基因治疗诱导聚化涂层保护 dna 折纸纳米结构

Chemistry
 

Summary

本文介绍了一种利用天然阳离子多糖壳聚糖和合成线性聚乙烯胺 (lpei) 涂层保护镁-贫化和富含核酸酶介质中 dna 折纸纳米结构的方案。

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Ahmadi, Y., Barisic, I. Gene-therapy Inspired Polycation Coating for Protection of DNA Origami Nanostructures. J. Vis. Exp. (143), e58771, doi:10.3791/58771 (2019).

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Abstract

脱氧核糖核酸折纸纳米结构具有巨大的潜力, 可用于生物和医疗应用。然而, 生理流体中的低盐条件和核酸酶会导致自组装 dna 纳米结构的变性和降解。在非病毒基因传递中, dna 的酶降解是通过在阳离子壳中封装带负电荷的 dna 来克服的。在基因传递进步的启发下, 提出了一种简单、一步到位、鲁棒性强的 dna 折纸纳米结构稳定方法, 并将其涂覆在壳聚糖和线性聚乙烯胺中。多离子涂层有效地保护了 mg 耗尽和富含核酸酶的介质中的 dna 折纸纳米结构。该方法还保留了 dna 纳米结构的酶和应用系功能化的全部可寻址性。

Introduction

dna 是纳米结构1可编程自组装的多功能构建。最流行的 dna 纳米结构的方法是 dna 折纸技术, 它是基于一个长的圆形, 单链 dna 支架的自组装与数百更短的形状确定合成细管线2的帮助。如今, 在几乎任何几何和形态中创建 dna 纳米结构都是很容易的。dna 纳米结构可在高精度 34 的情况进行特定功能化, 并可编程进行异构构象变化 5,6。因此, 使用 dna 作为建筑材料提供了一个独特的机会, 可以创建可编程和响应式定制设计的纳米结构, 用于生物传感、诊断和药物输送等领域。然而, dna 纳米结构容易被exoendo核酸酶消化, 而基于网状的 3d dna 折纸纳米结构通常需要高盐度缓冲液 (例如5-20 mmmg + 2) 来保持其完整性7,8

血液中存在的核酸酶和细胞外基质快速降解 dna 是在体内有效地将遗传物质传递到细胞9的主要障碍。为了克服这一限制, 在非病毒基因传递中, dna 与阳离子聚合物混合在一起, 以确定的 nsp 电荷比 (多阳离子中的胺与 dna 中的磷酸盐之比)10。与阳离子聚合物 (称为聚普莱丝) 的 dna 复合体保护 dna 免受核酸酶介导的降解, 并增强其细胞吸收11。灵感来自基因传递的进展, 寡溶氨酸12, 寡极素-聚乙二醇 (peg) 共聚物13, 聚 (2-二甲基氨基-乙基甲基丙烯酸酯) (pdmaema) 基聚合物14, 和病毒衣壳蛋白 15已被用于稳定脱氧核糖核酸折纸纳米结构。

最近, 我们报告了一种方法, 以保护 dna 折纸纳米结构在镁贫化和富含核酸酶的介质使用天然阳离子多糖壳聚糖和合成线性聚乙烯胺 (lpei) 被报道 16.本文是对我们早期工作的改编, 介绍了制备多层的详细协议、其特性、测试低盐和富含核酸介质中的裸和受保护纳米结构的稳定性以及对酶和功能化 dna 折纸纳米结构在多离子涂层上的可寻址性。

Protocol

1. 准备聚阳库存解决方案

  1. lpei 库存解决方案
    1. 在含有和 lt;10 毫升 h2o 的玻璃烧杯中加入10毫克的 lpei
    2. 要完全溶解 lpei, 加入 hcl (32%), 直到 ph 值2.0。
    3. 通过添加 naoh (10m), 将 ph 值调整到7.0。
    4. 将音量调整到 1 mgml 的最终浓度。
    5. 通过0.22μm 膜过滤 lpei 库存溶液。
  2. 壳聚糖库存解决方案
    1. 在1毫升醋酸 (10%) 水介质中溶解16.6 毫克壳聚糖寡糖乳酸 (mw ~ 5 kda, 60% 低聚糖组合物, 甲壳素脱乙酰化 90%), 制备浓度为 10 mgml 的库存溶液。

2. dna 折纸纳米结构的纯化

  1. 将 dna 折纸样品的 100μl (在 5 mm tris、1 mm edta、5 mm 氯化碳缓冲液 (称为 tb) (包括 18 mm mgcl2) 中混合, 等效体积为 22 mm mgcl 2, 补充 tb (100μl) 在 1.5 ml 管中.
  2. 加入200μl 的纯化缓冲液 (15% (w/v) peg 8, 000、5 mm tris、1 mm edta 和 505 mm ncl)。通过试管反转轻轻混合。
  3. 在室温 (rt.) 下, 以 16, 000 x 克的速度旋转样品25分钟。
  4. 小心丢弃上清液, 重新悬浮 16 mm mgcl2中的颗粒, 补充结核病缓冲液。上清液和颗粒分别含有多余的短纤维链和沉淀的 dna 折纸。
  5. 在下午650转的时候将样品在 rt 中培养一天。这一步是为了彻底重新悬浮 dna 折纸。

3. 琼脂糖凝胶电泳 (年龄)

  1. 加入1.6 克琼脂糖和 80 ml 0.5 tae 缓冲液 (20 mm tris, 0.5 mm edta, 10 mm 乙酸, ph 8), 制成玻璃烧杯, 制备2% 琼脂糖凝胶。微波炉 5分钟, 在水浴中旋转烧杯的内容物1分钟。加入352μl 的 mgcl2 (2.5 m), 用 11 mm mgcl2制备凝胶。用10μl 的 dna 凝胶染色对凝胶进行预染色。
  2. 将凝胶溶液放入干凝胶盒中, 插入凝胶电泳梳子。让溶液在 rt. 凝固15-30。
  3. 用 11 mm mgcl 2 补充运行缓冲区 (0.5 x tae 缓冲区)
  4. 将样品10-20μl 与20倍的负载缓冲液 (30% (v/v) 甘油、0.25% (w/v) 溴酚蓝、0.25% (w/v) xylene cyanol ff) 混合, 并将其加载到琼脂糖凝胶凝体井中。
  5. 在 rt. 上运行凝胶在 70 v 处 2.5-3小时。
  6. 使用紫外线扫描仪显示凝胶。

4. 负污渍透射电子显微镜 (nstem)

  1. 在发光排放的碳涂层 cu400 tem 栅格上应用5μl 的稀释纳米结构或聚面。让它吸收大约1分钟。
  2. 用一张滤纸从网格边缘排出多余的液体。
  3. 使用5μl 的2% 乌兰醋酸水溶液, 等待1分钟。
  4. 使用滤纸边缘从网格边缘完全排出多余的液体。
  5. 在将栅格注入 tem 之前, 让其完全干燥。

5. 聚丙烯形成

注: 在 n/p0.01-8 比处制备由 dna 折纸和壳聚糖组成的多面体的示例。

  1. 使用公式-1 (表 1) 计算每聚阳离子的胺数量。
  2. 使用紫外线分光光度计在260纳米处测量纯化 dna 折纸的浓度。使用2μl 的 tb 缓冲液作为空白来校准机器。使用公式-2 计算 "磷酸盐的 nmol"。
  3. 制备15μl 的 dna 折纸结构, 包括 1 nmol 磷酸盐。
  4. 采用公式-3 计算壳聚糖的体积, 这是在 0.01-8 nep 上制备多聚体所必需的。例如, 要在 nsp 8 处准备多边形, 需要1.8 微米的壳聚糖 (0.8 mg/ml) (nmol 为 8, 磷酸盐的 nmol 为 1, 壳聚糖的分子量为 5, 000 g/mol, 壳聚糖库存溶液的浓度为 0.8 mgm l, 每壳聚糖的胺含量为 28)。在1.8μl 壳聚糖 (0.8 mg/ml) 中加入13.2μl 的结核病。从步骤5.3 中加入15μl 的壳聚糖溶液 (0.8 mg/ml) 到15μl 的 dna 折纸中, 得到具有 np 8 的脱氧核糖核酸----壳聚壳聚糖多普罗。这种多面手是自发形成的。
  5. 重复步骤 5.4, 以准备不同 nop 比的多层数。
  6. 按照步骤 3 (图 1a) 中的说明执行年龄。包括赤裸的 dna 折纸作为对照。
  7. 如步骤4中所述 (图 2) 中所述, 对多面体进行映像。

    公式-1)每个多阳离子的胺基团数
    Equation 1

    公式 2)磷酸盐摩尔
    =Equation 2

    公式 3)多角体的体积 (μl)
    =Equation 3

6. 与硫酸糊精分离

  1. 使用公式 4 (表 2) 计算每份糊精的硫酸盐组数。
  2. 使用公式-5, 以预定义的 ap 比计算聚面体分解所需的糊精硫酸盐体积。a-p 电荷比是多阴离子 (a) 的硫酸盐基团与 dna 折纸磷酸盐基团 (p) 之间的比率。为了有效地分解多层化合物 (例如500-1000), 需要过量的硫酸右旋糖酐。例如, 要分解在第5节 (聚色含有1个磷酸盐 nmol) 中制备的聚 plex, 在 aop 1, 000, 需要3.6μl 的硫酸糊精 40 kda (50 mg/ml) (ap 为 1, 000, 磷酸盐的 nmol 为 1, 硫酸盐糊精的分子量为 40, 000 g/mol, 糊精硫酸盐库存溶液浓度为 50 mgml, 硫酸盐的含量为 220)。在步骤5.4 的多面体中加入3.6μl 的硫酸糊精 (50 mg/ml), 搅拌均匀。
  3. 如果使用壳聚糖聚醚, 加入 naoh, 以方便分解过程。添加 naoh, 最终浓度为 10 mm。跳过 lpei 复 plex 的此步骤。
  4. 按照步骤3中的说明执行年龄段 (图 1b)。包括一个赤裸的 dna 折纸和多面手作为对照。

    公式 4)每个多阴离子的硫酸盐基团数 =
    Equation 4

    公式 5)硫酸糊精的体积 (μl)
    =Equation 5

7. 对镁消耗的稳定性

  1. 用超滤柱 (mwco ~ 3 kda) 用4x600μl 的 mg-零缓冲液 (5 mm tris、1 mm edta 和 30 mm nmol) 清洗20μl 的 dna 折纸或相应的聚 plex (包括 2 nmol 磷酸盐)。每次旋转在 14, 000xg 的 rt. 3-5分钟。
  2. 收集剩余的溶液 (80μl), 并在37°c 下孵育一天, 在650转/分的温度。
  3. 如果测试 lpei 聚面, 请添加 2.5μl mgcl2 (500 mm), 最终浓度为 16 mm mgcl2。然后, 加入7μl 的硫精糊精 (50 mg/ml) (相当于 aop 1, 000) 来分解核心 dna 纳米结构 (分离, 见步骤 6)。
    注: 如果使用壳聚糖聚体或裸 dna 折纸, 请跳过此步骤。
  4. 按照步骤3中所述 (图 2) 进行 nstem 成像。

8. 裸体 dna 折纸纳米结构的 dnase i 滴定测定

  1. 将3μl 的裸 dna 折纸, 包括 1 nmol 磷酸盐和2μl 的 10x dnase i 缓冲液 (100 mm Tris-HCl, 25 mm mgcl2, 5 mm cacl2, ph 7.6), 1μl mgcl2 (250 mm), 在 0.2 ml pcr 管中的水的12μl。加入2μl 的 dnase i (10倍)。调整 dnase i (10倍) 的库存浓度, 使最终的 dnase i 浓度达到 0.25-2 uml。
  2. 在37°c 下将样品在热环器中培养1-2小时。
  3. 将样品浸入冰中, 通过添加 2μl 500 mm 二硫醇 (dtt) 和 2.5μl egta (33 mm) 来使其失活。
  4. 使用步骤3中所述的年龄分析示例。

9. 多聚体向 dnase i 方向的稳定性

  1. 将聚氨酸 (包括在不同 nsp 比下制备的 1 nmol) 的4μl 与 dnase i 缓冲液 (10x) 的1.5 微米、tb 的8μl 和 dnase i (100 uml) 的1.5 微米与 0.2 ml pcr 管中混合。
  2. 在37°c 的温度下将样品在热环器中培养24小时。
  3. 加入2μl 蛋白酶 k (20mg/ml), 在37°c 时在热环素中消化 dnase i., 以吸收30分钟。
    注: 可以通过添加1.5μl 的 dtt (500 mm) 和2μl 的 egta (33 mm) 来实现 dnase i 的化学失活, 而不是酶消化。
  4. 加入3.6μl 的磺酸糊精 (50 mg/ml) (相当于 aop 1, 000) 来分解核心 dna 纳米结构。
  5. 按照步骤3中的说明执行 age (图 3 a,图 3A)。包括新鲜的 dna 折纸作为测量和比较凝胶上的带强度的对照。
  6. 根据供应商提供的协议, 利用挤压冷冻提取柱对年龄源带进行消费, 并提取 dna 折纸。
  7. 按照步骤4中所述 (图 2) 进行 nstem 成像。

10. 胎儿牛血清 (fbs) 的稳定性

  1. 将4μl 的裸 dna 折纸或其相应的聚体 (包括 1 nmol 的磷酸盐) 与17μl 的 tb + 10% fbs 混合在 0.2 ml pcr 管中。使用刚解冻的 fbs。
  2. 将样品在37°c 的热循环中培养24小时。
  3. 将样品浸泡在冰浴中。
  4. 如果测试了聚面, 请加入3.6μl 的硫糊精-40kda (50 mg/ml) 进行分离。此外, 如果使用壳聚糖多路复用, 请添加 naoh (参见步骤 6.3)
  5. 按照步骤3中的说明执行年龄段。包括新鲜的 dna 折纸作为测量和比较凝胶上的带强度的对照。
  6. 利用年龄段上的带, 通过挤压冷冻提取柱提取 dna 折纸。
  7. 在 0.2 ml pcr 管中提取的 dna 折纸溶液 (20μl) 中加入2μl 蛋白酶 k (20mg/ml)。在37°c 时在热环器中培养 30分钟, 以消化与纳米结构结合的血清蛋白质。
  8. 用5x500μl 的 tb 清洗样品, 包括 16 mm mgcl2 , 使用超离心柱 (mwco ~ 100 kda) 将蛋白酶 k (mM ~ 28.9 kda) 洗掉。每次旋转在 14, 000xg 的 rt. 3-5分钟。
  9. 按照步骤4中的说明执行 nstem 成像 (图 3)。
    注: 从步骤10.6 中提取的凝胶样品可直接用于 nstem 成像。然而, 由于血清蛋白与 dna 折纸纳米结构的结合, 成像可能具有很大的挑战性。因此, 建议使用蛋白酶 k (步骤 10.7-10.9) 来促进成像过程。

11. 辣根过氧化物酶 (hrp) 功能化 dna 折纸在多形涂层上的可添加性检测

  1. 如步骤2所述, 纯化自组装的生物技术-nr (biotin-nr)。
  2. 用 200μl hrp 共轭链霉素 (540 nm, tb 缓冲液) 培养200μl 纯化的生物素-nM (36 nm, 16 mm 补充结核病缓冲液)。加入4.8μl 的 mgcl2 (500 mm), 最终浓度为 14 mm。在热敏管中以650转/5 分的速度在 r. t. 12小时内孵化
  3. 采用 peg 纯化方法 (如步骤2所述) 纯化 hrp 功能化 nr (hrp-nr), 去除未结合的 hrp 酶。在结核病中对沉淀的 hrp-nr 进行重组, 包括 16 mm mgcl2
  4. 将纯化的 hrp-nr (36 nm) 与不同浓度的6.5μl 聚离子混合, 以1、2、4、10和20的 nM 比制备多普莱斯 (使用公式 3)。
  5. 对非生物素化 nr 重复步骤 11.2-11.2。由于 hrp 酶可能与 dna 折纸非特异性结合, 非生物素化 dna 折纸 (用 hrp 酶和纯化的 peg) 进行处理 (类似于生物素-nr), 将作为检测的对照。
  6. 将6.5μl 的蒸馏水与不同浓度的不同浓度的多角混合, 与1、2、4、10和20的定义 nsp 比相对应。这些样本作为空白组。
  7. 将步骤 11.4-11.6 (12.5μl) 中的制备溶液添加到96孔板 (包括 72.5μl hepes 缓冲液 (25μl hepes) 中, 其中包括202.5μl 的 hepes (25mm m hepes, 20 mm kcl, 200 mm nacl, 0.05% triton x-100, 1% dmso, ph 7.4), 搅拌良好。
  8. 加入10μl 的 2, 2 '-偶氮-bis(3-乙基苯甲噻唑啉-6-磺酸) (abts) (15 mm)。
  9. 加入5μl 的 h2o2 (12 mm), 通过上下移液进行混合.h2o2 引发反应.
  10. 使用多模板式读取器测量421纳米超过4小时的吸收率 (图 4 a)。

12. 检测血液结合型凝血动物 (hba) 功能化 dna 折纸在多聚涂层上的可重复性

  1. 如步骤2中所述, 纯化 hba 函数化 nr (hba-nr)。在结核病中再利用沉淀的 hba-nr, 辅以 6 mm mgcl 2 (较高的盐浓度导致 hba-nr聚集)。
  2. 将 bba-nr (40 nm) 10μl 与不同浓度的10μl 多角共混, 制备1、2、10和20的定义 nM 比的多普莱斯。
  3. 在与1、2、10和20的 n/p 比率相对应的不同浓度下, 将 naked-nr (40 nm) 或蒸馏水与10μl 的聚合物混合10μl。
  4. 将步骤12.2 和12.2 中的20μl 制备溶液加入96孔板, 包括60μl 的 hepes 缓冲液 (25 mm hepes、20mm kcl、200 mm nacl、0.05% triton x-100、1% dmso、ph 7.4), 搅拌良好。包括至少一个空白样品, 用水代替20μl 聚面或聚阳溶液 (从步骤12.2 和 12.2)。
  5. 加入5μl 的血红素 (0.04 mm), 然后加入10μl 的 atbs (15 mm)。将板材放在轨道振动台上5分钟。
  6. 加入5μl 的 h2o2 (12 mm), 通过上下移液进行混合.
  7. 使用多模板读取器测量 421 nmmb 30分钟的吸收率 (图 421)。

Representative Results

设计了三种不同构型的 dna 折纸纳米结构, 包括纳米体 (nr)、纳米粒子 (nb) 和线框纳米结构 (wn) (纳米结构的三维模型如图 2所示)。nr 和 nb 分别是在正方形晶格和蜂窝晶格的基础上设计的, 分别使用 cadnano17 , wn 是利用代达罗软件18创建的。已经公布了 dna 纳米结构的设计和自组装的综合协议, 已经公布了19202122.根据 stahl 等人描述的协议, 订购、自组装和进一步纯化了形状特异性主食链。23 (步骤 2)。

采用凝胶阻滞法和 nstem 成像法对多层进行了表征。在将 dna 折纸与多面体混合后, 观察到裸纳米结构带向阴极的转移 (图 1a)。这可归因于磷酸盐基团在与多离子结合时负电荷的平衡和复合物整体尺寸的增加。添加额外数量的多阴离子, 如硫酸糊精, 可以逆转多普莱斯的形成。在这方面, 与低分子量的硫酸右旋糖酯 (mw ~ 4kda) 相比, 分子量较高的糊精硫酸盐 (mw ~ 40kda) 更有效 (图 1b)。

用醋酸铀阴性染色 tem 成像 lpei 多层, 对任何颗粒进行成像都很困难。据推测, lpei 可能会阻碍醋酸铀与磷酸盐主干结合, 由于对 dna 折纸的严密屏蔽。因此, 在 nstem 成像之前, lepi 多层中加入了过量的硫酸糊精。未解的 dna 折纸纳米结构无缺陷或分解的迹象。相反, 壳聚糖多层被成功地成像, 无需聚阴离子处理 (图 2)。

所有的裸 dna 纳米结构 (无论其不同的配置) 在37°c 孵育后完全变性在 Mg-zero 个缓冲区, 证实了 nstem 成像。相反, 在 N/P≥1涂覆 lpei 或壳聚糖的纳米结构保持完好。同样, dnase i 滴定检测显示无保护的纳米结构对酶消化的敏感性。虽然裸纳米结构在2小时后在 1 u/ml dnase i 存在的情况下被完全消化, 但 lepi 或壳聚糖封装的 dna 折纸在 mg-零缓冲液中保持完整, 并以 10 umml dnase i 为补充, 至少一天 (图 2)。通过提高多层的 nsp 比, 实现了对溶核消化的更高稳定性。此外, 与壳聚糖相比, lpei 更有效地保护 dna 纳米结构 (图 3a,图 3c), 这可能是由于 lepi 的电荷密度较高, 因此与 dna 24 的结合亲和力更高.使用不同分子量的 lpei 时无差异(图3b)。

在聚合物外壳中封装后, dna 纳米结构中官能团的可寻址性是一个重要特征。此外, 还研究了聚离子涂层与辣根过氧化物酶 (hrp) 和血红素结合适配剂 (hba) 功能化 dna 折纸的相容性。三个生物素化的短纤维链从 nr 表面伸出, 然后用 hrp 共轭链霉素 (每 dna 三种酶) 进行功能化。催化高活性 (kd:439 nm) hba aptamer ps2.m (5 '-ggggggggggggggggg-3 ') 被选定为这些实验 25。nr 表面伸出多达24根短线, 长度为5纳米的链接器 (5 '-aaaagaaaaaaaa-3 '), 其次是 ps2。m 序列 (每个 dna 折纸24个适配体)。在 lpei 和壳聚糖变异 np 比 (图 4-a-b) 16 中, 用 lpei 和壳聚糖包覆 hrp 或 hba 功能化 dna 的活性没有明显的障碍.然而, hrp 酶与 dna 折纸结合后的动力学发生了巨大的变化 (图 4c)。

Figure 1
图 1: 代表多普勒形成和解分离的年龄图像。(a)在 0.01 ~ 8 的 np 比条件下, 与壳聚糖混合的 nb 电泳移动转移法。每条车道包含 1个 nmol nb。第一条车道是参考 n b。(b)用聚阴离子硫酸右旋糖酐 (ds) 分离多层植物。这一数字已从先前公布的图16中修改。请点击这里查看此图的较大版本.

Figure 2
图 2: dna 折纸和多层的负染色 tem 显微图像.裸 dna 折纸纳米结构的三维模型和 nstem 显微图像 (第1和第2列)。lpei 多层 (脱封后) 和壳聚糖多层 (第3栏和第4栏) 的 nstem 显微图像。nstem 图像的赤裸和受保护的 dna 折纸 (多普罗) 遭受镁耗尽 (第5、第6和第7栏), 酶降解 (第8和第9栏), 血清消化 (第5和第11栏) 在37°c 一天。lpei-5 kda 被用于此检测。在37°c 孵育2小时后, 在 1 uml dnase i 或 tb + 10% fbs 中, 赤裸 dna 纳米结构在年龄检测过程中被降解后无法检测到。刻度柱: 100 纳米。这一数字已从先前公布的图16中修改。请点击这里查看此图的较大版本.

Figure 3
图 3: dnase i 保护检测的代表性结果。(a)以2、4、8和10的 nop 比制备的城镇多孔与 lpei-5 kda、lpei-10kda 和 lpei-25 kda 的 dnase i 保护试验。样品在37°c 下经过 10 umml dnase i 施加24小时。最后一条车道是控制 wn。在加载到凝胶中之前, 对多层进行了分离。(b)从 age 图像-a 中提取不同 lpei 的 dna 组合多径的归一化平均带强度。y 轴表示归一化的平均波段强度。(c)在1、2、4、10和20的 nsp 比下制备的壳聚体-wn 多层多聚体的 dnase i 保护试验。样品在37°c 下经过 10 umml dnase i 施加24小时。车道6是控制多边形 (n/p 20)。最后一条车道是控制 wn。所有壳聚糖多层在加载前被分离到凝胶中。这一数字已从先前公布的图16中修改。请点击这里查看此图的较大版本.

Figure 4
图 4:比色酶和功能化 dna 折纸检测的代表性结果。(a)反应开始后3.7小时涂覆壳聚糖的酶功能化纳米结构 (hrp-nr) 的比色法。(b)在反应起始6分钟后, 用壳聚糖包覆的抗作用功能化纳米结构 (hba-nr) 的比色法测定。y 轴表示归一化吸收。(c)随着时间的推移, 对 hrp 和 hrp-nr 的比色测定进行监测。这一数字已从先前公布的图16中修改。请点击这里查看此图的较大版本.

阳离子聚合物 壳 聚 糖 lpei-5 kda lpei-10 kda lpei-25 kda
聚合物的分子量 (kda) 5 5 10 25
单体的分子重量 (g/mol) 161 43 43 43
每单体胺的数量 1 1 1 1
每种聚合物的胺含量 28 116 232 581

表1。计算每个多阳离子的胺组数。

硫酸糊精的分子量 (kda) 4个 40
单体分子量 (g/mol) 26w 26w
每个单体的硫酸盐数量 2 2
每种聚合物的硫酸盐数量 22 220

表2。计算每个多阴离子的硫酸盐组数。

Discussion

在 dna 折纸的自组装中, 主食线通常以5-10 的多余比添加到支架上。这些多余的订书条也结合到多阳离子, 并在一元计范围内形成多层, 这是更难以从 dna 折纸多层分离。因此, 多普形成的一个关键步骤是去除多余的短纤维链, 并使用纯化良好的 dna 折纸纳米结构。

其他方法已经开发出稳定 dna 纳米结构, 如通过点击反应26的 dna 链的环化。由于形成互锁单链环需要碱基和氮化物修饰的短纤维链, 这种技术对于稳定 dna 卡烯内等小型纳米结构是有限的, 对于较大的 dna 折纸来说是不容易扩展的结构, 如本协议中使用的结构。最近, gerling报告了一种利用紫外线照射在 dna 纳米结构内的相邻胸组织之间建立共价环布腾吡啶二聚体 (cpd) 键的方法。虽然该方法具有位点选择性和可扩展性, 但其保护 dna 折纸的效率远远低于多离子涂层。例如, cpd 稳定 dna 折纸对象在1小时内只持续 0.4 u/ml dnase i, 而多层体体在存在 10 u/ml dnase i 的情况下至少持续一天。

总之, 基因治疗启发壳聚糖和 lpei 涂层是一种低成本、一步、高效的方法, 可以解决 mg 枯竭和富含核酸酶的培养基中 dna 折纸纳米结构的长期稳定性问题。多普莱克斯形成的可逆性促进了其在多步骤诊断测试中的应用, 在多步骤中, 保护 dna 折纸免受核溶解降解或盐耗尽至关重要, 但可能会在 dna 等其他步骤中造成问题放大。此外, 多离子涂层是提高细胞对用于药物输送应用的 dna 折纸纳米结构的吸收的一种潜在方法28

Disclosures

提交人声明没有与本报告有关的利益冲突。

Acknowledgments

根据第668477号赠款协议, 该项目获得了欧盟 "地平线 2020" 研究和创新计划的资助。在维也纳生物中心核心设施有限公司的 em 设施以80千伏的速度操作的 morgagni 上记录了 tem 图像。我们要感谢塔迪贾·凯基奇在图形设计方面的协助, 并感谢 elisa de liano 设计的线框纳米结构。

Materials

Name Company Catalog Number Comments
10× DNase I reaction buffer New England Biolab (NEB) B0303
ABTS (2′-Azino-bis(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid) diammonium salt) Alfa Aesar J65535
Amicon ultracentrifugation columns Merck Millipore UCF500308, UCF510024
Chitosan oligosaccharide lactate (Mn ~ 4000-6000, > 90% deacetylated, 60%. composition oligosaccharide Sigma-Aldrich 523682
Design-specific staple strands Integrate DNA Technologies (IDT)
Dextran sulfate sodium salt (Mr ~ 4 kDa) Sigma-Aldrich 75027
Dextran sulfate sodium salt (Mr ~ 40 kDa) Sigma-Aldrich 42867
DNA gel loading dye (6×) ThermoFischer sceintific R0611
DNase I (RNase free) New England Biolab (NEB) M0303
Ethylene glycol-bis(2-aminoethylether)-N,N,N′,N′-tetraacetic acid (EGTA) Sigma-Aldrich E3889
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) BioUltra, anhydrous, ≥99% (titration) Sigma-Aldrich EDS
Freeze'N Squeeze DNA Gel Extraction Spin Columns Biorad 7326165
Hemin Sigma-Aldrich H9039
HEPES Sigma-Aldrich H3375
Hydrogen peroixde slution (32 wt%) Sigma-Aldrich 216763
LPEI-25 kDa Polysciences, Inc 23966-1
NuPAGE Sample Reducing Agent (500 mM dithiothreitol (DTT)) ThermoFischer sceintific NP0004
Polyethylene glycol (PEG, MW ~ 8000 Da) Carl Roth O263.1
Polyethylenimine, linear, average Mn 10,000, PDI ≤1.2 Sigma-Aldrich 765090
Polyethylenimine, linear, average Mn 5,000, PDI ≤1.3 Sigma-Aldrich 764582
Proteinase K solution (20 mg/ml) ThermoFischer sceintific AM2548
Streptavidin-conjugated HRP ThermoFischer sceintific N100
SYBER safe DNA gel stain ThermoFischer sceintific S33102

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References

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