Author Produced

שירי תנועה של CFDA מעקב טעון ברקמות הכיור התחתון של Arabidopsis

* These authors contributed equally
Environment

Your institution must subscribe to JoVE's Environment section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

המטרה של פרוטוקול זה היא להראות כיצד לטעון את ה-CFDA לאתרים שונים של החלקים התחתונים של Arabidopsis. לאחר מכן אנו מציגים את דפוס ההתפלגות שהתקבל של CF ב נצרי.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations | Reprints and Permissions

Jiang, M., Deng, Z., White, R. G., Jin, T., Liang, D. Shootward Movement of CFDA Tracer Loaded in the Bottom Sink Tissues of Arabidopsis. J. Vis. Exp. (147), e59606, doi:10.3791/59606 (2019).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

מעקב אחר באופן סימטרי 5 (6)-carboxyפלואורוסקופים diacetate (cfda) כבר הוחל באופן נרחב בצמחים חיים כדי להדגים את החיבור התרבות, התחבורה שיפה ובדיקה כלי הדם. פרוטוקול זה מציג את החלק התחתון למעלה carboxyfluorescein (CF) תנועה ב Arabidopsis באמצעות חיתוך השורש ואת הליך ההיפוקטיל-צובט בהתאמה. אלה שני הליכים שונים התוצאה יעילות שונה של התנועה CF: כ 91% המראה של CF ב נצרי עם הליך ההיפוטיל-צובט, ואילו רק כ 70% המראה של CF עם הליך גזירה השורש. שינוי פשוט של אתרי טעינה, וכתוצאה מכך שינויים משמעותיים ביעילות הניידת של צבע זה באופן סימטרי, מציע התנועה CF עשוי להיות כפוף לתקנה באופן סימטרי, כנראה על ידי צומת השורש-היפוטיל.

Introduction

מכוניות פלורסנט רבים עם מגוון רחב של תכונות ספקטרליות, כגון 5 (6)-carboxyfluorescein (CF)1, 8-הhydroxypyrene-1, 3, 6-חומצה טריגופרתית2, לוציפר צהוב CH (lych)3, esculin ו-cter4, פותחו ו מוחל בצמחים כדי לפקח על התנועה באופן סימטרי ופעילות שיפה. באופן כללי, צבע סימטרי מוטען לחתוך ברקמת היעד ואת הפיזור רציפים של הכתב לתוך חלקים אחרים של הצמח יהיה להדגים את התקשורת הבין-תאית. למרות המנגנון של ספיגת הצבע אינו מובן במלואו, העיקרון הבסיסי התנועה CF בתוך תאים חיים כבר הודה נרחב. הצורה אסתר של CF (CF diacetate, CFDA) הוא לא פלורסנט, אבל ממברנה חדיר. מאפיין זה מאפשר דיפוזיה הממברנה המהירה של הצבע לתאים. פעם בתוך תאים חיים, תאיים מוחק להסיר את הקבוצות אצטט ב 3 ' ו 6 ' מיקום של CFDA, שחרור פלורסנט ו-הממברנה ממברנה-CF (איור 1, לחילופין להפנות את רייט et al.2); CF לאחר מכן יכול לעבור דרך פלמודסמאטה לחלקים אחרים של צמחים.

הליך מבוסס היטב עם cfda הוא שזה יכול להיות טעון לתוך עלי מקור ומשמש כדי לפקח על הזרמת שיפה ו לפרוק שיפה ברקמות הכיור של מינים רבים, למשל, כמו הפריקה CF ב arabidopsis שורש5, לפרוק שיפה במהלך לקות תפוחי אדמה6, הפריקה שיפה ב טבק כיור עוזב7, וכן הלאה. לפי גישות העמסה דומות, אימצו מחקרים אחרים את הצבע כדי להדגים את הקשר הסימטרי בין הפונדקאי לטפיל8,9, או כדי לחשוף את יחסי הסימביוזה10,11.

דרך נוספת לעשות שימוש בצבע זה היא לטעון אותו לתוך תאים ספציפיים או תא בודד על-ידי הזרקה כדי לקבוע את דפוס ההפצה שלה. טכניקות מתוחכמות כאלה הקלו מאוד את ההבנה העמוקה יותר של התקשורת הבינתאית בתחום הפלסטימאטה, בעיקר בפיתוח הקונספט של הדומיין הסימטרי12,13. לדוגמה, המיקרו ההזרקה של CFDA לתוך תאים cotyledon של Arabidopsis הביא דפוס צימוד לצבוע באפידרמיס היפוקטיל אבל לא צימוד בתאים הבסיסיים או באפידרמיס השורש, ולכן ההיפוטיל היפוקתא צורות האפידרמיס בתחום הפלסטיק הסימטרי14. תחומים דומים, כגון התאים לשמירה על שיניים15, מסננת הגוף תאים16, שיער בתאי השורש14 וכיפה שורש17,18 זוהו על ידי טכניקה microinjection. באופן מפתיע, מספר תחומים מאפשרים למולקולות מעקב לנוע בכיוון מסוים. קח את התחום יונקת למשל, מיקרוהזרקה של בדיקה פלורסנט לתוך התא באפידרמיס התומך מוביל את זרימת מעקב לתוך התחום יונקת, עם זאת, הזרקת הפוכה אינה מחזיקה true19. הדו ח האחרון מצא גם מצבים דומים בתחומים סימטרי של העובר Sedum 20. כך, כל המקרים לעיל לרמוז כי החלפת אתרי טעינה עלול להוביל תובנות הרומן לתוך תקשורת סימטרית. הניסוי הקודם שלנו במטרה לנתח את המסלול של שורש לירות נייד להשתקה זיהה תחום הרומן סימטרי, או HEJ (היפוקטיל צומת אפיטיל) אזור, אשר נבדק עוד באמצעות טעינת השורש (לא קאנוני כיור הטעינה) CFDA . ניסוי21 כאן, אנו עוד להרחיב את התנועה שורש-to-לירות CF באמצעות שיטה פשוטה לשחזר את תחום הפוטנציאל סימטרי פלסטיק על ידי העברת אתרי הטעינה. יתר על כן, הליך זה עשוי להיות מותאם כדי להבדיל את הרקע הגנטי, כי יש שינוי בסיס לירות הובלה ארוכת טווח.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

1. ההתפתחות האנכית של הערידופזיס במדיום MS

  1. הפנים של ארון זרימה למינארי צריך להיות מטופלים עם 30 דקות UV אור ו 15 דקות זרימת אוויר לפני השימוש. הקפידו לסגור את דלת הזכוכית כאשר אור UV דולק. רסס את כל הכלים והצלחות עם 70% אתנול לפני הצבת אותם בארון.
  2. הכינו את המדיום המורראשיג ו Skoog (MS) בצלחת פטרי בקוטר 90 מ"מ מתחת לארון זרימה למינארי.
    הערה: מדיום MS מכיל את הרכיבים הבאים: 20.6 mM NH4לא3, 18.8 mm מושג3, 1.25 mm KH2הפו4, 1.5 mm mgso4· 7h2o, 3 מ"מ cacl2· 2h2o, 0.1 mm mgso4· H2O, 1.03 Μm Na2MoO4· 2H2O, 0.1 MM H3BO3, 30 μm הלקוסו4·7h 2 o, 0.1 μm cuso4·5H 2 o, 0.1 μm cocl2·6h שני או, 1.39 μk KI, 97 μ M FeSO4 · 7h2O, 114.5 μm החומצה הנילינאית (edta), 4.07 μm חומצה ניקטינית, 2.44 μm pyridoxine HCl, 0.15 μm תיאמין HCl, 2.68 מילימטר גליצין, 555 μm-inositol, 87.7 מילימטר סוכרוז ו -10 גרם/L אגר.
  3. לחות עצות מעוקר או קיסמים על ידי נגיעה עצה או קיסמים למדיום MS, ולאחר מכן לטבול את הזרעים מעוקר אחד על ידי אחד על המיקום קבוע של כל צלחת פטרי המצוין על ידי כרטיס הזריעה.
  4. חותם את צלחת פטרי עם סרט פרפין וסרט דביק ומניחים אותו באופן אנכי על דוכן ברור בחדר הצמיחה (22 ° צ', 70% לחות) עם מחזור יום של 16 h של אור ו 8 h של חושך (תאורה מ 06:00 עד 10 pm). הצמח Arabidopsis מוכן הטעינה cfda ביום 9-13 לאחר זריעה.
    הערה: הפרוצדורה הבאה מבוצעת בשעות אחר הצהריים משעה 14:00 עד 17:00.

