Author Produced

ניהול פשוטה ויעילה והדמיה של Microparticles במערכת הדם של דגים קטנים באמצעות הזרקת כליות

Biology

Your institution must subscribe to JoVE's Biology section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

מאמר זה מדגים את העקרונות של זריקה מהירה, פולשנית של פלורסנט microparticles את circulatory system של דגים קטנים, הפריט החזותי ויוו של microparticles בדם דגים.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Borvinskaya, E., Gurkov, A., Shchapova, E., Karnaukhov, D., Sadovoy, A., Meglinski, I., Timofeyev, M. Simple and Effective Administration and Visualization of Microparticles in the Circulatory System of Small Fishes Using Kidney Injection. J. Vis. Exp. (136), e57491, doi:10.3791/57491 (2018).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

המינהל מערכתית של חלקיקים בגודל מיקרו לתוך אורגניזם יכול להיות מיושם להערכת ויזואליזציה, סמים, משלוח חיסון, ההשתלה של תאים הטרנסגניים וחיישנים אופטי זעיר. עם זאת, microinjections תוך ורידי לתוך חיות קטנות, אשר משמשים בעיקר במעבדות ביולוגי, וטרינרית, קשה מאוד, דורשת צוות מיומן. במסמך זה, נדגים שיטה חזקה ויעילה המבוא של microparticles לתוך מערכת הדם של דג זברה למבוגרים (רזבורה rerio) על ידי זריקה לתוך הכליה דגים. כדי להמחיש את microparticles הציג ב להערכת, אנו מציעים טכניקה פשוטה הדמיה intravital ב זימים של דג. In vivo ניטור pH הדם דג זברה הושג באמצעות פלורסנט microencapsulated מוזרק בדיקה, SNARF-1, כדי להדגים את אחד היישומים האפשריים של הטכניקה המתוארת. מאמר זה מספק תיאור מפורט העטיפה של pH רגיש צבע ומדגים את עקרונות הזריקה מהירה והדמיה של מהמיקרו קפסולות שהושג ויוו הקלטה של האות פלורסנט. השיטה המוצעת של הזרקת מאופיין על ידי שיעור התמותה נמוכה (0-20%) ואת יעילות גבוהה (70-90% הצלחה), וזה קל של מכון התקנים באמצעות ציוד זמין נפוץ. ניתן לבצע בכל ההליכים המתוארים במינים אחרים של דגים קטנים, כגון דגים ו- medaka.

Introduction

המינהל של חלקיקים בגודל מיקרו לתוך אורגניזם בעל חיים הינה משימה חשובה בתחומים כמו סמים, חיסון משלוח1, להערכת ויזואליזציה2, תא הטרנסגניים השרשה3וחיישן אופטי זעיר השרשה 4 , 5. עם זאת, הליך ההשתלה microscale חלקיקים לתוך מערכת כלי הדם של חיות מעבדה קטנה קשה, במיוחד עבור אורגניזמים ימיים עדין. עבור דגימות מחקר פופולרי כמו דג זברה, מומלץ כי הליכים אלה מובהר, שימוש בפרוטוקולי הוידאו.

Microinjections intracardiac, נימי דורשים צוות מיומן ומתקני למיקרו ייחודי למסירה של microobjects לדם דג זברה. בעבר, הזרקת ידנית רטרו-מסלולית3 הוצע כמו שיטת קלה ויעילה לניהול התוכן של תאים שלמים. עם זאת, מניסיוננו, בגלל שטח קטן של הרשת נימי העין, זה לוקח הרבה ניסיון כדי להשיג את התוצאה הרצויה של טכניקה זו.

במסמך זה, אנו מתארים שיטה חזקה ויעילה microparticle השרשה לתוך מערכת הדם על ידי זריקה ידנית ישירות לתוך רקמת הכליה של דג זברה בוגרת, אשר הוא עשיר נימים וכלי כליות. טכניקה זו מבוססת על פרוטוקול וידאו עבור השתלת תא לתוך הכליה דג זברה6, אך השלבים המיקרוכירורגית טראומטי ולגזול חוסלו. השיטה המוצעת מאופיין התמותה נמוכה (0-20%) ואת יעילות גבוהה (70-90% הצלחה), וזה קל של מכון התקנים באמצעות ציוד זמין נפוץ.

חלק חשוב של הפרוטוקול המוצע הוא החזיית מושתל microparticles (אם הם נמצאים פלורסנט או ולצבוע אותם) הנימים גיל, מה שמאפשר עבור האימות של איכות הזרקה, הערכה יחסית קשה של מספר חלקיקים מוזרק, זיהוי האות ספקטרלי מדידות פיזיולוגיות ישירות מתוך במחזור הדם. כדוגמה היישומים האפשריים של הטכניקה המתוארת, נדגים את פרוטוקול ויוו מדידות של דג זברה החומציות בדם באמצעות בדיקה פלורסנט microencapsulated, SNARF-1, Borvinskaya שהוצע במקור ב et al. 20175.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

כל ההליכים ניסיוני נערכו בהתאם להנחיית האיחוד האירופי 2010/63/האיחוד האירופי על ניסויים בבעלי חיים, אושרו על ידי החיה נושאים מחקר הוועדה של המכון לביולוגיה באוניברסיטת אירקוטסק.

1. ייצור של מהמיקרו קפסולות

הערה: נושא של הפלורסנט מהמיקרו קפסולות מוכנות תוך שימוש אסיפה שכבה אחרי שכבה של הפוך טעונה polyelectrolytes7,8. כל ההליכים בוצעו בטמפרטורת החדר.

