הקמת החולה סרטן קיבה-מודלים נגזרים הנגזרות וקווי התא הראשי

* These authors contributed equally
Cancer Research

Your institution must subscribe to JoVE's Cancer Research section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

הפרוטוקול הנוכחי מתאר את השיטות כדי ליצור מודלים של מטופלים שנגזר על המטופל (PDX) ושורות של תאים סרטניים העיקרי מדגימות סרטן הקיבה כירורגית. השיטות מספקות כלי שימושי לפיתוח סמים וחקר ביולוגיה של הסרטן.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations | Reprints and Permissions

Lu, J. h., Wang, Y., Meng, Q., Zeng, Z. l. Establishment of Gastric Cancer Patient-derived Xenograft Models and Primary Cell Lines. J. Vis. Exp. (149), e59871, doi:10.3791/59871 (2019).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

השימוש במודלים פרה-קליניים כדי לקדם את הבנתנו את הביולוגיה של הגידול ולחקור את היעילות של הסוכנים הטיפוליים הוא מפתח לחקר הסרטן. למרות שיש הרבה מבוססת סרטן קיבה מבוסס קווי ומודלים רבים של העכבר טרנסגניים קונבנציונאלי למחקר טרום קליני, החסרונות של אלה בתוך מבחנה במודלים vivo להגביל את היישומים שלהם. בגלל המאפיינים של מודלים אלה השתנו בתרבות, הם כבר לא מודל הגידול טרוגניות, ואת התגובות שלהם לא הצליחו לחזות את התגובות בני אדם. כך, מודלים חלופיים שמייצגים טוב יותר את טרוגניות הגידול מפותחים. המטופל נגזר מבע (pdx) מודלים לשמר את המראה היסטולוגית של תאים סרטניים, לשמור על טרוגניות intratumoral, וטוב יותר לשקף את הרכיבים האנושיים הרלוונטיים של מיקרוסביבה הגידול. עם זאת, זה בדרך כלל לוקח 4-8 חודשים כדי לפתח מודל PDX, אשר ארוך יותר ההישרדות הצפויה של חולי קיבה רבים. מסיבה זו, הקמת קווי התאים הראשוניים לסרטן עשויה להיות שיטה משלימה אפקטיבית ללימודי תגובה לסמים. הפרוטוקול הנוכחי מתאר שיטות להקמת מודלים PDX ושורות של תאים סרטניים העיקרי של סרטן כירורגי הקיבה דגימות. שיטות אלה מספקות כלי שימושי לפיתוח סמים וחקר ביולוגיה של הסרטן.

Introduction

סרטן קיבה הוא החמישי הנפוץ ביותר בעולם הסרטן הגורם המוביל השלישי למוות בסרטן. ב 2018, מעל 1,000,000 מקרים חדשים של סרטן קיבה אובחנו ברחבי העולם, ו מוערך 783,000 אנשים נהרגו על ידי מחלה זו1. השכיחות והתמותה של סרטן הקיבה להישאר גבוה מאוד במדינות אסיה הצפון מזרחי2,3. למרות התקדמות משמעותית בתחום של סרטן therapeutics, הפרוגנוזה של חולים עם סרטן קיבה מתקדם נשאר עני, עם שיעור ההישרדות של חמש שנים של כ 25%4,5,6, 7,. כך, יש צורך דחוף לפיתוח אסטרטגיות טיפוליות חדשות לסרטן קיבה

הטיפול בסרטן קיבה הוא מאתגר בשל טרוגניות גבוהה שלה8,9. כך, השאלה כיצד להתמודד עם האתגרים של טרוגניות הגידול כדי להגשים את הרפואה המדויקת היא מרכזית לחקר הסרטן. בתוך מבחנה במודלים vivo לשחק תפקידים מכריעים בהסבר המנגנונים הטרוגנית וביולוגיה של סרטן הקיבה. עם זאת, למרות שיש מספר רב של סרטן קיבה קווי מודלים רבים העכבר הטרנסגניים הקונבנציונלית למחקר טרום קליני, החסרונות של המודלים האלה להגביל את היישומים שלהם10. בגלל המאפיינים של מודלים אלה השתנו בתרבות, הם כבר לא מודל הגידול טרוגניות, ואת התגובות שלהם לא הצליחו לחזות את התגובות בני אדם11. סוגיות אלה מגבילות באופן חמור את האפשרות לזהות קבוצות מסוימות של חולי סרטן שיגיבו לתרופות ממוקדות. התרבות לטווח קצר של גידולים ראשוניים מספק דרך מהירה יחסית ואישית כדי לחקור את התכונות הפרמקולוגית של סרטן, אשר צפוי להיות סימן ההיכר של טיפול בסרטן אישית.

המטופל-xenografts (PDXs) מעדיפים כמודל טרום-קליני חלופי לפרופיל תגובת התרופה12. בנוסף, מודלים pdx מציעים כלי רב עוצמה עבור לימוד ייזום והתקדמות של סרטן13,14. Pdx מודלים לשמר את המראה היסטולוגית של תאים סרטניים, לשמור על intrאטומוראלית טרוגניות, וטוב יותר לשקף את הרכיבים האנושיים הרלוונטיים של מיקרוסביבה הגידול15,16. עם זאת, המגבלה של מודלים בשימוש נרחב PDX הוא שיעור ההצלחה הנמוכה להקמת והפצת באופן סדרתי גידולים מוצק אנושי. במחקר זה, שיטות מוצלחות מאוד להקמת דגמי PDX וקווי התא הראשי מתוארים.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

זה מחקר אנושי אושרה על ידי האתיקה המוסדית הוועדה של אוניברסיטת סון יאט-סן סרטן המרכז (SYSUCC, גואנגג'ואו, סין). המחקר בעלי חיים אושר על ידי טיפול בעלי חיים מוסדיים ועדת השימוש של אוניברסיטת סון יאט-סן. הערה: כל הניסויים בוצעו בהתאם לחוקים הרלוונטיים ולהנחיות המוסדיים, כולל ההנחיה להגנה על החשיפה התעסוקתית מפני פתוגנים הנישאים בדם.

1. הכנה לדוגמא

  1. להשיג רקמות סרטן קיבה (P0 = מעבר 0) ישירות מהפעולה. הדגימה צריך להיות גדול יותר מ 0.5 ס"מ3.
  2. הכינו 3-4 mL של פתרון מניות: לדוגמה, RPMI-1640 בינונית (1x) שיושלם עם 10% סרום פרה עוברי (FBS), 100 U/mL ו 0.1 mg/mL סטרפטומיצין.
  3. הכניסו את הדגימה הטרייה של הגידול בתמיסה המניה ב -4 ° c במשך לא יותר מ -4 שעות.

2. הקמת מודל PDX (איור 1)

  1. כדי להבטיח אזור כירורגי סטרילי, לחטא את כל החומרים עם אור אולטרה סגול עבור יותר מ 30 דקות לפני העברת לתוך המעבדה בעלי חיים.
    הערה: חדר המבצע צריך להיות מחוטא עם אור אולטרה סגול עבור 30 דקות, לפני שאנחנו לנקות את השולחן עם החומצה של dichloro isocyanuric חטא נתרן. ואז povidone-יוד משמש כדי לחטא את העור.
  2. באמצעות מלקחיים ומספריים, בזהירות לנתח את רקמות הגידול לקצץ אותם לכמה חתיכות קטנות (כ 1 מ"מ3 קוביות) בתנאים סטרילי.
  3. האישה הזאת, 5 עד 7 שבועות בנוד-SCID-IL2rg (NSG) עכברים על ידי חשיפה ל -1-1.5% isofלוריאן עם מכונת הרדמה.
    1. הניחו את העכבר עד שיפסיק להיאבק, אך תחזק אפילו נשימה.
      הערה: שפופרת 50 mL הוא ציוד פשוט שמתפקד דומה למכונה הרדמה. השימוש במשחה העין הוטרינרית כדי למנוע יובש אינו נחוץ עקב זמן פעולה קצר.
  4. לעשות חתך 1 ס מ על שני האגפים באמצעות מספריים סטרילי, והשתל פיסת הגידול אחד לתוך כל אגף של העכבר.
    1. כדי להבטיח את פיסת הגידול לא להחליק החוצה, השתמש מלקחיים סטרילי לשבש את הרקמה התת עורית. ואז, לחתוך פיסת רקמת הגידול, ולמקם אותו לתוך האתר העמוק.
  5. סגור את אזור השתל על ידי תפר תת עורית עם מחטים תפר כירורגי, ולסמן את האוזניים עם תגי האוזן מתויג
  6. . חטא את הפצע ביוד
  7. בעדינות למקם את העכברים בכלוב ריק לאחר הניתוח תוך שמירה על שכיבה משנית. שימו לב למצב העכברים; הם מתעוררים ומתחילים ללכת כ 3-4 דקות מאוחר יותר. הניחו עכברים שעברו ניתוח בכלוב חדש אחר הופרדו מאלו שלא נחשפו לניתוח.
  8. להעריך את גודל הגידול על ידי. מישוש של אתר ההשתלה למדוד את הגידולים עם קליבר פעמיים בשבוע.
  9. לאחר הגידול מגיע 10 מ"מ בקוטר, מצב בעלי חיים מחמיר, או הגידול כיבית, המתת החסד של העכבר עם שיטת IRB אושרה. השתלה מחדש שנקטפו שברי הגידול טרי לתוך 2 עכברים חדשים עבור passaging, או באופן זמני לאחסן את הדגימות ב-PBS על הקרח לבידוד של קווי התא הראשי.

3. הקפאה רקמות

הערה: חלק זה מתייחס בעיקר לשיטות הפעולה של ערכת רקמות חי. הקיטים והציוד העיקריים מפורטים בטבלת החומרים.

  1. המתת חסד העכברים עם שיטת IRB שאושרו כאשר הגידול גדול מ 10 מ"מ בקוטר.
  2. באמצעות מלקחיים ומספריים סטריליים, לבודד באיטיות את הגידול מן העכברים.
  3. לשטוף את רקמות הגידול עם DPBS בצלחת 10 ס מ. לנתח ולהסיר שטחים נקרופטיים, רקמת שומן, קרישי דם ורקמת חיבור עם מלקחיים ומספריים.
  4. חותכים את רקמות הגידול לעובי 1 מ"מ מקסימום עם עובש.
  5. לשטוף את הפרוסות עם DPBS בצלחת 10 ס מ.
    הערה: התהליך הויטריפיקציה כרוך בשימוש בצינורות המסומנים ב-V1/V2/V3 בשלבים 3.6-3.8. המרכיבים העיקריים הם DMSO ו סוכרוז.
  6. להעביר את הפרוסות לתוך הצינור V1 עם מלקחיים, ו לדגירה את הצינור ב 4 ° c עבור 4 דקות. לגלגל ולהפוך את הצינור בקצרה, ולמקם אותו ב 4 ° c עבור 4 דקות נוספות.
  7. יוצקים את הפתרון V1 ופרוסות לתוך 10 ס מ צלחת. העבר את הפרוסות לתוך הצינור V2 עם מלקחיים, ו-הרכבת התחתית מודטה V2 ב-4 ° c עבור 4 דקות. לגלגל ולהפוך את הצינור בקצרה, ולמקם אותו ב 4 ° c עבור 4 דקות נוספות.
  8. יוצקים את הפתרון V2 ופרוסות לתוך צלחת 10 ס מ. להעביר את הפרוסות לתוך הצינור V3 עם מלקחיים, ו מודג את הצינור ב 4 ° c עבור 5 דקות. לגלגל ולהפוך את הצינור בקצרה, ולמקם אותו ב 4 ° c עבור לפחות 5 דקות. ודא שהפרוסות כולן מסתכמות בתחתית השפופרת.
    1. אם מספר פרוסות נשארות מרחפות, מסתכמות ומהיפוך את הצינורית בקצרה, ומניחים את הצינור ב-4 ° c שוב עד שכל הפרוסות מטביעים לחלוטין; אם יש צורך בכך, מחק את הפרוסות הצפות.
  9. יוצקים את הפתרון V3 ופרוסות לצלחת 10 ס מ.
  10. חותכים את מחזיקי הרקמה לאורך הנכון, ומניחים אותם על גזה סטרילית. העבירו את הפרוסות למחזיקי המחשב. לעטוף את הפמוטים עם גזה, ולמקם אותם בחנקן נוזלי באמצעות מלקחיים, ואחריו דגירה עבור 5 דקות.
  11. תייג את מבחנות הקריוגניים. עם מידע על הרקמה
  12. להעביר את הפמוטים עם פרוסות רקמה לתוך מבחנות קריוגניים, אשר מאוחסנים חנקן נוזלי.

4. בידוד תאים ראשוניים (איור 2)

  1. לעקר מלקחיים ומספריים עם קיטור בלחץ גבוה ב 121 ° c עבור 30 דקות.
  2. לכרות דגימות סרטן קיבה מתוך דגימות מחדש או שנקטפו רקמות PDX. הניחו את הרקמות על הקרח ולאחר מכן העבירו את הרקמות לצלחת תרבותית של 10 ס מ.
  3. לנתח ולהסיר שטחים נקרופטיים, רקמת שומן, קרישי דם ורקמת חיבור עם מלקחיים ומספריים.
  4. לשטוף את רקמות הגידול פעם עם DPBS המכיל 100 U/mL פניצילין 0.1 mg/mL סטרפטומיצין בצלחת 10 ס מ.
  5. חותכים את רקמת הגידול לתוך 1 מ"מ3 חתיכות על המכסה של המנה; עובי המקסימום של כל חתיכה צריך להיות 1 מ"מ.
  6. להעביר את הרקמות לתוך שפופרת צנטריפוגה 50 mL עם כ 7 מ ל מסוג 1 הקולגנאז ו טריפסין (1:14) פתרון. מערבולת את התערובת לזמן קצר.
  7. מודקון את הצינור באמבט מים ב 37 ° c עבור 30-40 דקות. מערבולת התערובת כל 5 דקות.
  8. הוסף נפח שווה של RPMI-1640 בינונית (1x) בתוספת 10% FBS לצינור. מערבולת את התערובת ביסודיות.
  9. להעביר את התערובת לתוך שפופרת חדשה 50 mL של צנטריפוגה על ידי סינון איטי דרך מסנן 40 יקרומטר.
    הערה: השתמש במסננים 40 יקרומטר כדי להבטיח יחס גבוה יותר של תאים סרטניים. במקרה הצורך, ניתן להשתמש במסנני 100 יקרומטר כדי לשמר סוגים נוספים של תאים, כגון תאים אימונולוגיים.
  10. צנטריפוגה את filtrates ב 113-163 x g עבור 5-7 דקות ב RT. בזהירות להסיר את הסופרנטאנט.
  11. שטוף את הגלולה עם 5 מ ל של PBS, ובזהירות להסיר את הסופרנטאנט.
  12. אם הגלולה אדומה, הוא מכיל הרבה אריתרופוציטים. השהה מחדש בעדינות את הגלולה עם 500 μL של מאגר פירוק של תא דם אדום. לאחר הדגירה 5 דקות, להוסיף 5 מ ל PBS, ובזהירות להסיר את הסופרנטאנט.
  13. השהה מחדש את הגלולה עם בינונית תרבותית, והעבר את התערובת לצלחת 10 ס מ סטרילית.
  14. החליפו את המדיום עם המדיום המכיל סרום כל 2-3 ימים.
  15. העבר את התאים העיקריים באמצעות טריפסין/EDTA כאשר הם מגיעים 50% המפגש.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

כאן, רקמות הגידול מפעולה נשמרו בפתרון מניות עד לשלב הבא. בתוך 4 שעות, רקמות הגידול נחתכו לחתיכות קטנות מושתל לתוך האגפים הקטנים של עכברים NSG כי היה מורדם באמצעות כותנה שספוגה isofלוריאן. גידולים גדולים יותר 1 ס"מ3 יכול להיות resected עבור השרשה לתוך עכברים חדשים (איור 1) או לפרוס בזהירות ונשמר בחנקן נוזלי לאחר הפרוטוקול. במחקר זה, גידולים הדור הראשון גדל לאט יותר מאשר אלה בדורות המאוחרים, לוקח 3 שבועות או יותר כדי להגיע לגודל המתאים. שיעור ההצלחה של היווצרות הדור הראשון גידול תת עורית היה גדול מ 80%. אנו אישר את הזהות של תאים סרטניים מדגמי PDX ידי H & E מכתים תחת מיקרוסקופ (איור 3C). לבסוף, שיעור ההצלחה של היווצרות הגידול מרקמת הגידול הקריואופטית היה כ 95%.

תאים סרטניים ראשוניים היו מבודדים כדרך אחרת לחקור את הגידול הבודד. התאים היו מבודדים מכל אחד מהדגימות או מדגמי PDX. רקמות הגידול נשטפו עם DPBS וחתכו לחתיכות. שברי הרקמה מתעכלים ביסודיות עם סוג 1 קולאז וטריפסין (1:14) לפני הסינון. לאחר הסרת אריתרופוציטים, התאים היו מתורבתים באותו אופן כמו תאים סרטניים אחרים. התאים המשכוניים השורדים מתים בקטעים הבאים (איור 2). בהתבסס על הבדלים במבנה, אנו יכולים בקלות לזהות תאים סרטניים. תאים נורמליים יש צורה אחידה וגודל, אבל תאים סרטניים באים בגדלים שונים וצורות. בנוסף, בתאי הסרטן, הגרעין יש מבנים לא סדיר ו ציטופלסמה קטנה יחסית. לכן, התאים העיקריים אומתו באופן עצמאי על ידי שני פתולוגים תחת מיקרוסקופ (איור 3A). לקבלת אישור נוסף, H & E כתמים שימש כדי להתבונן מורפולוגיה תא סרטן לאחר קיבעון (איור 3B). שיעור הבידוד המוצלח של קווי התא הראשי היה כ-40%. התאים הראשיים חייבים להיות מיושנים פי 4 או 5 פעמים לאחר בידוד, ויש צורך באימות פתולוגי. שלבים אלה עשויים להימשך כ-20 יום.

Figure 1
איור 1. סכימה להקמת דגמי מבע (pdx) מטופלים.
כדי ליצור בהצלחה מודלים PDX, לכרות את הגושים הגידול בחדר הניתוח לעיבוד מיידי. לחלק את הגידול לכמה חתיכות קטנות. הניחו את כדורי הכותנה הספוגים בצינור 50 mL כדי להרדים את העכברים ולחתוך פצעים באגפים. בוטה מנתחים רקמות תת עורית עם מלקחיים, ומלקחיים להשתמש כדי למקם חתיכה אחת של הגידול תת-עורי הרחק הפצע. . תפר ועקר את הפצעים תהליך ההרדמה דורש ניטור זהיר של שלטים חיוניים לעכבר, כגון קצב נשימה. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.

Figure 2
. איור 2 סכימה לבידוד של תאים ראשיים.
. להשיג דגימות גידול מחדר הניתוח לשטוף במהירות את רקמות הגידול, וחותכים אותם לחתיכות. מעכלים את דגימות הגידול עם מסוג 1 כלקולאז ו טריפסין ב 37 ° c עבור 30-40 דקות, ערבוב הצינור כל 5 דקות. אז, להוסיף נפח שווה של בינוני עם 10% fbs, צנטריפוגה את התערובת, ולמקם את הפילטרט לתוך צינור חדש. , הסר את הסופרנטאנט. ושטוף את הגלולה בהתבסס על צבע הגלולה, להחליט אם לבדוק את כדוריות הדם האדומות. להעביר את הגלולה לתוך הצלחת חדשה 10 ס מ סטרילי, ותרבות התאים עבור מספר פסקאות לפני הקרנת תא סרטן. אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.

Figure 3
. איור 3 אימות של תאים סרטניים ראשוניים.
(א) תמונות תא ראשיות מחולי GC. התאים היו מבודדים ישירות מרקמות טריות ומעבר בגיל יותר 5 פעמים. סרגלי קנה מידה: 200 יקרומטר (משמאל), 100 יקרומטר (באמצע) ו-50 יקרומטר (מימין). (ב) תמונות התאים הראשוניים לסרטן הקיבה של H & E. סרגלי קנה מידה: 500 יקרומטר (משמאל), 200 יקרומטר (באמצע) ו-100 יקרומטר (מימין). (ג) תמונות של ה-H & E-מוכתם של גידולים pdx. סרגלי קנה מידה: 500 יקרומטר (משמאל), 200 יקרומטר (באמצע) ו-100 יקרומטר (מימין). אנא לחץ כאן כדי להציג גירסה גדולה יותר של איור זה.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

סרטן קיבה היא מחלה אגרסיבית עם אפשרויות טיפוליות מוגבלות; thus, מודלים של סרטן קיבה הפכו משאב קריטי כדי לאפשר לימודי מחקר פונקציונלי עם תרגום ישיר למרפאה4,8,17. כאן, יש לנו לתאר את השיטות ואת הפרוטוקול של יצירת סרטן קיבה מודלים PDX וקווי התא הראשי. חשוב מכך, הן המאפיינים הביולוגיים מורפולוגיים וביולוגיים של דגימות סרטן הקיבה נשמרו בעיקר בדגמי PDX.

קיימות מספר נקודות קריטיות בפרוטוקול להקמת דגמי PDX שיש להדגיש כדי להגדיל את שיעור התיאום. Nsg (נוד-scid-IL2rg) עכברים מומלצים כמו מודל חיסוני העכבר כי עכברים אלה מדוכאים יותר בחומרה וחסרים T, B ו NK תאים18,19,20,21. בנוסף, בשל הכשל החיסוני החמור של העכברים, עקרות חייב להישמר בכל הניסויים. כל הכלים, כולל מלקחיים ומספריים, חייבים להיות עקרים. עכברים NSG צריך להיות מתרבה בצפיפות נמוכה כדי למנוע זיהום. בנוסף, גורמים רבים עשויים גם להשפיע על היווצרות הגידול, כגון גודל המדגם, חלק של תאים mesenchymal בדגימה, ואתר השרשה.

אחד היבט מפתח בהקמת תאים סרטניים העיקרי הוא עקרות. יתר על כן, בגלל התאים mesenchymal בדרך כלל לצמוח מהר יותר מאשר התאים הראשוניים בסרטן, תאים עשויים להיות בעבר מספר דורות עד התאים mesenchymal למות. לבסוף, התאים המתורבתצריכים להיות מאומתים.

השתמשנו בשיטה הקריוגנית. כדי לשמר את דגימות הגידול של PDX היתרונות העיקריים של שיטת שימור זו הם כדלקמן: 1) אחסון לטווח ארוך לאחר הקפאת אפשרי (כ 10 שנים); 2) המבנה לאחר ההפשרה עקבי עם הרקמה הטרייה; 3) תאים סרטניים ראשוניים עדיין יכול להיות מבודד לאחר הפשרה; 4) היכולת היווצרות הגידול של PDXs נשאר ביסודו ללא שינוי לפני ואחרי הקפאת ההזמנה; 5) הרקמות ניתן להשתמש כדי לבצע מקטעים קפואים ניתן לתקן עם פרפין; 6) הפעילות של דנ א, RNA וחלבון נשמרת; ו -7) שיטה זו ישימה עבור דגימות ניתוח ורקמות ביופסיה.

המגבלה העיקרית של מודלים PDX כרוך בשימוש בעכברים חיסוני, אשר עשוי להחליש את ההשפעה של מיקרוסביבה הגידול על גידול הגידול והתרופות ובכך להגביל את היישום של מודלים PDX בהקרנה סוכנים אימונומודולטוריים. בנוסף, זה בדרך כלל לוקח 4-8 חודשים כדי לפתח מודל PDX, אשר ארוך יותר ההישרדות הצפויה של חולי קיבה רבים. מסיבה זו, הקמת קווי התאים הראשוניים לסרטן עשויה להיות שיטה משלימה אפקטיבית ללימודי תגובה לסמים.

PDX מודלים וקווי התא הראשי הופכים חלק בלתי נפרד של פיתוח התרופה ואת ייזום והתקדמות של מחקר ביולוגיה של הגידול. מודלים אלה מציעים ייצוגים מדויקים יותר של סרטן האדם מאשר קווי תאים סרטניים מסורתיים יש את הפוטנציאל לשפר את ההערכה פרה של הרומן תרופות נגד סרטן טיפולים. בנוסף, מודלים אלה עשויים להיות שימושיים בהשוואת מאפיינים מולקולריים או חתימות הגידול בין קבוצות שונות של חולי סרטן. אין ספק כי כלים אלה בסופו של דבר לשחק תפקיד רחב יותר בפיתוח התרופה ומחקר ביולוגיה של סרטן.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

. למחברים אין מה לגלות

Acknowledgments

עבודה זו נתמכת על ידי הקרן הלאומית למדעי הטבע של סין (81572392); תוכנית המחקר ופיתוח המפתח הארצי של סין (2016YFC1201704); טיפ-top כשרונות מדעיים וטכניים חדשניים של הנוער של גואנג-דונג מיוחד תמיכה תוכנית (2016TQ03R614).

אנחנו במיוחד להודות גואנגג'ואו Sagene ביוטכנולוגיה ושות, בע מ לסיוע בהכנת הדמויות.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
40 μm Cell Strainer Biologix, Shandong, China 15-1040
Biological Microscope OLYMPUS, Tokyo, Japan OLYMPUS CKX41
Centrifuge Eppendorf, Mittelsachsen, Germany. 5427R
CO2 Incubator Thermo Fisher Scientific, Carlsbad, California, USA HERACELL 150i
DPBS Basalmedia Technology, Shanghai, China L40601
Electro-Thermostatic Water Cabinet Yiheng, Shanghai, China DK-8AXX
Fetal bovine serum Wisent Biotechnology, Vancouver, Canada 86150040
Isoflurane Baxter, China CN2L9100
Live Tissue Kit Cryo Kit Celliver Biotechnology, Shanghai, China LT2601
Live Tissue Thaw Kit Celliver Biotechnology, Shanghai, China LT2602
NSG Biocytogen, Beijing, China B-CM-002-4-5W
Penicilin&streptomycin Thermo Fisher Scientific, Carlsbad, California, USA 15140122
Red blood cell lysis buffer Solarbio, Beijing, China R1010
RPMI-1640 medium Thermo Fisher Scientific, Carlsbad, California, USA 8118367
Surgical Suture Needles with Thread LingQiao, Ningbo, China 3/8 arc 4×10
Tissue-processed molds and auxiliary blades Celliver Biotechnology, Shanghai, China LT2603
Trypsin-EDTA Thermo Fisher Scientific, Carlsbad, California, USA 2003779
Type 1 collagenase Thermo Fisher Scientific, Carlsbad, California, USA 17100017

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Bray, F., et al. Global cancer statistics 2018: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries. Ca-a Cancer Journal for Clinicians. 68, (6), 394-424 (2018).
  2. Sugano, K. Screening of gastric cancer in Asia. Best Practive & Research in Clinical Gastroenterology. 29, (6), 895-905 (2015).
  3. Nikfarjam, Z., et al. Demographic survey of four thousand patients with 10 common cancers in North Eastern Iran over the past three decades. Asian Pacific Journal of Cancer Prevention. 15, (23), 10193-10198 (2014).
  4. Coccolini, F., et al. Advanced gastric cancer: What we know and what we still have to learn. World Journal of Gastroenterology. 22, (3), 1139-1159 (2016).
  5. Goetze, O. T., et al. Multimodal treatment in locally advanced gastric cancer. Updates in Surgery. 70, (2), 173-179 (2018).
  6. Graziosi, L., Marino, E., Donini, A. Multimodal Treatment of Locally Advanced Gastric Cancer: Will the West Meet the East? Annals of Surgical Oncology. 26, (3), 918 (2019).
  7. Choi, Y. Y., Noh, S. H., Cheong, J. H. Evolution of Gastric Cancer Treatment: From the Golden Age of Surgery to an Era of Precision Medicine. Yonsei Medical Journal. 56, (5), 1177-1185 (2015).
  8. Zhang, W. TCGA divides gastric cancer into four molecular subtypes: implications for individualized therapeutics. Chinese Journal of Cancer Research. 33, (10), 469-470 (2014).
  9. Tirino, G., et al. What's New in Gastric Cancer: The Therapeutic Implications of Molecular Classifications and Future Perspectives. International Journal of Molecular Sciences. 19, (9), (2018).
  10. Roschke, A. V., et al. Karyotypic complexity of the NCI-60 drug-screening panel. Cancer Research. 63, (24), 8634-8647 (2003).
  11. Wilding, J. L., Bodmer, W. F. Cancer cell lines for drug discovery and development. Cancer Research. 74, (9), 2377-2384 (2014).
  12. Siolas, D., Hannon, G. J. Patient-derived tumor xenografts: transforming clinical samples into mouse models. Cancer Research. 73, (17), 5315-5319 (2013).
  13. Xu, C., et al. Patient-derived xenograft mouse models: A high fidelity tool for individualized medicine. Oncology Letters. 17, (1), 3-10 (2019).
  14. Lai, Y., et al. Current status and perspectives of patient-derived xenograft models in cancer research. Journal OF Hematology & Oncology. 10, (1), 106 (2017).
  15. Kawaguchi, T., et al. Current Update of Patient-Derived Xenograft Model for Translational Breast Cancer Research. Journal of Mammary Gland Biology and Neoplasia. 22, (2), 131-139 (2017).
  16. Cassidy, J. W., Caldas, C., Bruna, A. Maintaining Tumor Heterogeneity in Patient-Derived Tumor Xenografts. Cancer Research. 75, (15), 2963-2968 (2015).
  17. Liu, X., Meltzer, S. J. Gastric Cancer in the Era of Precision Medicine. Cellular and Molecular Gastroenterology and Hepatology. 3, (3), 348-358 (2017).
  18. Shultz, L. D., et al. Human cancer growth and therapy in immunodeficient mouse models. (7), Cold Spring Harbor. 694-708 (2014).
  19. McDermott, S. P., et al. Comparison of human cord blood engraftment between immunocompromised mouse strains. Blood. 116, (2), 193-200 (2010).
  20. Ito, M., et al. NOD/SCID/gamma (c) (null) mouse: an excellent recipient mouse model for engraftment of human cells. Blood. 100, (9), 3175-3182 (2002).
  21. Wege, A. K., et al. Co-transplantation of human hematopoietic stem cells and human breast cancer cells in NSG mice: a novel approach to generate tumor cell specific human antibodies. MAbs. 6, (4), 968-977 (2014).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

    Usage Statistics