Изображение руководствоваться Transapical Mitral Valve Листовка Прокол Модель контролируемого объема перегрузки от Mitral Regurgitation в Крыса

JoVE Journal
Medicine

Your institution must subscribe to JoVE's Medicine section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

 

Summary

Сообщается о модели грызунов, которая перегружает объем левого сердца от митральной регургитации. Митральная регургитация контролируемой тяжести индуцируется путем продвижения иглы определенных размеров в переднюю листовку митрального клапана, в бьющемся сердце, с ультразвуковым руководством.

Cite this Article

Copy Citation | Download Citations | Reprints and Permissions

Corporan, D., Kono, T., Onohara, D., Padala, M. An Image Guided Transapical Mitral Valve Leaflet Puncture Model of Controlled Volume Overload from Mitral Regurgitation in the Rat. J. Vis. Exp. (159), e61029, doi:10.3791/61029 (2020).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Митральная регургитация (Mr) является широко распространенным поражения сердечного клапана, который вызывает ремоделирования сердца и приводит к застойной сердечной недостаточности. Хотя риски неисправленного МР и его плохой прогноз известны, продольные изменения в сердечной функции, структуре и реконструкции не полностью поняты. Этот разрыв знаний ограничил наше понимание оптимального времени для коррекции Mr, и выгоды, что ранняя по сравнению с поздней коррекции MR может иметь на левом желудочке. Для изучения молекулярных механизмов, лежащих в основе ремоделирования левого желудочка в настройках MR, необходимы модели животных. Традиционно, аорто-кавалерийская свищ модель была использована для индуцирования объем перегрузки, которая отличается от клинически значимых поражений, таких как MR. MR представляет собой низкое давление объем перегрузки гемодинамический стрессор, который требует животных моделей, которые имитируют это условие. При этом мы описываем модель грызунов тяжелой МР, в которой передняя листовка крысиного митрального клапана перфорирована иглой 23G, в бьющееся сердце, с эхокардиографическим руководством изображения. Тяжесть Mr оценивается и подтверждается эхокардиографией, и воспроизводимость модели сообщается.

Introduction

Митральная регургитация (Mr) является общим поражения клапана сердца, диагностируется в 1,7% населения США в целом и в 9% пожилого населения старше 65 лет1. При этом поражении клапана сердца, неправильное закрытие листовок митрального клапана в систоле, вызывает срыгивание крови из левого желудочка в левое предсердие. MR может произойти из-за различных этиологий; однако, первичные поражения митрального клапана (первичного Mr) диагностируются и лечатся чаще по сравнению со вторичным MR2. Изолированные первичные МР часто является результатом миксоматасной дегенерации митрального клапана, что приводит к удлинению листовок или аккордов, или разрыв некоторых аккордов, все из которых способствуют потере систолического коапации клапана.

MR в результате таких поражений клапана повышает объем крови заполнения левого желудочка в каждом сердцебиении, увеличивая конец диастолического напряжения стены и обеспечивая гемодинамический стрессор, который провоцирует сердечную адаптацию и ремоделирования. Сердечная реконструкция в этом поражении часто характеризуется значительным увеличением камеры3,,4, мягкой гипертрофией стены, с сохраненной сократительной функцией в течение длительных периодов времени. Так как фракция выброса часто сохраняется, коррекция МР с использованием хирургических или транскатетерных средств часто задерживается, до появления таких симптомов, как одышка, сердечная недостаточность и аритмии. Однако неисправленный МР связан с высоким риском сердечных побочных явлений, хотя в настоящее время знания об ультраструктурных изменениях, лежащих в основе этих событий, неизвестны.

Модели животных MR обеспечивают ценную модель для исследования таких ультраструктурных изменений в сердце, а также изучения продольной прогрессии заболевания. Ранее исследователи индуцированных Mr у крупных животных, включая свиней, собак и овец, путем создания внешнего желудочка-предсердий шунт5, интракардиальный разрыв хорда6, или листовка перфорации7. Хотя хирургические методы легче у крупных животных, эти исследования были ограничены суб-хронического наблюдения в небольшой размер выборки, из-за высокой стоимости выполнения таких исследований у крупных животных. Кроме того, молекулярный анализ тканей этих моделей часто является сложным из-за ограниченных видов конкретных антител и аннотированных библиотек генома для выравнивания.

Малые животные модели MR может обеспечить подходящую альтернативу для изучения этого поражения клапана и его влияние на ремоделирование сердца. Исторически использовалась крысиная модель аорто-кавалерийской свищи (АКФ) перегрузки сердечного объема. Впервые описанный в 1973 году Stumpe et al.8, астерио-венозная свищ хирургически создана, чтобы обойти артериальную кровь высокого давления из нисходящей аорты в низкое давление нижней полы вены. Высокая скорость потока в свищей вызывает резкое увеличение объема перегрузки по обе стороны сердца, вызывая значительную гипертрофию правого и левого желудочков и дисфункции, происходящие в течение нескольких дней после создания ACF9. Несмотря на свой успех, ACF не имитирует гемодинамику MR, низкое давление объем перегрузки, которая повышает преднагрузка, но и уменьшает послегруз. Из-за таких ограничений модели ACF мы стремились разработать и охарактеризовать модель MR, которая лучше имитирует перегрузку объемов низкого давления.