  1. לסנתז נקבובי microcores3 של קאקו, תוחמת את הפלורסנט, מערבבים 2 מ"ל של הפתרון SNARF-1-לתוספי (רוב פולימר מכורך הפלורסנט כגון FITC-BSA יכול לשמש)-ריכוז של ~ 2 מ"ג/מ"ל עם 0.6 מ"ל כל אחד הפתרונות 1 מול/ליטר של CaCl2 ו-2CO נה3 תחת ערבוב מהיר.
    הערה: שימו לב שהיא התכוונה שונים של צבעי פלורסנט כדי photobleaching; אם בדיקה פלורסנט רגישים לאור (כמו SNARF-1), מניפולציה ואת אחסון של microparticles חייב להתבצע עם כמו אור קטן ככל האפשר.
  2. לאחר 5-10 s של עצבנות, להעביר את המתלים צינורות microcentrifuge 2 מ"ל, צנטריפוגה 15 s ב 10,000-12,000 g כדי הצניפה קאקו3 microcores.
  3. למחוק את תגובת שיקוע, לשטוף את הליבות עם ~ 2 מ ל מים יונים, resuspend בגדר ע י ניעור.
  4. חזור על הפעולות צנטריפוגה-כביסה שלוש פעמים בסך הכל. לאחר צנטריפוגה אחרון, להשליך את תגובת שיקוע.
  5. דגירה של microcores עבור 1 דקות באמבט אולטראסוני כדי להפחית את מצבור שלהם.
    התראה: אל תשכחו להגן על האוזניים עם אוזניות.
  6. להפקיד את השכבה הראשונה פולימריים על התבניות, resuspend הליבות ב ~ 2 מ"ל של פתרון 4 מ"ג/מ"ל של poly(allylamine hydrochloride) (הפה) 1 מול/ליטר NaCl.
    1. שמור microcores את הפתרון עבור ~ 5 דקות עם טלטול מתמיד.
    2. לאחר 15 s של צנטריפוגה, למחוק את תגובת שיקוע עם הפה לא מאוגד. לשטוף את microcores מכוסה עם מים יונים לפחות 3 פעמים באמצעות צנטריפוגה מרובים ושטיפת צעדים. לאחר צנטריפוגה אחרון, להשליך את תגובת שיקוע.
    3. דגירה של microcores עבור 1 דקות באמבט אולטראסוני כדי להפחית את מצבור שלהם.
      הערה: אם יישומי הפלורסנט cationic, להתחיל פוליפוני (נתרן 4-styrenesulfonate) (PSS) 1 מול/ליטר NaCl (ראה שלב 1.7).
  7. חזור על שלב 1.6 עם ~ 2 מ"ל של פתרון 4 מ"ג/מ"ל של PSS (גם המכיל mol 1/L NaCl) להפקיד את השכבה השנייה פולימריים על התבניות.
  8. חזור על שלבים 6 פעמים 1.6 ל- 1.7 להפקיד 12 שכבות פולימריים.
    הערה: לא מומלץ לקחת הפסקה ארוכה (~ 12 שעות או יותר) במסגרת ההליך עד ~ 3-5 שכבות נצברים קאקו microcores3 ללא כיסוי עשוי נוטים recrystallize. שים לב PSS כיסוי גורם צבירה גבוה יותר של microcores, הפסקה ארוכה, מומלץ שרק כאשר הפה או פולי-L-ליזין הושתל עם פוליאתילן גליקול (PLL-g-PEG) היא השכבה החיצוני ביותר.
  9. דגירה של microcores מקורה ב- 2 מ"ג/מ"ל של PLL-g-יתד (~ 1 מ"ל לכל microtube) כבר לפחות שעתיים.
    1. לשטוף את microcores עם מים בעזרת צנטריפוגה רציפים והשלבים resuspension. לאחר צנטריפוגה אחרון, להשליך את תגובת שיקוע.
  10. כדי להשיג מהמיקרו קפסולות חלול, מתמוסס התבניות3 קאקו על-ידי הוספת 2 מ של 0.1 מול/ליטר ethylenediaminetetraacetic חומצה (EDTA) פתרון (מותאם pH 7.1 עם NaOH) microcores מקורה.
    1. לאחר ~ 5 דקות של דגירה, centrifuge מהמיקרו קפסולות עבור 45 s ו להשליך תגובת שיקוע עם EDTA.
    2. חזור על שלבים 1.10-1.10.1 פעמיים.
  11. לשטוף מהמיקרו קפסולות עם 0.9% NaCl 3 פעמים באמצעות צנטריפוגה מספר צעדים בתוך 45 s ולאחריה שטיפה צעדים. לאחר השלב האחרון צנטריפוגה, למחוק את תגובת שיקוע.
    הערה: הפתרון הסופי microcapsule להזרקה חייב להישמר סטרילי (לדוגמה על-ידי הוספת אמפיצילין, 0.1 מ"ג/מ"ל), התקשורת. לא מסתיימים מושא החקירה (מול מדיה עם חומציות ניטראלית).
  12. מעריכים את ריכוז מהמיקרו קפסולות מוכן ב hemocytometer תחת מיקרוסקופ זריחה. בסדרת תמונות של מהמיקרו קפסולות, למדוד את הקוטר על מאה מהמיקרו קפסולות באמצעות תוכנה9 או שווה ערך ImageJ, ולחקור את התפלגות גודל באמצעות היסטוגרמה.
  13. חנות שהושג אנקפסולציה בדיקה בחושך.
    הערה: לאחר מספר כביסות סטרילי 0.9% NaCl, מהמיקרו קפסולות ניתן לאחסן במשך חודשים-4 מעלות צלזיוס. לא מומלץ ייבוש מוחלט של מהמיקרו קפסולות במהלך האחסון.

2. הכנת ההתקנה אופטי וכיול של SNARF Microencapsulated-1

הערה: מדידות pH קשה עם SNARF microencapsulated-1 יכול להתבצע באמצעות תמונות בשני ערוצים של מיקרוסקופ פלואורסצנטי7, אך ב פרוטוקול זה מיקרוסקופ פלואורסצנטי ערוץ אחד מחובר ספקטרומטר סיבים היה מוחל.

  1. מקום קבוצת זריחה מסננים כדי מיקרוסקופ פלואורסצנטי לפי מאפייני הפלורסנט להחיל הנדרש והפעל את נורה פלואורסצנטית.
    1. למשוך את הידית עיניות.
      התראה: עודף אור יכול להזיק המטריקס ספקטרומטר. לפיכך, ודא כי המנוף הוא במצב "עינית" כאשר ספקטרומטר אינו בשימוש.
    2. חבר קצה אחד של סיבים אופטיים של ספקטרומטר ואת הקצה השני קולימטור. באמצעות מתאמי, מקם את קולימטור המוקד של הצינור מצלמה או אחרים היציאות הזמינות של מיקרוסקופ פלואורסצנטי.
    3. הפעל את ספקטרומטר. הפעל את תוכנית בקרה ספקטרומטר ולהתכונן ספקטרומטר את המידות.
  2. לצורך כיול של אצוות microcapsule, מקום ~ 5 µL של ההשעיה microcapsule (~ 10 000 מהמיקרו קפסולות לכל µL במים יונים) בשקופית מיקרוסקופ, יבש הירידה במקום חשוך (לדוגמה, בתרמוסטט-35 ° C).
    1. כדי לכייל את מאפייני ספקטרלי של microencapsulated SNARF-1, השתמש סדרה של מאגרי בערכי pH שונים בטווח ~ 6-9. זרוק ~ 10 µL של מאגר על גבי מהמיקרו קפסולות מיובשים עם SNARF-1-לתוספי, לכסות את זה עם coverslip.
    2. מקם את השקופית זכוכית על הבמה מיקרוסקופ. אתר מהמיקרו קפסולות באמצעות יעד 40 ×.
    3. לפנות את ידית מיקרוסקופ יציאת המצלמה. הירשם פלורסצנטיות שלהם עם ספקטרומטר. להפוך את הידית בחזרה אל עיניות.
      הערה: ודא כי האות ספקטרלי הוא הרבה מעבר לרמת הרקע ולהבטיח כי מהמיקרו קפסולות של שדה הראייה אינם בבועה (על-ידי המעבר הגדלה נמוכה במידת הצורך). הימנע תאורה ממושך של אותו מהמיקרו קפסולות. SNARF-1 הוא רגיש photobleaching.
    4. חזור על צעד 2.2.3 10 - 15 פעמים מהמיקרו קפסולות שונות.
  3. לחשב את יחס שיא קרינה פלואורסצנטית (לדוגמה, שימוש R או Scilab) עבור כל ספקטרום רשום ולקבוע קו הרגרסיה בין יחס החציוני (עבור כל מאגר) בינוני pH באמצעות הנוסחה הבאה:
    Equation 1
    הערה: SNARF-1 יש קשת עם שתי הפסגות התואם פליטת לצבוע protonated ו- deprotonated, היחס בין הפסגות מגיבים ה-pH של המדיום. במחקר זה, משמש היחס בין עוצמת קרינה פלואורסצנטית עבור 605, 660 ננומטר. אורכי גל אלה נבחרו בהתאם לקבוצת מסנן בשימוש. ו- b הם המקדמים שייקבעו ע י רגרסיה ליניארי (לדוגמה, שימוש R). הערכים 0.15 ו- 1.1 הם, בהתאמה, ערכי המינימום והמקסימום של אני605/I660 נצפתה במהלך הכיול.
  4. לאסוף 10 µL של דם דגים כ 5 חיות למבוגרים. המקום דגים לתוך צלחת פטרי עם µL 1/מ"ל מים השעיה של שמן ציפורן על הרדמה ולחכות עד החיה מסתובב על צידה, מפסיק להגיב קמצוצים הסנפיר (בדרך כלל ~ 2-3 דקות). להעביר את הדג על משטח זכוכית. לנתק את הזנב דגים עם אזמל מנתחים ולאסוף כ 2 µL של דם דגים מן הווריד של הזנב.
    הערה: כדי למנוע קרישת הדם, לטיפול החתך עם הפרין (5000 U/mL) ולהשתמש נימים זכוכית heparinized וצינורות microcentrifuge כדי לאסוף את הדם.
    1. לטפטף בערך 10 µL של דם עם פיפטה אל קצה microelectrode ולקבוע את ה-pH באמצעות מד pH.
    2. זרוק את הדם לשקופית עם מהמיקרו קפסולות מיובשים ולרשום את היחס של עוצמת קרינה פלואורסצנטית כמתואר על המאגרים כיול (שלבים 2.2-2.3).
  5. התאם את מקדם ליניארי של עקומת כיול כדי להפוך את עקומת להתאים את המידות בדם דגים (עבור פרטים נוספים ראה Borvinskaya et al. . 20175).

3. הכנה הזרקה

  1. שחרר את המחט פלדה מהקצה של עט אינסולין (או מזרק) על-ידי הסרת הפלסטיק עם אזמל מנתחים חדה.
    הערה: כל מחט דקה (Ø0.33 מ מ או פחות) או יכול להיות מוכנים נימי זכוכית (בדרך כלל Ø1 מ"מ) microinjection10,11.
  2. להכניס את המחט בחצי הדרך microcapillary זכוכית; במהירות ובעדינות הלחמה אותו באמצעות מבער גז.
  3. לחבר את microcapillary זכוכית microinjector ולא לשטוף את זה עם מים סטריליים שלוש פעמים. ודא כי הנוזל זורם דרך המחט.
  4. למלא את המערכת עם מים מזוקקים.
    הערה: ודא כי קיימים אין בועות בתוך המערכת.

4. הזרקה

  1. Resuspend על השעיית מהמיקרו קפסולות מוכן (סטרילי 0.9% NaCl או לכל מדיה אחרת המשמשים הזריקות, עם ריכוז של 0.5 ל 6 מיליון פרצת לכל microliter) באמצעות האמבט קולי עבור 1 דקות.
    הערה: מאז מהמיקרו קפסולות נוטים לזרז, במהלך הזריקה הבאה, לנער את המבחנה עם מהמיקרו קפסולות מכנית (באמצעות רוטור) או באופן ידני כל כמה דקות כדי resuspend אותם ולמנוע צבירת שלהם.
  2. מניחים את הדג לתוך צלחת פטרי עם הרדמה (0.1 מ"ל/ליטר של שמן ציפורן מושעה במים) עבור ~ 2-3 דק. חכה עד הדגים מסתובב על צידה, מפסיק להגיב קמצוץ אור של הסנפיר.
  3. בעזרת כפית, להעביר את הדג מהאגף ההרדמה ומניחים בעדינות אותו על ספוג לח במצב לרוחב עם הראש לכיוון השמאל (עבור אדם ימני) או לכיוון ימין (לאדם שמאלי).
  4. לפני הזריקה, למצוץ 1-2 מ מ של אוויר לתוך כוס נימי קשור microinjector. אז, לעזאזל עם µL כ- 2 של מהמיקרו קפסולות התפזרו.
    הערה: לפני הזריקה, הפתרון microcapsule חייב להיות מותאם לטמפרטורה שבה נשמרים הדג.
  5. בעדינות לייצב את הגוף של הדג על הספוג ביד האחרת.
    1. למצוא את קו הצד של הדג. נפשית בחר מקטע המרחיבה operculum לסופו של חלל הבטן. למצוא את האמצע של קטע זה. לשים את המחט 1 מ מ נמוך יותר כיוון הגחון.
    2. עם תנועה מגרד, להניע בעדינות הדג קשקשים הצידה, וגם לעשות נקב. הכנס את המחט לתוך הגוף בזווית של 45 מעלות על פני השטח בטבלה.
    3. דחוף את המחט לכיוון עמוד השדרה עד שתוצב בקפידה נגד זה.
    4. שחרור כ 1 µL של ההשעיה של מהמיקרו קפסולות לתוך הכליה, לאט לאט למשוך את המחט.
      הערה: כדי למצוא את החדירה נכונה בקלות רבה יותר, שימושי לאימון מציאת עורק הכליה על ידי transilluminating הדגים באמצעות אור למטה, כפי שמוצג 2A ו- 2B.
  6. לשטוף את הדג מהראש אל הזנב עם זרם מים כדי להסיר כל מהמיקרו קפסולות שנשפך באתר הזרקת.

5. להדמיה in Vivo

  1. להשתמש את המספריים לנתיחה כדי להסיר את מכסה הזימים ראש דג, מערטל את הזימים של דג. שטוף הזימים עם מים.
  2. בעזרת כפית, להעביר את הדג על שקופית מיקרוסקופ, ומניחים אותו על השלב של מיקרוסקופ פלואורסצנטי.
    הערה: ודא כי הגג של הדג לא יתייבש במהלך הליכי רצופים. כדי למנוע זאת, מדי פעם להרטיב אותן עם מים באמצעות פיפטה של פסטר (כ כל דקה 1-2).
  3. להכהות את החדר, באמצעות הגדלה נמוכה (x 10 המטרה) לבדוק הזימים למצוא מהמיקרו קפסולות פלורסנט.
    הערה: כאשר ההליך משמשת היכרות ראשונית של כמה חלקיקים פלורסנט לתוך מערכת הדם דגים, מומלץ לבחון זימים של כמה אנשים עבור חלקיקים פלורסנט לא צפוי לפני זריקות. זימים של פראי-סוג דג זברה autofluorescence, אך במקרים מסוימים חלקיקים פלורסנט ספורדי (כמו חתיכות אוכל או אנחנו חיים איתם בסמביוזה חד־תאיות) עשוי להיות נוכח על הזימים. אם יש צורך, חלקיקים כאלה ניתן לזהות המבוססת על צורתם ספציפי (לדוגמה, חתיכות אוכל יש צורה לא סדירה, בניגוד מהמיקרו קפסולות כדורית) או ספקטרום קרינה פלואורסצנטית (קרי, צבע).
    1. לעבור את העדשה גבוה יותר בסולם ריכטר (המטרה × 40), והצב את microcapsule או קבוצת מהמיקרו קפסולות במרכז שדה הראייה.
    2. לפנות את הידית היציאה עם ספקטרומטר מחוברים. להקליט את האות ספקטרלי.
    3. להפוך את הידית בחזרה אל העינית.
    4. חזור על המדידות מספר פעמים מהמיקרו קפסולות שונות.
  4. להעביר את הדגים באקווריום עם אוורור נאות להתאוששות.
    הערה: עם אימון מינימלי, זה אפשרי לבצע את ההזרקה ושידור הקלטת בשיעור מקורב של 2-3 דקות לכל דג. ניתן לחזור על המדידה עבור אחד מספר פעמים בודדות עם השימוש במינון נמוך, לא מזיק חוזרות ונשנות של הרדמה או שיטה אחרת של קיבעון. להשגחה לטווח ארוך, להשתמש במערכת עם הרדמה רציפה12.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

התוצאות שהושג בא מאחד לשלוש קטגוריות עיקריות של פרוטוקול שהוצגו: היווצרות של פלורסנט microparticles על ידי ומגעים צבע פלורסנט (איור 1), הזרקה כליות של מהמיקרו קפסולות עם עוד יותר את הפריט החזותי גיל נימים (איור 2 ו 3) וההקלטה, בסופו של דבר, אין ויוו ספקטרלי של קרינה פלואורסצנטית SNARF-1 כדי לפקח על דם רמות ה-pH (איור 4).

הגישה שכבה אחרי שכבה באמצעות ציפוי של הליבות תבנית קאקו3 תוחמת את צבען שכבות מרובות של הפוך טעונה פולימרים (הפה ו- PSS), שכבת החיצוני ביותר של פולימר מסתיימים (PLL-g-PEG) היא שיטה פשוטה וחסכונית המאפשר לתמצת שונה פלורסנט הגששים כגון SNARF-1-לתוספי, FITC-BSA או אחרים (איור 1 א'). כתוצאה מכך, חלול מהמיקרו קפסולות של מיקרומטר בגודל ובהפגזות אלסטי חדיר למחצה יציב ועם מדים הפלורסנט מתקבלים (איור 1B). מהמיקרו קפסולות מפוברק על ידי טכניקה זו הם בדרך כלל לא אחידה, עם התפלגות נורמלית של גודל החלקיקים וגודל החציוני האופייני בכל אצווה (איור 1С).

Figure 1
איור 1 : שכבה-מאת סינתזה ואפיון של polyelectrolyte חלול מהמיקרו קפסולות עמוסה הפלורסנט. (א) ערכה של אסיפה מהמיקרו קפסולות (להסיק ערכה דומה שפורסם Gurkov. ואח 20164). (B) תמונה של מהמיקרו קפסולות חלול עמוסה הפלורסנט FITC-BSA. (ג) גודל אפיון צרור מהמיקרו קפסולות של איור 1B. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת. 

ההשתלה microparticle עמיד ויעיל לתוך מערכת הדם של דגים קטנים יכול להתבצע על ידי זריקה ידנית ישירות לתוך הכליה דגים. הניקוב באתר נאות של הגוף דגים (עורק הכליה) חיונית אספקה מהירה של microparticles על ידי זריקה ידנית. הכליה דגים הוא איבר hematopoietic ומכיל פיגמנט melanophores, לכן זה טוב צבעוניות. כי זה חבויה בין לשכות השלפוחית שקופה, קל לזהות את האיבר של החיה ללא פגע עם פיגמנטציה חלש או על-ידי transillumination של דגים קטנים באמצעות מקור אור למטה, כפי שמוצג באיור 2A ו- 2B.

Figure 2
איור 2 : לוקליזציה של אתר המתאים להזרקה כליות. (א) טרנס-תאורה של דג זברה מדגים הלוקליזציה של עורק הכליה (חץ). (B) הערכה מדגים כיצד לזהות החדירה נאותה. קו מנוקד לבן מציין את קו הצד של המקטע בטן של הדג. החץ מצביע על האתר לנקב, לכיוון הנכון של הזרקת לכיוון עמוד השדרה. השלפוחית המיועד לפי הקו הירוק. (ג) ויזואליזציה של דג זברה בכליות בעקבות הסרת איברים והקיר הגוף. חץ מצביע על הבליטה המרכזי של עורק הכליה. (ד) קטע היסטולוגית הווריד rerio ד ממחיש את האנטומיה כללי של האיברים הפנימיים של הדג למבוגרים (צביעת המטוקסילין -אאוזין). Micrograph (E) של כליה דגים (מנוקד) מדורגים מ (D) עם חץ המצביע לומן של הווריד מונה האחורי. הכוכביות מציינות את השלפוחית. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.

כדי לבדוק את ההצלחה של הפרוצדורה הזרקה, בדיקה חזותית מהירה של הגג בהגדלה נמוכה (x10-20 המטרה) צריכה להיעשות לאחר חיתוך את מכסה הזימים של דגים (איור 3 א). למרות רוב מהמיקרו קפסולות שנותרו במקום ההזרקה או לשפוך לתוך חלל הגוף (איור 3B), אם ההזרקה מתבצעת כראוי, זה ניתן לצפות מהמיקרו קפסולות ניאון הצפה בחופשיות בתוך הנימים גיל זימים של דג חשופה, מיד לאחר ההזרקה (איור 3C). אם אין חלקיקי פלורסנט מזוהים ב הזימים, זה אפשרי לחזור על פעולת ההזרקה של פצע זהה. מסירה מוצלחת למחזור הדם צריכה להתקבל כ- 70-90% של הדג מוזרק הכולל.

Figure 3
איור 3 : כליות הזרקה של מהמיקרו קפסולות עם עוד יותר את הפריט החזותי גיל נימים. (א) התכנית הכללית של המשלוח של microcapsule לדם דג זברה. (B) פלורסנט תמונה של דג לאחר ההזרקה של מהמיקרו קפסולות עם ירוק צבע FITC-BSA (החדירה מסומן על ידי חץ). (ג) את התמונה הזו של הזימים של דגים, קנה המידה של (B), מדגים שילוח מוצלח של מהמיקרו קפסולות בזריקה כליות (זימים של פראי-סוג דג זברה יש אין autofluorescence). אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת. 

במהלך הזריקה ישירות לתוך הדג עורק הכליה, שטפי דם נרחב בדרך כלל טפסים מתחת החדירה, המעידים על נזקים הנימים parenchyma או כלי כליות. יש זליגת דם אל מחוץ לגוף מכיוון הניקוב מופיע להתכווץ במהירות. למרות דימום פנימי, אנשים עדיין יכול לשחזר כ 80-90% לשרוד ההליך (טבלה 1). זה ידוע גם כי זני דגים יכול להתחדש nephrons de novo לאחר פציעה13,14. אם יותר מ 20% של דגים מתים, אחד עליך להבטיח ההרדמה מבוצעת כהלכה.

כמוס הפלורסנט n ריכוז, פרצת לכל µL הזרקת נפח, µL קוטר ממוצע של מהמיקרו קפסולות, מיקרומטר מסירה מוצלחת למחזור דגים, % התמותה לאחר ההזרקה, %
1 h יום 1
הזרקה לתוך עורק הכליה
FITC-BSA 36 4 x 106 1.6 2.7 94 8 3
SNARF-1-לתוספי 29 3-6 x 105 1-2 5.1 72 7 12
RITC-לתוספי 20 6 x 106 2 2.0 70 0 0
0.9% NaCl 41 - 1-2 - - 5 0
הזרקת רטרו-מסלולית
FITC-BSA 9 עונה 1 פרק 105 2 4.2 11 22 0
RITC-לתוספי 11 6 x 106 1 2.0 9 18 0

טבלה 1. הבטיחות והיעילות של מסירת מהמיקרו קפסולות לדם דג זברה. להצלחת ההליך נקבעת על ידי הנוכחות של החומרים פלורסנט הנימים גיל דגים.

אם ריכוז microparticles מוזרק אינה מספיקה, מעט מדי חלקיקים ייתכן לרשות ניתן לאבחן במהירות ב זימים של דג. במקביל, השעיה עם ריכוז גבוה מדי יכולים להיסתם את המחט. במקרה של שכבה אחרי שכבה שהורכב מהמיקרו קפסולות עם חציון קוטר ~ 2-5 מיקרומטר, ריכוז של 4 * 105-6 * 106 פרצת לכל µL היא אופטימלית עבור זיהוי מאמץ זימים של דג לאחר ההזרקה לתוך הכליה דגים (טבלה 2).

ריכוז, פרצת לכל µL מספר מהמיקרו קפסולות במיקרוסקופ שדה מבט (המטרה × 20) ב הזימים של אנשים שונים (n = 7 לפי ריכוז)
4 x 106 > 100 > 100 0 > 100 ≈ 70 ≈ 50 > 100
4 x 105 ≈ 10 ≈ 20 0 0 ≈ 20 ≈ 40 ≈ 15
4 x 104 0 3 0 0 0 0 4
4 x 103 0 0 0 0 0 0 0

בטבלה 2. שיא של ספירת חזותי FITC-BSA-המכיל מהמיקרו קפסולות ב ד rerio זימים לאחר הזרקה (1.6 µL) לתוך עורק הכליה.

השיטה המוצעת של ההשרשה של microparticles לתוך מערכת הדם דגים יכול להיות מיושם עבור ויוו ניטור של דג זברה החומציות בדם על ידי בדיקה פלורסנט microencapsulated, SNARF-1 (איור 4). SNARF-1 יש קשת עם שתי הפסגות התואם פליטת לצבוע protonated ו- deprotonated (איור 4A), ובכך הכיול עקומות של היחס בין הפסגות ב- pH שונים של המדיה יכולים להיות מותווים (איור 4B). מרכיבי הדם השפעה מדידה במארז SNARF-1 (איור 4B), אשר ניתן להעריך השפעול על ידי מדידה סימולטני של החומציות בדם על ידי מהמיקרו קפסולות ו pH-מטר עם microelectrode זכוכית. עקומת כיול בשם עבור מהמיקרו קפסולות בדם דג זברה יש להתוות על ידי הסטה עיקול של המאגרים על ידי המקדם שווה להפרש pH שנמדד בניסוי (ראה Borvinskaya et al. . 20175 לפרטים).

החומציות בדם בדג זברה גיל נימים נשאר יציב במהלך לפחות מספר שעות לאחר ההזרקה של מהמיקרו קפסולות (איור 4C). במקביל, חשיפה hypercapnic קצר מוביל ירידה משמעותית מבחינה סטטיסטית של החומציות בדם, אשר מדגים את הישימות של השיטה עבור ויוו מחקר על דגים קטנים.

Figure 4
איור 4 : נציג דוגמה ניטור מדם דג זברה РН על-ידי רישום של ספקטרום קרינה פלואורסצנטית של צבע microencapsulated SNARF-1- (א) ספקטרום של מהמיקרו קפסולות מוכן עמוסה SNARF-1 במאגרי סודיום פוספט ב- pH שונים. (B) עקומות כיול של מוכן pH רגיש מהמיקרו קפסולות במאגרי סודיום פוספט, בדם דג זברה שחולצו. עבור כל המדידות, מתואר הממוצע ± סטיית התקן. (ג) דוגמה מייצגת של ויוו פיקוח על דג זברה דם рН על ידי שעברו אנקפסולציה הפלורסנט SNARF-1 בדג זברה גיל נימים. בתנאי בקרה, החומציות בדם נשאר יציב במהלך 4 שעות לאחר ההזרקה של מהמיקרו קפסולות, בעוד 5 דקות חשיפה מתחת hypercapnia חמורה (900-1000 מ ג/ליטר של CO מומס2) גורם לחומצי דם דגים. הכוכבית מציינת הבדל משמעותי סטטיסטית מקבוצת הבקרה מקבילים עם p < 0.01 (מבחן מאן-ויטני U). אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של הדמות הזאת.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

כדי להדגים את הזריקה של microparticles לתוך הכליה דג זברה, השתמשנו חדיר למחצה מהמיקרו קפסולות עמוסה של אינדקטור. כך, הפרוטוקול מכיל הוראות להרכבת מהמיקרו קפסולות באמצעות מכלול שכבה אחרי שכבה טעונה הפוך polyelectrolytes7,8,15,16,17 ,18 (איור 1 א'). היתרון בטכנולוגיה זו הוא כי זה קל לבצע עם ציוד מעבדה זמינים. בהתאם לתנאים תרכובות בשימוש, מהמיקרו קפסולות מפוברק יכול לנוע מ- 0.5 מיקרומטר 100 עם מעטפת polyelectrolyte ננומטר בעובי15. הפרמטרים סינתזה המתוארת בעלון זה כתב היד כתוצאה מהמיקרו קפסולות אלסטי המורכב 12 שכבות (בנוסף מסתיימים בשכבה) של פולימרים כ- 2-6 µm גודל (איור 1B וג 1). הצעד החשוב ביותר בקביעת גודל מהמיקרו קפסולות הוא היווצרות של microcores התבנית. תהליך זה כרוך היווצרות ספונטנית של גבישי סידן פחמתי, לכן, החלקיקים שהושג לא אחידה. לפיכך, אפיון של התפלגות גודל microcapsule צריכה להתבצע על כל.

השלב החשוב של פרוטוקול זה הוא אופטימיזציה של מסירת microparticles לתוך מערכת הדם דג זברה ללא השימוש בטכניקות המיקרומניפולציה. הממשל של תאים שלמים בזריקה רטרו-מסלולית תוארה בעבר פרט3. עם זאת, מניסיוננו, זה לא קל עבור משתמשים טירון להשיג יעילות הזרקת מתוארת על ידי המחברים כי הסינוס רטרו-מסלולית הוא מאוד קטן, הממוקם הלוע וקשתות גיל, אשר קל לפגוע בטעות עם מחט. מאז פחות ממילימטר נדרש דיוק על הזריקות, הזרקת כראוי הוא משימה קשה למדי. חלופה לא פחות מהיר ויעיל יותר (טבלה 1) היא להחדיר ישירות לתוך parenchyma כליות דגים. במהלך ההזרקה המחט מכנית נזקים נימים כליות וכלי הדם (למשל, הווריד קרדינל האחורי הגדול), המאפשר כניסה של microparticles לתוך מערכת הדם (איור 2E). לבסוף, הבליטה המרכזי של עורק הכליה בדג זברה למבוגרים הוא גדול מספיק (עד 2 מ מ) עבור זריקה ידנית ללא ציוד השתלה.

מיקום מתאים של המחט הזרקה חיוני לניהול מוצלח ידני. אתה יכול להתאמן למצוא עורק הכליה בבעלי חיים ללא פגע על ידי דגים transilluminating באמצעות אור למטה, כפי שמוצג באיור 2A ו- 2B. ערכת ב איור 2B מדגים כיצד לבצע כראוי את הזריקה. אם ההליך נכשל לנהל microparticles לתוך זרם הדם, הזרקת מחדש יכול להתבצע בכל פצע זהה בתוך מסגרת זמן קצר עם כמעט אין השפעה על שיעור ההישרדות של האנשים.

הזרקה לתוך עורק הכליה של דג זברה למבוגרים (נבדק גם בהצלחה על גופי למבוגרים מולי reticulata) היא שיטה יעילה מסירה microparticle למחזור הדם דגים עם התמותה בעלי חיים המותר; עם זאת, הוא לא מתאים בצורה מושלמת והתרופות האמריקני בשל הבדלים באמצעי האחסון מוזרק. נקודה חלשה של טכניקה זו היא דליפה משמעותית של הפתרון מתוך הכליה לתוך. חלל הבטן המינהל מהירה. יחד עם זאת, כמות יחסית של החומר מוזרק למחזור הדם יכול להיות בערך ההערכה בעזרת ויזואליזציה הנימים גיל (טבלה 2). אין הגבלה קפדנית של אמצעי האחסון הזרקה, אך הממשל של µL יותר 1 של ההשעיה מופיע לא יהיו אפקטיביים. הנימים זכוכית הטובים ביותר יכול להיות מיושם עבור microinjection; עם זאת, כי מספר גדול של מהמיקרו קפסולות נוטה לעורר צבירה, מומלץ השימוש של 31-29G (Ø 0.33-0.25 מ מ) פלדה מחטים כדי להימנע כפכפים ב לומן המחט.

ההצלחה של microcapsule משלוח דרך הכליה הזרקה לתוך זרם הדם צריך לפקח באמצעות הבדיקה המהירה לנוכחות של החלקיקים פלורסנט ב הזימים. זימים הם איברים נגיש עבור תצפיות ויוו . גיל הזירים רשת של נימי דם מכוסים על ידי שכבה דקה של אפיתל בדרכי הנשימה, מה שהופך intravital הדמיה של הדם לזרום ב הזימים נוח במיוחד (סוג של חלון אופטי טבעי). כדי לבצע את התצפית, ניתן לחתוך את מכסה הזימים סחוס כדי לחשוף את חוטים. ההליך זה בטוח עבור דגים, אשר יכול לחיות עם זימים חשופה במים קצף טוב ללא ירידה בתוחלת החיים. יתר על כן, הגג של דגים גדולים שניתן יהיה לבחון במיקרוסקופ פשוט על ידי דוחף את operculum החוצה דרך19. במקרה של זריקה מוצלחת, microparticles פלורסנט מופיעים מיד הזימים (איור 3). שים לב כי microparticles מושתל הם מומס במידה ניכרת עוצמת הקול במחזור הדם, ואת מספר מופחת של חלקיקים להגיע הנימים גיל, ובכך מספקת ריכוז microparticles צריך שייבחר עבור זיהוי דגים זימים לאחר זריקה לתוך הדג כליות (טבלה 2).

ההליך המוצע עבור השרשה יכול להיות מיושם במגוון רחב של מחקרים שכללו מינים שונים של דגים קטנים. למרות הטכניקה נתקל פותחה, אופטימיזציה עבור הזרקה של פלורסנט microparticles לתוך מערכת הדם, זה גם יכול להיות מיושם השרשת שאינם בצבע מיקרו/חלקיקים או מומסים חומרים; עם זאת, במקרה זה האפקטיביות של הזרקת צריך לאמת בדרך אחרת. השלבים המתוארים כיום הם אופטימליים למטרות כאלה פיזיולוגיים כמו ניטור באמצעות מיקרו אופטיים שונים - או nanosensors, ויזואליזציה של להערכת, מסירה של חיסונים או סמים על כמה מנשאים שטיחות גלוי ולאחר ההשתלה של תאים מהונדסים.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

המחברים אין לחשוף.

Acknowledgements

מחברים מאוד להכיר את העזרה של בוגדן Osadchiy, ייבגני Protasov (אוניברסיטת המדינה של אירקוטסק, רוסיה) בהכנה של פרוטוקול וידאו. מחקר זה נתמך על ידי קרן המדע הרוסי (#15-14-10008) וקרן רוסי למחקר בסיסי (#15-29-01003).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
SNARF-1-dextran, 70000 MW Thermo Fisher Scientific D3304 Fluorescent probe. Any other appropriate polymer-bound fluorescent dye can be used as a microcapsule filler
Albumin-fluorescein isothiocyanate conjugate (FITC-BSA) SIGMA A9771 Fluorescent probe
Rhodamine B isothiocyanate-Dextran (RITC-dextran) SIGMA R9379 Fluorescent probe
Calcium chloride SIGMA C1016 CaCO3 templates formation
Sodium carbonate SIGMA S7795 CaCO3 templates formation
Poly(allylamine hydrochloride), MW 50000 (PAH) SIGMA 283215 Cationic polymer
Poly(sodium 4-styrenesulfonate), MW 70000 (PSS) SIGMA 243051 Anionic polymer
Poly-L-lysine [20 kDa] grafted with polyethylene glycol [5 kDa], g = 3.0 to 4.5 (PLL-g-PEG) SuSoS PLL(20)-g[3.5]-PEG(5) Final polymer to increase the biocompatibility of microcapsules
Sodium chloride SIGMA S8776 To dissolve applied polymers
Water Purification System Millipore SIMSV0000 To prepare deionized water
Magnetic stirrer Stegler For CaCO3 templates formation
Eppendorf Research plus pipette, 1000 µL Eppendorf Dosing solutions
Eppendorf Research plus pipette, 10 µL Eppendorf Dosing solutions
Pipette tips, volume range 200 to 1000 µL F.L. Medical 28093 Dosing solutions
Pipette tips, volume range 0.1-10 μL Eppendorf Z640069 Dosing solutions
Mini-centrifuge Microspin 12, High-speed BioSan For microcapsule centrifugation-washing procedure
Microcentrifuge tubes, 2 mL Eppendorf Z666513 Microcapsule synthesis and storage
Shaker Intelli-mixer RM-1L ELMY Ltd. To reduce microcapsule aggregation
Ultrasonic cleaner To reduce microcapsule aggregation
Head phones  To protect ears from ultrasound
Ethylenediaminetetraacetic acid SIGMA EDS To dissolve the CaCO3 templates
Monosodium phosphate SIGMA S9638 Preparation of pH buffers
Disodium phosphate SIGMA S9390 Preparation of pH buffers
Sodium hydroxide SIGMA S8045 To adjust the pH of the EDTA solution and buffers
Thermostat chamber To dry microcapsules on glass slide
Hemocytometer blood cell count chamber To investigate the size distribution and concentration of the prepared microcapsules
Fluorescent microscope Mikmed 2 LOMO In vivo visualization of microcapsules in fish blood
Set of fluorescent filters for SNARF-1 (should be chosen depending on the microscope model; example is provided) Chroma 79010 Visualization of microcapsules with fluorescent probes
Fiber spectrometer QE Pro Ocean Optics Calibration of microcapsules under microscope
Optical fiber QP400-2-VIS NIR, 400 μm, 2 m Ocean Optics To connect spectrometer with microscope port
Collimator F280SMA-A Thorlabs To connect spectrometer with microscope port
Glass microscope slide Fisherbrand 12-550-A3 Calibration of microcapsules under microscope
Coverslips, 22 x 22 mm Pearl MS-SLIDCV Calibration of microcapsules under microscope
Glass microcapillaries Intra MARK, 10 µL Blaubrand BR708709 To collect fish blood
Clove oil SIGMA C8392 Fish anesthesia
Lancet No 11 Apexmed international B.V. P00588 To cut the fish tail and release the steel needle from the tip of insulin autoinjector
Heparin, 5000 U/mL Calbiochem L6510-BC For treating all surfaces that come in contact with fish blood during fish blood collection
Seven 2 Go Pro pH-meter with a microelectrode Mettler Toledo To determine fish blood pH
Insulin pen needles Micro-Fine Plus, 0.25 x 5 mm Becton, Dickinson and Company For injection procedure. Any thin needle (Ø 0.33 mm or less) is appropriate
Glass capillaries, 1 x 75 mm Hirschmann Laborgeräte GmbH & Co 9201075 For injection procedure
Gas torch To solder steel needle to glass capillary
Microinjector IM-9B NARISHIGE For precise dosing of microcapsules suspension
Petri dishes, 60 mm x 15 mm, polystyrene SIGMA P5481 For manipulations with fish under anesthesia
Plastic spoon For manipulations with fish under anesthesia
Damp sponge For manipulations with fish under anesthesia
Dissection scissors Thermo Scientific 31212 To remove the gill cover from the fish head
Pasteur pipette, 3.5 mL BRAND Z331767 To moisten fish gills

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Rivas-Aravena, A., Sandino, A. M., Spencer, E. Nanoparticles and microparticles of polymers and polysaccharides to administer fish vaccines. Biol. Res. 46, (4), 407-419 (2013).
  2. Yashchenok, A. M., Jose, J., Trochet, P., Sukhorukov, G. B., Gorin, D. A. Multifunctional polyelectrolyte microcapsules as a contrast agent for photoacoustic imaging in blood. J. Biophotonics. 9, (8), 792-799 (2016).
  3. Pugach, E. K., Li, P., White, R., Zon, L. Retro-orbital injection in adult zebrafish. J. Vis. Exp. (34), e1645 (2009).
  4. Gurkov, A., Shchapova, Е, Bedulina, D., Baduev, B., Borvinskaya, E., Timofeyev, M. Remote in vivo stress assessment of aquatic animals with microencapsulated biomarkers for environmental monitoring. Sci. Rep. 6, e36427 (2016).
  5. Borvinskaya, E., Gurkov, A., Shchapova, E., Baduev, B., Shatilina, Z., Sadovoy, A., et al. Parallel in vivo monitoring of pH in gill capillaries and muscles of fishes using microencapsulated biomarkers. Biol. Open. 6, (5), 673-677 (2017).
  6. Diep, C. Q., Davidson, A. J. Transplantation of cells directly into the kidney of adult zebrafish. J. Vis. Exp. (51), e2725 (2011).
  7. Kreft, O., Javier, A. M., Sukhorukov, G. B., Parak, W. J. Polymer microcapsules as mobile local pH-sensors. J. Mater. Chem. 17, (42), 4471-4476 (2007).
  8. Sadovoy, A., Teh, C., Korzh, V., Escobar, M., Meglinski, I. Microencapsulated bio-markers for assessment of stress conditions in aquatic organisms in vivo. Laser Phys. Lett. 9, (7), 542-546 (2012).
  9. Ferreira, T., Rasband, W. S. ImageJ User Guide - Version 1.44. imagej.nih.gov/ij/docs/guide/ (2012).
  10. Poland, R. S., Bull, C., Syed, W. A., Bowers, M. S. Rodent brain microinjection to study molecular substrates of motivated behavior. J. Vis. Exp. (103), e53018 (2015).
  11. Liu, L., Duff, K. A technique for serial collection of cerebrospinal fluid from the cisterna magna in mouse. J. Vis. Exp. (21), e960 (2008).
  12. Johnston, L., Ball, R. E., Acuff, S., Gaudet, J., Sornborger, A., Lauderdale, J. D. Electrophysiological recording in the brain of intact adult zebrafish. J. Vis. Exp. (81), e51065 (2013).
  13. Gerlach, G. F., Schrader, L. N., Wingert, R. A. Dissection of the adult zebrafish kidney. J. Vis. Exp. (54), e2839 (2011).
  14. McKee, R. A., Wingert, R. A. Zebrafish renal pathology: Emerging models of acute kidney injury. Curr Pathobiol Rep. 3, (2), 171-181 (2015).
  15. Donath, E., Sukhorukov, G. B., Caruso, F., Davi, S. A., Möhwald, H. Novel hollow polymer shells by colloid-templated assembly of polyelectrolytes. Angew. Chem. Int. Ed. 37, (17), 2201-2205 (1998).
  16. Antipov, A. A., Shchukin, D., Fedutik, Y., Petrov, A. I., Sukhorukov, G. B., Möhwald, H. Carbonate microparticles for hollow polyelectrolyte capsules fabrication. Colloids Surf. A. 224, 175-183 (2003).
  17. Gaponik, N., Radtchenko, I. L., Gerstenberger, M. R., Fedutik, Y. A., Sukhorukov, G. B., Rogach, A. L. Labeling of biocompatible polymer microcapsules with near-infrared emitting nanocrystals. Nano Lett. 3, (3), 369-372 (2003).
  18. Volodkin, D. V., Larionova, N. I., Sukhorukov, G. B. Protein encapsulation via porous CaCO3 microparticles templating. Biomacromolecules. 5, (5), 1962-1972 (2004).
  19. Tzaneva, V., Perry, S. F. A Time differential staining technique coupled with full bilateral gill denervation to study ionocytes in fish. J. Vis. Exp. (97), e52548 (2015).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics