Author Produced

Çıkıntı kuvvet mikroskobu: Hücre çıkıntılar tarafından geliştirilen kuvvetleri ölçmek için bir yöntem

* These authors contributed equally
Biology

Your institution must subscribe to JoVE's Biology section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

Burada, podosomes uyumlu bir filmde filmin topografik görüntülerin otomatik Analize hazırlanması uygulamak çıkıntı kuvvetleri değerlendirmek için kullanılan Deneysel teknikler ayrıntılı.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Bouissou, A., Proag, A., Portes, M., Soldan, V., Balor, S., Thibault, C., Vieu, C., Maridonneau-Parini, I., Poincloux, R. Protrusion Force Microscopy: A Method to Quantify Forces Developed by Cell Protrusions. J. Vis. Exp. (136), e57636, doi:10.3791/57636 (2018).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Çok sayıda biyolojik bağlamlarda hayvan hücrelerinin fiziksel olarak mekanik Kuvvetleri geliştirerek onların çevre ile etkileşim gerekir. Bunlar arasında çekiş güçleri iyi karakterize olmuştur, ama teknikleri onların substrat uygun hücrelere tarafından sarf çıkıntı kuvvetler ölçümü izin veren bir eksikliği olduğunu. Biz onların yüzey üzerinde yapışık hücreleri tarafından sarf çıkıntı kuvvetleri ölçmek için deneysel bir kurulum tasarlanmıştır. Bu yüzey hücreleri uyumlu Formvar kağıt üzerinde kaplama deforme ve elde edilen topografya nanometre ölçeğinde atomik kuvvet mikroskobu (AFM) tarafından eşleştirilir. Kuvvet değerleri daha sonra protrusive hücresel yapılar geometri üzerinde dayalı deformasyon profil bir analiz ayıklanır. Bu nedenle, bir yaşam hücre bireysel çıkıntılı birimleri tarafından sarf kuvvetleri zamanla ölçülebilir. Bu teknik, kuvvet oluşturma ve çıkıntı içeren birçok hücresel süreçler, Yönetmelikte sağlayacaktır. Burada, insan makrofajlar tarafından kurulan podosomes tarafından oluşturulan protrusive kuvvetleri ölçmek için uygulama açıklar.

Introduction

Hayvan hücrelerinin fiziksel olarak matrix ve onların çevre1oluşturan diğer hücreleri ile etkileşim. Bu onlar için geçirme, cesetleri içselleştirmesi, dış bilgi edinme veya ayırt etmek gereklidir. Bu tür işlemlerde, mekanik Kuvvetleri hücre oluşturmak için gereken ve çok sayıda çalışma son yıllarda gösterdiği gibi kuvvetler oluşturmak ve çevresine yoklama için hücre yeteneği Örneğin nükleer silahların yayılmasına karşı yönlendiren biyolojik davranışını etkiler veya farklılaşma2,3. Buna karşılık, hücresel kuvvetler ölçümü kuvvet oluşturma Yönetmeliği çalışma ve onun dolaylı hücre davranış ve doku kader4,5anlamak için bir büyük yardımcısıdır.

Son yıllarda bir hücre üzerinde onun çevre6uygulamayın kuvvetleri ölçmek için yöntemlerin geliştirilmesi sayesinde çok sayıda tanık olduk. Bunların çoğunluğu onlar mobil probları veya deforme substrat çekmek gibi hücreleri sarfetmek çekiş güçleri açığa vesile olmuştur. Ancak, mekanik Kuvvetleri çıkıntı hücre dışı ortama dahil ölçüm teknikleri bir eksikliği muzdarip ve iyi değil karakterize bugüne kadar.

Bu sınırlamayı aşmak için uygun belgili tanımlık substrate sarf kuvvetleri ölçmek için bir yöntem mevcut. Bu canlı hücreler hücreleri tarafından yüzey deformasyon ölçmek ve katılan kuvvetleri anlamak mümkün hale dik yönde deforme ince bir elastik levha üzerinde kaplama oluşur. Substrat topografya atomik kuvvet mikroskobu kullanarak nano çözünürlüğü ile ölçülür ve deformasyon kuvvetlerden değerlendirilmesi protrusive hücresel yapılar7,8, geometri bilgisine dayanıyor 9.

Burada, kurulum ve uygulama podosomes, protrusive yapışma yapıları için üç boyutlu ortamlarda10,11mezenkimal onların göç makrofajlar tarafından kurulan tarafından oluşturulan kuvvetleri ölçmek için açıklamak, 12,13,14,15,16,17. Bu teknik kuvvet oluşturma ve çıkıntı içeren birçok hücresel süreçler, Yönetmelikte anlayışı peşin olacak inanıyorum.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1. Formvar kaplamalı ızgaralar hazırlanması

  1. Elektron mikroskobu ızgaralar saf aseton ile temiz ve kuru onları filtre kağıt üzerinde. Sonra temiz bir mikroskop slayt saf etanol ile objektif kağıt ile silin ve toz bir üfleyici ile kaldırın.
  2. Bir etanol temizledim cam slayt film döküm cihazın alt kısmındaki Formvar çözeltilerine içeren huni dikey olarak yerleştirin. Huni üst kapak.
  3. Düzeyi üçte ikisi slayt ulaşıncaya kadar 100 mL Formvar çözeltisi (etilen ve %0,5) atomizer ampul ile pompa.
  4. Slayt 1 dk. için çözüm unutmayın.
  5. Aygıt bir akışı Formvar çözümünde drenaj valfi açın. Bir akış hızı 10 15 mL/s 30-80 nm Formvar film ortaya çıkarır. Film kalınlığı Formvar çözüm konsantrasyonu ve drenaj oranına göre belirlenir.
    Not: Drenaj oranı tarafından havalandırma basınç yoluyla hava-out Vana Vana yavaş yavaş açarak kontrol edilebilir. Daha hızlı drenaj, kalın film. Uygulamada, film kalınlığı Formvar akış hızı düşük tahmin etmek zordur çünkü biz Formvar filmlerin birkaç toplu hazırlamak ve onların kalınlığı AFM tarafından kontrol (adım 2 bakınız).
  6. Slayt odasından kaldırın ve kibar bir şekilde herhangi bir sıvı Formvar kaldırmak için filtre kağıdına kuru.
  7. 20 mm x 50 mm dikdörtgen bir tıraş bıçağı ile Formvar filmden kesip.
  8. Bir ölçek temiz distile su ile doldurun ve yavaş yavaş slayt dikey olarak filmin yüzer suya dalma: film su yüzeyine float.
  9. Yer kuru aseton temizlenmiş ızgaralar üzerinde film, parlak ön yüz yukarıda.
  10. Yuvarlak cam coverslip (Ø 12 mm) birkaç ızgaralar yerleştirin. Bu coverslip film kalınlığı ölçmek için hizmet edecek (adım 2 bakınız).
  11. Bir mikroskop slayt sığdırmak için yeniden boyutlandırılmış bir beyaz sopa ile kapak. Bütün film için slayt bağlıdır kadar slayt dikey kayan Formvar film sınırında daldırma. Aşırı su filtre kağıdı ile slayt kaldırmak ve oda sıcaklığında gecede kurumaya bırakın.

2. Film kalınlığı ölçümü

  1. Coverslip çevresinde Formvar slayttan ayırmak için cımbız ile kesti.
  2. Coverslip altında kılavuzunun bir kalemle işaretlemek.
  3. Coverslip ayırmak için Formvar işaretli kılavuz çevresinde kesin. Bu nedenle film kalınlığı ölçmek için izin verir kalan Formvar sayfasının içinde bir delik olacak. Coverslip PBS ile kapak ve bir cam slayt mikroskop üzerinde yerleştirin.
  4. Bir silikon nitrür prensibine göre altın şerit bahar ipucu tarafından kapsanmayan emin AFM cam blok bağlama.
    Not: Duyarlılığı ve bahar sabiti prensibine göre daha önce PBS içinde kalibre varsa.
  5. Cam blok AFM modülü üzerine monte ve modül mikroskop üzerine yerleştirin.
  6. Formvar kaplı coverslip Gözlem odası yerleştirin ve PBS 500 µL ile kapağı.
  7. Formvar sayfası AFM iletişim modu ve 0.5 nN kuvvet ayar noktası olarak kullanarak delik kenarlığını inceden inceye gözden geçirmek.
  8. Cam coverslip yüzey boy ölçümleri için başvurmak ve Formvar kalınlık kesit yüksekliğini olarak değerlendirmek (Formvar toplu iş başına en az 10 ölçümleri gerçekleştirmek).

3. tohum hücreleri üzerinde ızgaralar

  1. Steril bir başlık altında bir şerit (12 mm x 3 mm) çift taraflı yapışkan bant bir coverslip koy.
  2. Formvar kaplı ızgara cımbızla ve (sadece ızgara kenarında teybe bağlı olması gerekir) yapıştırıcı şerit üzerinde ters koydu. Formvar film coverslip karşısında gereken.
  3. Bu cihaz bir kültürde de koy.
  4. Yer RPMI 104 makrofajlar içeren FCS olmadan bir 10 µL damlacık insan monosit16' dan farklı.
    Not: Formvar kaplama zarar önlemek için pipet ucu kılavuzla dokunmak emin olun.
  5. 30 dk (37 ° C, % 5 CO2) uygun hücreleri izin vermek için kuluçkaya.
  6. Kadar iyi 2 mL % 10 FCS içeren RPMI ile doldurun.
  7. Aygıt hücreleri AFM gözlem önce uygun izin için 37 ° C ve % 5 CO2 2 h için kuluçkaya.

4. Podosome kaynaklı deformasyonlar topografya ölçümleri

  1. İki katına taraflı yapışkan bant iki şeritler bir cam alt Petri kabına sadık.
    Not: İki şeritler arasındaki mesafe kılavuz çapı daha küçük olmalıdır.
  2. Dikkatle makrofajlar yapışkan bandı üzerinden ile kaplama Kılavuzu bağlantısını kesin.
  3. Izgarayı cam dış yüzey hücreleri için ters çevirmek ve Izgarayı iki yapışkan şeritleri arasında sopa.
  4. Izgarayı iki ile yeni iki katına taraflı yapışkan şeritler Düzeltme: kılavuz böylece merkezi alan kılavuz AFM ipucu için erişilebilir bırakarak iki yapışkan şeritleri arasında gözükeceksin.
    Not: ızgara tamir ve değil bükülmüş emin olun; Aksi takdirde AFM prensibine göre Formvar yüzey yaklaşmak mümkün olmayabilir.
  5. Petri kabına 10 mM HEPES (pH 7,4) ile desteklenmiş önceden ısıtılmış 37 ° C Kültür ortamının (RPMI % 10 FCS ile) 2 mL ile doldurun.
  6. Kültür tabak bir 37 ° C yemek ısıtıcı yerleştirin.
  7. Yemek ısıtıcı AFM sahne alanı'nda yükleyin.
  8. 37 ° C'de stabilize sistem izin
  9. Kişi modu bir 0.5 nN kuvvetle podosomes bulmak için bir ilk küresel görüntü olun ve 3 Hz değerinde Formvar topografya ile yaklaşık 20 nm büyük pixel inceden inceye gözden geçirmek.
    Not: ızgara kenarlarına tarama kaçının.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Yukarıdaki Protokolü makrofaj podosomes Formvar substrat üzerine tarafından uygulanan çıkıntı kuvvetleri ölçmek için deneysel kurulum hazırlamak açıklar. Bu AFM kullanarak elde edilir ve Şekil 1' de gösterilmiştir.

JPK veri işleme yazılımı kullanarak podosomes altında çıkıntı topografik bir görüntüsünü analiz ederken, uygun bir üçüncü derece polinom her tarama satırından bağımsız olarak düşülen. Podosome kaynaklı diken diken maksimum yükseklik z renk ölçeği yan tarafındaki görüntü ekleyerek tespit edilebilir. TIFF formatında dışa aktarılan, topografik görüntü daha bir özel ev yapımı ImageJ makro kullanılabilir çevrimiçi8kullanılarak analiz edilir. Bu makro çıkıntı düzeltilmiş yükseklik yansımasında bulur ve verimleri bir kuvvet harita (Şekil 2) göre verilen parametreleri: Formvar film kalınlığı ve podosome yüzük yarıçapı. Ayrıca, makro metin dosyasına koordinatları, yükseklik ve hesaplanan kuvvet değeri ile algılanan her çıkıntı Formvar yüzeyinde verir.

Bu işlem aynı zamanda hızlandırılmış alımları söz konusu olduğunda uygulanır. Makroyu daha sonra her çıkıntı orta zaman noktasından itibaren ve geriye doğru herhangi bir şüphe herhangi bir anlaşmazlık durumunda Kullanıcı doğrulama isteyen izler.

Figure 1
Resim 1 : Deneysel kurulum
Deneysel Kur şematik gösterimi. Hücreleri ince, uyumlu Formvar film ile kaplı bir elektron mikroskobu ızgara üzerinde tohumlari ve ızgara hücreleri aşağı, bir petri içinde karşı karşıya yerleştirilir. Bir substrat kalarak zaman makrofajlar podosomes denilen Mikronaltı son derece dinamik yapışma yapıların oluşturur. Formvar film hücrelerin altında topografya sonra AFM kullanarak yansıma. Podosome yüzeyinde çıkıntı neden belgili tanımlık substrate kuvvetleri ortogonal uygulansın.

Figure 2
Resim 2 : Yüzey deformasyon ve güçleri tarafından podosomes sarf
Topografya saptırma (sol paneli) ve yükseklik (orta paneli, renk kodları için yükseklik) gösteren hücreleri ters tarafındaki Formvar filmin. Film üzerinde gözlenen çıkıntı tarafından bireysel podosomes için deformasyon karşılık gelir. Her podosome tarafından uygulanan kuvvet modeli tarafından değerlendirilir (doğru kapı aynası, her spot için bir podosome karşılık gelen ve kuvvet değerleri renk kodlu). Ölçek çubuğu: 5 mikron.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Malzeme özellikleri

Formvar, bizim durumumuzda deforme membran için malzeme seçimi birkaç şartları yerine getirmek gerekiyor. Malzeme için görünür ışık şeffaf olması ve gözlemler parlak alan ve floresan mikroskopi izin vermek için sınırlı otomatik floresans sergilemek gerekir. İnce film pürüzlülüğü de 10 olmalıdır nm açık hücre kaynaklı çıkıntılar gözlenmesi AFM görüntüleme tarafından izin veren ve hücre adezyon topografik herhangi bir etkisi önlemek için. Son olarak, Young'ın modülü ve malzeme kalınlığına bağlıdır, membran, sertliği podosome sitelerinde oluşturulan tipik stresleri için bazı gözlemlenebilir deformasyon tutarken podosomes oluşumu ikna etmek için yüksek olması gerekir etrafında olan 10-100 kPa. 30-80 nm ince filmlerin hazırlanan Formvar, tüm bu kısıtlamalar arasında iyi bir uzlaşma malzemedir. Bu değer Formvar membran kalınlığı ayarlama tarafından onun sertlik podosomes7mechanosensing özelliklerini incelemek için ayarlanabilir olduğunu fark var.

Tekrarlanabilirlik ve kalite Formvar hazırlık

Formvar bazı gruplar üzerinde kılavuz kıvrımlar sunmak ve bu nedenle kullanılamaz: Bu önceden parlak alan görüntülerde görülebilir. Deneyim, birden çok ızgaralar için bir koşul bazen ızgara montajı mükemmel değildir ve ızgara taşır veya alır çünkü ihtiyacımız bükülmüş. Formvar film kalınlığı beklenen güce adapte gerekiyor. Kalın film, ağır olduğunu, ama düşük deformasyonlar, gözlem daha zor hale olacak. Diğer taraftan, bu ince film, daha kırılgan ve yırtılma olmadan işlemek daha zor.

Topografya ölçümlere konsol tarafından uygulanan kuvvet etkisi

Film deformasyon ölçümü podosome nanomechanical aktivitesini etkileyen ya da film AFM sonda ile bozulmayı olmadan elde etmek için AFM görüntüleme sırasında uygulanan denetim kuvvetleri için çok önemli. Nitekim, aşırı güç görüntüleme sırasında uygulama bir tahmindi çıkıntı yüksekliği ve bu nedenle çıkıntı kuvvet için neden olabilir. Başka bir deyişle, bu gücü çok durak kuvvet çıkıntılı sitesinin altında sınırlamak için bir ihtiyaç vardır. Pico-Newton birkaç yüzlerce çevresinde görüntüleme sırasında uygulanan kuvvetlerin sınırlandırılması tavsiye ediyoruz.

Çıkıntı kuvvet değerlendirme için modeline

AFM topografik ölçüm kuvvet değerlere dönüştürmek için gerekli kuvvet uygulama uzamsal yapılandırmasını bilmek ve sınır koşulları tanımlamak için. Podosomes söz konusu olduğunda, bir model onun moleküler organizasyon güncel bilgiye dayalı ve bu modeli deformasyon profilleri topografik gözlemler8ile tutarlı sağlanan doğrulanmadı evlenme teklif etti. Daha doğrusu, biz dikey aktin filamentleri substrat iterek bir merkezi modülü ve üzerine çekerek periferik bir modül olarak halka yapışma proteinler tarafından çevrili polymerizing yoğun çekirdek modellenmiştir. Yüzey deformasyon hareket bu iki modüller tarafından sonlu elemanlar simülasyonları, kuvvet-deformasyon ilişki için önde gelen kullanarak tespit edilmiştir. Sayısal bu yaklaşım sayesinde, biz tam olarak ölçülmesi için gerekli o yüzük çapı ve yüzey kalınlığı gösterilen geometrik her parametre etkisi kuvvet-deformasyon ilişki karakterize. Substrat bir çıkıntı yüksekliği h ve bir podosome tarafından uygulanan F olarak ifade güç ilişkisi F = C0 E / (1-υ2) e3/r2 h, nereye E 2.1 = GPa olduğunu Young katsayısı Formvar, ve υ 0,3 = onun Poisson oranı7, C0 2.7 sabit bir eşit ve e ve r sırasıyla film kalınlığı ve podosome RADIUS8göstermek. Her koşul için r ortalama değerini podosomes floresan görüntüleri elde edildi.

Çıkıntı kuvvet mikroskobu uygulamaları

Çıkıntı kuvvet mikroskobu kârlı makrofajlar spesifik proteinlerin önemi podosome kuvvet oluşturma konusunda test etmek, podosome yüzük18 mekanik rolünü göstermek ve spatio-temporal korelasyon gücünün ortaya çıkarmak için kullanılan üretimi podosomes8ağ içinde yakın komşuları arasında.

Hücre içine birkaç biyolojik süreçlerin çalışma ortamlarında çıkıntı tespit edilmiştir. İnvaziv tümör hücreleri hücre dışı matriks Bozulması19için gerekli olan invadopodia, denilen protrusive yapıların kullanın. Lenfositler endotel hücrelere sırasında onların transcellular diapedesis den endotel20çıkıntı gösterilmiştir. Hücre-hücre etkileşim bazı örneklerini da hücresel yapılar çıkıntılı itimat: endotel hücreleri21T hücrelerinin antijen tanıma ve multinucleated Osteoklastlar veya myotubes açan hücre füzyon başlatılması için durum bu 22 , 23 , 24. fagositoz kullanım cep aktin tabanlı proje hedef etrafında yapıları gibi25içselleştirilmesi süreçleri sonunda, vücut. Yapıları çıkıntılı tarafından oluşturulan Kuvvetleri eğitim kesinlikle bu süreçlerde oynayan mekanizmaları ışık yardımcı olacaktır.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

Hiçbir çıkar çatışmaları ilan etti.

Acknowledgements

Yazarlar ilk katkılarından dolayı bu eser ve Matthieu Sanchez ve Françoise Viala için video filme ve düzenleme ile yardım için Anna Labernadie, Guillaume Charrière ve Patrick Delobelle için minnettarız. Bu eser l'Agence Nationale de la Recherche (ANR14-CE11-0020-02), la Fondation pour la Recherche Médicale (FRM DEQ2016 0334894), INSERM planı kanser, Fondation Toulouse kanser ve insan sınır bilim programı (RGP0035/2016) tarafından desteklenmiştir.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
200 mesh nickel grids Electron Microscopy Sciences G200-Ni
Filter paper Sigma-Aldrich 1001-055
Microscope slides Fisher Scientific 10235612
White stickers 26 x 70 mm Avery DP033-100
Film casting device with valve in its outlet Electron Microscopy Sciences 71305-01
Razorblades Electron Microscopy Sciences 72000
Ethanol VWR 1.08543.0250
Acetone VWR 20066.321
Formvar 0.5% solution in ethylene dichloride Electron Microscopy Sciences 15820
12 mm coverslips VWR 631-0666
Inverted microscope Carl Zeiss Axiovert 200
Atomic Force Microscope JPK Instruments NanoWizard III
Temperature-controlled sample holder  JPK Instruments BioCell
Silicon nitride cantilever with a nominal spring constant of 0.01 N/m Veeco Instruments MLCT-AUHW
PBS Gibco 14190-094
Double-sided adhesive tape APLI AGIPA 118100
RPMI 1640 Gibco 31870-025
FCS Sigma-Aldrich F7524
HEPES  Sigma-Aldrich H0887
35 mm glass-bottom Petri dishes WPI FD35-100

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Discher, D. E., Janmey, P., Wang, Y. L. Tissue Cells Feel and Respond to the Stiffness of Their Substrate. Science. 310, 1139-1143 (2005).
  2. Paszek, M. J., et al. Tensional Homeostasis and the Malignant Phenotype. Cancer Cell. 8, 241-254 (2005).
  3. Engler, A. J., Sen, S., Sweeney, H. L., Discher, D. E. Matrix Elasticity Directs Stem Cell Lineage Specification. Cell. 126, 677-689 (2006).
  4. Gilbert, P. M., Weaver, V. M. Cellular Adaptation to Biomechanical Stress across Length Scales in Tissue Homeostasis and Disease. Seminars in Cell & Developmental Biology. 67, 141-152 (2017).
  5. Vining, K. H., Mooney, D. J. Mechanical Forces Direct Stem Cell Behaviour in Development and Regeneration. Nature Reviews Molecular Cell Biology. (2017).
  6. Roca-Cusachs, P., Conte, V., Trepat, X. Quantifying Forces in Cell Biology. Nature Cell Biology. 19, 742-751 (2017).
  7. Labernadie, A., et al. Protrusion Force Microscopy Reveals Oscillatory Force Generation and Mechanosensing Activity of Human Macrophage Podosomes. Nature Communications. 5, 5343 (2014).
  8. Proag, A., et al. Working Together: Spatial Synchrony in the Force and Actin Dynamics of Podosome First Neighbors. ACS Nano. 9, 3800-3813 (2015).
  9. Proag, A., Bouissou, A., Vieu, C., Maridonneau-Parini, I., Poincloux, R. Evaluation of the Force and Spatial Dynamics of Macrophage Podosomes by Multi-Particle Tracking. Methods. 94, 75-84 (2016).
  10. Cougoule, C., et al. Three-Dimensional Migration of Macrophages Requires Hck for Podosome Organization and Extracellular Matrix Proteolysis. Blood. 115, 1444-1452 (2010).
  11. Cougoule, C., et al. Blood Leukocytes and Macrophages of Various Phenotypes Have Distinct Abilities to Form Podosomes and to Migrate in 3d Environments. European Journal of Cell Biology. 91, 938-949 (2012).
  12. Guiet, R., et al. Macrophage Mesenchymal Migration Requires Podosome Stabilization by Filamin A. Journal of Biological Chemistry. 287, 13051-13062 (2012).
  13. Maridonneau-Parini, I. Control of Macrophage 3d Migration: A Therapeutic Challenge to Limit Tissue Infiltration. Immunology Review. 262, 216-231 (2014).
  14. Park, H., et al. Tyrosine Phosphorylation of Wiskott-Aldrich Syndrome Protein (Wasp) by Hck Regulates Macrophage Function. Journal of Biological Chemistry. 289, 7897-7906 (2014).
  15. Van Goethem, E., et al. Macrophage Podosomes Go 3d. European Journal of Cell Biology. 90, 224-236 (2011).
  16. Van Goethem, E., Poincloux, R., Gauffre, F., Maridonneau-Parini, I., Le Cabec, V. Matrix Architecture Dictates Three-Dimensional Migration Modes of Human Macrophages: Differential Involvement of Proteases and Podosome-Like Structures. Journal of Immunology. 184, 1049-1061 (2010).
  17. Verollet, C., et al. Hiv-1 Reprograms the Migration of Macrophages. Blood. 125, 1611-1622 (2015).
  18. Bouissou, A., et al. Podosome Force Generation Machinery: A Local Balance between Protrusion at the Core and Traction at the Ring. ACS Nano. 11, 4028-4040 (2017).
  19. Lizarraga, F., et al. Diaphanous-Related Formins Are Required for Invadopodia Formation and Invasion of Breast Tumor Cells. Cancer Research. 69, 2792-2800 (2009).
  20. Carman, C. V., et al. Transcellular Diapedesis Is Initiated by Invasive Podosomes. Immunity. 26, 784-797 (2007).
  21. Sage, P. T., et al. Antigen Recognition Is Facilitated by Invadosome-Like Protrusions Formed by Memory/Effector T Cells. Journal of Immunology. 188, 3686-3699 (2012).
  22. Sens, K. L., et al. An Invasive Podosome-Like Structure Promotes Fusion Pore Formation During Myoblast Fusion. Journal of Cell Biology. 191, 1013-1027 (2010).
  23. Takito, J., et al. The Transient Appearance of Zipper-Like Actin Superstructures During the Fusion of Osteoclasts. Journal of Cell Science. 125, 662-672 (2012).
  24. Shilagardi, K., et al. Actin-Propelled Invasive Membrane Protrusions Promote Fusogenic Protein Engagement During Cell-Cell Fusion. Science. 340, 359-363 (2013).
  25. Freeman, S. A., et al. Integrins Form an Expanding Diffusional Barrier That Coordinates Phagocytosis. Cell. 164, 128-140 (2016).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics