大人のゼブラフィッシュの経口挿管: 生理活性化合物の腸管吸収の評価モデル

Immunology and Infection

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Summary

プロトコルは、生物学的製剤; とラリンジアルマスクエアウェイ アダルト ゼブラフィッシュを記述します。解剖し、フローサイトメトリー、共焦点顕微鏡と qPCR の腸を準備します。このメソッドは、腸内の吸収と局所の免疫刺激誘発を監視する生理活性物質を管理できます。口腔予防薬の腸内ダイナミクスのテストに適用されます。

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Ji, J., Thwaite, R., Roher, N. Oral Intubation of Adult Zebrafish: A Model for Evaluating Intestinal Uptake of Bioactive Compounds. J. Vis. Exp. (139), e58366, doi:10.3791/58366 (2018).

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Abstract

ほとんどの病原体は侵入、粘膜を通して生物です。これは、微生物が豊富な水環境にさらされ続ける魚で特に。ワクチンは、感染症に対する免疫システムをアクティブ化、または生理の口頭配達の効果的な手法の開発は非常に望ましいです。予防ツールを工夫すること、彼らのパフォーマンスをテストする良い実験モデルが必要です。ここでは、大人のゼブラフィッシュの経口挿管法とを細かく分析し、フローサイトメトリー、共焦点顕微鏡と量的なポリメラーゼの連鎖反応 (qPCR) 分析のための腸の準備の手順のセットを示します。このプロトコルでは、我々 は正確に魚の動物を傷つけることがなく簡単かつ迅速に、約 1 g の重さを 50 μ L までボリュームを管理できます。このメソッドでは、挿管後腸の粘膜とローカル ・ サイトでこのような生物学的製剤の免疫調節能力によって蛍光標識化合物の生体内で直接取り込みを探索することが出来ます。Cytometry 流れ、組織学、qPCR 腸組織の共焦点顕微鏡など下流の方法を組み合わせることによって我々 は生理やワクチンが腸の粘膜の障壁を交差、粘膜を通過することができる方法を理解できると腸管の粘膜免疫系に効果を発揮、筋肉に到達します。モデルは、候補者口腔予防薬と配信システムまたは任意の経口投与の生物活性化合物の局所効果をテストする使用できます。

Introduction

この記事の目標は、深さで関連付けられている下流の有用な手順と共に、ゼブラフィッシュの経口挿管に簡単なメソッドを記述することです。ゼブラフィッシュを用いた経口気管挿管における感染症の動態、経口ワクチン/免疫賦活剤、薬/ナノ粒子の吸収・効果、腸管粘膜免疫の実用的なモデルとなっています。たとえば、ゼブラフィッシュ経口挿管は、 marinum 結核菌結核菌 peregrinum感染1の研究で使用されています。Lovmo正常に大人ゼブラフィッシュ2の消化管をナノ粒子やM. marinum提供するのにこのモデルを使用します。さらに、陳は、ナノ粒子、薬がカプセル化をゼブラフィッシュ経口挿管を使用とき投与による消化管血頭脳障壁3間で運ばれました。これらの著者実行コリモアによって記述されている gauvage メソッドに基づいて、挿管4いくつかの変更。しかし、彼らは、経口挿管の手順を記述する非常に詳細なプロトコルを提供しませんでした。ここでは、建物コリモア大人のゼブラフィッシュの経口挿管法を提案します。4フローサイトメトリー、共焦点顕微鏡、qPCR による関連する下流解析のため腸の準備を更に含んで。

腸、特にその粘膜は感染に対する防御の最初の行と養分吸収5主のサイトです。上皮細胞と抗原提示細胞粘膜障壁内では、危険信号を感知、即時の自然免疫応答がトリガーされます。次に、非常に特定の適応免疫応答は、T および B リンパ球6,7で確立されます。経口ワクチンの開発は、ワクチン学に現在フォーカス エリアです。このようなワクチンは粘膜関連リンパ組織 (モルト)8,9の免疫細胞の特定の応答のための露出サイトで有機体を保護するために効果的なツールになります。養殖業、粘膜ワクチン注射ワクチンと比較して明らかな利点があります。集団予防接種は、比較的手間のかからないための実用的、魚、ストレスの少ない、若い魚に投与することができます。それにもかかわらず、粘膜ワクチン候補口腔内環境に変性されることがなく腸の 2 番目のセグメントに到達する必要があります。彼らはまた抗原提示細胞 (APCs) ローカルおよび全身の応答10を誘発するへのアクセスを得るために粘膜の障壁を越える必要があります。したがって、候補の経口抗原およびその配信システムにより粘膜吸収のテスト、誘発、免疫反応だけでなく、不可欠である経口ワクチンの開発に

生体においては、経口挿管の関心の高まりの後、化合物の生物学的効果をテストするモデルを開発します。腸の解剖学的および生理学的機能の多くは哺乳類、硬骨魚類11、左右相称性系統間保存されます。下流の分析に接続されているこの経口挿管モデルは、生物学的製剤の試験場と同様、人間の生物学への洞察力を提供するためのツールをすることができます。 または他の化合物の生体内で

経口気管挿管プロトコルは、1 つの演算子、例えば、魚の重さの 1 g は、生存率の高いタンパク質ナノ粒子懸濁液の最大 50 μ L を正常に管理実行できます。手順はセットアップするシンプルで簡単です。30 魚は 1 h で挿管することができます。腸の準備のためのプロトコルは、その後の分析のため品質の細胞・組織のサンプルを提供する鍵です。下流の結果の例の腸管吸収に関連するデータを取得、qPCR の質 RNA を隔離するプロトコルの有用性を示すとおりです。これら腸内口腔予防薬のダイナミクスや他の化合物をテストするための適切なモデルを必要とする偉大な使用のプロトコルになります。

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Protocol

ゼブラフィッシュ (動脈分布) を含むすべての実験手順は、Autònoma · デ · バルセロナ (CEEH 番号 1582) 研究を含む動物 (国際指導原則に一致しての倫理委員会によって承認されました。EU 2010/63)。26-28 ° C で生きたゼブラフィッシュで実験を行った

1. 経口挿管装置の準備

  1. 針の先端をカバーする 31 G ルアー ロック針に高級シリコン チューブを約 1 cm を配置します。
  2. カット 10 μ L 滅菌フィルター ピペット チップ (約 2 cm)、細かい端を取るやシースとしてシリコン チューブの上に置きます。ピペットを超える動物が負傷を避けるために針の先端を確認します。
  3. 100、μ L ルアーロック注射器に針を取り付けます。
    注: は常にエタノールで洗い、その後、リン酸緩衝生理食塩水 (PBS、資料をご覧ください) 治療の間に徹底的に。

2. ソリューション

  1. (麻酔) のための 150 mg/L または 300 mg/L (安楽死) エチル 3-アミノ安息香酸メタンスルホン酸 (MS-222) 液の水族館、ゼブラフィッシュの保管場所からの水の準備をします。麻酔液の 1 L と小型タンクを記入し、通気しておきます。
  2. 魚の回復のため MS 222 なし水槽の水 1 L を別の小さい水槽を記入し、通気しておきます。
  3. 50 mL の 1x PBS 滅菌原液 x の 10 からを確認します。
  4. フローサイトメトリー解析/腸の細胞の隔離、魚在庫ソリューション、またはダルベッコ変法イーグル培地 (DMEM) で粉からあたり 1 mL の 1 %v/v ペニシリンとストレプトマイシン (材料を参照) と十分な新鮮な 0.15% コラゲナーゼ IV 型ソリューションを準備します。2 mL の遠心管に 1 mL の因数 (魚ごとの 1) を作る。解剖手順の前に 30 分まで 4 ° c を維持します。
  5. 共焦点顕微鏡/サンプル固定用 PBS で新鮮な 4% パラホルムアルデヒド (PFA) ソリューションの 50 mL を準備または発煙のフード-20 ° C のフリーザーから原液を解凍します。
    注意: PFA は有毒です。使用前に製品安全データシートをお読みください。手袋と保護メガネ着用すべきし、ヒューム フード内のソリューションを常に残します。

3. 蛍光ナノ粒子懸濁液の準備

  1. Atto 488 NHS エステルとタンパク質ナノ粒子のラベル (材料の表を参照してください) または製造元の指示に従って適切な蛍光染料。
  2. 0.1 M 炭酸水素ナトリウム 2 mg/mL の濃度バッファーでナノ粒子を再懸濁します。
  3. アミン無料ジメチルスルホキシド (DMSO) で 2 mg/mL の Atto 488 NHS エステルを溶解します。ラベリング効率 (ステップ 3.7 3.8) をチェックする 10 μ L の因数を維持します。
  4. 暗闇の中で攪拌によるナノ粒子と (蛋白質: 色素) を 1:2 のモル比で Atto 488 NHS エステルを混ぜます。
  5. 室温で 10 分間 8,000 × gで遠心分離によってラベル付けされたナノ粒子のスピンダウン、上澄みを除去し、標識効率 (ステップ 3.7 3.8) をチェックしてください。
  6. ボルテックスと上下にピペットで 1 mL の 0.1 M 炭酸水素ナトリウム バッファーの再ラベル付けされたナノ粒子を洗い。その後、室温で 10 分間 8,000 × gで遠心分離して上澄みを廃棄します。5 倍の 3.6 のステップを繰り返します。
  7. 15 mL 遠心管中の 0.1 M 炭酸水素ナトリウム緩衝の 5 mL にペレットを再懸濁します、1.5 mL 遠沈管 (30 因数) 蛍光ナノ粒子の因数を作る。室温で 10 分間 8,000 x gでスピンダウン、上澄みを廃棄し、光から保護-80 ° C で保存します。
  8. 微量分光光度計を使用してラベル付けの効率を測定します。
    1. ステップ 3.3 から続けた元の Atto 488 ソリューションの 1 μ L を取り、さらに DMSO (例えば、1:20 容積比によると) で希釈しています。これは手順 3.4 でタンパク質ナノ粒子と Atto 488 ミックスのモル比を得るに使用するボリュームです。
    2. 3.5 の手順でラベリングの反応から保存した上清の 1 μ L を取る。吸光度 (abs) = 501 nm。ラベルの割合です。
      (Equation 1
  9. 実験の前に 1 x PBS 溶液を使用して望ましい集中ナノ粒子懸濁液を準備します。

4. ゼブラフィッシュ Anesthetization と経口挿管

  1. 魚を高速 (> 0.5 g) 腸を空にする実験の前に少なくとも 48 時間。
  2. 魚 (12 魚) 実験的戦車 (6 L) 順化12を許可する実験の前に 1 つの夜に移動します。
  3. 渦もナノ粒子溶液 (例えば、 2,500 rpm と 30 s)、保護された針に接続されている注射器にナノ粒子懸濁液 (例えば20 – 50 μ L) の音量を描きます。
  4. 曝気 150 mg/L の MS で、魚をプレイス-222 ソリューション (セクション 2 を参照) まではタンクの底に沈むし、垂直尾翼のピンチ; に応答しません。このプロセスは、5 分未満かかります。
  5. すぐにネットで麻酔をかけられた魚をぬれたプラスチック製のトレイに転送、針に直面し、すぐに経口挿管に水平方向に動物をオリエンテーションします。
  6. 慎重に 1 つの手で魚をサポートし、保護された針を使用して片方の手で口を開きます。そっと口の入り口から約 1 cm に食道を押し針を挿入します。
    注: オペレーターは、ピペット先端末鰓に合格したときわずかな抵抗を感じることがあります。鰓を穿孔することがありますあまりにも多く、針の刺入角度に注意してください。
  7. 魚にナノ粒子懸濁液をゆっくりと注入します。懸濁液はエラや口から外側はフローしないことを確認します。
  8. そっと針を除去し、回収タンク (セクション 2 を参照) に魚を置きます。回復は通常 1 分以内になります。
  9. 異常を慎重に魚をチェック (例えば鰓で出血、穿孔の徴候)。
  10. 魚が回復すると、一度実験タンクに戻します。

5. ゼブラフィッシュ腸解剖

  1. 挿管の記事の時間の指定された期間の後 (例えば、 5 h や 24 h)、300 mg/L MS に網を使って魚を置きます-222 向け安楽死 (セクション 2 を参照)。蓋を移動停止尾ピンチ反射がないことを確認します。5 分で通常十分です。
  2. ネットで euthanized の動物をピックアップし、フィルター ペーパーの上に置きます。
    メモ: フィルター ペーパーは腸に沿って接着組織を除去するのに便利です。
  3. 鋭い解剖はさみを使って、作る、蓋に肛門から半円形切開と微細ピンセットを使用して開いて切開。腸管の両端をカット、すべての内臓を取り出してろ紙の上に置きます。
    注意: は、細胞の代謝や死を減らすためにすぐに動作します。
    注: は、PBS で、氷の上または、接着組織を削除します。
  4. (前方後部腸管) の方向を維持し、それを伸ばすようにして内臓から腸を区切ります。通常、腸の眼は後方のセグメントよりも広いです。切り裂く場合腸のすべてを取得する注意してください。
    注: 後端は非常に微細で小魚に壊れやすいと動物の特に離れる可能性があります < 0.7 g。
  5. 腸をピンセットで腸から接着組織を切断するためにフィルター紙の上をロールします。
  6. 腸を備える様々 な下流解析 (セクション 6、7 および 8) に進んでください。

6. フローサイトメトリーの腸細胞を準備

  1. 0.15% コラゲナーゼ溶液 (セクション 2.4 を参照) の因数を事前に準備します。
    注: 因数は、進む前に室温でする必要があります。
  2. (省略可能) 手順 5.5 から継続し、腸を縦切り開いてし、1x PBS で洗浄します。
  3. ピンセットを使用すると、満ちている 0.15% コラゲナーゼ溶液 2 mL の遠心管に腸管を配置します。
  4. 暗闇の中で部屋の温度で 1 時間垂直研究室回転子にチューブを置きます。
  5. 50 mL の遠心管にサポートされている 100 μ m セル ストレーナーに腸を配置します。50 mL の遠心管にサンプル内の流れを収集 1 × PBS 洗浄 3 回 5 mL シリンジのプランジャーと腸を破る。
  6. 400 × g 10 分間、4 ° C で 50 mL 遠心チューブを遠心分離します。
  7. 慎重にいくつかの粘液に関連しているかもしれない細胞を維持しながら上澄みのほとんどをピペット。
  8. 500 μ L の 1x PBS で遠心管の底に小腸細胞を再懸濁します、フローサイトメトリー解析まで氷の上を保つ
  9. 5 mL に 30 μ m セル フィルターを介してフィルター サンプルはラウンド フローサイトメトリーの下部チューブです。
  10. Cytometer 機器のパラメーター (例えば分析用セルの数、興味、電圧および補償の地域があり、検出器の選択) を設定 (マテリアルを参照してください)。
  11. Cytometer で使用13の手順を次のセルをすぐに分析します。

7. 共焦点の顕微鏡検査のため腸の凍結切片の準備

  1. プラスチック金型をご記入 (材料表参照) 最適な切削温度 (O.C.T.) 化合物とボリュームも半分に。
  2. プラスチック金型で腸を配置手順 5.5 から、解体直後後に継続し、慎重に。腸は O.C.T. 化合物に完全に埋め込まれていることを確認します。必要に応じて、プラスチック金型に複数 O.C.T. 化合物を追加します。
    注: 簡単にその自然な方向に従う化合物 O.C.T. の"Z"の形をした腸を配置することをお勧めします。
  3. それが不透明な (1 分未満) までドライアイスにプラスチック金型を配置します。
  4. 長期的な使用またはすぐに次の手順を使用して、プロセスの-80 ° C でプラスチック金型を格納します。
    注: プロトコルはここで一時停止することができます。
  5. 冷凍の腸を 10 μ m のセクションまたは-20 ° C でクライオスタットを用いた適切な厚さにスライスします。
  6. スライドに細かいブラシで腸のセクションを収集します。
  7. 4% のスライドを浸し室温で 15 分間のサンプルを修正する PFA。
    注意: PFA は有毒です。使用前に製品安全データシートをお読みください。手袋と保護メガネ着用すべきし、ヒューム フード内のソリューションを常に残します。
  8. 1x PBS、10 分で 3 回スライドを洗います。
  9. メディアをマウントのドロップを追加し、標本を観察を配置します。
    注: プロトコルはここで一時停止することができます。
  10. 適切な倍率で共焦点顕微鏡下で試料を観察します。

8. qPCR リアルタイム (RT qPCR) の腸を準備

  1. ステップ 5.5 から継続し、極低温バイアルで腸を入れて、使用するまで液体窒素、-80 ° c 店で腸を急速に凍結します。
    注: プロトコルはここで一時停止することができます。
  2. 均質化、200 μ L 2% (v/v) の冷蔵 1 チオグリセ/均質化ソリューションを追加 (材料の表を参照してください) または腸のサンプルの均質化の代替ソリューションです。
  3. すぐに働き、氷上腸サンプルを均質の断片が残ってないの目に見える組織まで高速 (25-30,000 rpm に設定) で研究室ホモジナイザーを用いた。3 回の 5 s は通常は十分です。
  4. 商業を使用して RNA を分離 (材料の表を参照) をキット製造元の指示14または適切な代替方法によると。必要に応じて、長期使用のため-80 ° C で RNA を保存します。
    注: プロトコルはここで一時停止することができます。
  5. 分光光度計15を使用して RNA 濃度を定量化し、RNA アナライザー16を使用して品質を評価します。
  6. 1 μ g または製造元の指示に従って cDNA 合成キットを使用して cDNA の適切な量を準備します。
    注: プロトコルはここで一時停止することができます。QPCR 解析、MIQE のガイドライン17に従ってください。
  7. 興味の遺伝子/s の適切なプライマーを設計します。
  8. 適切な参照の遺伝子を選択し、RT qPCR 法による各遺伝子の発現を分析商業を用いたシステム キット (マテリアルを参照してください)。
    注: たとえば、qPCR プレートの各ウェルに 10 μ L の最終巻で SYBR グリーン スーパーミックスの 5 μ L、0.5 μ M プライマー、希釈 cDNA の 2.5 μ L、1.5 μ L の水を追加します。

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Representative Results

ゼブラフィッシュ (平均重量: 1.03 ± 0.16 g) 混合性が正常に異なる組換えタンパク質ナノ粒子 (細菌封入体)、自家製経口気管挿管デバイス (図 1) を使用して挿管します。正常に経口挿管を行い平均割合が低い死亡率 (6.8%) を達成(表 1)。ゼブラフィッシュは 30 μ L とナノ粒子懸濁液を 50 μ l 添加いずれか挿管され 24 時間ポスト挿管内死亡率を求めた。実験は、2 つの演算子によって行われた、R が j. よりゼブラフィッシュ経口挿管での作業経験の少ない結果、新しい演算子もが個別に実行経口挿管実験し、簡単にこのプロトコルにより高い生存率を達成します。私たちの経験から最適な魚のサイズは 1 g が、我々 は正常に 0.5 g のような小さな魚を挿管します。

フローサイトメトリーを行った蛍光ナノ粒子 IBstnf α (封入体として組換えサイトカイン タンパク質ナノ) は当社によるゼブラフィッシュに配信され、かゼブラフィッシュ腸によってとら、かどうかを理解するには解析。ナノ粒子 (50 μ L、100 μ g/フィッシュ) PBS (コントロール) 経口投与 (気管挿管) によってゼブラフィッシュにおよび 5 h、24 h の記事挿管で腸を切開します。総腸細胞作製手順 6, 蛍光発光信号を検出することにより分析.蛍光強度の代表的なヒストグラムと蛍光セル パーセンテージのドット プロットは図 2のとおりです。蛍光細胞密度は、ナノ粒子挿管グループ 5 h、24 h (図 2A) で対照群と比較して明らかに高い。蛍光細胞の割合も 5 h (46.3%) で 24 h (43.0%) ナノ粒子の挿管グループ (図 2B) の有意に高い。

さらなる研究は、腸内のレイヤーの一部はナノ粒子の取り込みに関与する、共焦点顕微鏡による解析を行った。ナノ粒子 (20 μ g/フィッシュ、50 μ L) PBS (コントロール) されたゼブラフィッシュに経口挿管し、5 h ポスト挿管で腸を切開します。腸のセクションは、ステップ 7 (図 3A) によると凍結するティッシュ法により作製しました。図 3Bに腸内蛍光ナノ粒子の共焦点画像を示します。蛍光ナノ粒子は、ゼブラフィッシュ腸で発見されました。上皮細胞、粘膜、筋細胞の蛍光を観察した.

我々 のプロトコルによる高品質 RNA を抽出できたかどうかを確認するため (ここで RNA のアナライザーとも呼ばれる) バイオアナライザーの腸から抽出した RNA を分析しました。ゼブラフィッシュが PBS で経口挿管 (50 μ L) または (20 μ g/フィッシュ、50 μ L) ナノ粒子。腸は、24 h ポスト挿 RNA 抽出のため切除した.アナライザーを使用してテストする 7 つの RNA のサンプルを選択しました。私たち見つかりましたすべてのテストされた RNA サンプル RNA 整合性多数に至る 7.9 8.9 (図 4)。

Figure 1
図 1:経口気管挿管デバイス。(A) 100 μ L のシリンジに針の先端をカバー シリコン チューブ ・ ピペット チップの先端で固定 31 G ルアーニードル ロックのイメージ。(B) 針の部分の拡大画像。黒い矢印は、ピペットの先端が針の先端を超えていることを示します。この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください

Figure 2
図 2:ゼブラフィッシュ腸内蛍光ナノ粒子のフローサイトメトリー解析経由で経口挿管します。ゼブラフィッシュ PBS や蛍光 IBstnf αを施した (100 μ g) 5 h、24 h のそれぞれ。(A) 代表的な蛍光強度ヒストグラム。(B) ドット蛍光細胞割合のグラフがプロットされます。それぞれの緑色の点は、1 つの n では、個々 の ≥4 蛍光細胞の割合を表します。データは、平均値 (SEM) の平均 ± 標準誤差を表しています。違いは、一方向の分散分析を使用して分析しました。コントロールに対する有意差 (* *、p < 0.01)この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください

Figure 3
図 3: 画像共焦点顕微鏡解析します。魚はいた PBS または 20 μ g/魚蛍光ナノ粒子を経口挿管。5 h ポスト挿管で腸を切開されました。(A) 10 月化合物に埋め込まれたゼブラフィッシュ腸。腸は、"Z"の形 (a: 前方端; p: 後端) の自然な向きで置かれました。(B) ゼブラフィッシュ腸の共焦点顕微鏡画像。白い矢印は、蛍光ナノ粒子が腸管粘膜でとられることを示しています。この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください

Figure 4
図 4: 7 ゼブラフィッシュの腸から抽出した RNA を示す RNA アナライザー仮想ゲル画像サンプリング ポスト挿管。サンプル数 1 と 2 PBS 挿管グループ、サンプル数 3 に 7 ナノ粒子挿管グループ。RNA の整合性番号 (鈴) は 8.9 7.9 に至る下部に与えられています。この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください

演算子 ボリューム 挿管 # 魚 平均重量
(g ± SD)
# 死亡 死亡率 (%)
R 30 Μ L 22 0.88 ± 0.14 3 13.6
R 30 Μ L 17 0.93 ± 0.19 0 0
J 50 Μ L 19 1.23 ± 0.31 1 5.2
J 50 Μ L 30 1.08 ± 0.40 2 6.6
合計 88 1.03 ± 0.16 6 6.8
SD: 標準偏差

表 1:プロトコルを使用して 2 つの演算子によるゼブラフィッシュの死亡率の比較.オペレーター識別コード、挿管のボリューム、魚数と魚の平均体重グラム (g) で表示されます。

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Discussion

このプロトコルは前述コリモアによる経口気管挿管法の改善4私達のプロトコルは経口挿管法の詳細に説明し、下流解析のため腸の準備が含まれています。本手法は、演算子間の変動があまりなく、急速に全体のプロトコルを実行する人を許可する魚操作速度を向上します。以前のものと弊社のプロトコルの主な違いは、幸福のための動物の観察によってだけでなく経口挿管実験の成功を評価する (例えば、出血)、チェックによっても投与し、流体の漏れ無し下流解析 (フローサイトメトリー、共焦点顕微鏡と qPCR) を用いた腸内活性ナノ粒子の取り込み。腸内挿管の蛍光に分類されたナノ粒子が検出されたことを示します。

実用的な側面で、挿管器具は安い、正確かつ再利用可能な: 基本的なデバイスは (例えばハミルトン) に再利用可能な 100 μ L のガラス製注射器の上にシリコンの部分で 31 G 針に結合します。滅菌カット シリコン チューブ上に置かれて、それぞれの個々 の管理の変更ことができます。シリンジは再利用可能な細い針により、成功の可能性が高いと小さな魚を挿.さらに、滅菌カットはシリコン チューブ挿管器具を実験室で作られる容易に可能にすることがなく針の上に直接に可能性があります。管理された生理活性化合物がはっきりと見えると正しい管理を簡単に監視することができます。挿管のプロシージャの間に重要なステップは、針のエントリです。針の傾斜またはえらの穿孔を避けるためにあまりにも多く挿入されていないことが重要です。この方法で観察された死亡率は非常に低い (約 7%) と魚の大きさによって異なります。ギルの穿孔は、最初の 1 時間内で魚死ぬとき魚の死の最も一般的な原因です。0.5 g の魚することができます簡単に挿管が最適な魚のサイズは約 1 g です。コリモアによって開発された方法で別の違い魚が必ずその消化管が空に 48 時間断食、です。全体の挿管の手順は非常に迅速に行うことができます (30 動物/h) メソッドが異なる演算子4間で一貫して重要な 1 つの演算子。挿管法は簡単に学べるし、マスターに多くの練習を必要としません。

腸解剖手順は、フローサイトメトリー、共焦点と qPCR 解析の質の良いサンプルを取得する正しく実行する必要があります。重要なステップはこの時点で、全体の腸の解剖後部セクションは壊れやすい、失いやすいです。腸を解剖すると、一度は、フローサイトメトリー (2 h プロトコル)、qPCR 分析 (総 RNA の隔離まで 2 h プロトコル) 共焦点顕微鏡 (cryosection の準備ができてのサンプルを持っている 1 h) をさらに処理できます。共焦点の顕微鏡検査のために特に、腸の方向を追跡する非常に重要です。フローサイトメトリー分析に迅速な処理が必要し、手順を完了する前に停止できません。一方、RNA の分離及びサンプル cryosection を正しく保存し、いつでも処理できるために準備。フローサイトメトリー、破片マシンを凝集することがなく質の良いサンプルはこの方法で分離することができ、蛍光細胞の存在のための高速な解析は個人で簡単に実行できます。RNA 品質監視を示した高品質の RNA は qPCR による個々 の魚の腸が分析から分離することができます。最後に、共焦点顕微鏡のための cryosection 準備はタンパク質ナノ粒子の取り込みについての重要な構造を提供します。我々 の方法は、このように腸内口腔予防薬のダイナミクスや他の化合物をテストするモデルを提供します。

我々 の研究の限界は、0.5 g と落ち着いた、動物化学麻酔の使用より小さい魚の管理はテストしませんでしたので、魚のサイズをいます。何人かの著者は、冷たい水を使用して (0-4 ° C) ゼブラフィッシュ18を麻酔する、動物の福祉とヨーロッパの法的な制約のコンテキストで MS 222 だった選択の方法であることをとしました。

ゼブラフィッシュは、遺伝子データと使用可能なトランスジェニック ラインの完全なセットを含む他のモデル システムに比べて多くの利点を提供しています。免疫、形質転換線 (例えば、Tg mpx:GFPおよびTg mpeg1:GFP) 免疫細胞マクロファージや好中球の19,20などの生体内観察のためのシーンを設定します。取り込みを含む細胞の種類を識別するために理想的かもしれない形質転換線と私たちの経口挿管と下流解析を組み合わせた輸送および経口ワクチン、ナノ粒子・魚の病原体の処理。

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Disclosures

著者は、競合する利益がないことを宣言します。

Acknowledgments

この作品は、欧州委員会と AGAUR 資金 NR (AGL2015-65129-R MINECO/フェダー、2014SGR-345 AGAUR) スペイン語科学省からの補助金によって支えられました。RT は、AGAUR (スペイン)、JJ から博士奨学金に支えられ中国公費 (中国) から博士課程フェローシップと NR は Ramón y カハール プログラム (RYC-2010-06210、2010 年、MINECO) によってサポートされているを保持します。タンパク質の生産、「Servei ・ デ ・ ミクロスコピア」から (名) バルバで専門家の助言ありがとう博士トレアルバと博士 m ・ コスタ、Autònoma · デ · バルセロナの役に立つのテクニカル サポートの「Servei ・ デ ・ Citometria」から。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Silicone tube Dow Corning 508-001 0.30 mm inner diameter and 0.64 mm outer diameter
Luer lock needle Hamilton 7750-22 31 G, Kel-F Hub
Luer lock syringe Hamilton 81020/01 100 μL, Kel-F Hub
Filtered pipette tip Nerbe Plus 07-613-8300 10 μL
MS-222 Sigma Aldrich E10521 powder
10x PBS Sigma Aldrich P5493
Filter paper  Filter-Lab RM14034252
Collagenase Gibco 17104019
DMEM  Gibco 31966 Dulbecco's modified eagle medium
Penicillin and streptomycin Gibco 15240
Cell strainer Falcon 352360
CellTrics filters  Sysmex Partec 04-004-2326 (Wolflabs) 30 µm mesh size filters with 2 mL reservoir
Tissue-Tek O.C.T. compound SAKURA 4583
Plastic molds for cryosections SAKURA 4557 Disposable Vinyl molds. 25 mm x 20 mm x 5 mm
Slide Thermo Scientific 10149870 SuperFrost Plus slide
Cover glasses Labbox  COVN-024-200 24´24 mm
Paraformaldehyde (PFA) Sigma-Aldrich 158127
Atto-488 NHS ester Sigma-Aldrich 41698
Sodium bicarbonate Sigma-Aldrich S5761
DMSO Sigma-Aldrich D8418
Maxwell RSC simplyRNA Tissue Kit Promega AS1340
1-Thioglycerol/Homogenization solution Promega Inside of Maxwell RSC simplyRNA Tissue Kit adding 20 μl 1-Thioglycerol to 1 mL homogenization solution (2%)
vertical laboratory rotator  Suministros Grupo Esper 10000-01062
Cryostat Leica  CM3050S
Homogenizer KINEMATICA Polytron PT1600E
Flow cytometer  Becton Dickinson FACS Canto
5 mL round bottom tube Falcon 352058
Confocal microscope Leica SP5
Fume Hood Kottermann 2-447 BST
Nanodrop 1000 Thermo Fisher Scientific ND-1000 Spectrophotometer
Agilent 2100 Bioanalyzer System Agilent G2939A RNA bioanalyzer
Maxwell Instrument Promega AS4500 
iScript cDNA synthesis kit  Bio-rad 1708891
CFX384 Real-Time PCR Detection System Bio-Rad 1855485
iTaq universal SYBR Green Supermix kit Bio-rad 172-5120
Water  Sigma-Aldrich W4502
Cryogenic vial  Thermo Fisher Scientific 375418 CryoTube vial
Mounting medium Sigma-Aldrich F6057 Fluoroshield with DAPI

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References

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