При этом, мы описываем протокол для модели митрального клапана прокол алистки для создания тяжелых MR у крыс10,11. Подкожная игла была введена в сердце бьющегося крысы, и продвинулась в переднюю листовку митрального клапана под эхокардиографическим руководством в режиме реального времени. Техника является весьма воспроизводимым и относительно хорошая модель, которая имитирует МР, как видно у пациентов. Тяжесть МР контролируется размером иглы, используемой для перфорации митральной листовки, и тяжесть МР может быть оценена с помощью трансэзофагеальной эхокардиографии (TEE).

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Protocol

Процедуры были утверждены Программой по уходу и использованию животных в Университете Эмори под протокольным номером EM63Rr, дата утверждения 06/06/2017.

1. Предоперационная подготовка

  1. Пар стерилизовать хирургические инструменты до процедуры.
  2. В день процедуры перенесите крыс из жилья в хирургию и взвесьте их.
  3. Нарисуйте предоперационные и послеоперационные препараты в зависимости от веса: две дозы карпрофена (2,5 мг/кг каждая), одна доза гентамицина (6 мг/кг) и одна доза бупренорфина (0,02 мг/кг).
  4. Обеспечить достаточный объем изофруран в смесителе газа, и кислорода в баках доступны для операции. Один полный бак кислорода (24фута 3) часто адекватный.

2. Подготовка животных

ПРИМЕЧАНИЕ: Взрослые Sprague-Dawley самцы крыс весом 350-400 г были использованы в этом исследовании. Хирургические методы поддаются немного меньше или больше животных, если по желает.

  1. Успокойте крысу в индукционной камере с 5% изолюраном, смешанным в 1 LPM (литр в минуту) 100% кислорода. Определите адекватный уровень седативных средств от более медленного дыхания при визуальном наблюдении, и потеря дергаться при щипать ногой крысы.
  2. Интубировать крысу 16 G ангиокат, установленные для использования в качестве эндотрахея.
    1. Визуализируйте трахею и голосовые связки с помощью отоскопа и используйте аппликатор кончика хлопка для очистки выделений на фаринге.
    2. Введите эндотрахеальной трубки на 0,034-дюймовый направляющий провод, в голосовые связки. После того, как трубка надлежащим образом помещены в трахею, нажмите трубку внутрь и снять провод(Рисунок1).
  3. Поместите крысу на нагретую хирургическую площадку при 37 градусах Цельсия и соедините эндотрахеюлическую трубку с механическим вентилятором. Ввешайте вес крысы в программное обеспечение для управления вентилятором, которое вычисляет скорость вентиляции и приливный объем. 66 вдохов в минуту с приливным объемом 1 мл/100 г массы тела были использованы в этом исследовании(рисунок 1D).
    1. Используйте 100% кислорода (1 LPM) в смеси с 2-2,5% изофруран в качестве ингаляционной анестезии и подтвердить уровень анестезии с потерей тончелюсти и потерей реакции на щепотку ног.
    2. Обратите внимание, что при правильном интубировании движение грудной клетки должно синхронизироваться с вентилятором.
    3. При неправильном интубировании движение грудной клетки не синхронизируется с аппаратом искусственной вентиляции легких. Для проверки на неправильную интубацию сжимают брюшную полость крысы, что создает давление на аппарате искусственной вентиляции легких, создавая тревогу сверхдавления. В этом случае, отказаться от ангиокат мягко, и вернуть крысу в индукционную камеру с 5% изофлуран в течение нескольких минут, чтобы обеспечить крысы достаточно анестезированных и повторно интубировать крысу.
    4. После правильноинтубированной, закрепите эндотрахеальную трубку, зашив проксимальный конец трубки на щеку крысы с 4-0 шелковым швом, чтобы избежать экстубации во время процедуры.
  4. Вставьте ректальный зонд температуры для мониторинга температуры тела, и четыре терминала электрокардиограммы для мониторинга ЭКГ в течение всей процедуры.
    1. Используйте накладную лампу отопления, если тепло от хирургической платформы недостаточно. Выключите лампу, если температура тела поднимается выше 37 градусов по Цельсию.
    2. Визуально оценить электрокардиограмму для любых аритмий или признаков ишемии миокарда. Если их нет, запишите базовую электрокардиограмму.
  5. Выполните трансторакальной эхокардиографии (TTE) для исходной сердечной функции(рисунок 2A).
    1. Поверните крысу на положение на спине и побрить левую сторону грудной клетки. Чтобы получить четкие виды эхо, удалить волосы с помощью крема для депиляции.
    2. Используйте любую ультразвуковую систему с адекватной частотой для визуализации высокого частоты сердечных приступов. В этом исследовании мы использовали visualsonics 2100 системы с 21 МГц зонд, который подходит для сердечной визуализации у крыс.
    3. Получение B-режим изображения в парастеральной длинной оси плоскости, чтобы вычислить объемы левого желудочка. В той же плоскости, получить M-режим изображения для измерения размеров стены.
    4. Поверните зонд на 90 градусов, и получить B-режим и М-режим парастернальной короткой оси мнения на середине папиллярного уровня для измерения поперечного участка размеров стены.
  6. Выполните трансэзофагеальную эхокардиографию (TEE) для исходной визуализации(рисунок 2B).
    1. Поместите крысу в нужное положение decubitus и вставьте 8 Fr интракардиальный ультразвуковой зонд (8 МГц) в пищевод крысы с небольшим количеством геля применяется к кончику. Частота ICE (интракардиальная эхокардиография) зонда достаточна для получения 4-6 кадров на сердцебиение, которые являются достаточными для визуализации движения клапана.
      ПРИМЕЧАНИЕ: GE Vivid I или Siemens SC2000 премьер система может быть использована для ice изображений.
    2. Получить высокий вид пищевода для получения двухкамерного зрения левой стороны сердца. Этот вид идеально подходит для визуализации левого предсердия, митрального клапана и левого желудочка. Позиция зонда так, что передние и задние листовки визуализированы и coaptation является центральным. Этот угол также позволяет доплеровских измерений по всему митрального клапана, без коррекции угла.
    3. Измерение оставило область предсердий и размеры аннулуса митрального клапана в этом представлении.
    4. Выполните цветное изображение Doppler для подтверждения компетентности клапана и отсутствия MR на базовом уровне. Выполните импульсную волну и непрерывную волну доплеровской визуализации для количественной оценки притока митрал и подтверждения отсутствия регургитантного потока.
    5. Выполните B-режим и импульсную волну доплеровской визуализации аорты для измерения диаметра корня аорты и расчета аортического потока.
    6. Выполните импульсную волну доплеровской визуализации легочной вены для измерения легочного венозного потока.
  7. Вводят разовую дозу карпрофена (2,5 мг/кг, СЗ, нестероидные противовоспалительные), гентамицина (6 мг/кг, СЗ, антибиотик) и стерильного солей (1 мл, СЗ), чтобы упреждающе компенсировать кровопотерю во время процедуры.
  8. Бритье левой стороне грудной клетки по мере необходимости, чтобы удалить все оставшиеся волосы из хирургического поля. Бритье от области нижней части шеи к ксифоиду, и от левой руки до середины стерны должно быть достаточно, чтобы обеспечить поле, которое лишено волос и уменьшить риск хирургического загрязнения сайта.
  9. Скраб хирургической области с марлей, пропитанной бетадин, а затем марли, пропитанной 70% этанола. Скраб области круговыми движениями на коже, так что марля не контактирует ранее очищенной области.
  10. Повторите этот шаг три раза, чтобы достичь адекватно стерильной области для хирургии.
  11. Заденьте животное стерильными крышками, открыв окно для доступа к стерильной хирургической области.

3. Левая торакотомия

  1. Выполните всю хирургическую процедуру с использованием асептических методов, с изофруран поддерживается на 2-2,5% в 1 LPM кислорода. Поместите все инструменты в стерильный лоток, и поместите обратно в лоток после каждого использования.
  2. Носите стерильные перчатки, маску и хирургическую шапку хирурга для всей процедуры. Стерильное хирургическое платье можно носить, но это необязательно, если загрязнение не ожидается.
  3. Используйте хирургический скальпель с лезвием No #15, чтобы сделать разрез кожи на левой стороне грудной клетки, примерно 1 см проксимальной к ксифоиду. Используйте тупые рассекающие наконечник ножницы, чтобы отделить слой кожи от мышечного слоя и сделать продольное разрез.
  4. Вскрыть мышечные слои таким же образом, пока ребра подвергаются.
  5. Тщательно сделайте 2-3 см продольной разрез в пятом межреберном пространстве, адекватно вставьте вставителей и разоблачите сердце.
  6. Используйте тонкие наконечником щипцы, чтобы поднять перикарда, и микро ножницы, чтобы акциз его в регионе, окружающем вершину сердца. Этот шаг помогает избежать послеоперационных приспастей сердца к стенкам грудной клетки и диафрагме.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Избегайте хирургических разрезов близко к грудине, чтобы свести к минимуму кровотечение. Трансектирование внутренних молочных артерий, которые проходят вдоль грудины, может вызвать чрезмерное кровотечение. Если столкнулись с таким кровотечением, определить кровотечение и прижречь его.

4. Эхо руководствоваться процедурой MR (Рисунок 3 и Рисунок 4)

  1. Используйте 6-0 prolene шов и держатель микроиглы, чтобы поместить портмоне строки шов на вершине левого желудочка. При необходимости используйте микрощипни для стабилизации сердца.
  2. Аккуратно привязывать апикальный шов, чтобы стабилизировать вершину и вставить 23 G иглу (покраснение с солевым раствором, и с стоп-коном на его дистальный конец) в центре портмоне строки шов, в левую желудочковую полость.
  3. Используйте одну руку, чтобы запоздало держать и направлять иглу, а другой рукой, чтобы одновременно манипулировать трансэзофагеальным эхо-зондом для достижения оптимального отголоска для визуализации иглы, как описано выше.
  4. С помощью ультразвукового руководства в режиме реального времени, заранее иглы к желудочковой стороне передней митральной листовки. После того, как положение иглы подтверждается на УЗИ, заранее иглы в одном тонком движении через клапан листовки. Если сопротивление ощущается, скрутите иглу, как она выдвинута в листовку, чтобы перфорировать его.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Продвижение иглы слишком далеко в левое предсердие может привести к левой перфорации предсердий, вызывая чрезмерное кровотечение и смерть животных. Игла должна быть визуализирована на УЗИ в любое время.
  5. Включите иглу в левую желудочковую камеру, вдали от митрального клапана, и подтвердите МР, включив цветную визуализацию Доплера.
  6. Если MR не видно на цветной доплеровской визуализации, повторите шаги 4.4 и 4.5. Отрегулируйте эхо-зонд, если это необходимо для получения лучшего вида. После практики в нескольких крыс, можно вызвать прокол листовки в одном движении иглы, вызывая отверстие, которое размером с внешний диаметр иглы. Это было подтверждено после некропсии крысиных сердец.
  7. Как только MR подтверждается, убирать иглу из левой желудочковой полости и аккуратно связать кошелек строки шов.
  8. Используйте стерильную марлю, чтобы замочить любую кровь на вершине и в грудной полости.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Прикосновение к эхо-зонду хирургическим перчатками может привести к загрязнению стерильной среды. Спрей перчатки с 70% этанола или заменить перчатки с новыми, надлежащим образом.

5. Восстановление животных и послеоперационный уход

  1. После 5-10 минут стабильной сердечной функции (нормальной ЭКГ и частоты сердечных сокращений), закрыть торакотомию слоями с 4-0 vicryl, при одновременном снижении изофлуран в шагах.
  2. Используйте прерванный шов, чтобы приблизить ребра, с изофлуран поддерживается на 2%. Вставьте грудную трубку в шестое межреберное пространство и закрепите ее стерильных штор, чтобы избежать непреднамеренного продвижения трубки в грудную полость.
  3. Используйте непрерывный шов, чтобы закрыть мышечный слой с изофруран поддерживается на 1,5%.
  4. Используйте непрерывный шов, чтобы закрыть слой кожи с изолюраном поддерживается на 1%.
  5. Соедините 10 мл клапана Luer-lock наконечником шприц на грудную трубку и слейте 10-12 мл воздуха из грудной полости, а затем удалите грудную трубку.
  6. Администрирование окончательной дозы карпрофена (2,5 мг/кг, СЗ) и выключите изофлюран.
  7. Продолжить механическую вентиляцию во время отлучиться от крыс от анестезии, мониторинг жизненно важных признаков (SpO2 и частота сердечных приступов). В начале спонтанного дыхания, выключите вентиляцию, чтобы проверить способность крысы поддерживать такое дыхание и хороший SpO2.
  8. Если уровни SpO2 начинают опуститься ниже 90%, включите вентилятор. После того, как крыса в состоянии поддерживать уровни SpO2 без вентиляции, якорь шов на эндотрахеальную трубку вырезать, и животное подготовлено для экстубации.
  9. После того, как крыса показывает признаки бдительности, включая усы или движения глаз, extubate животное.
  10. Поместите носовой конус со 100% кислородом, пока крыса не будет амбулаторной.
  11. Передача крысы в чистую клетку с минимальными постельными принадлежностями и продолжать следить за жизненно важными знаками с помощью портативного монитора SpO2, размещенного на ноге или хвосте крысы, пока крыса не будет амбулаторной.
    ПРИМЕЧАНИЕ: Если побочные эффекты от операции наблюдаются, животные могут иметь больше времени восстановления и может занять больше времени, чтобы провести высокий уровень SpO2. Если это происходит, носовой конус со 100% кислородом может быть применен до тех пор, пока уровни SpO2 не будут стабильными.
  12. Чтобы снизить риск получения травмы в хирургическом участке и избежать риска заражения, однодомные домашние крысы после операции.
  13. Администрирование Бупренорфин в течение 3 ч после того, как крыса проснулась и достаточно амбулаторно. Бупренорфин может вызвать дыхательный дистресс при введении в начале периода периоперационного восстановления, таким образом, задержать его, пока крыса дышит без затруднения.
  14. После операции все животные получают следующие лекарства: гентамицин (6 мг/кг, СЗ, СИД POD 1-3) и римадил (5 мг/кг, СЗ, СИД POD 1-3). Все животные наблюдаются один раз в день в течение пяти дней после операции для обследования участков разреза, и один раз в день в течение первых двух недель после операции для оценки боли.

6. Проверка тяжести МР с эхокардиографией(рисунок 5)

  1. Повторите TEE через две недели после операции, используя те же шаги, указанные в разделе 2.7. Две недели после операции – это достаточное время для стабилизации гемодинамики.
  2. Получить цветную визуализацию Доплера на 2-камерном обзоре с помощью трансэзофагеальной ультразвуковой визуализации, визуализации левого желудочка и левого предсердия. Измерьте площадь левого предсердия и струи MR. Рассчитайте фракцию области реактивного двигателя MR с помощью
    (1)
    Тяжелая МР определяется как область реактивной двигателя MR - 30%.
  3. Ориентируйоте область регургитантного обита путем вычисления площади 23 G иглы, используя внешний диаметр иглы. Это уравнение предполагает, что область регургитирующего прозрения равна площади иглы 23G.
    (2)
  4. Получить непрерывную волну доплеровской визуализации с доплеровскими воротами на луме регургитанта струи. Проследите форму волны, чтобы вычислить VTI регургитантной струи. Объем MR можно оценить с помощью
    (3)
    Тяжелая МР определяется как объем МР- 95 л.
  5. Получить импульсной волны Доплеровской визуализации легочной вены путем вращения эхо зонд аперео боковой, по часовой стрелке. Измерьте систолические и диастолические скорости волн и используйте следующее уравнение для расчета соотношения.
    (4)
    Отрицательное соотношение легочного потока указывает на серьезные MR.

7. Шам хирургии

  1. Выполните разделы 1-3, как описано.
  2. Изменение раздела 4 было изменено таким образом, что 23 G игла вставляется в левую желудочковую камеру, через портмонную строку шов на левой вершине желудочка, но не продвинулись в митральный клапан для создания MR. Вставьте иглу в левую желудочковую камеру и втягивание немедленно, после затягивания и закрытия желудочковой вершины.
  3. Выполните раздел 5, как описано.
  4. Выполните оценку митрального клапана, как описано в разделе 6. Тем не менее, MR не должно присутствовать ни в одном из животных, таким образом, количественная оценка, как описано, не является необходимым.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Representative Results

Осуществимость и воспроизводимость
Предлагаемая модель MR является высоко воспроизводимым, с четко определенным отверстием в митральной листовке, достигнутой в 100% крыс, используемых в этом исследовании. На рисунке 6А изображено направление иглы, когда она вставляется в митральный клапан. На рисунке 6B изображено отверстие в листовке митрального клапана от представительной крысы, высаженной через 2 недели после процедуры.

Выживание и неблагоприятные события
Шестнадцать крыс были индуцированы с Помощью MR с использованием описанных методов. Тяжелый MR был создан у всех крыс. Одна крыса умерла в течение часа после создания МР от острой дыхательной недостаточности. Таким образом, общая выживаемость на 2 недели после создания MR составила 93,75%. Смертность или основные сердечные побочные явления, такие как кровотечение, аритмии или инсульт не наблюдались ни у одного животного в течение двух недель наблюдения.

Тяжесть митральной регургитации
Таблица 1 обобщает гемодинамический профиль левого сердца на базовом уровне и через 2 недели после индуцирования MR. Парный t-тест был использован для определения статистической значимости между базовым уровнем и тяжестью Mr на 2 неделя, со статистической значимостью, определяемой как p qlt; 0.05. Mr струи был ярким в течение двух недель после операции, со средней площадью 21,15 и 8,11 мм2 (р/ 0,0001 по сравнению с базовым) и средняя скорость времени интегральной 39,72 и 7,52 см. Нормализованная фракция MR на 2 недели было 41,91 и 8,3%, который считается серьезным в соответствии с руководящими принципами Американского Общества Эхо. Тяжесть МР была адекватной для того, чтобы вызвать разворот легочного потока, с уменьшением соотношения S/D с 0,91 до 0,17 при базовом уровне до -0,69 и 0,65 на 2 недели (p qlt; 0.0001).

Реконструкция сердечной камеры
На рисунке 7 показаны морфологические изменения в репрезентативном сердце после тяжелой МР в течение 2 недель, по сравнению с сердцем от крысы, которая перенесла фиктивную операцию. После двух недель после операции, сердце от крысы с MR был сферическим и сильно расширена, с 29,65% увеличение в конце диастолического объема (базовый EDV: 462,49 и 39,62 л; и после 2 недели MR EDV: 599,79 й 58,590 л, р/т; 0,0001). Конечный систолический объем увеличился на 10,06%, с 153,90 и 18,78 л на базовом уровне, до 169,36 и 24,64 л (р 0,01) в течение 2 недель после индукции MR. Гиперконтрактность сердца наблюдалась в первые две недели, как и ожидалось, из-за снижения нагрузки, как видно из повышенной фракции выброса (66,77 и 2,02% на базовом уровне до 71,82 и 2,31% в 2 недели (p q lt; 0.0001)). Воздействие Mr в течение двух недель, увеличилось левой области предсердий на 99,59% (р-н йт; 0,0001).

Figure 1
Рисунок 1: Техника интубации. (A) 16 G ангиокат с направляющим проводом, используемым для эндотрахеявения интубации в этой модели крыс; (B) Изображение фарингеального зрения с помощью отоскопа и целевой области для вставки эндотрахеальной трубки; (C) Окончательная конфигурация эндотрахеялки трубки; (D) Прикрепление эндотрахеялки трубки к механическому вентилятору. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.

Figure 2
Рисунок 2: Трансторакальная и трансэзофагеальная визуализация. Трансторакальная визуализация: (A1) Настройка для трансторакальной визуализации крысы, изображающая угол изображения зонда; (A2) Парастернальное длинное оси зрения сердца; (A3) Короткий вид оси сердца. Трансесофагеальная визуализация: (B1) 8 Fr интракардиальный эхо-зонд с зондом, вставленным в пищевод во время интубирования животного; (B2) Высокие виды пищевода левого сердца, изображающие левое предсердие, митральный клапан и левый желудочек. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.

Figure 3
Рисунок 3: Хирургическая процедура. ()Хирургическая компоновка, показывающая левую торакотомию на5-м межреберном пространстве, и катетер ICE в пищевод крысы для руководства изображения, и 23 G иглы вставляется в вершину LV, где же кошелек строки шов находится. (B) Хирургический вид во время трансэзофагеального эхо управляемых листовки перфорации. (C) Эхокардиографическое изображение вставки иглы в левый желудочек в диастоле. (D) Эхокардиографическое изображение вставки иглы в левый желудочек в систоле. (E) Эхокардиографическое изображение иглы пронзил через переднюю листовку. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.

Figure 4
Рисунок 4: Изображение процедуры. (A) Базовый эхо 2 камерный вид до создания MR; (B) 23 G игла, визуализированная на эхо во время избиения сердца, продвинулась в левое предсердие через переднюю листовку митрального клапана; (C) Цвет Доплера изображения, показывающие MR струи видели в систоле. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.

Figure 5
Рисунок 5: Представитель эхо изображения для проверки тяжести MR на 2 недели после операции. (A) Левая область предсердий прослеживается в белом и МР реактивной области прослеживается красным; (B) MR VTI след в красном; (C)Легочной поток, показывающий систолический разворот. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.

Figure 6
Рисунок 6: прокол иглы. (A) Ориентация прокола иглы на сердце ex vivo. Игла проколота через вершину LV под углом, продольный раздел LV с иглой, направленной к листовке митрального клапана, и игла проколота через листовку митрального клапана в предсердное пространство. (B) Представитель explant фотография с изображением отверстие в передней митральной листовки. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.

Figure 7
Рисунок 7: Гросс морфология целых сердец фиктивной управляемой управляющей крысы (А) и крысы, которая перенесла операцию ПосЗ (B) 2 недели после операции. Крыса с тяжелым ИР имеет значительное расширение левого желудочка и увеличение камеры по сравнению с фиктивным управляемым управлением. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть большую версию этой цифры.

Базовый униза (n No 15) 2wk MR (n No 15) р-значение
Левая область предсердий (мм2) 25.03 и 8,70 49,95 и 14,78 р Злт; 0.0001
Область струи MR (мм2) 0 21.15 и 8,11 р Злт; 0.0001
Г-н фракция (%) 0 41,91 и 8,30 р Злт; 0.0001
MR VTI (см) 0 39,72 х 7,52 р Злт; 0.0001
S волна (м/с) 0,39 и 0,07 -0,51 и 0,41 р Злт; 0.0001
D волна (м/с) 0,44 и 0,04 0,70 и 0,17 р Злт; 0.0001
Соотношение волн S/D 0,91 и 0,17 -0,69 и 0,65 р Злт; 0.0001

Таблица 1: Характеристики митральной регургитации.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

Сообщается о воспроизводимой модели грызунов тяжелой МР с хорошей выживаемостью (93,75% выживаемости после операции) и без значительных послеоперационных осложнений. В режиме реального времени изображения с трансэзофагеальной эхокардиографии и введение иглы в бьющееся сердце, чтобы проколоть митральную листовку являются возможными и могут быть научены. Тяжелые MR был произведен с 23 G размер иглы в этом исследовании, которые могут быть разнообразны по желанию с помощью меньшего или большего иглы. MR индуцированных в этой модели создает низкое давление объем перегрузки на левом желудочке, который является лучшим представлением клинически наблюдается митрального клапана поражений. Тяжелые левые предсердий и левый желудочковый расширение наблюдаются в течение двух недель после начала Mr в этой модели, но без сократительной дисфункции измеряется выброса фракции. Аналогии с такой ситуацией имеют пациенты с первичным МР, которые остаются бессимптомными без сердечной недостаточности в течение длительных периодов времени, несмотря на постепенное расширение их левосторонней сердечной камеры.

Эта модель МР объемной перегрузки в нескольких отношениях отличается от широко используемой модели аорто-кавалерийских фистул свищей объемной перегрузки. Процедурная простота ACF, которая требует простой лапаротомии без необходимости интубации и механической вентиляции, поощряет его принятие научным сообществом12. Несмотря на свои явные процедурные преимущества, артерио-венозный свищ шунт большой объем крови в поливе вены, которая перегружает венозный резервуар, а также правый желудочек. Повышенное центральное венозное давление от венозных заторов может вызвать печеночные заторы и неоптимальную фильтрацию почек, что может вызвать печеночный фиброз или активацию системы ренин-ангиотензин-альдостерон (РААС). Запутанное влияние системы RAAS на желудочково-артериальную связь известно, и, таким образом, модель ACF не может представить истинную перегрузку объема на левом желудочке, как видно в настройке митральной регургитации. По сравнению с моделью дефекта митрального клапана, отсутствие снижения послегрузо-продува еще больше расходится с этой моделью от клинической ситуации MR. В целом, значительное различное гемодинамическое напряжение на LV в модели ACF, вводит быстрые изменения с выраженной гипертрофией, расширением и дисфункцией, которые не наблюдались в нашей модели13.

Помимо новизны внедрения MR с иглой палкой, наша модель имеет несколько применений в ответах на клинически важные вопросы. Пациенты с первичным МР, который возникает из поражения митрального клапана часто бессимптомно в течение длительного времени и получают коррекцию их МР только в начале легочной или сердечной недостаточности симптомы. Последние клинические данные свидетельствуют о том, что такая задержка коррекции МР не позволяет функциональновосстановить восстановление левого желудочка, несмотря на облегчение усталости и симптомов14. В недавнем исследовании с использованием этой модели грызунов, мы показали, что MR вводит быстрый и ранний ремоделирование сердечной внеклеточной матрицы, которая является предшественником структурных изменений в левом желудочке10. Такие механистические идеи, которые обеспечивают физиологическую основу для вмешательства митрального клапана могут быть разработаны с помощью этой модели. В сочетании с визуализацией сердца, можно разработать биомаркеры, которые представляют эти ранние изменения левого желудочка для руководства сроки вмешательства. Кроме того, эта модель МР может быть объединена с желудочковой кардиомиопатии, такие как ишемическая, неишемическая и другие этиологии, чтобы понять влияние Mr на ремоделирование больных левых желудочков. Например, вторичное Mr, частое явление в желудочках миопатической после инфаркта или с хронической ишемией, является поражения, которое клинически сложно управлять. Является ли MR сторонним прохожим в этом состоянии болезни и продукт омрачитель LV дисфункции, или если он активно способствует сердечной ремоделирования являются спорными. Недавно мы расширили эту модель Mr для расследования, если после инфаркта сердца с МР отличаются в их сердечной ремоделирования потенциал по сравнению с теми, без MR11, выясняя потенциальные механизмы, участвующие в ухудшении сердечной недостаточности у пациентов с MR. Эта модель обеспечивает гибкость для расследования воздействия раннего начала по сравнению с поздним началом MR на сердечной ремоделирования к отказу, которые могут иметь значительное клиническое воздействие на руководящие вмешательства.

Как и в любой экспериментальной модели, Есть некоторые преимущества и ограничения, которые должны быть рассмотрены при применении результатов от животных к человеку. Явным преимуществом этой модели является воспроизводимая тяжесть МР, которая помогает в понимании сердечной камеры ремоделирования в клинически диагностированных условиях, таких как первичный МР от разрыва хорда. Увеличение объемов сердечной камеры наблюдается в этой модели и внеклеточной матрицы ремоделирования наблюдается в миокарде представляют изменения, наблюдаемые ранее в крупных животных и людей с первичной MR14,15. Ограничение этой модели перфорации листовки заключается в том, что МР развивается остро, представляя лишь подмножество пациентов с первичным МР от острого разрыва хорда. Несмотря на ограничения, острое начало МР составляет значительно большую популяцию пациентов, которые проходят митральные вмешательства клапана, и эта модель очень актуальна для такой ситуации. Еще одним ограничением этой модели является то, что МР не является обратимым или ремонтируемым, что не позволяет проводить исследования о влиянии или сроках вмешательства на ремоделирование сердца.

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Disclosures

M.P является советником компании Heart Repair Technologies (HRT), за которую он получил консультационные сборы. ЗГТ не играет никакой роли в этом исследовании и не предоставляет никаких финансовых средств для поддержки этой работы.

Acknowledgments

Эта работа была профинансирована грантом 19PRE34380625 и 14SDG20380081 от Американской ассоциации сердца d. Corporan и M. Padala соответственно, дарят HL135145, HL133667, и HL140325 от национальных институтов здоровья к M. Padala, и финансирование инфраструктуры от центра сердца Carlyle Fraser на стационаре университета Emory к M. Padala.

Materials

Name Company Catalog Number Comments
23G needle Mckesson 16-N231
25G needle, 5/8 inch McKesson 1031797
4-0 vicryl Ethicon J496H
6-0 prolene Ethicon 8307H
70% ethanol McKesson 350600
ACE Light Source Schott A20500
ACUSON AcuNav Ultrasound probe Biosense Webster 10135936 8Fr Intracardiac echo probe
ACUSON PRIME Ultrasound System Siemens SC2000
Betadine McKesson 1073829
Blunted microdissecting scissors Roboz RS5990
Buprenorphine Patterson Veterinary 99628
Carprofen Patterson Veterinary 7847425
Chest tube (16G angiocath) Terumo SR-OX1651CA
Disposable Surgical drapes Med-Vet SMS40
Electric Razor Oster 78400-XXX
Gentamycin Patterson Veterinary 78057791
Heat lamp with table clamp Braintree Scientific HL-1 120V
Hemostatic forceps, curved Roboz RS7341
Hemostatic forceps, straight Roboz RS7110
Induction chamber Braintree Scientific EZ-1785
Injection Plug, Cap, Luer Lock Exel 26539
Isoflurane Patterson Veterinary 6679401725
Mechanical ventilator Harvard Apparatus Inspira ASV
Microdissecting forceps Roboz RS5135
Microdissecting spring scissors Roboz RS5603
Needle holder Roboz RS6417
No. 15 surgical blade McKesson 1642
Non-woven sponges McKesson 446036
Otoscope Welch Allyn 23862
Oxygen Airgas Healthcare UN1072
Pulse Oximeter Nonin Medical 2500A VET
Retractor, Blunt 4x4 Roboz RS6524
Rodent Surgical Monitor Indus Instruments 113970 The integrated platform allows for monitoring of vital signs and surgical warming
Scale Salter Brecknell LPS 150
Scalpel Handle Roboz RS9843
Silk suture 3-0 McKesson 220263
Small Animal Anesthesia System Ohio Medical AKDL03882
Sterile saline (0.9%) Baxter 281322
Sugical Mask McKesson 188696
Surgical cap McKesson 852952
Surgical gloves McKesson 854486
Syringe 10mL McKesson 1031801
Syringe 1mL McKesson 1031817
Ultra-high frequency probe Fujifilm Visualsonics MS250
Ultrasound gel McKesson 150690
VEVO Ultrasound System Fujifilm Visualsonics VEVO 2100

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Nkomo, V. T., et al. Burden of valvular heart diseases: a population-based study. Lancet. 368, (9540), 1005-1011 (2006).
  2. Zamorano, J. L., et al. Mechanism and Severity of Mitral Regurgitation: Are There any Differences Between Primary and Secondary Mitral Regurgitation? The Journal of Heart Valve Disease. 25, (6), 724-729 (2016).
  3. Grossman, W., Jones, D., McLaurin, L. P. Wall stress and patterns of hypertrophy in the human left ventricle. Journal of Clinical Investigation. 56, (1), 56-64 (1975).
  4. Carabello, B. A. Concentric versus eccentric remodeling. Journal of Cardiac Failure. 8, (6), S258-S263 (2002).
  5. Braunwald, E., Welch, G. H., Sarnoff, S. J. Hemodynamic effects of quantitatively varied experimental mitral regurgitation. Circulation Research. 5, (5), 539-545 (1957).
  6. Sasayama, S., Kubo, S., Kusukawa, R. Hemodynamic and angiocardiographic studies on cardiodynamics: experimental mitral insufficiency. Japanese Circulation Journal. 34, (6), 513-530 (1970).
  7. Hennein, H., Jones, M., Stone, C., Clark, R. Left ventricular function in experimental mitral regurgitation with intact chordae tendineae. Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 105, (4), 624-632 (1993).
  8. Stumpe, K. O., Sölle, H., Klein, H., Krück, F. Mechanism of sodium and water retention in rats with experimental heart failure. Kidney International. 4, (5), 309-317 (1973).
  9. Abassi, Z., Goltsman, I., Karram, T., Winaver, J., Hoffman, A. Aortocaval fistula in rat: A unique model of volume-overload congestive heart failure and cardiac hypertrophy. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2011, (January), 1-13 (2011).
  10. Corporan, D., Onohara, D., Hernandez-Merlo, R., Sielicka, A., Padala, M. Temporal changes in myocardial collagen, matrix metalloproteinases, and their tissue inhibitors in the left ventricular myocardium in experimental chronic mitral regurgitation in rodents. American Journal of Physiology - Heart and Circulatory Physiology. 315, (5), H1269-H1278 (2018).
  11. Onohara, D., Corporan, D., Hernandez-Merlo, R., Guyton, R. A., Padala, M. Mitral Regurgitation Worsens Cardiac Remodeling in Ischemic Cardiomyopathy in an Experimental Model. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. (2019).
  12. Garcia, R., Diebold, S. Simple, rapid, and effective method of producing aortocaval shunts in the rat. Cardiovascular Research. 24, (5), 430-432 (1990).
  13. Brower, G. L., Janicki, J. S. Contribution of ventricular remodeling to pathogenesis of heart failure in rats. American Journal of Physiology-Heart and Circulatory Physiology. 280, (2), H674-H683 (2001).
  14. McCutcheon, K., et al. Dynamic changes in the molecular signature of adverse left ventricular remodeling in patients with compensated and decompensated chronic primary mitral regurgitation. Circulation Heart Failure. 12, (9), (2019).
  15. McCutcheon, K., Manga, P. Left ventricular remodeling in chronic primary mitral regurgitation. Cardiovascular Journal of Africa. 29, (1), 51-64 (2018).

Comments

0 Comments


    Post a Question / Comment / Request

    You must be signed in to post a comment. Please sign in or create an account.

    Usage Statistics