הפונקציונליזציה של מיקרוסקופ כוח אטומי מנופים עם תאים חד-טי או חלקיק יחיד לספקטרוסקופיית של כוח בודד אימונולוגיים

Immunology and Infection

Your institution must subscribe to JoVE's Immunology and Infection section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

אנו מציגים פרוטוקול לפונקציונליזציה של מיקרוסקופ כוח אטומי (AFM) התלויה מנופים עם תא T יחיד וחלקיק חרוז למחקרים אימונולוגיים. הליכים לחקור בודד זוג תא תא דנדריטי כריכה על ידי AFM ולפקח על התגובה התאית בזמן אמת של מקרופאגים לחלקיק אחיד אחד על ידי AFM עם הדמיה פלואורסצנטית מוצגים.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations | Reprints and Permissions

Chen, J., Xu, Y., Shi, Y., Xia, T. Functionalization of Atomic Force Microscope Cantilevers with Single-T Cells or Single-Particle for Immunological Single-Cell Force Spectroscopy. J. Vis. Exp. (149), e59609, doi:10.3791/59609 (2019).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

מיקרוסקופ כוח אטומי (AFM-SCFS) הוא כלי רב עוצמה ללימוד תכונות ביופיזיקלי של תאים חיים. טכניקה זו מאפשרת הידברות בדיקה ודינמיקה על קרום התא חי, כולל אלה בין תאים, קולטן וליגטים, לצד וריאציות רבות אחרות. זה גם עובד כמנגנון לספק גירוי פיסי או ביוכימיים על תאים בודדים בצורה מבוקרת spatioזמניות, ובכך לאפשר הפעלה תא ספציפית ואירועים סלולריים הבאים להיות מנוטרים בזמן אמת בשילוב עם לחיות תא הדמיה פלואורסצנטית. הצעד העיקרי במידות ה-AFM-SCFS הוא הפונקציונליזציה של ה-AFM-זיז, או במילים אחרות, ומצרף נושא מעניין לזיז. כאן, אנו מציגים שיטות כדי לשנות את מנוף AFM עם תא T אחד ו פוליסטירן בודד חרוז בהתאמה למחקרים אימונולוגיים. הראשון כרוך דבק ביולוגי תואם זוגות תאים T יחיד לקצה של זיז שטוח בפתרון, בעוד האחרון מסתמך על דבק אפוקסי על הדבקה אחת חרוז בסביבה האוויר. שני יישומים אימונולוגיים הקשורים לכל שינוי שלוחה מסופקים גם כן. השיטות המתוארות כאן יכולות להתאים בקלות לסוגי תאים שונים ולחלקיקים מוצקים.

Introduction

מיקרוסקופ כוח אטומי (afm), כלי רב-תכליתי, מצא יישומים רבים במחקר ביולוגיה תא1,2,3,4,5. מלבד יכולת הדימות שלה ברזולוציה גבוהה, התכונה הטבעית בודק כוח מאפשר ביופיזיקלי מאפיינים של תאים חיים להיחקר ישירות באתרו בתא יחיד ברמה6,7. אלה כוללים את מרכיבי הרוח של מבנים subcellular או אפילו תאים שלמים8,9,10,11,12, מסוימים מחייב ליגפני/קולטן החוזקות ב רמת מולקולה בודדת על פני השטח של התא13, וכוחות הדבקה בין זוגות בודדים של חלקיקים מוצקים ותאים או בין שני תאים1,2,14,15. שני האחרונים מסווגים בדרך כלל כספקטרוסקופיית כוח בודד (SCFS)16. בשל מנוף התלויה זמין עם קבוע באביב שונים, טווח הכוח נגיש AFM הוא רחב למדי מכמה piconewtons (pN) כדי מיקרוונטונים (μN), אשר מכסה כראוי את כל מגוון של אירועים סלולריים מעורבים כוחות מכמה עשרות של pN, כגון כריכת מולקולה בודדת מבוססת-קולטן, ל-nN, כגון אירועים סלולריים phagocytic15. זה טווח כוח דינאמי גדול עושה יתרון AFM על טכניקות אחרות כוח לחטט כגון מלקחיים אופטיים/מגנטיים ו biomembrane כוח בדיקה, כפי שהם מתאימים יותר מדידות כוח חלש, עם כוח בדרך כלל פחות מ 200 pN17 , 18. בנוסף, afm יכול לתפקד כמו מניפולטור בדיוק גבוהה כדי לספק גירויים שונים על תאים בודדים באופן מוגדר בצורה מוגדרת4,19. הדבר רצוי עבור לימודי הפעלה בזמן אמת של תא יחיד. בשילוב עם הדמיה לחיות בתאים הפלואורסצנטית, את התגובה התאית הבאה לגירוי מסוים ניתן לנטר בו, ובכך לבצע SCFS מבוססי מאוד חזק כמו דימות אופטי מתן כלי מעשי לחקור איתות סלולרי. למשל, AFM שימש כדי לקבוע את הזנים הדרושים כדי לעורר ארעיות סידן באוסטאואורך20. בעבודה זו, מעבר סידן מסומנים פלואורומטרים באמצעות הדמיה מטימטרי סידן לאחר היישום של כוחות מותאמים לשפות אחרות על האוסטאופיה מתורבת עם טיפ AFM. לאחרונה, afm הועסק מתיחה סיבים קולגן על אשר תאים stellate הכבד (hsc) גדלו ואת זה מכונאי הפעלה hsc ההפעלה היתה בזמן אמת מפוקח על ידי פלורסנט Src ביוסנסור, אשר זירחון כפי שמיוצג על ידי האינטנסיביות הפלואורסצנטית של ביוסנסור מתואם עם hsc הפעלה3.

בניסויי SCFS מבוססי AFM, הפונקציונליזציה הנכונה של מנופים של AFM התלויה הוא צעד מפתח לקראת מדידות מוצלחות. מאז אינטרס המחקר שלנו מתמקד הפעלה של תאים חיסוניים, אנחנו באופן שגרתי מנופים התלויים עם חומר חלקיקי כגון חלקיקים מוצק אחד שיכול להפעיל phagocyציטוזה ו/או תגובות החיסון חזק4,14 , 15 ותאי T בודדים שיכולים ליצור סינפסה החיסונית עם הצגת התאים אנטיגן, כגון תאים דנדריטים המופעל (DC)2. חלקיקים מוצקים בודדים מצמידים בדרך כלל לזיז באמצעות דבק אפוקסי בסביבה האוויר, ואילו תאים T בודדים, בשל האופי שלהם שאינם דבקים, הם פונקציונל באמצעות דבק ביולוגי בפתרון. כאן, אנו מתארים את השיטות לבצע שני סוגים אלה של שינוי זיז ולתת שני יישומים משויכים גם. האפליקציה הראשונה היא לחקור אינטראקציות T cell/DC עם AFM-SCFS כדי להבין את המנגנון המדכא של תאי T הרגולציה מנקודת המבט של מכניקת התא. השני כולל שילוב של AFM עם הדמיה לחיות בתאים פלואורסצנט כדי לפקח על התגובה התאית של מקרופאג כדי חלקיק מוצק בזמן אמת כדי לחשוף את המנגנון המולקולרי של הקולטן פוספולידיליליניום 4, 5-ביספושוונאים (PIP2)- . מוסין מתווכת הפייגוציטוזה מטרת פרוטוקול זה היא לספק מסגרת התייחסות לחוקרים מעוניינים לעצב וליישם הגדרות הניסוי שלהם עם מבוססי AFM ניתוח תא בודד עבור מחקר אימונולוגיים.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

פרוטוקול ניסוי העכבר עוקב אחר ההנחיות לטיפול בבעלי חיים של אוניברסיטת טסינחואה

1. פונקציונליזציה של זיז עם תאי T בודדים

  1. בתאי הטחול של העכבר הכנה
    1. להקריב את העכבר (8-16 שבועות של גיל (או סקס); למשל, C57BL/6 זן) באמצעות פחמן דו חמצני, ואחריו פריקה צוואר הרחם.
    2. לנקות את העכבר עם 75% אתנול ולעשות חתך העור באמצע קו ואחריו כריתת טחול.
    3. הומוגון לסדר את הטחול ב 4 מ ל של PBS המכיל 2% סרום של שור עוברי (fbs) באמצעות שקופיות זכוכית ולהסיר אגרגטים ופסולת על ידי העברת ההשעיה התא דרך מסננת ניילון 70 יקרומטר שינוי.
    4. צנטריפוגה את ההשעיה התא ב 500 x g עבור 5 דקות, להיפטר supernatant ולהשעות את התאים 2 מ ל של מאגר הפירוק של תא דם אדום (מאוזנת בטמפרטורת החדר) עבור 5 דקות. לסיים את תגובת הליזה על ידי הוספת 8 מ ל של פתרון PBS.
    5. צנטריפוגה את ההשעיה התא ב 500 x g עבור 5 דקות להשעות את התאים בצפיפות של 1 x 108 תאים/mL ב-PBS המכיל 2% Fbs ו 1 מ"מ Edta (מתויג כמו פתרון a), בדרך כלל 0.25-2 mL בהתאם לצפיפות התא. העבר את התאים המושהים ל-5 מ ל (12 x 75 מ"מ) פוליסטירן בצינור התחתון.
  2. הכנה לעכבר CD4 + T
    1. הוסף 50 μL/mL סרום עכברוש (ראה טבלת חומרים) ו 50 μl/ml CD4 + בידוד תא T קוקטייל (ראה טבלת חומרים) למדגם התא שהתקבל משלב 1.1.5. מערבבים ו דגירה עבור 10 דקות בטמפרטורת החדר.
    2. וורטקס המניות streptavidin מצופה חלקיקים מגנטיים (ראה טבלת חומרים) עבור 30 s או עד החלקיקים מופיעים באופן שווה התפזרו.
    3. ה75 וסף חלקיקים מגנטיים streptavidin מצופים ב-μL/mL לדגימת התא. מערבבים ו דגירה עבור 2.5 דקות בטמפרטורת החדר.
    4. הוסף פתרון A כדי למעלה את דגימת התא כדי 2.5 mL ולערבב על ידי ליטוף בעדינות למעלה ולמטה עבור 2-3 פעמים.
    5. מניחים את השפופרת לדוגמה (ללא מכסה) לתוך המגנט (ראה טבלת חומרים) ו דגירה עבור 5 דקות בטמפרטורת החדר. שופכים בזהירות את התא המועשר הבולם לתוך חדש 5 מ ל פוליסטירן מוקצף עגול התחתון.
    6. צנטריפוגה את ההשעיה התא ב 500 x g עבור 5 דקות. למחוק את supernatant ולהשעות מחדש את התאים T מועשר ב 500 μl של פתרון A.
      הערה: התאים CD4 + T המועשר מכילים הן תאי T רגילים ורגולליים.
  3. תאי T רגולט הפרדה מתאי T רגילים
    1. הוסף 25 μL של חוסם FcR (ראה טבלת חומרים) לדגימת תא T המועשר שהושגה משלב 1.2.6. מערבבים ו דגירה עבור 5 דקות בטמפרטורת החדר.
    2. הוסף 25 μL של קוקטייל בחירה חיובית של תא T (ראה טבלת חומרים) לדגימת התא t. מערבבים ו דגירה עבור 10 דקות בטמפרטורת החדר.
    3. הוסף 10 μL של קוקטייל בחירת PE (ראה טבלת חומרים) לדגימת התא T. מערבבים ו דגירה עבור 5 דקות בטמפרטורת החדר.
    4. וורטקס המניה מצופה החלקיקים המגנטיים של המניות (ראה טבלת חומרים) עבור 30 s או עד החלקיקים מופיעים באופן שווה התפזרו.
    5. הוסף 10 μL של חלקיקים מגנטיים מצופים דקטרן לדגימת התא T. מערבבים ו דגירה עבור 5 דקות בטמפרטורת החדר.
    6. הוסף את הפתרון A כדי למעלה את דגימת התא T ל 2.5 mL ולערבב על ידי בעדינות ללטף למעלה ולמטה עבור 2-3 פעמים.
    7. מניחים את השפופרת לדוגמה תא T (ללא מכסה) לתוך מגנט ו דגירה עבור 5 דקות בטמפרטורת החדר. שופכים בזהירות את הסופרנטאנט לשפופרת חדשה.
      הערה: supernatant מכיל את התאים המועשר קונבנציונאלי CD4 + T.
    8. צנטריפוגה את התאים CD4 + T קונבנציונאלי מועשר ב 500 x g עבור 5 דקות. להיפטר supernatant ולהשעות את התאים ב 4 מ ל של RPMI1640 המכיל 10% fbs, 0.05 mM β-Mercaptoethanol, 0.01 M hepes ו 1% פניצילין/סטרפטומיצין (שכותרתו כבינונית B).
    9. הסר את הצינור שבו תאי T הרגולציה מועשרים מן המגנט. הוסף 2.5 mL של פתרון A אל הצינור ולערבב על ידי בעדינות ליטוף למעלה ולמטה עבור 2-3 פעמים. לשים את הצינור בחזרה לתוך המגנט, דגירה עבור 5 דקות, ולאחר מכן בזהירות לשפוך ולמחוק את supernatant. חזור על שלב זה עוד שלוש פעמים.
    10. השהה מחדש את תאי T הרגולטורים המועשר ב-2 מ ל של בינונית B.
    11. שניהם מטוהרים בתאי T קונבנציונאלי ותאי T הרגולציה עם 100 U/mL היל-2 לילה או לפחות 4 h ב 37 ° c בחממה מחולל לחות עם 5% CO2 לפני שנעשה שימוש לפונקציונליזציה זיז.
  4. הכנה לתאים דנדריטים
    1. הכנת פתרון פיראניה, תערובת של 30% H2O2 (30%) ו 70% H2כל כך4 (conc) (v/v). לאט לשפוך 3 מ ל של H2O2 לתוך 7 מ ל של h2כל כך4 תחת ערבוב וקירור קבוע.
      התראה: הפתרון פיראניה הוא מאוד מאכל, והוא יכול לצרוב ולהשמיד רקמות הגוף. לכן, בטוח יותר להשתמש בתמיסה פיראנה תחת ברדס וללבוש ציוד בטיחות מתאים, כמו התערובת יהיה להתיז סביב הגביע. לנטרל את הפתרון עם NaOH ל-pH 7 לאחר השימוש.
    2. לטבול את שמיכות זכוכית של קוטר 24 מ"מ לתוך הפתרון פיראניה עבור 30 דקות ולשטוף ביסודיות לאחר מכן עם המים באולטרטהורים סטרילי.
    3. טובלים זוג מלקחיים מחודדים ב-75% אתנול במשך 30 דקות לחיטוי קר.
    4. הציגו את שמיכות הזכוכית הנקוות לצלחת התרבות בעלת 6 היטב על ידי הפינצטה.
    5. להטות את הצלחת 6 ס מ לתרבות פלסטיק שבה DC 2.4 תאים היו טרום תרבותית עם 4 מ ל של בינונית B ומכה את כל המדיום. הוסף 2 mL של PBS לתוך צלחת התרבות כדי לשטוף DC 2.4 תאים ולמחוק PBS. חזור על צעד שטיפה זה פעמיים נוספות.
    6. הוסף 1 מ ל של 0.25% טריפסין EDTA לצלחת התרבות עבור 2 דקות. הוסף 1 מ ל של בינונית B כדי תבשיל זה כדי לסיים את תגובת העיכול האנזים. העבר את השעיית התא המתעכל לשפופרת של 15 מ ל.
    7. צנטריפוגה את השעיית התא ב 500 x g עבור 5 דקות ו-dc השעיה מחדש 2.4 תאים בצפיפות של 2 x 105 תאים/mL במדיום B.
    8. זרעי DC 2.4 תאים על שמיכות זכוכית הכין בשלב 1.4.4 ו-דגירה את התאים לילה בחדר מחולל לחות ב 37 ° c עם 5% CO2.
      הערה: כדי למדוד כוחות האינטראקציה בין שני תאים בודדים, ריכוז נמוך יחסית של DC 2.4 תאים (כלומר, < 10% שליטה) הוא הכרחי כדי להיות מרווח הולם בין תאים.
  5. הכנת שלוחה AFM
    הערה: מנופים שמתאימים לניסויים באמצעות ספקטרוסקופיית בודד, הם אלה עם קבועי מעיין נמוכים, בדרך כלל בטווח של 0.01-0.06 N/m. כאן, מנופים רכים התלויה פחות עבור תאים בודדים ופונקציונליות חלקיקים בודדים אחיד.
    1. נקו את המנופים על ידי טיפול פיראניה או פלזמה או UV-אוזון.
    2. הר את הזיז הנקי לראש סריקת AFM.
    3. הכן תא מדגם נקי מלא מים טהורים לכייל את הזיז בתמיסה המים על ידי הפעלת עקומת כוח על מצע הזכוכית כדי לקבל את הרגישות (השיפוע של התאמה ליניארית על החלק הדוחה של העקומה מתקרב) ולאחר מכן הקלטת ספקטרום רעש תרמי כדי לחלץ את קבוע האביב בהתאם למדריך ההוראה של AFM.
    4. הסר את ראש סריקת AFM מהפתרון, לשטוף את הזיז רכוב עם כמה טיפות של אתנול טהור, ולשמור את הזיז יבש על הראש סריקה.
  6. חיבור תאי T בודדים לזיז
    1. מחממים את מארז התאים החיים עם 5% CO2 ב 37 ° c.
    2. הר שמיכות זכוכית עם DC 2.4 תאים גדל על זה משלב 1.4.8 הרכבת למדגם קאמרית, להוסיף 600 μL של בינונית B לחדר מיד, ולאחר מכן לשים את ההרכבה על הבמה AFM לדוגמה.
    3. הוסף CD4 להוסיף לחדר הדגימה את התאים הרגילים או הרגולטורים של היל -2.
      הערה: נפח הדגימה הכולל לא יעלה על 1 מ ל.
    4. המתן עד תאי CD4 + T שנוספו מיושבים במלואם בתחתית הכיסויים.
      הערה: בועות אוויר יגרום הפרעה גדולה לניסוי, ולכן, מומלץ להימנע כל בועות אוויר בשלב 1.6.2 ו 1.6.3.
    5. הוסף טיפה של 2 μl של דבק ביולוגי על הקצה של הזיז רכוב עם פיפטה כפי שמוצג באיור 1 ולאחר מכן למקם את ראש הסריקה על הבמה לדוגמה במהירות, ובכך לאפשר את הזיז מצופה עם דבק תואם ביולוגי לטבול ב פתרון.
      התראה: אין לגעת בבלוק הזכוכית או בזיז עם קצה הפיפטה. מכיוון שדבק ביולוגי המשמש כאן הוא נוטה חמצון באוויר, שלב זה צריך להיעשות מהר ככל האפשר.
    6. אתר תא T בריא מתחת לקצה של הזיז מתחת למיקרוסקופ על ידי הזזת שלב המדגם ולאחר מכן להתאים בעדינות את המיקום על ידי הזזת ראש הסריקה.
      הערה: תא CD4 + T בריא בדרך כלל כולל גודל גדול יחסית, קצוות חלקים וtransmissive אופטית בדימות השדה הבהיר.
    7. הנמך את הזיז באופן ידני עם גודל השלב החל מ-50 יקרומטר ולאחר מכן ל-10, 5, 2 ו-0.5 יקרומטר בהדרגה על-ידי שליטה על מנועי stepper. להחזיק את המיקום של מנועי stepper ולהתאים את המיקום של הראש סריקה ליישור טוב יותר בין קצה הזיז ואת התא, פעם הזיז הופך קשר המשרד עם תא T היעד כפי שצוין על ידי עקירה קטנה של קרן הלייזר מיקום בגלאי התמונות התואם לטווח הכוח האופייני של 0.5-1.5 nN.
      הערה: ניתן לבצע שלב זה גם על-ידי הפעלת מידה יחידה בודדת שבה נקודת ההגדרה (הכוח המוחל על התא) וזמן יצירת הקשר יכולים להיות מוגדרים היטב בתוכנה. עם זאת, בשל האופי הלא דביק של תאים T, הגישה הידנית מספק גמישות רבה יותר בשליטה מכוון, מיצוב, זמן יצירת קשר מאשר האוטומטי מתקרב וזה עובד באופן אמין עבור הדבקה תא T. ניסויים בעתיד צריכים לנסות הן את המדריך והן אוטומטית מתקרבים לגלות מה עובד טוב יותר עבור מערכות העניין שלהם.
    8. למשוך את הזיז אחרי 30 של מגע.
      הערה: אם התא נע עם הזיז, הקובץ המצורף מצליח. אם לא, חזור על שלב 1.6.6 אך על תא T אחר. הדבק התואם ביותר. מתחמוצת בקלות שלב 1.6.5-1.6.7 צריך להסתיים בתוך 5 דקות. בנוסף, אם אותו הזיז נכשל שלוש פעמים על הקובץ המצורף לתא T, יש להשתמש בזיז חדש, וההליך המצורף צריך להתחיל שוב משלב 1.5.2.

Figure 1
איור 1: ייצוג סכמטי של הוספת טיפה קטנה של דבק ביולוגי על הזיז הנטען. הזיז הוא רכוב באמצעות קפיץ לחסום את מחזיק הזכוכית המותקן בראש סריקת AFM (לא מצויר כאן). כאשר ראש הסריקה עומד על משטח מפולס, הזיז מונחה אנכית כמוצג בציור. ניתן להוסיף לקצה הזיז באמצעות מיקרו-פיפטה על שני הדבק התואם ל-μL. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.

  1. כפיית ספקטרוסקופיה של תא T בודד/תא הדנדריטי אינטראקציה
    הערה: כדי לבדוק אינטראקציות תא/תאים, afm עם טווח Z גדול יותר מאשר 10-15 יקרומטר קונבנציונאלי נדרש כדי להפריד באופן מלא את שני התאים. AFM משמש כאן יש Z-טווח של 100 μm, אשר מספיק כדי להפריד תא T מתא הדנדריטים לאחר מגע תא/תא.
    1. הצב את התא T המצורף מעל לתא DC 2.4 נפרד על-ידי הזזת השלב לדוגמה ו/או ראש הסריקה (ראה איור 2).
    2. הגדר פרמטרים נכונים והפעל ספקטרוסקופיית כוח.
      הערה: הגדרות המפתח הבאות משמשות בדרך כלל: Setpoint 0.5 nN, אורך מושך 50 μm, תנועת Z מהירות קבועה, הרחבת מהירות 5 μm/s, צור קשר זמן 10, כוח קבוע של מצב עיכוב. עבור כל זוג T-DC, 20 חוזר של עקומות כוח נאספים ומינימום של 14 עקומות כוח משמשות לניתוח נוסף.
    3. הר שלוחה חדשה ומנוקה, כיול אותו במים טהורים כמו בשלב 1.5.3, וחזור לדגימת תאים T-DC כדי לחזור על שלב 1.6 ו 1.7 עבור זוג T-DC אחר. בדיקה לפחות 5 זוגות לכל תנאי.

Figure 2
איור 2: קביעת התצורה הניסיונית של בדיקת כוח בין תא T יחיד לבין DC. (א) רישום סכמטי של התצורה הניסיונית שבה תא T המחובר לזיז מובא ל-DC שגדל על המצע לחיטוט בכוח. (ב) תמונת שדה בהירה של שלוחה בעלת פונקציונליות תא T ו-DC. סרגל בקנה מידה, 20 μm. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.

2. פונקציונליזציה לזיז עם חרוזי קלקר בודדים

  1. הכנה לחרוזים בודדים
    1. לדלל את השעיית המניה של 6 יקרומטר פוליסטירן חרוזים ב 100% אתנול.
      הערה: הריכוז של פתרון חרוזים מדולל צריך להיות נמוך מספיק כך שכאשר הוסיף משטח שמיכות זכוכית, חרוזים בודדים מופרדים היטב ללא אשכולות משמעותיים לאחר אידוי הממס.
    2. נקה את שמיכות זכוכית בקוטר 24 מ"מ עם אתנול ולהסיר כל אבק על ידי N2 האוויר זרימת.
    3. הר את שמיכות זכוכית מנוקה להרכבה קאמרית לדוגמה ולשים את ההרכבה על המיקרוסקופ.
    4. שים טיפה של פתרון חרוזים מדולל בצד שמאל אבל קרוב למרכז של coverslip (ראה איור 3) ולבדוק את המרווח בין החרוזים לאחר אידוי הממס בשדה בהיר תחת המיקרוסקופ עם מטרה 20x. המשך לשלב הבא אם החרוזים בודדים מופרדים היטב.
    5. לטבול טיפ מיקרופיפטה או קיסם לתוך דבק אפוקסי מעורב היטב ולאחר מכן להעביר כמות קטנה של דבק כזה לשלושה כתמים נפרדים עם נגיעות עדינות רצופים בצד ימין אבל קרוב למרכז של הcoverslip.
      הערה: שלושת נקודות הדבק צריכות להיות מיושרות אנכית (ראו איור 3). הנקודה האחרונה עם הכמות הקטנה ביותר של הדבק תהיה בשימוש מאוחר יותר.

Figure 3
איור 3: ייצוג סכמטי של זרימת עבודה לפונקציונליזציה של חרוזים בודדים על הזיז. מופרדים היטב מיקרון בגודל חרוזים מוכנים בצד שמאל של המצע וכמות זעירה של דבק אפוקסי מועברים על הצד הימני של המצע דרך 3 נגיעות עדינות רצופות, וכתוצאה מכך 3 כתמי דבק. רק המקום האחרון עם הסכום הנמוך ביותר של הדבק (מצוין על ידי מעגל) משמש כדי לשים את קצה מאוד של הזיז. להתקרב הזיז לתוך הדבק משמאל ולאחר מכן להזיז את הזיז אחורה ברגע שהוא שקוע לתוך הדבק כדי להגביל את הדבק בקצה מאוד של הזיז. להביא את חרוז היעד מתחת הזיז וליישר אותם כראוי לפני ביצוע מגע החברה (בדרך כלל 2-5 nN) עבור הדבקה חרוז. כאשר החרוז הוא מתפקד בהצלחה על הזיז, שלוחה חדשה יכולה להיות מותקן כדי להתחיל מחזור הפונקציונליזציה החדש. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.

  1. הכנת שלוחה AFM
    1. טעינת שלוחה שנוקה פחות מקצה לראש סריקת AFM.
    2. כיול הזיז הזה באוויר עם משטח נקי כדי לקבל את קבוע האביב.
  2. חיבור חרוזים בודדים אל הזיז
    1. הצב את קצה הזיז מעל הגבול השמאלי של הכתם האחרון של דבק האפוקסי כמוצג באיור 3.
    2. הביאו את הזיז הקרוב לדבק לאט על ידי הנמכת מנועי הפסיעה עם גודל השלבים הקטנים.
    3. משוך את הזיז הרחק במהירות מן הדבק באמצעות הזזת ראש סריקת AFM לאחור (משמאל) באופן ידני פעם הקצה הוא שקוע בדבק.
      הערה: ודא כי רק כמות קטנה של הדבק מדבקת בקצה הקצה. אם יש דבק מופרז על הקצה, אפשר להקטין את כמות הדבק על ידי נגיעה ואחריו על ידי הזזת הקצה על משטח ריק.
    4. הזז את קצה הזיז על גבי חרוז יחיד מבודד היטב.
    5. לגשת הזיז לחרוז אחד לאט ולעשות קשר עם החברה עם חרוז (כפי שמצוין על ידי העקירה של מיקום קרן לייזר בגלאי המתאים לטווח כוח אופייני של 2-5 nN) עבור 10 במהלכו במהלכה התאמה קנס של ה מיקום ה-ip באופן מיותר מקרוב תסייע לאתר בצורה טובה יותר את החרוז בקצה מאוד של הקצה. משכי את הקצה בסוף איש הקשר.
      הערה: היעלמותו של החרוז מתוך המישור המקורי מעיד על אירוע חסיד מוצלח.
    6. Demount שונה חרוז בזהירות ולאחסן אותו בתיבת זיז לילה עבור מיצוק מלא של הדבק.
  3. הדמיה פלואורסצנטית של התגובה התאית של מקרופאג לחרוז אחד שנמסר על ידי AFM.
    הערה: הדמיה פלואורסצנטית בוצעה על מיקרוסקופ מתוצרת בית מסוג כולל השתקפות פנימית במיקרוסקופ מבוסס על דוכן מיקרוסקופ מסחרי. מערכת הדמיה זו מצוידת 4 מקורות לייזר (405 nm, 488 nm, 561 nm, 647 nm), מציג מפצל לאיתור שני צבעים, ו אלקטרון הכפלת חיוב מצמידים המכשיר (EMCCD) עבור הדמיה שטח רחב.
    1. לגדול 264.7 תאים גולמיים על שמיכות זכוכית ב 37 ° c ב 5% CO2 מחולל תא.
    2. Transfect Moesin אסין-EGFP ו-PLCδ-PH-mCherry לתאי 264.7 גולמיים באמצעות ערכת החצייה (ראה טבלת חומרים) לפי פרוטוקול של היצרן כדי להמחיש באופן מוסין ופוספרידיםליניטול 4, 5-ביספוםשנאה (PIP2) מולקולות בהתאמה.
      הערה: מוסין כולל מוטיב ITAM שיכול להפעיל את Syk, שחקן מפתח בפייגוציטוזה. PIP2 ידוע לגייס מוסין לקרום התא.
    3. לשים את שמיכות זכוכית עם תאים על הרכבה קאמרית מדגם והר ההרכבה על הבמה AFM לדוגמה.
    4. הר השונה חרוז לראש סריקת AFM.
    5. הפעל עקומת כוח באזור ריק וכבה את הכוח עם הרגישות מעקומה זו ואת קבוע האביב שנמדד בשלב 2.2.2.
    6. מצא תא מבודד היטב עם עוצמות של כוונות זריחה בשתי הירוקות (Moesin-EGFP) ואדום (PLCδ-PH-mCherry) ערוצים עם 488/561 ננומטר הפעלות.
    7. מסירת בעירום 6 יקרומטר פוליסטירן בחרוזים עם afm למשטח התא עם 1 nN כוח קבוע ו 500 s זמן יצירת קשר.
    8. הקלטת סדרה של תמונה פלואורסצנטית של התא במגע עם חרוז לניתוח (בדרך כלל 10 מסגרות/s).
      הערה: כדי להקטין את photobleaching לבנת של fluorophores, כוח עירור נמוך יחסית צריך לשמש לחיפוש בתאי העניין. בנוסף, תרמית עירור לסירוגין יכול להיות מועסק כדי להאריך את עקבות הזמן של הזריחה אם הדינמיקה של תגובות התא הוא בסרגל זמן איטי.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

איור 4A מציג עקומות מרחק כוח אופייני מתוך האינטראקציה הbinding בין תא בודד-T לבין SINGLE-DC במחזור אחד של מחזור גישה. העקומה האדומה הקלה היא עקומת ההרחבה והאדום הכהה הוא עקומת הנסיגה. כיוון שעקומת ההארכה משמשת בדרך כלל לכניסות או לניתוחי קשיחות, כאן רק עקומת הנסיגה מודאגת לגבי הדבקה בתאים. הערך המינימלי (העיגול הירוק) בעקומה מעניק מידה של כוח הדבקה מרבי. האזור שמתחת לעקומה (אזור מוצל) מייצג את העבודה (אנרגיה) הדרושה להפרדת התא T מהבירה. לפני הפרדה מלאה, אירועים הקרע חדה ומבחינה מעשית לעתים קרובות נצפו. זה מפורש כמו ממברנה להיות מושך מפני השטח התא בשל הכריכה חזקה בממשק התא/התא ולאחר מכן שבירת באופן מתמשך תחת משיכה רציפה. המספר, הגובה, ואורך השלבים יכולים לשמש לאפיון התכונות המכאניות של קרום התא21. לאינטראקציות T cell-DC, אנו מעוניינים בחוזק המחייב, ולכן רק כוח הדבקה מירבי מנותח עבור כל עיקול. איור 4B משווה כוחות הדבקה בין תא t קונבנציונאלי (המרה)/DC ו-T הרגולציה תא (treg)/dc. המרה מזהה אנטיגנים פפטיד הציג על ידי אנטיגן הצגת תאים כגון DC, ואילו Treg הוא מדכא תאים T כי כיבוי Tconv מרה-חסינות בתיווך לקראת סוף התגובה החיסונית. ברור, Treg מראה הרבה יותר חזק קשירה עם DC מאשר Tconv מרה עושה (ראה איור 4C). זה קשור לשיעורי מחזור דיפרנציאלי של LFA-1 על משטח התא T בין Treg ו Tconv מרה2. אולם, המנגנון המדויק ששולט על זה עדיין מתחת לחקירה. הכריכה חזקה של Treg ל DC הוא עקבי עם זמני מחייב ארוך בין Treg ו DC נצפתה ב vivo22. יותר חשוב, אם DC מראש מראש כדי Treg, DC זה לא יכול לעסוק בכוח אחר Tconv מרה בחוזקה (נתונים לא מוצגים), המוביל לקרקע T מופחתת הטרמה או דיכוי החיסון2. כך, מדידות הכוח בזוגות T cell/DC לספק תובנה חדשה לתוך המנגנון המדכא של Treg.

Figure 4
איור 4: תאים Treg להראות הדבקה חזקה כדי DCs. (א) מתעקל כוח אופייני בין תא Tconv מרה לבין dc 2.4. העקומה האדומה הקלה היא עקומת ההרחבה והעקומה האדומה הכהה היא עקומת הנסיגה. הערך המינימלי של העקומה האדומה הכהה שמציין העיגול הירוק הוא כוח הדבקה המירבי. האזור המוצל מייצג את האנרגיה הדרושה להפרדה מוחלטת בין שני התאים. (ב) קריאות כוח עבור תאים T של סוגים שצוינו אינטראקציה עם dc 2.4 תאים. לכל זוג T-DC יש לפחות 14 קריאות כוח ו-5 זוגות תאי DC-T עצמאיים שעברו בנחקר לכל סוג תא. סמלים אפורים הם עבור תאים המרה (5); כחול כהה, תאים Treg (5). כל נקודות הנתונים נאספו באותו יום. ג. משמעות הכוחות של תאי T של הסוגים המצוינים אינטראקציה עם DC 2.4 תאים. קווי שגיאה הם SEM. * * *, P < 0.001 (מבחן ה-t של הסטודנט). אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.

איור 5 מראה כיצד לתייג phagocytic raw 264.7 תא גולמיים מגיב אחד עירום 6 יקרומטר פוליסטירן מועבר על ידי afm4. התוכנית הניסיונית מוצגת באיור 5A. PIP2 מתויג על ידי PLCδ-PH-mCherry (אדום) ו Moesin מתויג על ידי EGFP (ירוק) (ראה איור 5B). למרות ששניהם מועשר בממשק חרוז/תא, הצטברות של Moesin במידה רבה איתר את שינויי העוצמה של PIP2 כפי שמצוין על ידי מגרשים kymograph מראה את פרופילי העוצמה כפונקציה של זמן לאורך הקו הלבן המצוין איור 5C. יחד עם העובדה מוסין יכול לאגד ל PIP2 דרך תחום FERM שלה23, התוצאה כאן עולה כי על העוסקים חרוז, ממברנה PIP2 מיון הראשון באתר הקשר, אשר לאחר מכן גורם גיוס ממברנה של מוסין אשר התחום itam אז מפעיל מסלולים Syk-PI3K, וכתוצאה מכך אירוע phagocytic. כך, מסלול phagocytic חדש מעורבים PIP2-Moesin-Syk הציר זוהה והכי חשוב, זה לא תלוי בקולטנים על קרום התא.

Figure 5
איור 5: מוסין איתות הוא במורד הזרם של PIP2 מיון מונע על ידי המבנה המוצק. (א) ייצוג סכמטי של הדמיה פלואורסצנטית של מגע/תא עם חרוז שנמסר על ידי afm. (ב) PH-PLCδ-מדובדבן ומואסין-egfp הביעו שיתוף בתאי 264.7 גולמיים. חרוז מוקצף שימש ליצירת קשר עם משטח התא. תמונות צולמו במרווח של 6 s עבור 500 s. סרגל קנה מידה, 5 μm. C. לוקליזציה של PIP2 ו Moesin באתר המגע (המצוין עם "*") נבדק עם kymographs שנוצרו מן הקו המצוין. איור זה השתנה מ-4. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

AFM מבוססי תא בודד ספקטרוסקופיית התפתח להיות כלי רב עוצמה כדי לטפל במאפיינים הביופיסיים של תאים חיים. עבור יישומים אלה, הזיז צריך להיות מתפקד כראוי על מנת לחקור אינטראקציות או מאפיינים ספציפיים על תאי העניין. כאן, השיטות לצימוד תא T יחיד וחרוז מיקרון בגודל יחיד לזיז הפחות-טיפ מתוארים בהתאמה. כדי לצרף תא T יחיד לזיז, הדבק הביותואם נבחר כדבק בתאים. זהו פתרון חלבון שניסח במיוחד שהופק ממוסזל ימי. היא מקורו בפסולת פוליפנפילית שקבוצת הידרוקסיל שלהם יכולה ליצור קשר מימן עם שאריות שנחשפו על פני השטח באופן לא ספציפי. שיטה זו של איגוד אינה מפריעה בדרך כלל לפונקציות סלולריות של התא המאוגד. לצורך הדבקה נכונה, התנאים של התאים להיות מחוברים חשובים גם. במקרה של העכבר הטרי CD4 + T תאים, הם צריכים להיות מטופלים הראשון עם האדם IL-2 לילה לפני שהם יכולים לשמש פונקציונליזציה הזיז. אחרת, הם יעברו מוות. תאים במהירות אם התאים אינם במצב טוב, גם אם הם יכולים להיות מחוברים הזיז, הם כנראה להתנתק מן הזיז לאחר רק מחזורים מסוימים של בדיקה כוח עקב חוזק הדבקה חלשה, המוביל שיעור כישלון גבוה של מדידות כוח. החיסרון של דבק זה תואם ביולוגי הוא שהוא נוטה חמצון, ולכן את ההליך צימוד צריך להסתיים מהר ככל האפשר, אשר יכול להיות מאתגר לפעמים עבור אופרטורים. כדי להפחית את החמצון של הדבק תואם סתיימים מומלץ מאוד להכין 30 μl ali, בבקבוקונים קריוגניים ממולאים n2 גז מהפתרון במניה בסביבה n2 אוויר ולאחסן אותם בנוזל n2 עבור הביצועים הטובים ביותר . החשוב ביותר, דבק זה תואם ביולוגי מוכיחה להיות אינרטי תאים T בניגוד דבק חלבונים אחרים המבוססים על חלבון כגון fibronectin ו לשנס אשר יכול לגרום לאשכולות קולטן בלתי מכוונות באזור הקשר זיז/תא ובכך להפעיל את התאים T24 ,25,26. לפיכך, השפעות הדבקים על תאי העניין צריכים להיבדק בבדיקה לפני שניתן יהיה להשתמש בהם לצורך הדבקת תאים. הדבר חל גם על סכימות אחרות של שלוחה-פונקציונליזציה המתבססים על הפרשות מולקולריות ספציפיות, כגון אנטיגן/נוגדן, biotin/streptavidin, וקונקאנאבאלין A/carbohydrated-קולטנים, למספר תאים בודדים לזיז.

כדי לבדוק את האינטראקציות T cell/DC, הפרמטרים הממוטבים כפי שצוין בפרוטוקול (step 1.7.2) נבחרו לספקטרוסקופיית כוחות. ביניהם, הערך של נקודת ההגדרה וזמן ההתקשרות הם שני פרמטרי המפתח. באופן כללי, המיטוב של נקודת ההגדרה מתחיל עם ערכים קטנים (0.1-0.2 nN). עבור אינטראקציה של תא/תא, ערך של נקודת הערכה גבוהה (> 2 nN) מוביל לעיוות גדול של תאים ולאזור איש קשר גדול. זה בדרך כלל התוצאה של כוח הדבקה גדול הבדיקה. עם זאת, הכוח הנחקר נובע הן מאינטראקציות ספציפיות ולא ספציפיות בממשק התא/תא בשל האופי המורכב של משטחי התא, אשר, במידה מסוימת, קשקשים עם אזור המגע. לכן, ככל שהערך של נקודת ההגדרה גדול יותר, כך התרומה גדולה יותר של אינטראקציות שאינן ספציפיות. האחרון הוא מה צריך להיות ממוזער בכל מדידות כוח. בנוסף, כדי ללמוד אודות אינטראקציות לא ספציפיות, מדידות כוח בקרה כגון שימוש בנוגדנים ספציפיים או הסתרה (או מנותחת) תאים כדי לחסום אינטראקציות מסוימות של הריבית צריך להיחשב לקבל בדיקה כוח בסיס בערכי set-point נתון . פעולה זו תסייע לזהות את האינטראקציות הספציפיות במידות הבדיקה. באשר לזמן יצירת הקשר, הדבר תלוי בקנה המידה בו מתרחשים האירועים המולקולריים או הסלולאריים. לכן, ידע מוקדם על האירועים המעניינים הוא חשוב. במקרה של T תא/אינטראקציה DC הפעלה, מולקולת הדבקה LFA-1 על תא T ו-ICAM-1 על DC טופס זוג קשירה. מליטה בין-מולקולרית זו מתרחשת מהר למדי פעם שני עמיתיהם נמצאים בעמדה, אבל זה לוקח זמן עבור המולקולות לדיפוזיה למקומות הנכונים על קרום התא שבו מולקולות המקביל מוכנים להתחברות, תהליך מוגבל דיפוזיה. לכן, אנו מגדיר 10 s זמן יצירת קשר כדי לאפשר מרובים lfa-1/icam-1 זוגות מליטה לטופס על פי ניסויים זרימת הטיה על ידי בונגרנד קבוצה27,28. למרות שזמן רב יותר ניתן להגדיר, בשלב מסוים, זמן רב יותר לא עוזר כאשר היווצרות מליטה רווי בממשק. יתרה מזאת, זמני יצירת קשר ארוכים עלולים לגרום לתגובות הסלולר שאינן מעניינות. מצד שני, אם אירועים סלולריים מסוימים הם העניין, כגון אירוע phagocytic המתואר ביישום השני שבו חרוז היה נבלע חלקית על ידי מקרופאג, זמן המגע הארוך הוא הכרחי לחלוטין.

כדי לצבור מספיק סטטיסטיקה, 20 חוזר של עקומות כוח נאספו עבור כל זוג T תא/DC ו לפחות 14 כוחות עקומות שימשו ניתוח מקסימלי של כוח הדבקה. לפחות 5 זוגות נבדקו בכל אחת מקבוצות הבדיקות. כדי להסיר היסטוריית לדוגמה, רק צמדי T cell/DC טריים היו מסומנים, כלומר התאים T ו-DCs שנבחרו לבדיקה לא היו היסטוריית אנשי קשר עם תאים אחרים. למרות ההליך הנ ל הופך את הניסויים הכוללים זמן-ואת העלות צורכת, זה אולי הדרך הנכונה לבצע מדידות כוח כגון על הצמדים T cell/DC.

הצמדת חרוזים בודדים לזיז קלה יחסית בהשוואה לפונקציונליזציה של התא על הזיז. מאחר שדבקים באפוקסי שונים מאפשר להשיג בשוק, ניתן לבחור בדבק אפוקסי עם זמן מיצוק ארוך, בדרך כלל לפי סדר השעות. זה מאפשר מספר חרוז שונה התלויה מנופים להיות מוכנים במדגם אחד חרוזים. לחילופין, דבק UV לריפוי ניתן להשתמש, אשר יכול לקצר את זמן הריפוי באופן משמעותי, כ 10 דקות תחת אור UV28. לא משנה מה הדבקים נמצאים בשימוש, הצעד הקריטי היחיד לאורך הפרוטוקול הוא לצרף כמות מינימלית של דבק לקצה של הזיז. דבק עודף לא רק לקבור את חרוז בקלות, מה שהופך את התא לעסוק עם הדבק במקום חרוז במהלך המדידה, אבל גם לשנות את המאפיין המכני של הזיז, מה שהופך את כיול כוח מדויק. לכן, חשוב לשלוט באזור הקשר בין הזיז והדבק כך שרק כמות קטנה של הדבק מוגבלת בקצה מאוד של הזיז. השיטה המתוארת כאן ישימה גם לחלקיקים מוצקים אחרים בגודל מיקרון, כגון גביש מונונתרן urate15, אלום14, ו כולסטרול קריסטל29.

מלבד כוח גישוש, AFM יכול גם לספק גירוי פיסי או כימי לתאים ואירועים סלולריים הבאים ניתן לנטר בזמן אמת, כפי שמתואר ביישום השני. הדבר פותח הזדמנות מצוינת לטיפול באירועים ביולוגיים מסובכים יותר, כגון היווצרות סינפולוגית מסוג30, שאינו יכול להיות מאופיין בזמן אמת על-ידי גישות קונבנציונליות.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

. למחברים אין מה לגלות

Acknowledgments

עבודה זו נתמכת על ידי הקרן הלאומית למדעי הטבע של סין התוכנית הכללית (31370878), תוכנית מפתח המדינה (31630023) ותוכנית קבוצת מחקר חדשנית (81621002).

Materials

Name Company Catalog Number Comments
Material
10 μl pipette tip Thermo Fisher 104-Q
15 ml tube Corning 430791
6 cm diameter culture dish NALGENE nunc 150462
6-well culture plate JET TCP011006
AFM Cantilever NanoWorld Arrow-TL1-50 tipless cantilever
β-Mercaptoethanol Sigma 7604
Biocompatible glue BD Cell-Tak 354240
CD4+ T cell isolation Cocktail STEMCELL 19852C.1
DC2.4 cell line A gift from K. Rock (University of Massachusetts Medical School, Worcester, MA)
Dextran-coated magnetic particles STEMCELL SV30010
EDTA GENEray Generay-E1101-500 ml
Epoxy ERGO 7100
Ethanol twbio 00019
FBS Ex Cell Bio FSP500
FcR blocker STEMCELL 18731
Glass coverslip local vender (Hai Men Lian Sheng) HX-E37 24mm diameter, 0.17mm thinckness
Glass slides JinTong department of laboratory and equipment management, Haimen  N/A customized
H2O2 (30%) Sino pharm 10011218
H2SO4 Sino pharm 80120892
HEPES Sigma 51558
Magnet STEMCELL 18000
Mesh nylon strainer BD Falcon REF 352350
Moesin-EGFP N/A cloned in laboratory
Mouse CD25 Treg cell positive isolation kit STEMCELL 18782 Component: FcR Blocker,Regulatory T cell Positive Selection Cocktail, PE Selection Cocktail, Dextran RapidSpheres,
Mouse CD4+ Tcell isolation kit STEMCELL 19852 Component:CD4+T cell isolation Cocktail, Streptavidin RapidSpheres, Rat Serum
NaOH Lanyi chemical products co., LTD? Beijing 1310-73-2
PBS Solarbio P1022-500
PE selection cocktail STEMCELL 18151
Penicillin-Streptomycin Hyclone SV30010
PLCδ-PH-mCherry Addgene 36075
Polystyrene microspheres 6.0μm Polysciences 07312-5
polystyrene round bottom tube BD Falcon 352054
Rat serum STEMCELL 13551
RAW264.7  ATCC
Recombinant Human Interleukin-2 Peprotech Peprotech, 200-02-1000
Red blood cell lysis buffer Beyotime C3702
Regulatory T cell positive selection cocktail STEMCELL 18782C
RPMI 1640 Life C11875500BT
Sample chamber Home made
Streptavidin-coated magnetic particles STEMCELL 50001
Transfection kit Clontech 631318
Trypsin 0.25% EDTA Life 25200114
Tweezers JD N/A
Name Company Catalog Number Comments
Equipment
20x objective NA 0.8 Zeiss 420650-9901 Plan-Apochromat
Atomic force microscope JPK cellHesion200
Centrifuge Beckman coulter Allegra X-12R
Fluorescence imaging home-made objective-type total internal reflection fluorescence microscop based on a Zeiss microscope stand
Humidified CO2 incubator Thermo Fisher HERACELL 150i
Inverted light microscope Zeiss Observer A1 manual

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Benoit, M., Gabriel, D., Gerisch, G., Gaub, H. E. Discrete interactions in cell adhesion measured by single-molecule force spectroscopy. Nature Cell Biology. 2, (6), 313-317 (2000).
  2. Chen, J., et al. Strong adhesion by regulatory T cells induces dendritic cell cytoskeletal polarization and contact-dependent lethargy. Journal of Experimental Medicine. 214, (2), 327-338 (2017).
  3. Liu, L., et al. Mechanotransduction-modulated fibrotic microniches reveal the contribution of angiogenesis in liver fibrosis. Nature Materials. 16, (12), 1252-1261 (2017).
  4. Mu, L. B., et al. A phosphatidylinositol 4,5-bisphosphate redistribution-based sensing mechanism initiates a phagocytosis programing. Nature Communications. 9, (2018).
  5. Qi, C., et al. Pathology-targeted cell delivery via injectable micro-scaffold capsule mediated by endogenous TGase. Biomaterials. 126, 1-9 (2017).
  6. Muller, D. J., Helenius, J., Alsteens, D., Dufrene, Y. F. Force probing surfaces of living cells to molecular resolution. Nature Chemical Biology. 5, (6), 383-390 (2009).
  7. Muller, D. J., Dufrene, Y. F. Atomic force microscopy: a nanoscopic window on the cell surface. Trends in Cell Biology. 21, (8), 461-469 (2011).
  8. Radotic, K., et al. Atomic force microscopy stiffness tomography on living Arabidopsis thaliana cells reveals the mechanical properties of surface and deep cell-wall layers during growth. Biophysics Journal. 103, (3), 386-394 (2012).
  9. Kuznetsova, T. G., Starodubtseva, M. N., Yegorenkov, N. I., Chizhik, S. A., Zhdanov, R. I. Atomic force microscopy probing of cell elasticity. Micron. 38, (8), 824-833 (2007).
  10. Scheuring, S., Dufrene, Y. F. Atomic force microscopy: probing the spatial organization, interactions and elasticity of microbial cell envelopes at molecular resolution. Molecular Microbiology. 75, (6), 1327-1336 (2010).
  11. Berdyyeva, T. K., Woodworth, C. D., Sokolov, I. Human epithelial cells increase their rigidity with ageing in vitro: direct measurements. Physics in Medicine and Biology. 50, (1), 81-92 (2005).
  12. Sokolov, I., Dokukin, M. E., Guz, N. V. Method for quantitative measurements of the elastic modulus of biological cells in AFM indentation experiments. Methods. 60, (2), 202-213 (2013).
  13. Bozna, B. L., et al. Binding strength and dynamics of invariant natural killer cell T cell receptor/CD1d-glycosphingolipid interaction on living cells by single molecule force spectroscopy. Journal of Biological Chemistry. 286, (18), 15973-15979 (2011).
  14. Flach, T. L., et al. Alum interaction with dendritic cell membrane lipids is essential for its adjuvanticity. Nature Medicine. 17, (4), 479-487 (2011).
  15. Ng, G., et al. Receptor-independent, direct membrane binding leads to cell-surface lipid sorting and Syk kinase activation in dendritic cells. Immunity. 29, (5), 807-818 (2008).
  16. Helenius, J., Heisenberg, C. P., Gaub, H. E., Muller, D. J. Single-cell force spectroscopy. Journal of Cell Science. 121, (11), 1785-1791 (2008).
  17. Litvinov, R. I., Shuman, H., Bennett, J. S., Weisel, J. W. Binding strength and activation state of single fibrinogen-integrin pairs on living cells. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 99, (11), 7426-7431 (2002).
  18. Evans, E., Ritchie, K., Merkel, R. Sensitive Force Technique to Probe Molecular Adhesion and Structural Linkages at Biological Interfaces. Biophysics Journal. 68, (6), 2580-2587 (1995).
  19. Lamprecht, C., Hinterdorfer, P., Ebner, A. Applications of biosensing atomic force microscopy in monitoring drug and nanoparticle delivery. Expert Opinion on Drug Delivery. 11, (8), 1237-1253 (2014).
  20. Charras, G. T., Horton, M. A. Single cell mechanotransduction and its modulation analyzed by atomic force microscope indentation. Biophysics Journal. 82, (6), 2970-2981 (2002).
  21. Sun, M. Z., et al. Multiple membrane tethers probed by atomic force microscopy. Biophysics Journal. 89, (6), 4320-4329 (2005).
  22. Yan, J. C., Liu, B., Shi, Y., Qi, H. Class II MHC-independent suppressive adhesion of dendritic cells by regulatory T cells in vivo. Journal of Experimental Medicine. 214, (2), 319-326 (2017).
  23. Hao, J. J., et al. Phospholipase C-mediated hydrolysis of PIP2 releases ERM proteins from lymphocyte membrane. Journal of Cell Biology. 184, (3), 451-462 (2009).
  24. Rodriguez, R. M., et al. Lymphocyte-T Adhesion to Fibronectin (Fn) - a Possible Mechanism for T-Cell Accumulation in the Rheumatoid Joint. Clinical and Experimental Immunology. 89, (3), 439-445 (1992).
  25. Kimura, A., Ersson, B. Activation of Lymphocytes-T by Lectins and Carbohydrate-Oxidizing Reagents Viewed as an Immunological Recognition of Cell-Surface Modifications Seen in the Context of Self Major Histocompatibility Complex Antigens. European Journal of Immunology. 11, (6), 475-483 (1981).
  26. Miller, K. The Stimulation of Human Lymphocyte-B and Lymphocyte-T by Various Lectins. Immunobiology. 165, (2), 132-146 (1983).
  27. Vitte, J., Pierres, A., Benoliel, A. M., Bongrand, P. Direct quantification of the modulation of interaction between cell- or surface-bound LFA-1 and ICAM-1. Journal of Leukocyte Biology. 76, (3), 594-602 (2004).
  28. Beaussart, A., et al. Quantifying the forces guiding microbial cell adhesion using single-cell force spectroscopy. Nature Protocols. 9, (5), 1049-1055 (2014).
  29. Shu, F., et al. Cholesterol Crystal-Mediated Inflammation Is Driven by Plasma Membrane Destabilization. Frontiers in Immunology. 9, (2018).
  30. Hosseini, B. H., et al. Immune synapse formation determines interaction forces between T cells and antigen-presenting cells measured by atomic force microscopy. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 106, (42), 17852-17857 (2009).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics