 mm LED holder Radio Shack Corp 276-080
matte black spray paint Stock
Fluon Stock
molded polyacrylic
screw top Nalgene Thermo Fisher Scientific Nunc polymethylpentene 125 mL, 64 mm outer diameter, 74 mm height
Threaded Teflon pipes Stock 15 mm diameter, 60 mm length
StellarNet light spectrometer Stellar Net, Inc BLACK Comet C-SR-25
LED infrared light source Tracksys LTD
infrared video camera Panasonic Corp WV-BP330 Panasonic CCTV camera
MEDIACRUISE software Canopus Corp

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References

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