إيندوسيبلي، الخلية المحددة بنوع التعبير في نبات التمويل "عن طريق لحجر" بوساطة ترانس-التنشيط

* These authors contributed equally
JoVE Journal
Genetics

Your institution must subscribe to JoVE's Genetics section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

هنا، يصف لنا توليد وتطبيق مجموعة من المعدلة وراثيا التمويل نبات خطوط التعبير إيندوسيبلي، الخاصة بالانسجة مواتية في الخلايا الإنشائية الرئيسية الثلاثة وأرض قمية تبادل لإطلاق النار وأرض قمية الجذر وكامبيوم.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations | Reprints and Permissions

López-Salmerón, V., Schürholz, A. K., Li, Z., Schlamp, T., Wenzl, C., Lohmann, J. U., Greb, T., Wolf, S. Inducible, Cell Type-Specific Expression in Arabidopsis thaliana Through LhGR-Mediated Trans-Activation. J. Vis. Exp. (146), e59394, doi:10.3791/59394 (2019).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

التعبير إيندوسيبلي والأنسجة على حدة أداة هامة وقوية لدراسة ديناميات اضطراب الوراثية الزمانية. الجمع بين جرينجاتي بالمرونة والكفاءة الاستنساخ مع نظام ثبت ومرجعية لهجر نظام (يطلق عليها هنا غرام-LhG4) للتعبير إيندوسيبلي، نحن قد ولدت مجموعة من خطوط نبات المعدلة وراثيا التي يمكن أن تدفع بالتعبير عن المستجيب كاسيت بمجموعة من أنواع الخلايا المحددة في الخلايا الإنشائية النباتية الرئيسية الثلاثة. وتحقيقا لهذه الغاية، اخترنا نظام الموارد الوراثية-LhG4 المتقدمة سابقا على أساس عامل نسخ تشيميريك ومروج المشابهة من نوع البوب ضمان رقابة مشددة على مجموعة واسعة من مستويات التعبير. وباﻹضافة إلى ذلك، تصور المجال التعبير التي تنشط فيها عامل النسخ الاصطناعية، يتم ترميز مراسل فلورسنت المترجمة ER mTurquoise2 تحت سيطرة المروج pOp4 أو pOp6 في خطوط برنامج التشغيل. هنا، نحن تصف الخطوات الضرورية لإنشاء سطر برنامج التشغيل أو المستجيب، وتبين كيف يمكن الناجمين عن خلية محددة نوع التعبير وأتباعه في أرض قمية تبادل لإطلاق النار، وأرض قمية الجذر وكامبيوم من نبات. باستخدام برنامج تشغيل عدة أو كافة خطوط، أثر سياق محدد للتعبير عن أحد أو عوامل متعددة (المستجيبة) تحت سيطرة المروج الاصطناعية البوب يمكن تقييم سرعة، على سبيل المثال في مصانع F1 من عبور بين المستجيب واحدة ومتعددة خطوط برنامج التشغيل. ويتجلى هذا النهج التعبير حمل خارج الرحم من VND7، عامل نسخ NAC قادرة على حمل خارج الرحم الثانوية خلية الجدار ترسب بطريقة ذاتية في خلية.

Introduction

قيداً رئيسيا في علم الأحياء في عصر بوستجينوميك فك سياق الدور المحدد لعامل معين أو اضطراب الوراثية. كثيرا ما لا تسمح التأسيسي الاضطرابات الوراثية مثل النهج فقدان للوظيفة والكسب من وظيفة تحليل نقطة النهاية لعمليات التكيف مدى الحياة، تشويش التمييز بين الآثار الأولية والثانوية. وبالإضافة إلى ذلك، يمكن ملثمين سياق مهام محددة أو يخفف من آثار واسعة النطاق في أنسجة بعيدة أو خلال مراحل أخرى من التنمية. وعلاوة على ذلك، في الحالات القصوى، يمكن أن يحول دون الفتك أي فكرة آليا. ومن الناحية المثالية، للالتفاف حول هذه القضايا، أحد يمكن تحليل أثر اضطراب الوراثية الحادة داخل سياق محدد مثل نوع خلية محددة بطريقة حل الوقت. ولتحقيق ذلك، هي الأدوات الجينية للخلية إيندوسيبلي، الخاصة بنوع التعبير المطلوبة1. لتوفير موارد للتقييم السريع لديناميات الزمانية المكانية استجابة للمستجيب عينها، جمعنا بين سهولة الاستنساخ المنصوص عليها في نظام جرينجاتي2 مع أثبتت فعاليتها من نظام الموارد الوراثية-LhG43، 45،،6. ونحن قد ولدت مجموعة من خطوط التعبير عن عامل النسخ تشيميريك LhG4 تنصهر فيها المجال ملزم يجند من الفئران كورتيكويد مستقبلات (GR)7 تحت سيطرة المروجين محددة نوع الخلية جيدا تتسم8. في استراحة الظروف، يبقى عامل النسخ خارج النواة، كما يرتبط المجال الموارد الوراثية قبل HSP90 سيتوسوليك. مع إضافة يجند الاصطناعية الديكساميتازون (Dex)، هو فعل إزفاء النووية وسوف التوسط LhG4 النسخ من أشرطة الكاسيت التعبير تحت سيطرة المروج الاصطناعية المشابهة من نوع البوب ، مثل مراسل mTurquoise2 وشملت في بنود برنامج التشغيل تصور المجال التعبير بعد التعريفي.  وهكذا، الخطوط برنامج تشغيل تقنيا تحتوي أيضا على كاسيت المستجيب. عبور مجموعة من بنود برنامج التشغيل مع خط يحمل كاسيت المستجيب مع، على سبيل المثال، أحد جينات للفائدة تحت التحكم من نفس نوع البوب المروج وهكذا يسمح التقييم السريع لآثار حادة أو طويلة الأجل المستجيب التعبير في مجموعة واسعة من أنواع الخلايا.

هنا، نحن نقدم بروتوكول وصف الإجراءات اللازمة لإنشاء خطوط السائق والمستجيب، وتثبت كيف يمكن الناجم عن خلية محددة نوع التعبير وأتباعه في أرض قمية تبادل لإطلاق النار، وأرض قمية الجذر وكامبيوم من نبات. لتوضيح ذلك ببراعة وخصوصية لهذا النهج، فنحن نستخدم عامل النسخ المعروفة VND7 وقادرة على قيادة الخلية الثانوية مثل الخشب الجدار ثيكينينجس اكتوبيكالي9. علاج F1 من عبور بين السطر برنامج تشغيل11 10، pSCRوخط المستجيب pOp6:VND7 يؤدي إلى تكوين خلايا الخشب مثل حمل خارج الرحم في غمد النشا وقف الخلايا من نبات .

لتيسير توليد التجميعات الحمض النووي الكبيرة اللازمة لتشييد والبلازميدات التعبير السائق والمستجيب، كنا جرينجاتي بسرعة وكفاءة استنساخ الأسلوب2. جرنجيت الاستنساخ أساس في النوع الثاني S تقييد الإنزيمات مثل منظمة التعاون الاقتصادي31I أو إيسوشيزومير في جيش صرب البوسنة2. هذه الإنزيمات قطع المصب من مواقعهم الاعتراف غير المتناظر المنتجة يتدلى مع اختلاف تكوين قاعدة. من خلال دمج الإيكولوجية31I/جيش صرب البوسنةأنا تقييد مواقع في النوكليوتيد وتخصيص تسلسلات عبء محددة لعناصر الحمض النووي، استنساخ وحدات يتحقق، تيسير توليد التجمعات الكبيرة. وفي إطار جرنجيت، وحدات الحمض النووي تنقسم إلى فئات واو استناداً إلى تسلسل المتراكمة التي تعمل كمحولات ويتم تجميعها في هذا النظام. ولذلك، ينبغي أن تكون كبسولة تفجير تهدف إلى تضخيم المنتج المطلوب وفقا للوحدة النمطية المحددة2 (الشكل 1A). إذا كان هناك داخلية الإيكولوجية31I/جيش صرب البوسنةأنا الموقع والتسلسل غير متوافق مع وحدات الإدخال والوجهة جرينجاتي، يمكنك المتابعة دون موتاجينيزينج، ولكن بكفاءة أقل. بدلاً من ذلك، استخدام الطفرات موقع الموجه لإزالة الإيكولوجية31I/جيش صرب البوسنةوأنا تقييد مواقع مع الحرص على عدم تغيير الأحماض الأمينية في منتجات الجينات.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

يمكن الحصول على ناقلات ووحدات من المستودع غير هادفة للربح، أدجيني (https://www.addgene.org).

1-الاستنساخ باستخدام جرينجاتي

  1. تصميم كبسولة تفجير باستخدام يتدلى المدرجة في الجدول 1، استبدال 'NNNN' مع وحدة محول نوع خاص تسلسل المدرجة أدناه: إلى الأمام: 5´AACA جتكتك أ NNNN (ن) CA* + 3´ تسلسل معين، عكس: NNNN A جتكتك 5´AACA (n) + عكس تكملة 3´ تسلسل معين. إضافة قواعد المسطرة لضمان الحفاظ على الإطار القراءة.
    يتدلى الوحدة النمطية:
    ملاحظة: في إطار جرينجاتي الافتراضية، ست وحدات، واو، يتم تجميعها مع محطة تحول ناقلات العمود الفقري في تعبير واحد بلازميد (الشكل 1). عادة، سوف المرفأ وحدة بتسلسل منظم، ب-الوحدة الطرفي ن العلامة أو "دمية" تسلسل6، ج نمطية أقراص مدمجة، علامة د-وحدة ج-محطة طرفية أو دمية، ه وحدة المدمر، ووحدة نمطية و كاسيت مقاومة لاختيار المحورة وراثيا النباتات. محول للربط مع وحدات أخرى ستنشئ متوفرة للاستخدام بدلاً من وحدة نمطية و2.
  2. [بكر] تضخيم
    1. تضخيم تسلسل الفائدة مع الإشعال مصممة بواسطة تفاعل البوليميراز المتسلسل (PCR) وفقا للبروتوكولات القياسية.
    2. فصل المنتج [بكر] على [اغروس] هلام. المكوس والعمود تطهير الجزء الصحيح باستخدام تجاري كيت (انظر الجدول للمواد) وفقا لإرشادات الشركة المصنعة.
  3. إنشاء الوحدة النمطية للإدخال
    1. بشكل منفصل هضم متجه الوحدة النمطية ويفتت بكر (الخطوة 1.2.) (الشكل 1 أ، ب) مع منظمة التعاون الاقتصادي31I/Bsaالأول باستخدام 100-500 نانوغرام من الحمض النووي (خط متجه أو جزء) وميليلتر 3 10 × الهضم المخزن المؤقت 5-10 يو الإيكولوجية31I في أنبوب وإحضار وحدة التخزين إلى 30 ميليلتر مع ddH2o.
    2. المزيج بلطف من بيبيتينج صعودا وهبوطاً، وتدور إلى أسفل بإيجاز في 1,000 س ز. احتضان عند 37 درجة مئوية في كتلة حرارة لمدة 15 دقيقة (أو بناء على توصية الوقت إنزيم التقييد التي تم شراؤها).
    3. بعد الهضم وتنقية العمود كل عينة باستخدام تجاري كيت (انظر الجدول للمواد)، وتحديد كمية الحمض النووي التي تم الحصول عليها بواسطة تحديد الكثافة البصرية على 260 nm (OD260) باستخدام جهاز المطياف الضوئي.
    4. ميكس نغ 30 – 100 يهضم بيبيتينج صعودا وهبوطاً عدة مرات إدراج وناقل 10 – 50 نانوغرام هضمها واحتضان مع 1 ميليلتر ليجاسى T4 (يو 5/ميليلتر، و 3 ميليلتر 10 × T4 ربط المخزن المؤقت في إجمالي حجم 30 ميليلتر في درجة حرارة الغرفة ح 1 (بناء على توصية المورد ليجاسى T4) (انظر الجدول للمواد).
      ملاحظة: حساب متجه الوحدة النمطية: الوجهة إدخال نسبة المولى المطلوبة (مثلاً، 3:1) لربط اعتماداً على تركيز وطول من دخول إدراج وحدة نمطية.
    5. لزيادة كفاءة التحويل، تعطيل الحرارة ليجاسى T4 التي تفرخ رد فعل عند 65 درجة مئوية لمدة 20 دقيقة.
    6. استخدام المنتج عملية ربط لتحويل المختصة كولاي الخلايا وفقا للبروتوكولات القياسية مختبر وانتشار البكتيريا في لوحات أجار تستكمل مع الأمبيسلّين (100 ميكروغرام/مل)
    7. احتضان اللوحة مع البكتيريا في 37 درجة مئوية لبين عشية وضحاها.
    8. الشاشة للمستعمرات مع وحدة الإدخال المطلوب من مستعمرة PCR باستخدام كبسولة تفجير 86A1 (5-جتجتجتجاتجتجاجك-3) و 86A2 (5-جتتتكككاجتكاكجاكج-3) والشروط المعيارية PCR.
      ملاحظة: هذا المزيج التمهيدي صالحة لجميع وحدات الإدخال كما ربط أجهزة الإشعال دخول ناقلات العمود الفقري.
    9. حدد واحدة من مستعمرات لعزل بلازميد. استخدام الثقافة السائل 2 مل رطل وتستكمل مع الأمبيسلّين (100 ميكروغرام/مل) واحتضان بين عشية وضحاها في شاكر 37 درجة مئوية.
    10. بروتوكول والبلازميدات عزل من ثقافة السائل بين عشية وضحاها مع "مجموعة" مصغرة من الإعدادية أو استخراج المطلوب (انظر الجدول للمواد).
    11. تحديد والبلازميدات مع إدراج الصحيح، إجراء تحليل إنزيم التقييد، على سبيل المثال عن طريق تحديد اثنين من الإنزيمات التي تقطع فريد في إدراج الخاص بك عن طريق خلط 200 نانوغرام بلازميد، 2 ميليلتر 10 × الهضم العازلة، يو 5-10 لتحديد تقييد الإنزيمات و ddH2 يا إلى 20 ميليلتر.
    12. التسلسل والبلازميدات المحدد باستخدام كبسولة تفجير 86A1 و 86A2 (راجع الخطوة 1.3.9.).
  4. إنشاء وحدة نمطية الوجهة:
    ملاحظة: بلازميد الوجهة استخدام الوجهة المرغوب فيه الوحدة النمطية pGGZ001 أو pGGZ002 أو pGGZ0032 (الشكل 1).
    1. في أنبوب إضافة ومزيج 50 – 150 نانوغرام ناقل الوجهة فارغة (pGGZ003، على سبيل المثال)، شغل 50-300 نانوغرام لكل وحدة إدخال، 2 ميليلتر 10 × الهضم العازلة العازلة، ميليلتر 1.5 ملم 10 ATP، 1 ميليلتر ليجاسى T4 (يو 30/ميليلتر)، 5-10 ميليلتر يو إيكو31I ودرهم2س لإجمالي حجم 20 ميليلتر.
      ملاحظة: حساب نسبة المولى المطلوب إدخال الوحدة النمطية: الوجهة ناقلات (مثلاً 3:1) لربط اعتماداً على تركيز وطول من دخول إدراج وحدة نمطية.
    2. خلط والقيام برد فعل جرنجيت2 استخدام ثيرموسيكلير بكر التناوب 30 مرة بين 37 درجة مئوية لمدة 5 دقائق و 16 درجة مئوية لمدة دقيقة 2، تليها خطوات وحيدة لمدة 5 دقائق عند 50 درجة مئوية و 5 دقائق عند 80 درجة مئوية.
    3. إضافة إلى زيادة الكفاءة، 1 ميليلتر ليجاسى T4 (30 U/ميليلتر) وميليلتر 1.5 ملم 10 ATP لرد الفعل واحتضانها ح 1 في درجة حرارة الغرفة، تليها المنظمة الحرارة من T4 الحمض النووي ليجاسى عند 65 درجة مئوية لمدة 20 دقيقة.
    4. استخدام رد فعل ربط لتحويل المختصة كولاي وتنتشر البكتيريا في لوحات أجار تستكمل مع السبيكتينوميسين عامل انتقائية مناسبة (50 ميكروغرام/مل).
    5. احتضان تحول كولاي على اللوحة في 37 درجة مئوية لبين عشية وضحاها.
    6. تأكيد التحويل، إعادة متتالية كل من المستعمرات واحد المحدد في السبيكتينوميسين (50 ميكروغرام/مل) والامبيسلين (100 ميكروغرام/مل) الذي يحتوي على لوحات، على التوالي. استخدم فقط المستعمرات التي تنمو في السبيكتينوميسين ولكن ليس على لوحات الأمبيسلّين.
    7. احتضان المستعمرات كولاي بين عشية وضحاها في 37 درجة مئوية.
    8. حدد واحدة من مستعمرات لعزل بلازميد. استخدام الثقافة السائل 2 مل رطل وتستكمل مع السبيكتينوميسين (50 ميكروغرام/مل) واحتضان بين عشية وضحاها في شاكر 37 درجة مئوية.
    9. عزل والبلازميدات المقابلة مع "مجموعة" صغيرة الإعدادية (انظر الجدول للمواد).
    10. التحقق من تحليل إنزيم التقييد (انظر 1.3.12). وتحديد تسلسل نيات إيجابية باستخدام كبسولة تفجير 3 88 (5-أككتكتكججكتتكتج-3)، 4 88 (5-ككتتتتاكجتككتج-3). إذا كان لا يمكن أن تكون متسلسلة الإدراج تماما مع هذه الإشعال، تصميم كبسولة تفجير داخلي للتسلسل.
      ملاحظة: لتحديد استنساخ مع العدد الصحيح موسيقى البوب تكرار تسلسل (انظر المناقشة)، في كبسولة تفجير pOp6 (pOp6_F، 5-تجكاتاتجتكجاجكتكاجا-3؛ و pOp6_R، 5-كتاتاتاجاجاججتكت-3) التي تربط في يمكن استخدام اختصار المرافقة متواليات التضخيم بكر والتفريد جل اللاحقة لتميز بالحجم.
  5. إنشاء سوبيرمودولي المتوسطة
    1. للجمع بين مجموعتين من مجموعات مستقلة من وحدات الإدخال، كما هو مطلوب لتوليد الموارد الوراثية-LhG4 سائق الخطوط مع كاسيت المستجيب مراسل المتكاملة، أول بناء اثنين الوسيطة والبلازميدات، يسمى سوبيرمودوليس2، قبل تجميع التعبير النهائي بلازميد في pGGZ001 أو pGGZ003.
    2. تأكد من إضافة محول F-H في نهاية سوبيرمودولي الأول ومحول H-A في بداية سوبيرمودولي الثانية (تلك التي تخدم كاتصالات بين اثنين بنيات) ك وصف2.
      ملاحظة: فقط وحدة الوسيطة pGGN000 يحمل كاسيت المقاومة. لتوليد بلازميد التعبير، القيام برد فعل جرينجاتي مع ناقل الوجهة والمتوسطة pGGN000 و pGGM000 سوبيرمودوليس. وبدلاً من ذلك، مزيج من ناقل الوجهة، pGGN000 سوبيرمودولي المتوسطة، والوحدات الوحيدة المتبقية القيام برد فعل جرنجيت2. الأسلوب الأخير هو أقل كفاءة من السابق ولكن يمكن أن يكون أسرع.
    3. لإنشاء سوبيرمودولي pGGM000/pGGN000، خلط 1.5 ميليلتر (100-300 نانوغرام/ميليلتر) لكل من وحدات الإدخال مع 1 ميليلتر (30 نانوغرام/ميليلتر) فارغة وسيط ناقل (pGGM000 أو pGGN000)، والهضم المخزن المؤقت 10 x ميليلتر 2، ميليلتر 1.5 ملم 10 ATP، 1 ميليلتر ليجاسى T4 (30 U/ميليلتر) ، و 5-10 يو الإيكولوجية31I في إجمالي حجم 20 ميليلتر.
      ملاحظة: حساب متجه الوحدة النمطية: الوجهة إدخال نسبة المولى المطلوبة (مثلاً، 3:1) لربط اعتماداً على تركيز وطول من إدراج وحدة الإدخال
    4. خلط والقيام برد فعل جرينجاتي كما في الخطوة 1.4.2
    5. إضافة إلى زيادة الكفاءة، 1 ميليلتر ليجاسى T4 و 1.5 ميليلتر ATP (10 ملم)، واحتضان ح 1 في درجة حرارة الغرفة، متبوعاً بالحرارة-المنظمة عند 65 درجة مئوية لمدة 20 دقيقة.
    6. استخدام 10 ميليلتر من رد فعل ربط تحويل المختصة كولاي والانتصارات في لوحات تتضمن كاناميسين (50 ميكروغرام/مل).
    7. أداء الحضانة بين عشية وضحاها لتحول كولاي على لوحة عند 37 درجة مئوية.
    8. إعادة متتالية كل المستعمرات واحدة مختارة في كاناميسين (50 ميكروغرام/مل) والامبيسلين (100 ميكروغرام/مل) الذي يحتوي على لوحات، على التوالي.
    9. أداء الحضانة بين عشية وضحاها من المستعمرات كولاي على لوحة عند 37 درجة مئوية.
    10. حدد واحدة من المستعمرات التي تنمو على كاناميسين فقط ولكن ليس على الأمبيسلّين لعزل بلازميد. استخدام الثقافة السائل 2 مل رطل وتستكمل مع كاناميسين (50 ميكروغرام/مل) واحتضان بين عشية وضحاها في شاكر 37 درجة مئوية.
    11. عزل والبلازميدات المقابلة الإعدادية المصغر باستخدام كيت (انظر الجدول للمواد).
    12. التحقق من البلازميدات بتحليل إنزيم التقييد (انظر 1.3.12). وتأكيد بالتسلسل باستخدام كبسولة تفجير 87E2 (5´-أجكاتكااكتاجكاجاج-3´) و 87E3 (5´-كجتتكككجتجاتاتجك-3´) الصلب إلى العمود الفقري pGGM000/pGGN000. إذا كان لا يمكن أن تكون متسلسلة الإدراج تماما مع هذه الإشعال، تصميم كبسولة تفجير داخلي للتسلسل.
      ملاحظة: إذا لم تنجح الاستنساخ في ناقلات pGGM000 أو pGGN000، هو أحد الحلول الممكنة هضم pGGM000 أو pGGN000 مع منظمة التعاون الاقتصادي31I وتشغيل على جل وتنقية من الهلام الجزء العمود الفقري (حوالي 2000 bp) pGGM000 أو pGGN000 دون كاسيت ككدب (حوالي 1400 bp). ثم تمضي عادة برد فعل عملية ربط.
  6. تحول سلالة A. tumefaciens بسوب+ (مثل بورصة عمان)، أصل بسا النسخ المتماثل (أوري ألف tum.) في ناقلات الوجهة تتطلب وجود بسوب بلازميد مساعد12. متواصلة من البكتيريا على ألواح رطل المحتوية على كلورامفينيكول (34 ميكروغرام/مل)، كاناميسين (50 ميكروغرام/مل)، بالسبيكتينوميسين (50 ميكروغرام/مل) والتتراسيكلين (12.5 ميكروغرام/مل). احتضان تحول A. tumefaciens على اللوحة في حاضنة 28 درجة مئوية لمدة يومين أو ثلاثة أيام.

2-جيل من نبات من النباتات المعدلة وراثيا

  1. التحول من التمويل نبات.
    ملاحظة: تحويل محطات التمويل (أ) ذكرت تشانغ et al., 200613.
  2. اختيار الخطوط المعدلة وراثيا.
    1. لتحديد النباتات المحولة، استخدام نظام التحديد المستخدمة في جابي-كات14 للمقاومة إلى السلفاديازين15.
    2. لتحديد خطوط مستقرة مع حدث دمج واحد ممكن، اختر تلك في توليد T2، تبين أن نسبة الفصل 3:1 في علامة المقاومة. تنتشر هذه الخطوط إلى جيل T3 وتحديد النباتات متماثل للجينات المقاومة. وبدلاً من ذلك، إجراء تحليل "لطخة جنوبي" أو قياسية كمية في الوقت الحقيقي بكر (SA-qPCR)16 لتحديد خطوط الإدراج واحد.

3-تحريض ترانس-التنشيط في نبات السائق خطوط

  1. الجذر
    1. لاختبار تعبير مراسل في التمويل (أ) سائق الخطوط التي تم إنشاؤها من خلال الخطوات 1 و 2 من تعقيم البذور كما هو موضح أدناه.
      1. إضافة 0.5-1.0 مل من 70% إيثانول + 0.01 ٪ المنظفات غير الأيونية للبذور حوالي 100 (20 ملغ) في أنبوب رد فعل 1.5 مل وعكس الأنبوبة عدة مرات. تدور إلى أسفل في 1000 غ س 15 ق و aspirate المادة طافية.
      2. إضافة 0.5-1.0 مل إيثانول المطلقة. قلب الأنبوبة عدة مرات، وزيادة ونقصان لأسفل ل 1,000 x ز 15 s وتجاهل المادة طافية.
      3. إضافة 0.5-1.0 مل إيثانول مطلقة وعكس تي أنبوب بضع مرات، تدور ثم إلى أسفل في س 1,000 ز 15 s وتجاهل المادة طافية.
      4. تسمح للبذور الجافة داخل غطاء محرك السيارة. إذا سوف تكون طبقات في أنابيب البذور تابع مع الخطوة 3.1.1.6.
      5. إضافة 0.5-1.0 مل من الماء المعقم وعكس الأنبوبة عدة مرات. تدور إلى أسفل في 1,000 س ز 15 s وتجاهل المادة طافية.
      6. إضافة 0.5-1.0 مل من الماء المعقم وعكس الأنبوبة عدة مرات. تدور إلى أسفل في 1,000 س ز 15 s وتجاهل المادة طافية.
      7. إضافة 0.5-1.0 مل الماء المعقم.
    2. إعداد نصف قوامها Murashige وسكوغ متوسطة، درجة الحموضة 5.8 وإضافة السكروز أجار و 1% مصنع 0.9 في المائة. بعد إضافة التعقيم الديكساميتازون (Dex)، حلت في [دمس]، إلى تركيز نهائي 10-30 ميكرومتر إلى لوحات تعريفية ومبلغ مساو من [دمس] إلى لوحات التحكم، على التوالي.
    3. وضع بذور لتصوير الجذر على لوحات والتجهيزه لهم عن 48 ساعة في الظلام والبرد (4 درجات مئوية).
    4. وضع لوحات في وضع عمودي في حاضنة نبات (يوم طويل 16/8 (ح)، 22 درجة مئوية، والرطوبة، 65%) وزراعتها لمدة خمسة أيام.
    5. خمسة أيام بعد الإنبات (همرشولد)، صورة الشتلات باستخدام الليزر [كنفوكل] الفحص المجهري.
  2. الجذعية
    1. تعقيم البذور كما هو موضح في 2.1.1. ووضع بذور ½ مرض التصلب العصبي المتعدد واجار مصنع 0.9% ولوحات السكروز 1%. التجهيزة عن 48 ساعة في الظلام والبرد (4 درجات مئوية).
    2. ستة إلى سبعة أيام بعد الإنبات، نقل الشتلات التربة، كل مصنع في وعاء واحد (يوم 16/8 (ح)، 22 درجة مئوية، والرطوبة، 65% من طويل).
    3. حمل ترانس-التنشيط في ينبع بسقي مع الحل صورية أو التنفيذ المباشر، أو بغمس النباتات في التنفيذ المباشر أو حلول وهمية، على التوالي.
    4. للري، استخدام حل التنفيذ المباشر 25 ميكرومتر في المياه التي أعدت من مخزون من 25 مم التنفيذ المباشر الذائبة في الإيثانول. المياه كل 2-3 أيام حتى الوقت المطلوب للاستقراء.
    5. غمس، تحضير كوب ل 1، 750 مل مياه التي تحتوي على 0.02% سيلويت L-77 مع 25 ميكرومتر من التنفيذ المباشر أو ما يعادلها من [دمس] للتنفيذ المباشر والعلاج الوهمي، على التوالي. تراجع معامل واحد لمدة 30 ق في استحثاث أو الحل صورية. كرر كل 2-3 أيام حتى الوقت المطلوب للتصوير.
      ملاحظة: بعد الغمس، النباتات ينبغي الاحتفاظ بالرطوبة العالية لمدة ساعة واحدة.
  3. تبادل لإطلاق النار قمية أرض (SAM)
    1. تعقيم البذور كما هو موضح في 2.1.1. إعداد لوحات مع ½ مرض التصلب العصبي المتعدد واجار مصنع 0.9% والمتوسطة السكروز 1% ووضع البذور على لوحات. تخزين اللوحات لمدة يومين في الظلام والبرد للتقسيم الطبقي.
    2. وضع لوحات في وضع عمودي في حاضنة مصنع. ستة إلى سبعة أيام بعد الإنبات، نقل الشتلات بالتربة، وكل مصنع في وعاء واحد (يوم 16/8 (ح)، 22 درجة مئوية، والرطوبة، 65% من طويل).
    3. عندما تنبع حوالي 1 سم طويلة (25-30 همرشولد)، رش نورات سام مع 10-50 ميكرون التنفيذ المباشر في ح20 ارتداء قناع لوجه. للاستقراء والتصوير في مراحل لاحقة من التطور، حمل سامز ينبع أطول أو يطلق النار على الجانب.
      ملاحظة: يمكن أيضا أن يكون سامز الناجمة عن باينتبروشينج الحل التنفيذ المباشر لمنع قطرات الرذاذ. استخدام قناع عندما يتم تطبيق التنفيذ المباشر عن طريق الرش.
    4. تشريح بعثات ح 24-48 بعد التعريفي، والمضي قدما للتصوير (انظر 4.3).
      ملاحظة: استخدمت فقط من النباتات غير العمدي للنشر لتقليل الاحتمالية لإسكات الجينات. واستخدمت النباتات في T2/T3 للتصوير.

4-التصوير التعبير مراسل في نبات السائق خطوط.

  1. الجذر
    1. نقل الشتلات من اللوحة إلى حل (PI) يوديد propidium ميكروغرام/مل 10 ومكافحة وصمة عار لمدة 5 دقائق.
    2. وضع الجذور في مجهر التصوير الدائرة (دائرة زراعة الأنسجة 1-جيدا في تغطية الزجاج الثاني، انظر الجدول للمواد) وصورة لها باستخدام ليزر [كنفوكل] المسح مجهر مع 63 × الهدف غمر المياه (انظر الجدول للمواد).
    3. لتصور الأسفار PI، استخدم الطول موجي إثارة للانبعاثات 488 نانومتر وجمع بين 590 و 660 شمال البحر الأبيض المتوسط. MTurquoise2 fluorescence استخدام 458 نانومتر الإثارة وجمع الانبعاثات بين 460 و 615 نانومتر.
  2. الجذعية
    1. أداء اليد أفقية قطع أجزاء من مصنع ينبع مع شفرة حلاقة، نسق جزء من حوالي 3 سم. الإصلاح تنبع بالإصبع على الجانب المعاكس للقسم المطلوب قطع. إجراء العديد من التخفيضات غرامة تسلسلياً ولكن لاحظ أنه ينبغي مقارنة المقاطع فقط من موقف مماثل في الساق.
    2. بعد كل قص وتزج ريزربليد في طبق بتري يحتوي على مياه الحنفية وجمع المقاطع الجذعية. وصمة عار المقاطع عند هذه النقطة أو جبل مباشرة على شرائح المجهر.
    3. لتلوين، تعد من 1 مل من 250 ميكروغرام/مل من محلول PI من الماء في طبق بتري صغيرة (انظر الجدول للمواد). تزج الفروع لمدة 5 دقائق، وشطف لهم في المياه. نقلها إلى شرائح المجهر مع الملقط غرامة أو فرشاة طلاء غرامة. الحرص على عدم ضغط العينات مع ساترة.
    4. صورة العينات باستخدام ليزر [كنفوكل] المسح مجهر مع 25 x غمس عدسة غمر المياه (انظر الجدول للمواد). استخدام 561 نانومتر الليزر تثير PI الأسفار وجمع من 570 إلى 620 نانومتر. استخدام 405 نانومتر لإثارة المستجيب فلوروفوري mTurquoise2 المشفرة بواسطة برنامج تشغيل الخط بنيات وجمع الانبعاثات من 425 إلى 475 نيوتن متر.
  3. إطلاق النار على أرض قمية
    1. قطع الجذع 2 سم تحت الحافة تبادل لإطلاق النار مع الملقط. عقد الجذعية في يد واحدة واستخدام الملقط غرامة لإزالة براعم الزهور وبريمورديا كبيرة. لإزالة بريمورديا الشباب، إصلاح SAM في وضع رأسي في طبق بتري يحتوي على 3% [اغروس]. استخدام مجهر والملقط لإزالة primordia الشباب قريبة من SAM. بدلاً من ذلك، استخدم قنية حقن (انظر الجدول للمواد) لقطع هذه بريمورديا.
    2. وصمة عار سام تشريح في حل 250 ميكروغرام/مل بي 5-10 دقيقة إجراء تلطيخ أما مباشرة بواسطة بيبيتينج بضع قطرات من تلطيخ الحل على رأس سام استعداد أو نقل العينة إلى أنبوب مليء تلطيخ الحل. الاحتفاظ سام مغمورة تماما أثناء الإجراء المصبوغة.
    3. ضع سام الملون إلى طبق بتري صغيرة (انظر الجدول للمواد) مع 3% [اغروس] متوسطة وتغطي SAM مع ddH2o.
    4. صورة تشريح سامز استخدام ليزر [كنفوكل] المسح مجهر مجهزة 25 x غمس عدسة غمر المياه (انظر الجدول للمواد).
    5. استخدام 561 نانومتر الليزر تثير PI الأسفار وجمع من 570 إلى 620 نانومتر. استخدام 405 نانومتر لإثارة mTurquoise2 فلوروفوري وجمع الانبعاثات من 425 إلى 475 نيوتن متر.
      سجل رصات الصور التي تغطي 50 ميكرومتر في الاتجاه z مع حجم خطوة 0.5 ميكرومتر.
      ملاحظة: يتطلب سام التصوير كما هو موضح هنا ليزر [كنفوكل] تستقيم المسح مجهر وعدسة (هنا، مياه غمس العدسة) مع المسافة العمل منذ فترة طويلة.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

جيل خطوط السائق والمستجيب عن طريق الاستنساخ جرنجيت

جرينجاتي استنساخ نظام يستند إلى GoldenGate الاستنساخ واستخدام endonuclease تقييد IIS نوع جيش صرب البوسنةأنا أو ما إيسوشيزومير إيكو31I. كما يمكن أن يكون يتدلى تنتج إنزيم بعيدة من موقعها على الاعتراف غير المتناظر، تكوين قاعدة من يتدلى بحرية تشكيل المختار، الذي هو الأساس نمطية للنظام. ويتم إدراج كل عنصر ولدت بكر، على سبيل المثال، تسلسل منظم أو الأقراص المدمجة أو المنهي، أولاً ناقل إدخال معينة مع مطابقة يتدلى المنتجة من خلاصة القيد لإنشاء وحدة نمطية. بعد سوبكلونينغ، تستخدم عددا من الوحدات النمطية المتطابقة، عادة ستة، لأن رد الفعل ربط جرنجيت أدى إلى الجمعية العامة للبناء في ناقل وجهة نبات ثنائي.

لتشغيل خطوط، تنصهر فيها الوحدات النمطية التي تحتوي على تسلسلات الحمض النووي من المروج الأنسجة على حدة (pTS) وعامل النسخ LHG4 غرام والمروج pOp6 ومراسل mTurquoise2 للطرفي ن إشارة هضميد وكانت إشارة استبقاء ER ج-الطرفية تنصهر فيها بما في ذلك الوحدات الطرفية ووحدات المحول المختلفة ووحدة نمطية للتحديد المعدلة وراثيا كما هو موضح سابقا 2،8 (الشكل 2). وشيدت خطوط المستجيب مع pOp6 المروج، وكاسيت المستجيب، على سبيل المثال تتألف من الجينات للفائدة والمدمر، فضلا عن وحدة ترميز جينات مقاومة لاختيار النباتات المحورة وراثيا (الشكل 2).

تنظيم دورات تعريفية لخطوط السائق والتصور للأسفار مراسل

التعريفي بالتنفيذ المباشر يؤدي إلى التعبير mTurquoise2 محددة نوع الخلية في endodermis الجذر (pSCR>> SP-mTurquoise2-هديل، و الشكل 3 ألف)، لحاء السلائف وكامبيوم (pSMXL5>> س-mTurquoise2-هديل 17، الشكل 3B)، والخلايا الجذعية في أرض قمية تبادل لإطلاق النار (pCLV3>> س-mTurquoise2-هديل 18، الشكل 3).

ترانس-تفعيل VND7 في خلايا غمد النشا كامبيوم

كحالة اختبار للتنشيط عبر، أنشأنا خط ترميز عامل النسخ الرئيسية جدار الخلية الثانوية VND7 تنصهر إلى مجال التنشيط VP16، الذي أظهر لحمل الثانوية الجدار تشكيل خلية مستقلة عندما المستجيب ميسيكسبريسيد 8،9،،من1920.

بعد 5 أيام علاج واحد مع 15 ميكرون من التنفيذ المباشر أو [دمس] للمحرض أو النباتات صورية على التوالي، وأعدت المقاطع الجذعية لتصور ليجنيفيكيشن حمل خارج الرحم في غمد النشا. يوديد Propidium يظهر في تقارب الجذعية قوية للأنسجة ليجنيفيد. فعل خلايا غمد النشا في عينات من التنفيذ المباشر، ولكن ليس في موك أظهر إشارة قوية لقناة بي وبعض الخلايا تظهر نموذجي شبكي سماكة جدار الخلية في خلايا الخشب (الشكل 4).

Figure 1
رقم 1. جرينجاتي الاستنساخ المبدأ. A) اندونوكليسيس تقييد نوع IIS، مثل جيش صرب البوسنةأناالإيكولوجية31I، الاعتراف بتسلسل غير المتناوب (أحمر)، وقطع دون تناسق في مسافة محددة بصرف النظر عن التسلسل (أزرق). إيكو31I تسلم 'جتكتك'، وتخفيضات من النوكليوتيدات الثاني مجرى النهر في موقع التسليم ويخلق عبء أربعة قاعدة 5 '. ب جرنجيت) استنساخ نظام يستند إلى نظام المرن مع دخول مختلف ست ناقلات pGGA000-pGGF000. تحتوي هذه الناقلات كاسيت مقاومة الأمبيسلّين (أمبر) وكاسيت ككدب محاط بمحولات معينة لكل ناقل الإدخال (على سبيل المثال pGGA000 دخول ناقلات) والاعتراف 'جتكتك' إيكو31I المواقع. إصدارات ككدب الهضم الإيكولوجية31I من pGGA000 ويخلق يتدلى النوكليوتيدات أربعة pGGA000 على حدة (أزرق داكن). يتم تضخيمه Insert1 الإشعال إيواء محولات معينة 'جتكتك' و pGGA000 وبعد الهضم متصلة في pGGA000. ويتبع نفس الإجراء مع الوحدات النمطية الأخرى. ج) رد فعل جرنجيت النهائي يجمع بين هضم الإيكولوجية31I pGGZ001 ناقل الوجهة ودخول ست ناقلات pGGA000-pGGF000 وربط المتزامنة لكافة الوحدات النمطية إلى ناقل الوجهة. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-

Figure 2
رقم 2. نظرة عامة على نظام التنفيذ المباشر-إيندوسيبلي لهجر/الملوثات العضوية الثابتة مع خطوط السائق والمستجيب. في برنامج تشغيل خطوط، مراقبة المروجين الأنسجة محددة (pTS) تعبير عامل النسخ الاصطناعية LhG4، الذي هو ترانسلاتيونالي تنصهر فيها المجال ملزم يجند من الفئران جلوكوكورتيكويد مستقبلات (GR) ومما يمنع، في غياب التنفيذ المباشر، إزفاء النووية. السطر المستجيب المرافئ كاسيت النسخي يقودها عنصر موسيقى البوب ومربع تاتا مع أحد المروجين الحد أدنى 35S . عبرت مع خط سائق وعند التنفيذ المباشر التعريفي، LhG4 غرام يربط العناصر من نوع البوب في كاسيت مراسل وتلك الموجودة في الوحدة النمطية المستجيب، حمل النسخ mTurquoise2 والمستجيب. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-

Figure 3
الشكل 3. خطوط سائق المستحث في الجذر والجذع وسام. A) سطر برنامج التشغيل الناجمة عن التنفيذ المباشر pSCR >>س-mTurquoise2-هديل (نامي في 50 ميكرومتر التنفيذ المباشر) في الجذر والعلاج الوهمي. مروج فزاعة (pSCR) يتوسط مركز هادئة (QC) والتعبير في endodermis، قشرة/endodermis الأولية (المبادرة). الخلايا مكافحة الملون مع يوديد propidium (PI). تغيير حجم أشرطة = 20 ميكرومتر. ب) سطر برنامج التشغيل الناجمة عن التنفيذ المباشر pSMXL5 >>س-mTurquoise2-هديل (انخفضت في حل التنفيذ المباشر 50 ميكرومتر وتصور بعد 3 أيام) في الساق والعلاج الوهمي. مروج SMXL5 (pSMXL5) يتوسط التعبير في المجال ولحاء سلائف الخلايا الجذعية كامبيوم. الخلايا مكافحة الملون مع يوديد propidium (PI). تغيير حجم أشرطة = 100 ميكرومتر. ج) سطر برنامج التشغيل الناجمة عن التنفيذ المباشر pCLV3 >>س-mTurquoise2-هديل (10 ميكرومتر، ح 48) في SAM. مروج CLAVATA3CLV3) يتوسط التعبير في مجال الخلايا الجذعية. إظهار الصور في الأسفل XZ و YZ المقاطع العرضية، والناجمة عن التنفيذ المباشر وصورية يعامل، على التوالي. الخلايا مكافحة الملون مع يوديد propidium (PI). تغيير حجم أشرطة = 20 ميكرومتر. الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-

Figure 4
الشكل 4. ليجنيفيكيشن حمل خارج الرحم في غمد النشا الجذعية. A) ليجنيفيكيشن حمل خارج الرحم ينظر إليها بعد خمسة أيام من التنفيذ المباشر التعريفي للسطر برنامج تشغيل pSCR >> VND7 VP16 في الساق. مروج فزاعة (pSCR) يتوسط التعبير في خلايا غمد النشا في الساق. تظهر الصورة اليسرى دمج قناة بي وميدان مشرق، الحق تظهر الصورة فقط قناة بي. ب) ويبين سيطرة وهمية لا توجد إشارة في خلايا غمد النشا. الخلايا مكافحة الملون مع يوديد propidium (PI). تغيير حجم أشرطة = 100 ميكرومتر. PI الأسفار false الملون باللون الأخضر بينما بلاستيدات الخضراء fluorescence السيارات الأحمر في جميع الصور. رؤوس الأسهم البيضاء أشر إلى النشا خلايا غمد. تظهر الصورة اليسرى دمج قناة بي وميدان مشرق، الحق تظهر الصورة فقط قناة بي.  الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-

وحدة نمطية 5 ' تراكم عادة ما تستخدم 3 ' تراكم
A ACCT مروج آكا
ب آكا العلامة الطرفي ن جكت
ج جكت الترميز تسلسل تكاج
د تكاج ج-محطة العلامة كتجك
ه كتجك فاصل ACTA
و ACTA كاسيت المقاومة جتات

الجدول 1: يتدلى المستخدمة لتصميم التمهيدي

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

هنا، نحن تصف الخطوات الضرورية لإنشاء وتطبيق مجموعة أدوات متنوعة وشاملة لنوع الخلية إيندوسيبلي، محددة ترانس-التنشيط. عبور خطوط تحمل أشرطة الكاسيت المستجيب تحت سيطرة المروج البوب مع خطوط برنامج تشغيل يسمح لدراسة آثار سوء التعبير في الجيل F1، تمكين التقييم السريع لاضطراب الوراثية في مجموعة واسعة من أنواع الخلايا. وبدلاً من ذلك، المستجيب بنيات يمكن استخدامها لتحويل خطوط برنامج التشغيل، أو بتكييف استراتيجية الاستنساخ وسائق والمستجيب بناء يمكن أيضا أن يقترن في تي-دنا واحد. تطبيقات لهذا النظام وتتراوح مكانياً وزمنياً الخاضعة لسوء التعبير الدراسات الخاصة بالمجال تدق لأسفل أو التكامل محددة التحرير ونوع الخلية الجينات.

أي من الإجراءات المذكورة هنا ينبغي أن تشكل تحديا لمختبرات مجهزة لتقنيات البيولوجيا الجزيئية العامة. نظام التعبير LhG4 قد تم اختبارها بدقة، ويكفل التعبير غير راشح وتونيابل التي يمكن أن تكون مدفوعة إلى أعلى المستويات8، على الرغم من أننا نحذر من أن النطاق الديناميكي لتركيز محفز ينبغي أن يحدد تجريبيا لكل برنامج تشغيل والمستجيب خط مزيج يجمع بين هذا النظام ثبت مع وحدات جرينجاتي الاستنساخ يوفر طريقة سريعة وبسيطة للتعبير إيندوسيبلي بأي نوع من الخلايا التي يتوفر مروج محددة. فقد لاحظنا جزئ أن الأحداث يمكن أن يحدث خلال تضخيم البلازميدات التي تحتوي على تسلسلات متكررة من المروج نوع الملوثات العضوية الثابتة . غالباً ما تؤدي هذه في أن يكرر أقل من تسلسل البروتوكول الاختياري، التي يمكن أن يقيمها PCR. ينبغي دائماً تأكيد ثوابت نهائية حسب تسلسلها في الإشريكيّة القولونية و tumefaciens المتبعة. ومع ذلك، أحداث عرضية جزئ اكتشفت فقط في كولاي.

وبالتالي الحد من تطبيق هذه التقنية هو وقت لتوليد النباتات المعدلة وراثيا.  أنها ذات أهمية حاسمة لاختبار الجينات إسكات، ابتداء من جيل T2، وإلا الإبقاء على خطوط ثابتة. لتقليل الفرصة لإسكات، ننصحك بجمع البذور فقط نموذج غير الناجمة عن النباتات.

الأسلوب الموصوفة هنا مكملة للأخرى عبر تفعيل نظم21،22، كما أنها توفر مورد شامل يجمع بين خصوصية النسيج مع التعبير إيندوسيبلي. تنمية المستقبلية ممكنة لهذا الأسلوب هو دمج الخلية أكثر نوع معين المروجين لمحرك الأقراص الموارد الوراثية-LhG4، على سبيل المثال في الأنسجة خارج الخلايا الإنشائية الرئيسية. فيما يخص المستجيبة، هو توسيع إمكانية مثيرة تكييف الجينات ذات كفاءة عالية تحرير أدوات تتيح للخلية نوع معين تدق عموميات23.

تتوفر خطوط سائق الموصوفة في Schürholz et al. عام 20188 من أثر (http://arabidopsis.info/)، ووصف بنيات الحمض النووي في لامبروبولوس et al., 20132 و Schürholz et al., 20188 متوفرة من أدجيني (https://www.addgene.org/).

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

الكتاب ليس لها علاقة بالكشف عن.

Acknowledgments

عمل في مختبراتنا معتمد من قبل مؤسسة البحوث الألمانية (DFG) منح WO 1660/6-1 (إلى جنوب غرب) و "الموارد الوراثية" 2104/4-1 (إلى آثاريا) و SFB1101 (إلى آثاريا و J.U.L) ومجلس البحوث الأوروبي منح consolidator (بلانتستيمس 647148) إلى آثاريا  جنوب غرب معتمد من خلال "الزمالة إيمي نويثر" من DFG من خلال منحة WO 1660/2.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Ampicillin Carl Roth GmbH + Co. KG K029.1
ATP Sigma-Aldrich A9187
Chloramphenicol Sigma-Aldrich C1919
Column purification Qiagen QIAquick PCR Purification Kit (250)
Culture chamber for imaging Sarstedt AG & Co. KG 1-well tissue culture chamber, on cover glass II
Dexamethasone Sigma-Aldrich D4903
DMSO Fisher Scientific, UK D139-1
Eco31I Thermo Fisher Scientific FD0294
injection cannula (0.30 x 12 mm, 30 G x 1/2) Sterican, Braun
Kanamycin Carl Roth GmbH + Co. KG T832.2
Leica TCS SP5 CLSM, HCX PL APO lambda blue 63x water immersion objectiv Leica, Wetzlar, Germany
MS medium Duchefa, Haarlem, Netherlands M0221.0050
Nikon A1 CLSM, Apo LWD 25x  1.1 NA water immersion objective Nikon, Minato, Tokyo, Japan
Petri dish 35/10 mm Greiner Bio-One GmbH, Germany 627102
Petri dish 60/150 mm Greiner Bio-One GmbH, Germany 628102
Petri dish 120/120/17 Greiner Bio-One GmbH, Germany 688102
Plant agar Duchefa, Haarlem, Netherlands P1001
Plasmid extraction Qiagen QIAprep Spin Miniprep Kit
Propidium iodide (PI) Sigma-Aldrich P4170
Razorblade Classic, Wilkinson Sword GmbH 7005115E
Reaction tubes Sarstedt AG & Co. KG 72.690.001
Silwet L-77 Kurt Obermeier GmbH & Co. KG, Bad Berleburg, Germany
Spectinomycin AppliChem GmbH 3834.001
Spectrophotometer Thermo Fisher Scientific NanoDrop 2000c
Sucrose Carl Roth GmbH + Co. KG 4621.1
Sulfadiazine Sigma-Aldrich S6387
Tetracycline AppliChem GmbH 2228.0025
T4 Ligase 5 U/µl Thermo Fisher Scientific EL0011
T4 Ligase 30 U/µl Thermo Fisher Scientific EL0013

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Moore, I., Samalova, M., Kurup, S. Transactivated and chemically inducible gene expression in plants. The Plant Journal. 45, (4), 651-683 (2006).
  2. Lampropoulos, A., et al. GreenGate---a novel, versatile, and efficient cloning system for plant transgenesis. PLoS One. 8, (12), e83043 (2013).
  3. Baroux, C., et al. Predictable activation of tissue-specific expression from a single gene locus using the pOp/LhG4 transactivation system in Arabidopsis. Plant Biotechnology Journal. 3, (1), 91-101 (2005).
  4. Craft, J., et al. New pOp/LhG4 vectors for stringent glucocorticoid-dependent transgene expression in Arabidopsis. The Plant Journal. 41, (6), 899-918 (2005).
  5. Moore, I., Galweiler, L., Grosskopf, D., Schell, J., Palme, K. A transcription activation system for regulated gene expression in transgenic plants. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 95, (1), 376-381 (1998).
  6. Samalova, M., Brzobohaty, B., Moore, I. pOp6/LhGR: a stringently regulated and highly responsive dexamethasone-inducible gene expression system for tobacco. The Plant Journal. 41, (6), 919-935 (2005).
  7. Picard, D. Steroid-binding domains for regulating the functions of heterologous proteins in cis. Trends in Cell Biology. 3, (8), 278-280 (1993).
  8. Schurholz, A. K., et al. A Comprehensive Toolkit for Inducible, Cell Type-Specific Gene Expression in Arabidopsis. Plant Physiology. 178, (1), 40-53 (2018).
  9. Kubo, M., et al. Transcription switches for protoxylem and metaxylem vessel formation. Genes and Development. 19, (16), 1855-1860 (2005).
  10. Di Laurenzio, L., et al. The SCARECROW gene regulates an asymmetric cell division that is essential for generating the radial organization of the Arabidopsis root. Cell. 86, (3), 423-433 (1996).
  11. Wysocka-Diller, J. W., Helariutta, Y., Fukaki, H., Malamy, J. E., Benfey, P. N. Molecular analysis of SCARECROW function reveals a radial patterning mechanism common to root and shoot. Development. 127, (3), 595-603 (2000).
  12. Hellens, R. P., Edwards, E. A., Leyland, N. R., Bean, S., Mullineaux, P. M. pGreen: a versatile and flexible binary Ti vector for Agrobacterium-mediated plant transformation. Plant Molecular Biology. 42, (6), 819-832 (2000).
  13. Zhang, X., Henriques, R., Lin, S. S., Niu, Q. W., Chua, N. H. Agrobacterium-mediated transformation of Arabidopsis thaliana using the floral dip method. Nature Protocols. 1, (2), 641-646 (2006).
  14. Kleinboelting, N., Huep, G., Kloetgen, A., Viehoever, P., Weisshaar, B. GABI-Kat SimpleSearch: new features of the Arabidopsis thaliana T-DNA mutant database. Nucleic Acids Research. 40, (Database issue), D1211-D1215 (2012).
  15. GABI KAT. Selection scheme used at GABI-Kat for resistance to sulfadiazine. Available from: https://www.gabi-kat.de/methods/sul-selection-scheme.html (2018).
  16. Huang, Y., et al. Standard addition quantitative real-time PCR (SAQPCR): a novel approach for determination of transgene copy number avoiding PCR efficiency estimation. PLoS One. 8, (1), e53489 (2013).
  17. Wallner, E. S., et al. Strigolactone- and Karrikin-Independent SMXL Proteins Are Central Regulators of Phloem Formation. Current Biology. 27, (8), 1241-1247 (2017).
  18. Fletcher, J. C., Brand, U., Running, M. P., Simon, R., Meyerowitz, E. M. Signaling of cell fate decisions by CLAVATA3 in Arabidopsis shoot meristems. Science. 283, (5409), 1911-1914 (1999).
  19. Watanabe, Y., et al. Visualization of cellulose synthases in Arabidopsis secondary cell walls. Science. 350, (6257), 198-203 (2015).
  20. Yamaguchi, M., et al. VASCULAR-RELATED NAC-DOMAIN6 and VASCULAR-RELATED NAC-DOMAIN7 effectively induce transdifferentiation into xylem vessel elements under control of an induction system. Plant Physiology. 153, (3), 906-914 (2010).
  21. Engineer, C. B., Fitzsimmons, K. C., Schmuke, J. J., Dotson, S. B., Kranz, R. G. Development and evaluation of a Gal4-mediated LUC/GFP/GUS enhancer trap system in Arabidopsis. BMC Plant Biology. 5, 9 (2005).
  22. Aoyama, T., Chua, N. H. A glucocorticoid-mediated transcriptional induction system in transgenic plants. The Plant Journal. 11, (3), 605-612 (1997).
  23. Decaestecker, W., et al. CRISPR-TSKO facilitates efficient cell type-, tissue-, or organ-specific mutagenesis in Arabidopsis. bioRxiv. (2018).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please sign in or create an account.

    Usage Statistics