2. CFDA לטעון עם הליך חיתוך השורש

  1. הכינו פתרון חדש לעבודה CFDA באופן מיידי לפני השימוש. לדלל את 1 מ"מ CFDA מניות פתרון מאוחסן ב-20 ° c מקפיא עם מים באולטרטהורים סטרילי לריכוז עובד של 5 μM.
  2. חותכים את קרום מיקרו נקבובי פרפין הסרט (ראה טבלת חומרים) לחתיכות קטנות של 3 מ"מ x 3 מ"מ גודל.
  3. לחשוף את הצמחים גדל בחדר ב 22 ° c ולנקות את הלחות עודף עם מגבת נייר. מניחים את חתיכות הסרט הקטנות מתחת לכל שורש.
    הערה: מכאן ועד שלב 2.6, יש להשלים את התהליך כולו תוך 15 דקות.
  4. להרים את הצמחים על מכסה צלחת פטרי. חותכים את השורשים בעמדה על 5-10 מ"מ מתחת השורש-היפוקטיל שורש. מניחים את החלק לירות בחזרה על הסרט על המדיום.
  5. בקפידה להחיל 0.25 μL של CFDA אל קצה החיתוך של כל שורש תחת מיקרוסקופ מבתר. להימנע מתיז לחלקים אחרים של הצמח.
  6. לכסות את הצלחת ולהשאיר את הצמחים תחת אור עבור 2-3 h (22 ° c) בחדר הצמיחה.
  7. שטפו את הצמחים המוכתמת שלוש פעמים ברציפות בשלושה ספלים נפרדים מלאים במים מזוקקים, ולאחר מכן שימו לב לצמחים שמתחת למיקרוסקופ עם מערכת הסטריאו עם מרחק של 1.4 x עד 3.3 x (ראו טבלת חומרים). לאיתור הקרינה הפלואורסצנטית, להשתמש בקוביית מסנן יעילות גבוהה (470/20 ננומטר, 495 nm פיצול ו 525/50 ננומטר פליטה) רכוב לשדר את האות הפלואורסצנטית.

3. CFDA טעינה עם היפוקטיל-צובט הליך

  1. הכינו פתרון חדש לעבודה CFDA באופן מיידי לפני השימוש. לדלל את 1 mM CFDA מניות פתרון מאוחסן-20 ° c מקפיא עם מים באולטרסאונד סטרילי (לראות את הטבלה של חומרים) לריכוז עובד של 5 μm.
  2. חותכים את קרום מיקרו נקבובי פרפין הסרט (ראה טבלת חומרים) לחתיכות קטנות של 3 מ"מ x 3 מ"מ גודל.
  3. לחשוף את הצמחים גדל בחדר ב 22 ° c ולנקות את הלחות עודף עם מגבת נייר.
    הערה: מכאן ועד שלב 3.7, יש להשלים את התהליך כולו תוך 15 דקות.
  4. הניחו פיסת סרט קטנה מתחת לצומת השורשים הבסיסי של כל צמח.
  5. מלקחיים להשתמש כדי לצבוט בעדינות את ההיפוטיל ליד השורש-היפוטיל במיקרוסקופ תחת מיקרוסקופ מבתר.
  6. בזהירות להחיל 0.1 μL של CFDA אל אתר הפצע תחת מיקרוסקופ מבתר. להימנע מתיז לחלקים אחרים של הצמח.
  7. לכסות את הצלחת, ולהשאיר את הצמחים תחת אור (22 ° c) עבור 2-3 h.
  8. שטפו את הצמחים המוכתמת שלוש פעמים ברציפות בשלושה ספלים נפרדים מלאים במים מזוקקים, ולאחר מכן שימו לב לצמחים שמתחת למיקרוסקופ עם מערכת הסטריאו עם מרחק של 1.4 x עד 3.3 x (ראו טבלת חומרים). לאיתור הקרינה הפלואורסצנטית, הר קוביית מסנן יעילות גבוהה (470/20 ננומטר, 495 nm לפצל ו 525/50 הפליטה nm) כדי לשדר את האות זריחה.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

התנועה הסימטרית כפופה לעיתים קרובות לתנודות סביבתיות. הפרטורציה של המדינה גדל הצמח, ואפילו את התהליך של הכנת רקמות ישפיע על הגבלת גודל הדרה של פלמודמאטה, ובכך להשפיע על התחבורה הסימטרית22. כדי לשפר את היעילות מכתים, אנו להגביל את הפעולה שלנו בחדר הגידול, שבו הטמפרטורה והלחות נשלטת בחוזקה, וגם לבצע את ההליך כולו מהר ככל האפשר (באופן אידיאלי בתוך 10-15 דקות לאחר הרמת מכסה של צלחת פטרי). אמצעי זהירות אלה במהלך ניסוי יכול להפחית ביעילות את שיעורי הצביעת לירות לא מוצלח.

תיארנו שני הליכים מעט שונים כדי להפגין תנועה לירות-מחלקה CF. בדרך כלל, שני ההליכים יכולים להוביל לצביעת CF בנצרי על 2 h לאחר האכלה (איור 2). עם זאת, שני ההליכים מייצרים יעילות שונה. הליך hypocotyl צובט ההליך התוצאות ב 91% יעילות צביעת, ואילו הליך חיתוך שורש מייצרת 70% (וולש t-test, p < 0.001) (איור 3). ניסינו גם לטעון את הצבע על ידי השורש-שיטה צובט ומצאו יעילות מכתים אפילו נמוך יותר לעומת שורש גזירה שיטה, מציע כי הגישה לטעון את הצבע בשורש אינו מסביר את ההבדל מכתים בין השורש ו היפוקוטיל טעינת אתרים (איור 3). האות CF נמצא בעיקר בתוך vasculature לטורה, אבל רק צמחים מעטים להראות את דפוס חצי עלה (איור 2) כפי שניתן לראות מקרומולקולה תנועה אחרים בדפוסי21. לאחר האות CF מתפשט לירות, זה יכול להישמר עבור יותר מ 72 h והאות לא יכול לפרוק עוד סוגי תאים אחרים; הדבר מתאים לתוצאות שפורסמו בעבר17.

Figure 1
איור 1 : איור סכמטי עבור ספיגת CFDA ותנועה CF בתאי הצמח. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.

Figure 2
איור 2 : האות CF ב נצרי של 9, 11 ו -13 יום לאחר זריעה (DAS) ערידרופזיס צמחים. האות CF ניתן לזהות הן פסיגי ועלים אמיתי (A, B, C). ברוב הצמחים, האות CF הוא נצפתה ב יום אחר 2-3 שעות של טעינה עם או שורש חיתוך או היפוקטיל-צובט שיטה. רק במקרים נדירים מאוד (פחות מ 0.5%), שיטת ההיפוקטיל-צובט יכול ליצור דפוס מכתים חלקי ב-cotyledon של 7 DAS Arabidopsis (ד). אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.

Figure 3
איור 3 : מכתים את היעילות עם שיטת טעינת השורש (שורש גזירה וצבירות שורש) ושיטת היפוקטיל-צובט. היעילות מכתים ב 9 הצמחים DAS נקבע בשלושה ניסויים עצמאיים (n = 26 בניסוי שורש צובט; n = 335 בניסוי חיתוך השורש; n = 522 בשיטה המאפיטיל-צובט). סרגל השגיאות מציין שגיאה סטנדרטית. מציין p < 0.001. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

מחקרים מתעוררים הראו כי הצמחים יכולים להגיב במהירות לגירויים חיצוניים23, כולל מניפולציה הציג את ההליכים הניסיוניים22. בניסוי הראשוני שלנו, הפיקוח שלנו על ידע זה מוביל לעיתים קרובות להצביעת הכישלון. עם שיעורים אלה, אנו מציעים כי אמצעי הזהירות הבאים יש לזכור בעת ביצוע ניסוי זה: (1) את הזרעים לאחר הקציר יש לשמור בארון אחסון מוגדר טמפרטורה נמוכה לחות נמוכה; (2) מניפולציה של צמחים, במיוחד את החשיפה לאוויר בארון, יש לשמור על זמן מינימלי; (3) התנאים הניסיוניים צריכים להישמר באופן קבוע, למשל, כל ההליכים יש לבצע בחדר הגידול.

היבט נוסף בניסוי זה שצריך לציין הוא שעוצמת הטעינה של CFDA צריכה להישמר כקטנה ככל האפשר. הפתרון העודף מוביל לעתים קרובות לפריטים שבהם הפתרון העודף CFDA יכול לפזר עד לירות דרך הפעולה נימי, ובכך צביעת trichomes של כיור צעיר עלי. למרות צעד כביסה לפני הדמיה יכול להפחית את הפריט הזה, הגישה הטובה ביותר היא לטעון סכום מינימלי כדי למנוע סיבוך הנגרם על ידי פתרון עודף.

עם אלה אמצעי זהירות טכניים נפתרה, התנועה שורש ל-לירות של CFDA ניתן לראות באופן בלתי נשכח כפי שמוצג באיור 2. כאשר הצמחים לצמוח, לומר מעל 24 ימים, צמחים Arabidopsis נראה לאבד את היכולת לשדר CF לירות, אשר עדיין לא מצאנו הסבר מדויק. רמז אחד אפשרי מגיע הצטברות תאיים שלה. על פי הדיווחים על ידי רייט et al.2, cf עלול להיות sequestrated על ידי וחללים, ולכן, ה-cf חינם התאיים במהלך הטרנסלוקציה מפחית בהדרגה כדי לקיבוע על בחללים גדולים יותר של צמחי הזדקנות.

אחת התכונות הברורות של הליך זה הוא דפוס ההפצה של CF ב לירות. דפוס כלי הדם הזה מזכיר את אלה על ידי טעינת הצבע בעלה המקור1,24,25, ובכך מובילה לאשליה כי הצבע נע גם דרך phloem. למעשה, הטרנסלוקציה התחתון של CF לא יכול להיות מושגת דרך שיפה נתון לעובדה כי השורש הוא רקמת כיור חזק התנועה היורה של cfda הולך נגד שיפה הזרמת. ליתר דיוק, תהליך זה עשוי להיות הקלה על ידי הובלה עצה כפי שמוצג על ידי botha ואח '25. בקצרה, ניתן לקחת את cfda דרך כלי עצה, מעובד בתאי כימומה ומועבר נוסף לרכיב הסננת של זרם שיפה25. לכן, ניסוי העמסה בדרך זו לא יכול לשקף את הפעילות של phloem, אבל התנועה באופן סימטרי של CF חייב להתרחש כמו זריחה חזקה ניתן לזהות. במילים אחרות, זו התנועה התחתונה לראש CF עשוי לנבוע התחבורה עצה משולב והובלה סימטרית דרך תאים בתוך כימוא.

הובלה סימטרית לעתים קרובות כפופה למערך הדומיין הסימטרי13, ובנסיבות מסוימות הוא מציג הובלה חד-כיוונית19,20. דרך אחת לבדיקה מהירה היא העברת אתרי טעינה. אכן, כאשר אנו פירט את התהליך הזה באמצעות אותה שיטה, מצאנו את השינוי הפשוט של האתר טעינה, משורש בצד ההיפוקטיל הצדדי כדי שורש הצומת היפוטיל, יגרום לשינוי משמעותי של היעילות הניידת CFDA (איור 3). בידול הסלולר CF בשל אתרי טעינה ברורים מראים כי צומת השורש-היפוטיל הוא תחום אחר סימטרי, שם מכשול סימטרי נוצר עבור אותות שורש נגזר הירי. תכנון ניסיוני נוסף עם מולקולות אחרות נדרש כדי לחקור אפשרות זו.

עד כה, שיטה פשוטה זו יכולה לספק תנועה של ירי יציב של CFDA. תכונה זו ניתן לחקור עוד כדי להבדיל בין צמחים עם פרוצים או משופר תנועת השורש לירות אשר לעתים רחוקות נחקרו.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

. למחברים אין מה לגלות

Acknowledgments

עבודה זו ממומנת על ידי הקרן הלאומית למדע הטבע של סין (31671257) ו חוביי המרכז חדשנות שיתופית לתעשיית הדגן (LXT-16-18).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
KNO3   Sinopharm Chemical Reagent 10017218
KH2PO4  Sinopharm Chemical Reagent 10017608
MgSO4·7H2O Sinopharm Chemical Reagent 10013018
CaCl2·2H2O Sinopharm Chemical Reagent 20011160
MnSO4·H2 Sinopharm Chemical Reagent 10013418
Na2MoO4·2H2O Sinopharm Chemical Reagent 10019818
Boric Acid Sinopharm Chemical Reagent 10004818
ZnSO4·7H2O Sinopharm Chemical Reagent 10024018
CuSO4·5H2O Sinopharm Chemical Reagent 10008218
CoCl2·6H2O Sinopharm Chemical Reagent 10007216
KI Sinopharm Chemical Reagent 10017160
FeSO4·7H2O Sinopharm Chemical Reagent 10012118
EDTA  Sinopharm Chemical Reagent 10009717
NaOH Sinopharm Chemical Reagent 10019718
KOH Sinopharm Chemical Reagent 10017018
Sucrose Sinopharm Chemical Reagent 10021418
Myo-inositol   MACKLIN I811835
Nicotinic Acid  MACKLIN N814565
Pyridoxine HCl MACKLIN V820447
Thiamine HCl MACKLIN T818865
Glycine MACKLIN G800880
Agar powder Novon ZZ14022
Fluorescence Microscope Zeiss Axio Zoom V16
Dissecting microscope SDPTOP SRE-1030
200μl pipette Dragon Laboratory Instruments 713111110000-20-200ul
2.5μl pipette Eppendorf 3120000011
Fine forceps  TWEEZERS ST-15
Parafilm PARAFILM PM-996
Stainless steel double-sided blade Gillette Platinum-Plus Double-Edge Blade

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Grignon, N., Touraine, B., Durand, M. 6(5)Carboxyfluorescein as a tracer of phloem sap translocation. American Journal of Botany. 76, 871-877 (1989).
  2. Wright, K. M., Oparka, K. J. The fluorescent probe HPTS as a phloem-mobile, symplastic tracer: an evaluation using confocal laser scanning microscopy. Journal of Experimental Botany. 47, (3), 439-445 (1996).
  3. Oparka, K. J., Prior, D. A. Movement of Lucifer Yellow CH in potato tuber storage tissues: A comparison of symplastic and apoplastic transport. Planta. 176, (4), 533-540 (1988).
  4. Knoblauch, M., et al. Multispectral Phloem-Mobile Probes: Properties and Applications. Plant Physiology. 167, (4), 1211-1220 (2015).
  5. Oparka, K. J., Duckett, C. M., Prior, D. A. M., Fisher, D. B. Real-time imaging of phloem unloading in the root tip of Arabidopsis. The Plant Journal. 6, (5), 759-766 (1994).
  6. Viola, R., et al. Tuberization in Potato Involves a Switch from Apoplastic to Symplastic Phloem Unloading. The Plant Cell. 13, (2), 385-398 (2001).
  7. Roberts, A. G., et al. Phloem Unloading in Sink Leaves of Nicotiana benthamiana: Comparison of a Fluorescent Solute with a Fluorescent Virus. The Plant Cell. 9, (8), 1381-1396 (1997).
  8. Péron, T., et al. New Insights into Phloem Unloading and Expression of Sucrose Transporters in Vegetative Sinks of the Parasitic Plant Phelipanche ramosa L (Pomel). Frontiers in Plant Science. 7, (2048), (2017).
  9. Spallek, T., et al. Interspecies hormonal control of host root morphology by parasitic plants. Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA. 114, (20), 5283-5288 (2017).
  10. Complainville, A., et al. Nodule initiation involves the creation of a new symplasmic field in specific root cells of medicago species. The Plant Cell. 15, (12), 2778-2791 (2003).
  11. Bederska, M., Borucki, W., Znojek, E. Movement of fluorescent dyes Lucifer Yellow (LYCH) and carboxyfluorescein (CF) in Medicago truncatula Gaertn. roots and root nodules. Symbiosis. 58, (1-3), 183-190 (2012).
  12. Robards, A. W., Lucas, W. J. Plasmodesmata. Annual Review of Plant Physiology and Plant Molecular Biology. 41, (1), 369-419 (1990).
  13. Roberts, A. G., Oparka, K. J. Plasmodesmata and the control of symplastic transport. Plant, Cell & Environment. 26, (1), 103-124 (2003).
  14. Duckett, C. M., Oparka, K. J., Prior, D. A. M., Dolan, L., Roberts, K. Dye-coupling in the root epidermis of Arabidopsis is progressively reduced during development. Development. 120, (11), 3247-3255 (1994).
  15. Palevitz, B. A., Hepler, P. K. Changes in dye coupling of stomatal cells of Allium and Commelina demonstrated by microinjection of Lucifer yellow. Planta. 164, (4), 473-479 (1985).
  16. van Bel, A. J. E., Kempers, R. Symplastic isolation of the sieve element-companion cell complex in the phloem of Ricinus communis and Salix alba stems. Planta. 183, (1), 69-76 (1991).
  17. Erwee, M. G., Goodwin, P. B. Symplast domains in extrastelar tissues of Egeria densa Planch. Planta. 163, (1), 9-19 (1985).
  18. Oparka, K. J., Prior, D. A. M., Wright, K. M. Symplastic communication between primary and developing lateral roots of Arabidopsis thaliana. Journal of Experimental Botany. 46, (2), 187-197 (1995).
  19. Christensen, N. M., Faulkner, C., Oparka, K. Evidence for Unidirectional Flow through Plasmodesmata. Plant Physiology. 150, (1), 96-104 (2009).
  20. Wróbel-Marek, J., Kurczyńska, E., Płachno, B. J., Kozieradzka-Kiszkurno, M. Identification of symplasmic domains in the embryo and seed of Sedum acre L. (Crassulaceae). Planta. 245, (3), 491-505 (2017).
  21. Liang, D., White, R. G., Waterhouse, P. M. Gene silencing in Arabidopsis spreads from the root to the shoot, through a gating barrier, by template-dependent, non-vascular, cell to cell movement. Plant Physiology. 159, (3), 984-1000 (2012).
  22. Radford, J. E., White, R. G. Effects of tissue-preparation-induced callose synthesis on estimates of plasmodesma size exclusion limits. Protoplasma. 216, (1-2), 47-55 (2001).
  23. Kollist, H., et al. Rapid Responses to Abiotic Stress: Priming the Landscape for the Signal Transduction Network. Trends in Plant Science. 24, (1), 25-37 (2019).
  24. Haupt, S., Duncan, G. H., Holzberg, S., Oparka, K. J. Evidence for Symplastic Phloem Unloading in Sink Leaves of Barley. Plant Physiology. 125, (1), 209-218 (2001).
  25. Botha, C. E. J., et al. A xylem sap retrieval pathway in rice leaf blades: evidence of a role for endocytosis? Journal of Experimental Botany. 59, (11), 2945-2954 (2008).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics