De MODS methode voor de diagnose van tuberculose en multidrug-resistente tuberculose

Published 8/11/2008
4 Comments
  CITE THIS  SHARE 
Biology

Your institution must subscribe to JoVE's Biology section to access this content.

Fill out the form below to receive a free trial or learn more about access:

Welcome!

Enter your email below to get your free 10 minute trial to JoVE!





By clicking "Submit", you agree to our policies.

 

Summary

De microscopische observatie-drug-gevoeligheid (MODS) test is een low-cost, low-tech tool voor high-performance detectie van tuberculose (TB) en multiresistente tuberculose (MDRTB). Deze video beschrijft de MODS vloeistof mediacultuur methode.

Cite this Article

Copy Citation

Brady, M. F., Coronel, J., Gilman, R. H., Moore, D. A. The MODS method for diagnosis of tuberculosis and multidrug resistant tuberculosis. J. Vis. Exp. (18), e845, doi:10.3791/845 (2008).

Please note that all translations are automatically generated.

Click here for the english version. For other languages click here.

Abstract

Patiënten met actieve longtuberculose (tbc) te infecteren 10-15 andere personen per jaar, waardoor de diagnose van actieve tuberculose essentieel voor zowel het genezen van de patiënt en het voorkomen van nieuwe infecties. Bovendien is de opkomst van multidrug-resistente tuberculose (MDRTB) betekent dat de detectie van resistentie tegen geneesmiddelen noodzakelijk is voor het stoppen van de verspreiding van resistente stammen. De microscopische observatie-drug-gevoeligheid (MODS) test is een low-cost, low-tech tool voor high-performance detectie van TB en MDRTB. De MODS test is gebaseerd op drie principes: 1) Mycobacterium tuberculosis (MTB) groeit sneller in vloeibare media dan op vaste media 2) microscopische MTB groei kan eerder in vloeibare media worden gedetecteerd dan te wachten tot de macroscopische verschijnen van kolonies op vaste media, en dat de groei is kenmerkend voor MTB, waardoor het kan worden onderscheiden van atypische mycobacteriën of schimmel of bacteriële besmetting 3) de drugs isoniazide en rifampicine kunnen worden opgenomen in de MODS test te laten voor gelijktijdige directe detectie van MDRTB, het wegnemen van de noodzaak voor subcultuur uit te voeren een indirecte drug gevoeligheid te testen. Concurrerende huidige diagnostiek wordt gehinderd door een lage gevoeligheid met sputum uitstrijkje, lange vertragingen tot diagnose met stevige mediacultuur, onbetaalbaar hoge kosten met bestaande vloeibare media cultuur methoden, en de noodzaak om subcultuur doen voor indirecte drug gevoeligheid testen om MDRTB op te sporen. In tegenstelling tot de niet-merkgebonden MODS methode heeft een hoge gevoeligheid voor TBC en MDRTB, is een relatief snelle cultuur-methode, biedt gelijktijdige medicijn testen van de gevoeligheid voor MDRTB, en is toegankelijk voor gebieden met beperkte middelen op slechts minder dan $ 3 voor het testen op TBC en MDRTB.

Protocol

  1. Bereid voorraadoplossingen
    1. Fosfaatbuffer voorraad
      1. Mix capaciteit van 950 van natrium dibasisch oplossing (9.47g van dibasisch opgelost in gedestilleerd water 1000ml) met een capaciteit van 950 kalium monobase oplossing (9.07g van kalium monobase opgelost in gedestilleerd water 1000ml) en roer; houden achterkant 50 ml van elke oplossing aan te passen pH, indien nodig
      2. Pas de pH op 6,8 ± 0,2: voeg dibasisch oplossing om de pH te verhogen; toe te voegen kalium monobasisch oplossing voor een lagere pH
      3. Autoclaaf bij 121-124 ° C gedurende 15 minuten om te steriliseren
      4. Plaat een 100μl hoeveelheid van de fosfaatbuffer op voedingsagar medium in een petrischaal en incubeer bij 37 ° C gedurende 48 uur tot steriliteit te bevestigen
      5. Bewaren in de koelkast bij 2-8 ° C gedurende een maand

        Opmerking: Elke sputummonster vraagt ​​10 ml van de fosfaatbufferoplossing
    2. Decontaminatie voorraad
      1. Combineer gelijke volumes van natriumhydroxide-oplossing (8.0g van natriumhydroxide opgelost in 200 ml steriel gedistilleerd water) en natriumcitraat oplossing (5,8 g natrium citraat gedistilleerd in 200 ml steriel gedistilleerd water)
      2. Mix en autoclaaf bij 121-124 ° C gedurende 15 minuten
      3. Bewaren in de koelkast bij 2-8 ° C gedurende een maand

        Opmerking: Elke sputummonster vereist 2 ml van decontaminatie voorraad
    3. Cultuurmedia voorraad
      1. In 900 ml van steriel gedestilleerd water toe te voegen 3.1ml van glycerol en 1.25g van casitone en 5.9g van 7H9 medium poeder, meng met een constante agitatie tot het volledig is opgelost
      2. Autoclaaf bij 121-124 ° C gedurende 15 minuten
      3. Koel en verdeel de steriele medium in 4.5ml porties in een steriele 16x 100 mm glazen buizen voor monstervoorbereiding, en 10.8ml porties voor de voorbereiding van antibiotica en de interne controles
      4. Incubeer bij 37 ° C gedurende 48 uur om de steriliteit (gebrek aan troebelheid) te controleren
      5. Bewaren bij 2-8 ° C met dop goed afgesloten, voor maximaal een maand

        Opmerking: Elke sputummonster vereist een buisje met 4.5ml van 7H9 medium
    4. Antibiotica stockoplossingen
      1. A. Isoniazide voorraad (8 mg / ml)
        1. Los 20 mg isoniazide volledig in 2,5 ml steriel gedistilleerd water
        2. Filter met 0.2μm spuitfilter voor waterige oplosmiddel
        3. Bewaren in 20μl aliquots in steriele micro centrifugeren buisjes bij -20 ° C tot 6 maanden

          Opmerking: Elke opgeslagen 20μl hoeveelheid is voldoende voor maximaal 100 monsters (met inbegrip afval)
      2. B. Rifampicine voorraad (8 mg / ml)
      1. Volledig oplossen 20 mg rifampicine in 1,25 ml DMSO
      2. Voeg 1,25 ml steriel gedestilleerd water toe en meng
      3. Filter met 0.2μm spuit filter voor organische oplosmiddelen
      4. Bewaren in 20μl aliquots in steriele microcentrifugebuizen bij -20 ° C tot 6 maanden

        Opmerking: Elke opgeslagen 20μl hoeveelheid is voldoende voor maximaal 100 monsters (met inbegrip afval)
  2. Bereid te werken oplossingen
    1. Decontaminatie werkende oplossing
      1. Los van 0.1g NALC kristallen in elk 20 ml van de benodigde decontaminatie-oplossing

        Let op: Elk monster heeft 2 ml van de decontaminatie-oplossing

        Opmerking: Gooi NaOH-NALC decontaminatie-oplossing die ongebruikt blijft na 24 uur als NALC verliest zijn mucolytische activiteit loop van de tijd
    2. Cultuur media werkende oplossing
      1. Uiteengezet:
        1. 1 tube met 7H9 medium voor elke sputum monster worden verwerkt, plus een extra buis voor elke plaat (voor de negatieve controle kolom)
        2. 2 buizen van 7H9 medium voor de positieve controles (3 indien monoresistant stammen worden gebruikt)
        3. 1-2 buizen met 10.8ml 7H9 voor antibiotica oplossing voorbereiding
      2. Voeg 0,5 ml OADC aan de 4.5ml van 7H9 in elk monster buis
      3. Voeg 1,2 ml OADC aan buizen met 10.8ml 7H9
      4. Zet opzij twee buizen met 5ml 7H9-OADC voor positieve controles, en buis (s) met 12ml 7H9-OADC te worden gebruikt voor antibiotica-oplossing voorbereiding (deze hoeven niet PANTA)
      5. Reconstrueren PANTA en voeg 0,1 ml aan elk monster buis en met de negatieve controle buizen (7H9-OADC-PANTA: totaal volume = 5.1ml)

        Let op: Compleet medium met PANTA (7H9-OADC-PANTA) wordt gebruikt voor sputum monsters en negatieve controles, gebruik 7H9-OADC zonder PANTA voor positieve controles en voor antibiotica oplossing voorbereiding
    3. Antibiotica werken oplossingen
      1. 1. Zie figuur 1 voor stappen om het maken van het antibioticum werkende oplossing in een ongebruikte 24-well plaat

        Opmerking: Voor een nauwkeurige gevoeligheid resultaten, de laatste antibiotica concentraties zijn van cruciaal belang. De volgende procedure is geschikt voor laboratories uitgerust met micropipetten. Als micropipetten niet beschikbaar zijn, kunnen tuberculine injectiespuiten worden gebruikt met een andere reeks van verdunningen wordt beschreven in de Gebruikershandleiding Bijlage 3 bij modsperu.org

        Let op: niet opnieuw invriezen of hergebruik antibiotica werken of stock-oplossingen als drug activiteit kan worden verloren Gooi alle ongebruikte antibiotica aan het einde van de verwerking dag Figuur 1.. Het maken van de antibiotische werking oplossingen (van User Guide op modsperu.org)
  3. Sputummonster en plaat voorbereiding
    1. Decontaminatie
      1. Plaats 2 ml sputum monster in een 15ml centrifugebuis (indien minder, vul aan tot 2 ml met fosfaat buffer, als er meer, gebruik 2 ml)
      2. Voeg 2 ml NaOH-oplossing NALC
      3. Cap buis strak en vortex gedurende 20 seconden; omkeren buis om ervoor te zorgen NaOH-oplossing in contact NALC de gehele binnenkant van de buis en deksel
      4. Laat staan ​​voor een minimum van 15 minuten - kan verlengen door een paar minuten als het monster is bijzonder viskeus. Om te voorkomen dat over de behandeling, mag niet meer dan 20 minuten
      5. De buis wordt tot 14ml met fosfaatbuffer (pH 6,8) te neutraliseren alkali en beëindiging van de decontaminatie-proces, en goed door het buisje mix 4 keer
      6. Centrifugeer bij 3000 g gedurende 15 minuten (zie bijlage 2 in de User Guide op modsperu.org voor de vergelijking van rotaties per minuut nodig is om 3000 g te bereiken)
      7. Giet af bovendrijvende in een vloeibare afvalstoffen container met 10% natriumhypochloriet of een ander geschikt ontsmettingsmiddel en behouden van de pellet
    2. De voorbereiding van de uiteindelijke monster schorsing en back-up
      1. Met behulp van 7H9-OADC-PANTA (van de buis met 5.1ml), resuspendeer de sample pellet in een totaal volume van 2 ml in de centrifugebuis met een Pasteur pipet; meng goed
      2. Verwijder 1 ml van het monster schorsing en op te slaan in een microcentrifugebuis bij 2-8 ° C als een back-up
      3. Voeg de seconde 1 ml van het monster schorsing op de buis met de rest van 7H9-OADC-PANTA, meng goed. Dit is de uiteindelijke steekproef oplossing klaar voor plating
    3. Het plaatsen van monster suspensies in 24-well plaat
      1. Plaats 900μl van het eindmonster schorsing in elk van de vier putten van een kolom in de 24-well plaat
      2. Herhaal dit met extra monsters totdat alle kolommen van de plaat, met uitzondering van kolom 3, worden gevuld (of totdat alle monsters zijn verguld)
      3. Plaats 900μl van 7H9-OADC medium zonder monster in de vier putten van Kolom 3 van elk monster plaat (negatieve interne controles)
    4. Het toevoegen van antibiotica om monsters te
      1. Met behulp van een multi-channel pipet voorzichtig vullen 4 tips met 100μl uit de putten met 7H9-OADC en antibiotica werken oplossingen (kolom 2 in antibiotica verdunning plaat-zie figuur 1)
      2. Voeg de 100μl monsters om de kolom te putten met een 900μl sample oplossingen zonder te raken plaat of monster
      3. Herhaal dit totdat alle kolommen hebben ontvangen van de extra 100μl van medium (drugsvrije putten) of antibiotica oplossingen (inclusief negatieve controle kolom 3)
      4. Sluit de plaat met het deksel en plaats het in een afsluitbare plastic (Ziplock) zak en seal (tas is niet meer geopend vanaf dit punt)
      5. Incubeer bij 37 ° C (CO 2 verrijking is niet nodig)
  4. Kwaliteitscontrole
    1. Negatieve controles worden uitgevoerd op elk bord. De aanwezigheid van een groei in een van de putten in de negatieve controle kolom geeft kruisbesmetting, dus de hele plaat moet worden weggegooid en de monsters opnieuw verguld.
    2. Positieve controles worden uitgevoerd op een aparte plaat aan het eind van de dag. Een volledig drugs-gevoelige stam is uitgevoerd in een kolom en een stam resistent tegen INH en RIF is uitgevoerd in een andere kolom. Als er bezorgdheid over het uitvoeren van een MDR stam, zowel een INH monoresistant stam en een RIF monoresistant stam kan worden uitgevoerd in de plaats van de gevoelige en MDR stammen. Alle positieve controles moeten de groei in de drugsvrije putten dat de media ondersteunen de groei aan te tonen. Om aan te tonen dat het medicijn concentraties juist zijn, dient de kwetsbare stam groeien niet in de INH of RIF putten, maar de MDR stam moet groeien ook groeien in de INH en RIF putten.
  5. Plaat te lezen
    1. Met de dag in de platen als "Dag 0," plaat lezen begint op dag 5, en als negatief op dag 5 te lezen is gedaan om de dag (of andere dagen afhankelijk van de werkbelasting) tot en met dag 14 en daarna om de 2-3 dagen vanaf dag 15 -21. Platen zijn onderzocht op eenomgekeerde lichtmicroscoop met het 10x objectief
    2. Een positieve cultuur is er een waarin er twee of meer kolonievormende eenheden (> 2 CFU) in zowel drugsvrije putten. Vroege mycobacteriële groei ziet eruit als kleine gebogen komma's of spiralen (dag 5-9). Kolonie de vorming vordert meestal om "snoeren" of "knopen" (zie afbeelding bibliotheek op modsperu.org)
    3. Op de dag dat een cultuur is positief in de twee drugsvrije putten, het geneesmiddel-bevattende putten moeten worden gelezen. Eventuele groei in de aanwezigheid van een geneesmiddel geeft weerstand tegen deze drug.

      Opmerking: Als het lezen van het geneesmiddel-bevattende putten gebeurt> 1 week na een positieve cultuur wordt opgemerkt in de drug-free putten, kan dit niet verzet vertegenwoordigen als break-through groei is af en toe gezien
    4. Monsters die niet positief op dag 21 worden beschouwd als negatief culturen
    5. Vertroebeling van de putten is een gevolg van besmetting overmatige groei, terwijl mycobacteriële de groei niet leidt tot troebelheid
    6. Aan het einde van 21 dagen culturen kunnen worden weggegooid. Culturen blijven in de verzegelde tassen en worden geplaatst in autoclaafzakken en geautoclaveerd bij 121-124 ° C voor 45-60 minuten

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Discussion

De MODS test is gericht op gebieden met beperkte middelen. Voor de eerste keer, MODS brengt de mogelijkheid voor een snelle detectie van vloeibare cultuur tuberculose en multidrug-resistente tuberculose voor gebieden met beperkte middelen iets minder dan drie dollar per test. MODS is een non-proprietary, iteratieve methode, en de MODS gemeenschap is altijd geïnteresseerd in verbeteringen die andere laboratoria hebben weten te maken.

Een terugkerend zorg is de bioveiligheid van vloeibare media cultuur van tuberculose, want vloeistoffen kunnen worden gemorst of verstoven. Wij zijn van mening dat de MODS test is meer biosafe dan elke test dat de betrokken indirecte drugs testen van de gevoeligheid omdat indirecte drug testen van de gevoeligheid gaat de manipulatie van sterk geconcentreerde oplossingen van mycobacteriën met de daarmee gepaard gaande risico's van morsen en aërosolvorming, in contrast, MODS gewoon gaat om de inenting van de een sputum monster in een bord, waarna de plaat wordt afgesloten in een plastic zak en nooit meer geopend. Dit wordt ondersteund door gegevens uit Korea (Kim 2007) waaruit bleek dat de arbeidsrisico's voor werknemers die het laboratorium uitgeplaat sputum monsters zonder te doen drug-testen van de gevoeligheid was niet groter dan dat bij werknemers het doen sputum uitstrijkje microscopie, in contrast, die doen drug- gevoeligheidstesten had veel hoger beroepsrisico voor tuberculose.

We raden dat geen van deze procedures worden uitgevoerd zonder de juiste voorzorgsmaatregelen voor laboratorium werkers. Dit geldt ook voor N-95 maskers voor persoonlijke adembescherming, een klasse 2 biologische veiligheid kast met afgevoerde lucht gefilterd door HEPA-filters, en een slot op de deur laboratorium voor turbulentie van de luchtstroom te stoppen, terwijl monsters worden gemanipuleerd.

Standard operating procedures voor de verwerking van extrapulmonale monsters, een fototheek van Mycobacterium tubercuclosis en andere mycobacteriën en bacteriën en schimmels besmetting, een aanbevolen kwaliteitsborging strategie, een procedure voor erkenning van laboratoria om te beginnen met MODS, en een FAQ pagina zijn beschikbaar op modsperu.org

Subscription Required. Please recommend JoVE to your librarian.

Acknowledgements

We willen graag Sean Fitzwater en Carmen Giannina Luna Colombo te erkennen voor de tuberculose groei van time-lapse video segment. Wij danken Marty Roper voor haar grondige en uitstekende feedback tijdens het bewerken en co-authoring de handleiding, waaruit het huidige protocol werd genomen meestal letterlijk. De productie van deze video werd gefinancierd door het NIH / Fogarty International Center http://www.fic.nih.gov/ David AJ Moore droeg als een Wellcome Trust Clinical Research Fellow in Tropische Geneeskunde en Reader in Infectieziekten aan het Imperial College London (Fellowship award nummer 078067/Z/05). Mark F. Brady droeg als een NIH / Fogarty International Center Research Fellow.

Materials

Name Type Company Catalog Number Comments
Refrigerator/ freezer Equipment to store pre-prepared broth and antibiotic stocks
Vortex Equipment to aid sputum decontamination
Centrifuge Equipment for sputum concentration; capable of reaching 3000 g; d–s not need to be refrigerated, but MUST be biosafe (buckets can be sealed)
Incubator (37 degree C) Equipment for culture; need not be CO2 enriched
Inverted light microscope Microscope to read MODS plates
Autoclave Equipment to sterilize media, PBS and used plates
Balance Equipment to weigh isoniazid, rifampicin and NALC
Middlebrook 7H9 broth (Difco) Reagent Fisher Scientific DF0713-17-9 500gr/bottle; culture media base
Casitone (pancreatic digest casein) Reagent Fisher Scientific DF0259‐17‐9 500gr/bottle; culture media base
Glycerol (glycerin) lyophilized Reagent Sigma-Aldrich G‐33‐500 500ml/bottle; culture media base
PANTA (Antibiotic mixture lyophilized BD) Reagent Fisher Scientific B4345114 6 bottles/pack; antibiotic media supplement
OADC (Middlebrook OADC enrichment BD) Reagent Fisher Scientific B11886 10 x 20ml/pack; nutritional media supplement
Dimethyl sulphoxide (Hibri-Max) Reagent Sigma-Aldrich D-2650 100ml/bottle; to prepare rifampicin stock
Antibiotic stocks: isoniazid Reagent Sigma-Aldrich I-3377 50gr/bottle; direct susceptibility testing
Antibiotic stocks: rifampicin Reagent Sigma-Aldrich R-3501 1gr/bottle; direct susceptibility testing
Sodium hydroxide (pellets) Reagent Sigma-Aldrich 221465 500gr/bottle; sputum decontamination
Sodium citrate (trisodium salt dihydrate) Reagent Sigma-Aldrich S-4641 500gr/bottle; sputum decontamination
N-acetyl-L-cysteine Reagent Sigma-Aldrich A-7250 50gr/bottle; sputum decontamination
Potassium Phosphate Monobasic crystal. KH2PO4 Reagent Sigma-Aldrich P0662 500gr/bottle; sputum decontamination
Sodium Phosphate Dibasic, anhydrous. Na2HPO4 Reagent Sigma-Aldrich S0876 500gr/bottle; sputum decontamination
Sodium hypochlorite Reagent household bleach to discard contaminated waste
15ml centrifuge tubes (polypropylene 15ml Falcon 35‐2096) Consumable Fisher Scientific 14‐959‐49B 500ea/case; for sputum decontamination and concentration
24 well plates (Plates Tissue 24 wells BD Falcon 35‐3047) Consumable Fisher Scientific 08-772-1 50 plates/case; for culture and reading
Sealable polythene bags 6 X 6 “ (ziplock) Consumable for biosecurity to contain 24 well plate
Glass tubes with lid (16 x 100mm and 18 x 145mm) Consumable VWR international 47729-583 500 tubes/case; to store aliquots of prepared broth
Screw cap microcentrifuge tubes (1.5ml) Consumable Fisher Scientific 05‐669‐22 1000ea/case; to store aliquots of antibiotic stocks
0.22μm filters (aqueous solvents) Syringe filter Millex blue Consumable Fisher Scientific SLGL 025 OS 50 units/case; to filter antibiotic stocks
0.22μm filters (organic solvents) Syringe filter Millex yellow Consumable Fisher Scientific SLGV 033 RS 50 units/case; to filter antibiotic stocks
Disposable Pasteur pipettes borosilicate glass 9″ Consumable Fisher Scientific 13‐678‐20C 720ea/case; to mix PANTA with media mix
Aerosol barrier tips 1000‐1300μl Consumable Fisher Scientific 02‐707‐51 1000ea/pk; to dispense media into plate
USA Scientific Tips One 1‐200μl yellow tips Consumable Fisher Scientific 1111‐0006 1000 tips/bag; to dilute antibiotic stocks

DOWNLOAD MATERIALS LIST

References

  1. Arias, M. Clinical evaluation of the microscopic-observation drug-susceptibility assay for detection of tuberculosis. Clin Infect Dis. 44, 674-674 (2007).
  2. Caviedes, L. Rapid, efficient detection and drug susceptibility testing of Mycobacterium tuberculosis in sputum by microscopic observation of broth cultures. The Tuberculosis Working Group in Peru. J Clin Microbiol. 38, 1203-1203 (2000).
  3. Caviedes, L., Moore, D. A. Introducing MODS: a low-cost, low-tech tool for high-performance detection of tuberculosis and multidrug resistant tuberculosis. Indian J Med Microbiol. 25, 87-87 (2007).
  4. Caws, M. Evaluation of the MODS culture technique for the diagnosis of tuberculous meningitis. PLoS ONE. 2, e1173-e1173 (2007).
  5. Ejigu, G. S. Microscopic-observation drug susceptibility assay provides rapid and reliable identification of MDR-TB. Int J Tuberc Lung Dis. 12, 332-332 (2008).
  6. Kim, S. J. Risk of occupational tuberculosis in National Tuberculosis Programme laboratories in Korea. Int J Tuberc Lung Dis. 11, 138-138 (2007).
  7. Mello, F. C. Clinical evaluation of the microscopic observation drug susceptibility assay for detection of Mycobacterium tuberculosis resistance to isoniazid or rifampin. J Clin Microbiol. 45, 3387-3387 (2007).
  8. Moore, D. A. Future prospects for the MODS assay in multidrug-resistant tuberculosis diagnosis. Future Microbiol. 2, 97-97 (2007).
  9. Moore, D. A. Infrequent MODS TB culture cross-contamination in a high-burden resource-poor setting. Diagn Microbiol Infect Dis. 56, 35-35 (2006).
  10. Moore, D. A. Microscopic-observation drug-susceptibility assay for the diagnosis of TB. N Engl J Med. 355, 1539-1539 (2006).
  11. Moore, D. A. Microscopic observation drug susceptibility assay, a rapid, reliable diagnostic test for multidrug-resistant tuberculosis suitable for use in resource-poor settings. J Clin Microbiol. 42, 4432-4432 (2004).
  12. Moore, D. A., Roper, M. H. Diagnosis of smear-negative tuberculosis in people with HIV/AIDS. Lancet. 370, 1033-1033 (2007).
  13. Oberhelman, R. A. Improved recovery of Mycobacterium tuberculosis from children using the microscopic observation drug susceptibility method. Pediatrics. 118, e100-e100 (2006).
  14. Palomino, J. C., Martin, A., Portaels, F. MODS assay for the diagnosis of TB. N Engl J Med. 356, 188-189 (2007).
  15. Park, W. G., Bishai, W. R., Chaisson, R. E., Dorman, S. E. Performance of the microscopic observation drug susceptibility assay in drug susceptibility testing for Mycobacterium tuberculosis. J Clin Microbiol. 40, 4750-4750 (2002).
  16. Shiferaw, G. Evaluation of microscopic observation drug susceptibility assay for detection of multidrug-resistant Mycobacterium tuberculosis. J Clin Microbiol. 45, 1093-1093 (2007).
  17. Tovar, M. Improved diagnosis of pleural tuberculosis using the microscopic- observation drug-susceptibility technique. Clin Infect Dis. 46, 909-909 (2008).
  18. Vargas, D. Diagnosis of sputum-scarce HIV-associated pulmonary tuberculosis in Lima, Peru. Lancet. 365, 150-150 (2005).

Comments

4 Comments

  1. I think it is an interesting video about the rapid diagnosis of tuberculosis by MODS assay but I also think this assay might be improve if the casein is replaced by simple amino acids in order to generate a chemically culture medium.

    Reply
    Posted by: Anonymous
    January 10, 2009 - 11:21 AM
  2. nice work.  how dŒs this compare to the MABA method?  what is the false positive and false negative rates with samples from adult humans?

    Reply
    Posted by: Anonymous
    March 9, 2009 - 9:47 AM
  3. very good site for TB, but method lacks the video of reading a plate on inverted microscope.

    Reply
    Posted by: Anonymous
    March 31, 2009 - 3:38 PM
  4. Excelente trabajo, el MODS es una tecnica infalible, considero que existe buena concordancia con las pruebas confirmatorias de sensibilidad a drogas como metodo proporciones, APP, TEMA, MABA e incluso Fagotipificacion.

    Reply
    Posted by: cesar augusto r.
    November 3, 2009 - 11:17 PM

Post a Question / Comment / Request

You must be signed in to post a comment. Please or create an account.

Video Stats