Kılcal Elektroforez-kütle spektrometresi tarafından metabolomik analiz için kültürlü yapışan hücrelerden sulu metabolitlerin çıkarılması

Cancer Research
 

Summary

Bu makalenin amacı, metabolomik analiz için kültürlü yapışan hücrelerden sulu metabolitlerin çıkarılması için bir protokol açıklamak için, özellikle, kapiller Elektroforez-kütle spektrometresi.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations

Maruyama, A., Kami, K., Sasaki, K., Sato, H., Sato, Y., Tsuchihara, K., Makinoshima, H. Extraction of Aqueous Metabolites from Cultured Adherent Cells for Metabolomic Analysis by Capillary Electrophoresis-Mass Spectrometry. J. Vis. Exp. (148), e59551, doi:10.3791/59551 (2019).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Metabolomik analiz sadece normal hücrelere kıyasla kanser hücrelerinde spesifik metabolik düzenleme anlamak değil, aynı zamanda erken evre kanser tespiti ve kemoterapi tepkisi tahmini için biyomarkerleri belirlemek için umut verici bir omik yaklaşımı kanser hastaları. Metabolomik analiz için üniforma örneklerinin hazırlanması, ele alınması gereken önemli bir konudur. Burada, kapiller Elektroforez-kütle spektrometresi (CE-MS) kullanarak metabolomik analiz için kültürlü yapışan hücrelerden sulu metabolitleri ayıklamak için kolay ve güvenilir bir protokol sunuyoruz. Kültürlü hücrelerden sulu metabolitleri kültür ve yıkama hücreleri tarafından analiz edilir, metanol ile hücreleri tedavi, metabolitleri ayıklanması, ve CE-MS analizi için spin sütunları ile proteinleri ve makromolekülleri kaldırma. Diamid ile tedavi akciğer kanseri hücre hatları kullanarak temsili sonuçlar, bir oksidatif reaktif, oksidatif stres altında hücrelerin açıkça gözlemlenebilir metabolik kayması göstermektedir. Bu makale özellikle öğrenciler ve araştırmacılar metabolomikler araştırma dahil için değerli olacaktır, kim CE-MS tarafından analiz için hücre hatlarından metabolitleri hasat için yeni.

Introduction

Otto Warburg kanser hücrelerinin glikoz kadar almak ve yeterli oksijen varlığında lakdamak üretmek için mayalanmaya alışılmadık yeteneği elde gözlenen-bir fenomen Warburg etkisi veya aerobik glikoliz olarak adlandırılan1,2. Mitokondriyal solunum kusurları kanser hücrelerinde aerobik glikoliz için temel temel olarak spekülasyon3. Gerçekten de, Warburg etkisi fluorodeoxyglukoz (FDG)-pozitron emisyon tomografi (PET), klinik uygulamada yaygın olarak kullanılan tümör görüntüleme temeli4,5. Aerobik glikoliz yüksek bir oran kanserin önemli bir özelliği olarak kabul edilir ve son zamanlarda biri olarak kabul edilmiştir "kanser damgalar," D. Hanahan ve B. Weinberg6tarafından açıklandığı gibi. Onkogenler ve tümör bastırıcı genlerde somatik mutasyonlar — HRAS/KRAS/NRAS, EGFR, BRAF, MYC, TP53, isocitrate dehidrogenaz (idh) ve Fumarik hidataz (FH) gibi )-Warburg etkisi7bir sonucu olduğuna inanılan, kanser hücrelerinde belirli metabolik değişikliklere bağlı olmuştur.

Metabolomik analiz sadece kanser hücrelerinde metabolik düzenlemeyi anlamak için değil, aynı zamanda erken evre kanser biyomarkerleri ve kemoterapi tepkisi tahmini tanımlamak için umut verici bir yaklaşımdır. Antikanser bileşikleri ile hassas veya dayanıklı kanser hücrelerinin tedavisi takiben, metabolik tepkiler Takibi kanser hastalarında spesifik antikanser tedavisinin etkinliğini tahmin etmek için metabolik biyomarkerlerin tanımlanması kolaylaştırır8 ,9,10,11. Bu yazıda, diamid ile tedavi edilen bir EGFR mutasyonu ile akciğer adenokarsinomdan elde edilen kanser hücresi hatları-metabolomik analiz için modeller olarak oksidatif strese neden oldu. Bu analitik yöntemin, kapiller Elektroforez-kütle spektrometresi (CE-MS) kullanarak avantajı, kütle aralığı m/z 50-100012,13ile şarj edilen metabolitlerin kapsamlı ölçüsüdür. Bu makalenin amacı, özellikle CE-MS tarafından kültürlü kanser hücreleri ve sonraki metabolomik analiz, sulu metabolitlerin hazırlanması için acemiler ayrıntılı bir step görsel protokol sağlamaktır.

Protocol

1. gün hücre kültürü 1

Not: metabolit ekstraksiyon için her örnek, orta ama tam olarak (yaklaşık 2 – 5 milyon hücre içeren) tek bir 100 mm doku kültürü çanak hazırlanmalıdır. Tahlil için gerekli yemek sayısını hesaplayın ve buna göre hazırlayın.

  1. Kültür HCC827 ve PC-9 hücreleri 5% CO2 at 37 ° c rpmi-1640 orta% 10 fetal sığır serumu (FBS) ile tamamlayıcı.
  2. 100 mm Kültür yemeklerinden hücre kültürü medyasını aspirate.
  3. Kalsiyum ve magnezyum olmadan 2 mL fosfat tamponlu tuz (PBS) çözeltisi kullanarak her bir çanak üzerinde yıkayın hücreleri. PBS çözeltisi tamamen çanak yüzeyini kapsar, böylece yavaşça her çanak kaya.
  4. Kültür yemeklerinden yıkama tamponunu aspirate.
  5. Sıcak 0,25% Trypsin-EDTA çözeltisi 37 °C ' ye ve 5 mL serolojik pipet ile 2 mL tripsin-EDTA çözeltisi ekleyin. Yavaşça her yemek böylece tripsin tamamen çanak yüzeyini kapsar kaya.
  6. 37 °C ' de kültür yemeklerine yaklaşık 5 dakika boyunca inküye yapın.
  7. Yemek başına ön ısıtılmış tam büyüme orta 4 mL ekleyin. Birkaç kez hafifçe pipetleme tarafından orta hücreler resuspend.
  8. Her bir hücre süspansiyonunu ayrı bir 15 mL Konik Tüpe aktarın ve 800 × g 'de Santrifüjlü 5 dk.
  9. 2 ml önceden ısıtılmış komple büyüme orta her hücre Pelet resuspend.
  10. Otomatik hücre sayacı ve 0,4% tripan mavi çözüm kullanarak hücrelerin toplam sayısını ve yüzde canlılığı belirleyin.
    1. 10 μL hücreli süspansiyon ve 10 μL 0,4% tripan mavi çözeltisi karıştırın.
    2. 10 μL örnekteki hücre sayma bölmesi kaydırağı içinde kapiller eylem yükleyin.
    3. Oda slaytı otomatik hücre sayacına yerleştirin. İletilen ışık otomatik olarak aydınlatır ve cihaz otomatik olarak hücreye odaklanır.
    4. Görüntüyü yakalamak ve sonuçları görüntülemek için Capture düğmesine basın.
    5. Gerekirse, istenilen hücre konsantrasyonunu elde etmek için daha fazla büyüme ortamı ekleyin.
  11. 100 mm hücreli kültür çanak başına yaklaşık 1 – 2.5 milyon hücre tohum.
    Not: CE-MS analizine göre belirlenen metabolit konsantrasyonları, uygun hücrelerin sayısına göre normalleştirilir. Hücre sayımı amacıyla, her grup için en az bir ekstra seribaşı kültür çanak hazırlamak gerekir.
  12. 37 °C ' de 18 saat için% 5 CO2 ' de kültür yemeklerini kulbe etmek.

2. Reaktiflerin hazırlanması

  1. L-metionine sülfona karaciğerde dönüştürülür ve d-Camphor-10-sülfonik asit 1000-Ultra Apure su dahil olmak üzere ticari bir iç standart çözüm seyreltilen.
    Not: 80 ' den az numune için, sadece 50 μL iç standart çözüm 1 ve 45 ml Ultra saf su için bir 50 ml hacimsel Flask, sonra çözüm kadar 50 ml Ultra saf su ile getirmek.
  2. 0,05 g/ml mannitol çözeltisi yıkama tamponu olarak ultra saf suda hazırlayın.
    Not: 30 ' dan az numune için 500 ml 'lik Ultra Saf suyla 25 gr mannitol çözülür. 100 mm Kültür çanak başına yaklaşık 15 mL yıkama tamponu gereklidir, bu nedenle numune sayısına göre yeterli miktarda yıkama tamponu hazırlayın.

3. santrifüj filtre üniteleri ön yıkama

  1. Pipet 250 her santrifüj filtre ünitesinin filtre bardağı içine ultra saf su μL ( malzeme tablosunabakın).
    Not: örnek başına Iki filtre birimi gereklidir.
  2. Filtre birimlerini sıkıca kapa ve 9.100 × g 'de 4 °c ' de 5 dakika santrifüjün.
  3. Her süzgecin hacmini kontrol edin — ilk kısa Spin sırasında önemli filtrat birikirse, filtre ünitesi arızalı olabilir. Bu durumda, filtre birimini atın ve bunun yerine yeni bir filtre ünitesi kullanın.
  4. Filtre ünitelerinin kapakları sıkıca kapatın ve 9.100 × g 'de 30 dakika boyunca 4 °c ' de tekrar santrifüjün.
  5. Filtre bardakları herhangi bir ultra saf su kalır emin olun; Her bir toplama tüpünde süzülmüş ultra saf suyu bir pipet ile çıkarın ve atın.
    Not: filtreye zarar verebilmek için bir filtre bardağın içinde kalan suyu pipet ile kaldırmaya çalışmayın.
  6. Filtre bardakları toplama tüplerine değiştirin.
    Not: santrifüj filtre ünitelerini bir saat içinde kullanın, çünkü filtreler kurutulduktan sonra hasar görebilir.

4. gün hücre kültürü 2

  1. 100 mm Kültür yemeklerini kuluçlatıcından çıkarın.
    Not: önerilen hücre kültürü süresi 18 h 'dir.
  2. Her 100 mm Kültür çanak hücre kültürü orta aspirate.
  3. Hücre katmanını rahatsız değil bakım alarak, her çanak için bileşiklerin veya ilaçların uygun konsantrasyonları içeren hücre kültürü orta 10 mL ekleyin.
    Not: Gösterim amacıyla, bu deneyde PBS 'de (250 μM son konsantrasyon) çözülmüş 10 μL 250 mM diamid ekledik.
  4. 37 ° c 'de kültür yemeklerini diamid veya PBS 'de kontrol olarak 30 dakika süreyle kulyın.
  5. Her 100 mm Kültür çanak hücre kültürü orta aspirate.
  6. Her bir yemeğin kenarına hafifçe 2 mL% 5 mannitol çözeltisi ekleyerek hücreleri yıkayın, hücre tabakasını rahatsız etmek için değil, daha sonra biraz çanak eğim özen.
    Not: PBS veya tuz çözeltisi CE-MS tabanlı metabolomik analizlerle müdahale eder ve ölçüm sonuçlarını olumsuz yönde etkiler ve böylece yıkama tamponu olarak kullanılmamalıdır.
  7. Her kültür çanak yıkama tamponu aspirate, sonra hafifçe çanak başına yıkama tampon 10 mL ekleyerek ve biraz çanak eğerek hücreleri tekrar yıkayın.
  8. Tamamen her kültür çanak kenarından yıkama tampon Aspire.
    Not: hücreleri Aspire değil dikkat ederken, mümkün olduğunca çok yıkama tampon Aspire. Kalan mannitol CE-MS analizine engel olabilir; hücrelerin aspirasyonu hücre sayısını azaltır ve böylece veri normalleştirme bir hata kaynağı haline gelir.

5. kültürlü hücrelerden metabolitlerin çıkarılması

  1. Kültür çanak başına 99,7% metanol 800 μL ekleyin. Yavaşça tüm yüzeyi kapsayacak şekilde ileri geri her kültür çanak kaya. Yemekleri oda sıcaklığında 30 s için bırakın.
  2. Pipetin ucunu metanol içine daldırarak ve birkaç kez hafifçe yukarı ve aşağı pipetleme yaparak, tabak başına seyreltilmiş iç standart çözeltinin 550 μL değerini yavaşça ekleyin.
  3. Yavaşça tüm yüzeyi kapsayacak şekilde ileri geri her kültür çanak kaya.
  4. Yemekleri oda sıcaklığında 30 s için bırakın.

6. hücre ekstraktlarının ultrafiltrasyonu

  1. Her kültür yemeğinden çıkarılan solüsyonu ayrı bir 1,5 mL mikrosantrifüj tüpüne aktarın.
  2. 5 dk için 4 °C ' de 2.300 × g 'de tüpleri santrifüjün.
  3. Her bir süpernatant 350 μL 'yi örnek başına iki santrifüj filtre birimine aktarın.
    Not: her kültür çanak, toplam 700 μL ayıklanan çözüm iki filtre tüpleri (350 μL/tüp) aktarılır.
  4. Filtre tüplerini yaklaşık 2 saat için 9.100 × g olarak 4 °c ' de Santrifüjden ayırana kadar hiçbir sıvı süzgeç bardakları içinde kalmaz.
  5. Filtre bardakları çıkarın ve sıkıca toplama tüpleri kapakları kapatın.

7. örnek buharlaşma

  1. Bir santrifüj Buharlaştırıcı hazırlayın-genellikle, bu bir evaporatör oluşur, bir soğuk tuzak, ve bir vakum pompası.
  2. Toplama tüplerini santrifüj evaporatörün içine yerleştirin.
    Not: tüplerin kapaklarının açık olmasını bırakın.
  3. Ayıklanan numune solüsyonları, vakum koşullarında oda sıcaklığında Buharlık yapın.
    Not: rotasyonlar ve basınç sayısı için tipik konfigürasyonlar 1.500 rpm ve 1.000 PA, sırasıyla, ve genellikle yaklaşık alır 3 tamamen örnekleri Buharlık saat.
  4. Hiçbir sıvı toplama tüpleri içinde kalır ve sıkıca tüpler kapakları kapatın onaylayın.
  5. Toplama tüplerini Ultra düşük sıcaklıkta (− 80 °c) derin dondurucu ile metabolomik analizine kadar saklayın.

8. CE-MS tarafından metabolomic Analizi

  1. CE-MS analizinden hemen önce 50 μL ultra saf su içinde filtrat yeniden resuspend.
  2. Daha önce12,13 kapiller elektroforez sistemi ve izokrat pompa, CE-MS adaptörü ve CE-ESI-MS püskürtücü ile donatılmış uçuş zaman kitle Spektrometre sistemi kullanılarak açıklanan yöntemlerle CE-MS analizi gerçekleştirin.
    Not: her iki sistemde de sistem satıcılarının yazılımı tarafından kontrol edilebilir ve erimiş silika kapiller (50 μm iç çapı × 80 cm toplam uzunluğu) ile bağlanır.
    1. Enstrümanlar ve numune şişeleri ayarlayın, kapiller bir kapiller kaseti ile hazırlamak, kılıf sıvıları ve uygun Elektroforez tamponları anyon veya kstasyon analiz moduna bağlı olarak doldurmak ve sonra gerilimler uygulanır.
      Not: enstrümantasyon ve analitik koşullar,12,13başka bir yerde ayrıntılı olarak açıklanmıştır.
    2. Yazılımı açın ve veri alma yöntemleri ve örnek bilgileri içeren bir çalışma listesi hazırlayın.
    3. Bir test çalışması başlatın ve sinyal yoğunluğu ve iç standartların tepe şekli ve diğer standart bileşiklerin tepe çözünürlüğü gibi verileri kontrol edin.
    4. Gerekirse analitik koşulların ince ayarını yapın.
    5. Örnek çözümleri 3 s için 50 mbar 'a ve 30 kV 'lik bir gerilime enjekte edilir.
      Not: CE-MS ya pozitif ya da negatif iyon modunda yürütülmüştür. M/z 50 – 1000 kitle aralığını taramak için Spektrometre ayarlayın. Kapiller voltajı 4 kV olarak ayarlandı; Azot Gazı debisi (ısıtıcı sıcaklığı 300 °C). Pozitif mod için, fragmentor, Skimmer ve OCT RFV voltaj sırasıyla 75, 50 ve 125 V olarak ayarlandı. Negatif iyon modu için fragmentor, Skimmer ve OCT RFV gerilimi sırasıyla 100, 50 ve 200 V olarak ayarlandı.
  3. Spektrum verilerini analiz edin.
    1. M/z, tepe alanı ve göç SÜRESI (MT) dahil olmak üzere en yüksek bilgileri elde etmek için otomatik entegrasyon yazılımını kullanarak kitle spektrum verilerinden zirveleri ayıklayın.
      Not: Yöntem, başka bir yerde14ayrıntılı olarak açıklanmıştır.
    2. İzotopomerler, yaklaştırmak iyonlarına karşılık gelen sinyal zirveleri ve bilinen metabolitlerin diğer ürün iyonlarının dışlama.
    3. M/z değerlerine ve MTS 'ye göre hmt metaboliti veritabanından gelen bilgilerle kalan zirveler ek açıklama ekleyin.
    4. Açıklama eklenmiş zirvelerin alanlarını iç standart düzeylere ve örnek başına hücre sayılarının normalleştirin.
    5. Her metabolit için hazırlanan standart eğrileri kullanarak kültürlü hücrelerde (pmol/106 hücreli) her metabolitin konsantrasyonunu değerlendir.
    6. Sonraki istatistiksel analizler ve biyolojik Yorumlar için nicelik metabolitin konsantrasyonlarını kullanın14.

Representative Results

Kanser hücrelerinde metabolit konsantrasyonları (pmol/106 hücreler) uygun hücrelerin sayısına normalleştirilmiş olduğundan, koşullar arasında geçerli hücrelerin sayısında varyasyonu en aza indirmek için deneysel koşullar bakım ile ayarlanması gerekir. Örneğin, diamid tedavisi nispeten yüksek bir konsantrasyonda (250 μm) ama kısa bir süre için tüm hücrelerin mümkün olduğunca eşit büyüymesine izin vermek, böylece analiz uygulanabilir hücrelerin sayısını eşitleme oldu. Bu deneysel koşullarda, HCC827 ve PC-9 hücreleri eşit olarak büyüdü 3 h (Şekil 1). Diamide işlenmiş hücrelerin CE-MS analizi ile karşılaştırıldığında PBS-tedavi (kontrol) hücreleri ortaya 175 ve 150 diferansiyel metabolitleri HCC827 ve PC-9 hücrelerinde, sırasıyla. Bunlar arasında, pentoz fosfat yolu (PPP) ve üst glikoliz içinde birkaç ara iki hücre hatlarında diamid tedavi koşullarda önemli ölçüde daha yüksek, birkaç tricarboksilik asit (TCA) döngüsü ara tedavi daha düşük iken (Şekil 2 ve Şekil 3).

PPP, redoks homeostazı bakım ve yağlı asit biyosentezi15için kullanılan azaltılmış nikotinamide adenin dinükleotid fosfat (NADPH) şeklinde azalan eşdeğerleri üretir. Diamid tedavi takipte, Glukonik asit düzeyi-oksitlenmiş glikoz-12 kat HCC827 hücre ve PC-9 hücrelerde 10 kat arttı; benzer şekilde, diamid tedavisini takiben, glikoz 6-fosfat (G6P)-fosforile glikoz ve ilk hexokinase-katalizlenmiş glikoliz ürünü-Ayrıca 6,3-ve 3,5-fold HCC827 ve PC-9 hücrelerinde, sırasıyla (Şekil 4) artmıştır. Buna ek olarak, diamid tedavisinden sonra, 6-fosfoglukonat (6PG)-PPP 'de ilk ara seviyeleri-HCC827 hücrelerinde 89-Fold ve PBS kontrollerinde görülen seviyelere kıyasla PC-9 hücrelerinde 231-kat artar (Şekil 4). Bunun aksine, fruktoz 6-fosfat (F6P) ve fruktoz 1, 6-bisfosfat (F1, 6p) gibi diğer glikolitik ara maddelerin seviyeleri diamid deneysel durumda değişmez (Şekil 4). Toplam nikotinamide adenin dinükleotid fosfat (NADP+) seviyeleri diamid tedavi ve PBS kontrol koşulları arasında neredeyse eşdeğerdir (Şekil 4), GLIKOZ esas olarak PPP üzerinden katabolize olduğunu düşündürmektedir.

Figure 1
Şekil 1. Diamid tedavi üzerine değişmeden hücre numaraları. 250 μm diamid hücre büyüme tepkiler tripan mavi boyama kullanılarak ölçülmüştür. 1 veya 3 saat için PBS (mavi) veya diamid (kırmızı; 250 μm) Ile tedavi edilen (A) HCC827 ve (B) PC-9 hücrelerinin hücre numaraları gösterilir. Veriler ortalama ± SD (n = 6) olarak gösterilir. Bu figürün daha büyük bir versiyonunu görmek Için lütfen tıklayınız.

Figure 2
Şekil 2. Metabolitlerin temsilcisi MS doruklarına. (A) Glukonik asit, (B) glikoz 6-fosfat (G6P), (C) 6-phosphogluconate (6PG) ve (D) CE-MS analizi ile elde edilen nikoinamid ADENIN dinükleotid fosfat (NADP+) olarak açıklamalı elektrophergramlar. Her satır, kullanılan hücre çizgisini (katı, HCC827; noktalı, PC-9) ve tedavi (mavi, PBS; kırmızı, diamide) gösterir. Bu figürün daha büyük bir versiyonunu görmek Için lütfen tıklayınız.

Figure 3
Şekil 3. Hücre içi metabolitlerin metabolome profilleri. (A) HCC827 ve (B) diamid ile tedavi edilen PC-9 hücrelerinde metabolitlerin kat değişiklikleri günlük2(diamıde/PBS) olarak gösterilir. Toplam olarak, 175 ve 150 metabolitleri sırasıyla HCC827 ve PC-9 hücrelerinde açıklamalı. Bu figürün daha büyük bir versiyonunu görmek Için lütfen tıklayınız.

Figure 4
Şekil 4. Diamit tedavisi üzerine PPP 'nin yukarı düzenlenmesi. Diamid ile tedavi edildikten sonra glikoliz ve pentoz fosfat yolu (PPP) dahil anahtar metabolitlerin hücre içi konsantrasyonları (pmol/106 hücreler) gösterilir. Metabolitler HCC827 ve PC-9 hücrelerinde PBS (mavi) veya diamid (kırmızı, 250 μm) ile tedavi edilen Glukonik asit, glukoz 6-fosfat (G6P), fruktoz 6-fosfat (F6P), 6 gibi 30 dk. temsili metabolitleri elde edildi -fosfoglukonat (6Pg) ve nikotinamide adenin dinükleotid fosfat (NADP+) gösterilir. Bu figürün daha büyük bir versiyonunu görmek Için lütfen tıklayınız.

Discussion

Burada, CE-MS tabanlı metabolomik analiz için kültürlü kanser hücrelerinden metabolitleri hazırlamak için yaygın olarak erişilebilen bir metodolojisi tarif ediyoruz. Ölçülen metabolit konsantrasyonları uygun hücrelerin sayısına normalleştirilmiş çünkü bu protokolün en kritik noktalarından biri, kanser hücrelerinin doğru hazırlanması. Hücre numarasının doğru tahmini için, metabolomik analiz için metabolitlerin çıkarılması ile paralel olarak uygun hücrelerin sayısını saymak için deneysel grup başına en az bir ek kültür çanak hazırlamak gereklidir. Buna ek olarak, hücrelerin aynı sayıda çoğaltır için her çanak ve sayma için çanak tohumluk olmalıdır; gelecekte, bu, aynı yemeğin hem uygun hücreleri sayma hem de metabolitleri ayıklanması için kullanılmasını sağlayan hızlı ve stressiz (örn. tripsin içermeyen) hücre sayımı protokolüyle desteklenir. Hücreler yemeklerin yüzeyinden ayırmayın böylece bakım yıkanabilir sırasında alınmalıdır. Ciddi sitotoksisite testleri ve hücre yapışmasını azaltan diğer deneyler, yıkama prosedürü sırasında olası hücre kaybına bağlı olarak bu ekstraksiyon protokolü için uygun olmayabilir.

CE-MS tabanlı metabolomik analiz için kültürlü hücrelerden metabolitleri ayıklamak için yıkama tamponu olarak% 5 mannitol çözeltisi kullanmak önemlidir, çünkü PBS gibi tuz bazlı tamponlar, metabolomik analizlere müdahale ve ölçümü olumsuz yönde etkiler.

İki ya da üç yemek tek bir örnek olarak her çanak ve daha sonra örnekleri havuzu metabolitleri ayıklayarak kombine edilebilir; Ancak, birden fazla yemekleri birleştirerek genellikle çıkarılan metabolit çözeltisi içinde kalan mannitol artar. Bu da CE-MS tarafından metabolomik analizine engel olabilir. bu nedenle, tek bir örnek olarak birden fazla yemek veya kuyu kullanmayın tavsiye edilir.

CE-MS kullanarak bu metabolomik analiz yöntemi 50 ve 1000 da arasında moleküler ağırlıkları ile şarj molekülleri kapsamlı ölçümü için geliştirilmiştir; Bu nedenle, bu protokol sulu, düşük moleküler ağırlık bileşiklerinin çıkarılması için optimize edilmiştir. Bu nedenle, bu protokol lipid veya proteinler ve nüklik asitler gibi makromoleküller gibi hidrofobik metabolitleri ayıklamak için uygun değildir. Kapsamlı lipid analizleri veya kültürlü hücre numunelerinin lipidomicleri için artan bir talep olduğundan, hem hidrofilik hem de hidrophobic metabolitlerin eşzamanlı olarak çıkarılması için kolay ve etkili bir protokolün geliştirilmesi gereklidir.

Metabolit ekstraksiyon ilk adım-mannitol ile orta ve yıkama hücreleri aspirating-hücrelerin metabolik profilinde değişiklikleri en aza indirmek için mümkün olduğunca çabuk yapılmalıdır. Mannitol ile yıkandıktan sonra metanol ile hücrelerin tedavisi, proteinlerin denilmesine ve böylece enzimlerin daha fazla metabolik reaksiyonu katalizleymesini önlemektedir. Ancak, metanol tedavisinden sonra bile, redoks reaksiyonları, bazı dearboksilasyon süreçleri ve tiyol bağlantıları gibi enzimatik olmayan kimyasal reaksiyonlar olabilir. Bu nedenle, bu protokol ile ölçülen bu reaksiyonlarda yer alan tüm metabolitlerin konsantrasyonları dikkatle yorumlanmalıdır. Genom veya transcriptome aksine, metabolome kimyasal özellikleri çok çeşitli moleküller oluşur; Bu nedenle, hiçbir tek protokol herhangi bir kayıp veya rahatsızlık olmadan tüm metabolitleri ayıklamak olabilir. Bu tür son derece reaktif metabolitlerin daha doğru ölçümleri için, özellikle kesitler ve derivatizasyonlar gerektiren belirli metabolitler gruplarını ayıklamak için tasarlanmış bir protokol, danışılmalıdır. Ancak burada sunulan protokol, CE-MS tarafından metabolomik analiz için kültürlü hücre örneklerinden sulu metabolitlerin basit ve hızlı bir şekilde çıkarılması açıklanmaktadır. Bu yazıda biz nasıl CE-MS ayrıntılı olarak mevcut el yazması odak farklı, ancak, CE-MS kurmak için ayrıntılı adımları açıklayan ayrı bir özel makale gerektirebilir ayarlamak için tarif olamazdı.

Disclosures

Yazarların ifşa etmesi gereken hiçbir şey yok.

Acknowledgments

Biz onların yardımı için Shonai bölgesel Sanayi Promosyon Merkezi tüm üyelerine teşekkür ederiz. Bu çalışma kısmen Yamagata Prefecture ve Tsuruoka City araştırma fonları tarafından, Ulusal Kanser Merkezi araştırma ve Geliştirme Fonu [Grant numarası 28-A-9] tarafından ve Japonya Derneği tarafından bilim tanıtımı için desteklenmektedir (JSPS) KAKENHı [Grant numarası 17K07189] için HM.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Automated cell counter Thermo Scientific AMQAX1000 Countess II automated cell counter
Automatic integration software Agilent Technologies MassHunter G3335-60041 version B.02.00
CE system Agilent Technologies Agilent 7100 CE system
CE/MS adapter kit Agilent Technologies G1603A
CE-ESI-MS Sprayer kit Agilent Technologies G1607A
Cell counting chamber slide Thermo Scientific C10282 Countess cell counting chamber slides
Centrifugal filter device, 5 kDa Human Metabolome Technologies ULTRAFREE MC PLHCC, UFC3LCCNB-HMT
Conical sterile polypropylene tube, 15 ml Thermo Scientific N339651
Conical sterile polypropylene tube, 50 ml Thermo Scientific N339653
Costar stripette, 10 ml Corning 4488
Costar stripette, 5 ml Corning 4487
D(-)-Mannitol Wako 133-00845 500 g
Dulbecco's phosphate buffered saline (DPBS) Sigma-Aldrich D8537-500ML
Electrophoresis buffer Human Metabolome Technologies H3301-1001 for cation analysis
Electrophoresis buffer Human Metabolome Technologies H3302-1021 for anion analysis
Fetal bovine serum Biowest S1780
Filter tip, 1000 μl Watson 124P-1000S
Filter tip, 20 μl Watson 124P-20S
Filter tip, 200 μl Watson 1252-703CS
Fused silica capillary Polymicro Technologies TSP050375 50 μm i.d. × 80 cm total length
HCC827 American Type Culture Collection CRL-2868
Internal standard solution Human Metabolome Technologies H3304-1002
Isocratic pump Agilent Technologies Agilent 1100 Series Isocratic Pump
Methanol Wako 138-14521 1 L, LC/MS grade
Microtube, 1.5 ml Watson 131-415C
Operating Software Agilent Technologies ChemStation G2201AA version B.03.01 for CE
PC-9 RIKEN Bio Resource Center RCB4455
RPMI-1640 Sigma-Aldrich R8758-500ML
Sterile tissue culture dish, 100 mm Corning 430167
Time-of-flight mass spectrometer Agilent Technologies Agilent G1969A Time-of-Flight LC/MS
Trypan blue solution, 0.4% Thermo Scientific T10282
Trypsin-EDTA solution Sigma-Aldrich T4049-100ML
Ultrapure water Merck Milli-Q water 18.2 MΩ·cm pure water
Volumetric flask, 50 ml Iwaki 5640FK50E TE-32

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Lunt, S. Y., Vander Heiden, M. G. Aerobic glycolysis: meeting the metabolic requirements of cell proliferation. Annual Review Cell and Developmental Biology. 27, 441-464 (2011).
  2. Soga, T. Cancer metabolism: key players in metabolic reprogramming. Cancer Science. 104, (3), 275-281 (2013).
  3. Zong, W. X., Rabinowitz, J. D., White, E. Mitochondria and Cancer. Molecular Cell. 61, (5), 667-676 (2016).
  4. Fukuda, H., et al. Experimental study for cancer diagnosis with positron-labeled fluorinated glucose analogs: [18F]-2-fluoro-2-deoxy-D-mannose: a new tracer for cancer detection. European Journal of Nuclear Meddicine and Molecular Imaging. 7, (7), 294-297 (1982).
  5. Miles, K. A., Williams, R. E. Warburg revisited: imaging tumour blood flow and metabolism. Cancer Imaging. 8, 81-86 (2008).
  6. Hanahan, D., Weinberg, R. A. Hallmarks of cancer: the next generation. Cell. 144, (5), 646-674 (2011).
  7. Levine, A. J., Puzio-Kuter, A. M. The control of the metabolic switch in cancers by oncogenes and tumor suppressor genes. Science. 330, (6009), 1340-1344 (2010).
  8. Makinoshima, H., et al. Epidermal growth factor receptor (EGFR) signaling regulates global metabolic pathways in EGFR-mutated lung adenocarcinoma. The Journal of Biological Chemistry. 289, (30), 20813-20823 (2014).
  9. Makinoshima, H., et al. Signaling through the Phosphatidylinositol 3-Kinase (PI3K)/Mammalian Target of Rapamycin (mTOR) Axis Is Responsible for Aerobic Glycolysis mediated by Glucose Transporter in Epidermal Growth Factor Receptor (EGFR)-mutated Lung Adenocarcinoma. The Journal of Biological Chemistry. 290, (28), 17495-17504 (2015).
  10. Makinoshima, H., et al. Metabolic Determinants of Sensitivity to Phosphatidylinositol 3-Kinase Pathway Inhibitor in Small-Cell Lung Carcinoma. Cancer Research. 78, (9), 2179-2190 (2018).
  11. Sato, Y., et al. Metabolic Characterization of Antifolate Responsiveness and Non-responsiveness in Malignant Pleural Mesothelioma Cells. Frontiers in Pharmacology. 9, 1129 (2018).
  12. Ohashi, Y., et al. Depiction of metabolome changes in histidine-starved Escherichia coli by CE-TOFMS. Molecular BioSystems. 4, (2), 135-147 (2008).
  13. Ooga, T., et al. Metabolomic anatomy of an animal model revealing homeostatic imbalances in dyslipidaemia. Molecular BioSystems. 7, (4), 1217-1223 (2011).
  14. Sugimoto, M., Wong, D. T., Hirayama, A., Soga, T., Tomita, M. Capillary electrophoresis mass spectrometry-based saliva metabolomics identified oral, breast and pancreatic cancer-specific profiles. Metabolomics. 6, (1), 78-95 (2010).
  15. Patra, K. C., Hay, N. The pentose phosphate pathway and cancer. Trends in Biochemical Sciences. 39, (8), 347-354 (2014).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics