Name: マウス角膜血管新生のアルカリ熱傷損傷モデル (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-04-07T15:30:00.000+00:00
Duration: 10 min 52 s
Description: 学ぶマウス角膜血管新生のアルカリ熱傷モデルによる抗血管新生療法の効果評価法。免疫染色と臨床観察で定量化し、角膜疾患の新規治療開発に応用可能な再現性の高い実験系を構築します。

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私たちは、原稿を準備中の博士余市Liさんの助けに感謝しています。 SWがUTの南西医療センター、NIHグラントEY021862、失明基盤を防止するための研究からキャリア開発賞、加齢性黄斑変性症の研究における明るいフォーカス賞からの大​​統領の研究評議会の新しい研究者賞、チューレーン大学からのスタートアップ資金によってサポートされていました。

注：以下のプロトコルおよび代表的な結果は、実施例化合物として、HDAC阻害剤SAHAを使用しています。しかしながら、このプロトコルは、SAHAの使用に限定されるものではなく、角膜新生血管形成に対する可溶性化合物の効果を試験するための一般的な方法として推奨される。軽微な変更は、希釈の度合いだけでなく、周波数と印加時間のために作られる必要がある。また、水に容易に可溶​​性である化合物は、DMSOの非存在下で投与することができるようになる。 倫理的な声明：すべての動物実験は、国内法や制度の規制を遵守して実施されるべきである。このプロトコルは、チューレーン大学機関動物実験委員会で使用するために承認された。 1。材料の調製（使用順に） <ol><li> 2ミリメートルの円形にセルロース濾紙（11ミクロン）の部分をカット。 </li><li>で、NaOHの1Mの溶液を調製H 2 Oを500mlの蒸留中のNaOHを20g溶解室温で保管してください。注意：NaOHのソリューションは、腐食性であり、アルカリ火傷を引き起こす可能性があります。 </li><li> 100 mg / mlのケタミンおよび20 mg / mlのケタミンおよび4 mg / mlのキシラジンの最終濃度のために1X PBSを37.5ミリリットル中20 mg / mlのキシラジンの2.5ミリリットルの10ミリリットルを希釈することにより麻酔薬のカクテルを用意してください。 </li><li>濾過PBS 100mlにプロパラカイン塩酸塩500mgを溶解することによって（局所鎮痛のため）プロパラカイン塩酸塩の0.5％溶液を調製する。 </li><li> 8グラムのNaCl、KClを0.2グラム、1.44グラムのNa 2 HPO 4、蒸留H 2 Oの900ミリリットルのNaH 2 PO 4の0.23グラムを溶解することにより1X PBSを準備7.4のpHに調整する。無菌性を確保するために、 蒸留水とフィルターとの千ミリリットルの最終容量に解決策をもたらす。 </li><li> 1mlのDMSOにSAHAの26.4ミリグラムを溶解させて、ジメチルスルホキシド（DMSO）に〜100mmとSAHAの千Xストック溶液を準備します。 1Xに希釈（〜10μM）それぞれの使用のために濾過したPBS中でソリューションを提供します。最大1ヶ月間-20℃で保存溶液を保管してください。注意：DMSOは、既知の毒素や変異原である。 </li><li>固定用のホルムアルデヒド（PFA）の4％溶液を調製します。化学フードの下で、PBSを90mlに、PFAの4グラムを溶解する。 65℃まで混合物を持参し、7.4のpHに滴定する。 PFAを溶解した後、最終容量100mlの溶液をもたらす。最長1ヶ月間、4℃で保存してください。注意：PFAは、アレルギー性​​の発ガン性、および毒性があることが知られている。 </li><li> PBS 94.5中へヤギ血清およびTriton X-100500μlの5mlの希釈することにより、ブロッキング緩衝液または1x調製する。 </li><li> PBSを99.5ミリリットルにトリトンX-100の500 ulの希釈することにより1X洗浄バッファーを準備します。 </li></ol> 2。傷害·物の処理にアルカリバーン<ol><li> 1 MのNaOH溶液中に、直径〜2mmの濾紙のラウンド片を浸す。 </li><li> WH、100 mg / kgのケタミンおよび5 mg / kgのキシラジンの注射でマウスを麻酔ICHは、25グラムのマウスあたりのステップ1.3からの麻酔カクテル〜100μlである。麻酔は麻酔が無応答でなければなりません十分であれば、静かに動物の足指や尾をつまんで決定することができる〜麻酔深度インチに設定する1〜2分を取る必要があります。注意：お手入れは、マウスが麻酔誘発性低体温症に屈するしないように注意する必要があります。 </li><li>スポイトツールを使用して、局所的に地元の鎮痛のため角膜表面に0.5％プロパラカイン塩酸の滴を適用します。 </li><li>滅菌ピンセットを使用して、NaOHを浸した濾紙を拾う。あなたは過剰NaOHをにしがみついたり、ろ紙から滴下気付いた場合は、簡単に過剰を吸収するために、ろ紙の乾燥片に浸したろ紙をタップします。角膜中央部にNAOH浸した濾紙を置きます。エリア内の〜2×2ミリメートル2の急性アルカリ火傷を発生させる30秒間そのままにしておきます。手術用顕微鏡は、適切に、ろ紙を置くのに役立ちます。注：マウスの​​Sの片目だけをhouldは、他のコントロールとして機能してけがをする。 </li><li>フィルター紙を取り除きます。 10ミリリットルの注射器を使用して、静かに残留1MのNaOHを洗い流し回1X 10mlのPBSで目を洗い。 </li><li>すぐに角膜に局所1X SAHAのドロップ作業溶液（またはSAHAを含まないPBSで希釈し、DMSOからなる車両制御）を適用。 14日間、アプリケーション1日3回を繰り返します。注：それは傷害の開発や化合物の送達を妨げる可能性として、この期間中に局所抗生物質軟膏はお勧めできません。代わりに、このような3％ゲンタマイシン液などの液体抗生物質溶液を使用してください。 </li><li>臨床的評価（以下のプロトコール3）に直接進むか、マウスを犠牲にして、角膜のフラットマウント（プロトコール下記4）または従来のパラフィン/冷凍組織学のために目を脱核。 </li></ol> 3。臨床的評価<ol><li>手術用顕微鏡下で盲検法でマウスの毎日の検査を行うとCスコア角膜混濁、ネバダ、容器の大きさに基づいてornealネバダ州。少なくとも2オブザーバーを使用し、2の平均である最終的なスコアを記録。 <ol><li> 0-4の規模で角膜混濁スコア。 0 =完全にクリア; 1 =わずかに曇っ、虹彩と瞳孔見やすい。 2 =わずかに不透明、虹彩と瞳孔依然として検出;ほとんど検出3 =不透明、生徒;と瞳孔の無い景色を完全に不透明4 =。 </li><li> 0-3の規模でネバダ州のスコア。 0 =いいえ新生血管;角膜輪部の1 =新生血管; 2 =新生血管、角膜輪部に及ぶと角膜中心に近づく。角膜中心にまたがる3 =新生血管。 </li><li> 0-3の規模で船舶のサイズをスコア。 0 =いいえ新生血管;手術用顕微鏡下で検出可能な1 =新生血管;簡単に手術用顕微鏡下で見る2 =新生血管;簡単に顕微鏡なしで見られる3 =新生血管。 </li></ol></li><li>デジタルカメラを使用して、7日と14日に、目の代表的な画像を取る。 </li></ol> 4。角膜染色とフラットマウント<ol><li> 4℃で少なくとも1時間、4％PFA中で除核の目を修正しました。 </li><li> PBSを1Xと慎重に余分な組織を除去するために鉗子を使用するように目を移す。 </li><li>手術用顕微鏡を用いて、（これは、目から流体を解放する必要があります注意してください）​​、目の角膜周囲領域に穿孔する針（18ゲージ）またはマイクロナイフを使用しています。 <ol><li>セクション4.3.1で行われたミシン目からの後方部分から目（角膜）の前方部分をカットする外科はさみを使用しています。 </li></ol></li><li> 4℃で一晩固定のために戻って、4％PFA中に角膜を転送</li><li> 4％PFA（注意：PFAは危険ですと制度の規制に従って、廃棄しなければならない）を破棄し、残留PFAを除去するために、1X PBSで角膜を3回すすいでください。 </li><li>組織を透過性にし、一次抗体の非特異的結合を防止するために室温で少なくとも2時間、1×ブロッキング緩衝液中でインキュベートする。。 <ol><li> 100〜500倍希釈で、1×ブロッキングバッファーで一次抗体を適用します。マクロファージを検出するための（1:100で血管を検出するための例えば 、ラット抗マウスPECAM-1、1:500でリンパ管を検出するためのウサギ抗マウスLYVE-1、および/ ​​またはラットanti-mouse-F4/80 1:100）。 4℃で一晩インキュベートする。 </li><li>完全に非結合一次抗体を除去し、室温で各回1時間、1×洗浄バッファーで6回洗浄する。 </li><li> 1Xは500〜1,000倍希釈でブロッキング緩衝液中で二次抗体を適用します。 （ 例えば 488 nmの蛍光は1:800でヤギ抗ラットIgGとタグ付きまたは594 nmの蛍光は1:800でヤギ抗ウサギIgGとタグ付けされた）。 4℃で一晩インキュベートする。 </li><li>完全に未結合の二次抗体を除去し、室温で1時間毎に1×PBSで3回洗浄する。 </li></ol></li><li>新鮮な1X PBSに角膜を転送して、手術用顕微鏡を用いて、慎重にセントに向けて周囲から4切開を作るER。これは、ほぼ等しい大きさの4つの象限に角膜を分割（その結果、形状がかなり蝶のようになります）で、それをスライドに平らにできるようにする必要があります。 </li><li>蛍光イメージングのための封入剤の適切でマウントします。最適な結果を得るために、サンプルは直ちに画像化されるべきであり、デジタル写真を撮影するが、4℃で光から保護して数週間保存することができる</li></ol>

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</ol>

著者らは、開示することは何もありません。

ここで紹介するプロトコルは、これらの3（相互に）プロセスを研究するための理想的なシステム作り、hemangiogenesis、リンパ管、および炎症の再現可能なレベルになる。この方法は、集中角膜NVを生成するが、より多くの監督ネバダ、すなわち角膜17の縫合、ペレット18を表現移植し、成長因子を引き起こすために開発されているいくつかの方法が、また、関心があるかもしれない。我々のプロトコルはまた、大型の哺乳動物のためまだ利用できません分子·遺伝子組換え技術のホストを最大限に活用するために実験室を可能にしながら、動物モデルを使用して簡単に提供し、成体マウスで使用するために設計されています。上記のプロトコルおよび代表的な結果を詳細C57BL/6Jバックグラウンド上でマウスの使用。アルビノマウスはまた、適切であろうと、容易に画像化を提供することができる;しかし、最近の研究では、アルビノマウスの新生血管応答は19ほど劇的ではないかもしれないことを示している。さらに、いくつかのとは異なり、他の血管新生モデルは、角膜NVは、手術用顕微鏡を通して、あるいは肉眼で検査して採点することができる。...

角膜失明はすべてのケース1の約4％に責任失明の第四の最も一般的な原因です。角膜血管新生（NV）は、ヘルペス性角膜炎（西の失明の主な感染原因）とトラコーマ（世界的な感染失明の主な原因）2を含むこれらの病態の多くの重要な役割を果たしている。現在の治療は、ステロイド、非ステロイド性抗炎症薬（NSAID）、抗VEGF療法と同様に従来のまたはレーザ手術技術3シクロスポリン Aを含む。しかし、角膜NV基づく病状の深刻な衰弱性質上、外科角膜NVを治療することができる施設、好調理学的選択肢の欠如の不足は、現存の治療法にもかかわらず、それを締結する基本的な医療ニーズを、最近の専門家の円卓会議を主導これらの病理によって提示されたが4満たされていないままです。 ヒトの角膜5層、3細胞層（上皮細胞、間質および内皮）および2インターフェイス（ボーマン膜とデスメ膜）で構成されています。それは、目には機械的な障壁や屈折面として機能します。その透明な性質は、その構成要素の微妙なバランスの結果であり、その適切な機能5に不可欠である。通常は無血管、角膜は毛様体および眼動脈から供給され、その外縁に沿って実行されている微小血管から血液を受け取る。刺激が彼らが角膜の中心に向かって成長し、そのためのビジョン6を制限することができ、これらの血管の新生を促進する際の角膜NVが発生します。角膜血管新生は、角膜の中心に向かって輪部血管アーケードからの血管やリンパ管の内部成長につながる、これhemangiogenesisやリンパ管が含まれています。これは角膜の「血管新生の特権」、角膜混濁および線維症の増加、角膜LAの崩壊の崩壊につながるyers、および浮腫7。角膜NVの正確なトリガーは数多くあり、そのような化学的に誘発された状態へのトラコーマなどの感染性疾患に対する応答に至るまで、伝統的な医薬品、工業薬品、さらには化学兵器を引き起こした。 このプロセスの分子メカニズムは、まだ、完全に特徴付けられていない。しかし、いくつかの重要な選手が同定されている。通常の条件下では、角膜（例えば、可溶性VEGF-R1のような）抗血管新生因子8の冗長アレイによって維持されるユニークな「血管新生特権&#39;有する。しかし、（このような損傷のような）外部刺激に反応して、血管新生促進因子（ 例えば VEGF-A）の局所的なアップレギュレーションがあるでしょう。これは、先端角膜の血管新生特権の根底炎症および抗血管新生因子のバランス、従って角膜の病理及び失明さえ9を引き起こし、hemangiogenesis、lymphangeogenesis、および炎症をもたらす。 &lt;Pクラス= &quot;jove_contentは&quot;&gt;この非常に衰弱させる病理学の満たされていない医療ニーズを考えると、角膜NVの信頼できる動物モデルを持っている分野に関心がある。制御アルカリ火傷：ここでは、そのようなモデルを提示する。濾紙環の使用に基づく様々な眼損傷モデル1970 10が使用されてきた。 1989年には、ハーバード大学医学部の眼科医のグループは、水酸化ナトリウム（NaOH）の円形濾紙を浸漬し、特定の範囲の角膜にそれを適用することに基づいてウサギ角膜中央アルカリ火傷の標準モデルを特徴づけ濃度11。それ以来、この技術は、マウス12-14での使用に適合されている。最近では、王の研究室では、マウスの角膜アルカリ火傷モデル15を使用して角膜NVの病因におけるヒストン脱アセチル化酵素（HDAC）阻害剤SAHAの治療効果を検討した。ここで紹介するマウスの角膜アルカリ火傷モデルの方法論は、建設されました主に2他の論文14,16の前の仕事に。

<table><tbody><tr><td>1 ml シリンジ</td><td>BD</td><td>309659</td><td></td></tr><tr><td>18 G ニードル</td><td>BD</td><td>305918</td><td></td></tr><tr><td>10 ml シリンジ</td><td>BD</td><td>306575</td><td></td></tr><tr><td>25 G ニードル</td><td></td><td>BD 305916</td><td></td></tr><tr><td>抗 F4/80 (ラット抗マウス)</td><td>AbD セロテック</td><td>MCA497RT</td><td></td></tr><tr><td>抗 LYVE-1 (ウサギ抗マウス)</td><td>Abcam</td><td>ab14917</td><td></td></tr><tr><td>抗PECAM-1(ラット抗マウス)</td><td>BD</td><td>553370</td><td></td></tr><tr><td>抗IgG Alexa 488(ヤギ抗ラット)</td><td>Invitrogen</td><td>A11006</td><td></td></tr><tr><td>抗IgG Alexa 594(ヤギ抗ウサギ)</td><td>Invitrogen</td><td>A11012</td><td></td></tr><tr><td>カメラ</td><td>Tucsen</td><td>TCC 5.0 ICE</td><td></td></tr><tr><td>カバースリップ</td><td></td><td>Fisher 12-548-B</td><td></td></tr><tr><td>DMSO</td><td>Sigma</td><td>D4540-1L</td><td>注意:変異原性、毒性</td></tr><tr><td>鉗子(鈍い)、虹彩</td><td>WPI</td><td>15915</td><td></td></tr><tr><td>鉗子(シャープ)、デュモン#4</td><td>WPI</td><td>500340</td><td></td></tr><tr><td>KCl</td><td>Fisher</td><td>P217-500</td><td></td></tr>ケ<tr><td>タミン溶液</td><td>MedVet</td><td>RXケタミン</td><td>規制物質、使用には適切なライセンスが必要です。</td></tr><tr><td>顕微鏡用光源</td><td>AmScope</td><td>LED-14M-YA</td><td></td></tr><tr><td>顕微鏡 (ステレオ 7X-45X)</td><td>AmScope</td><td>SM-1B</td><td></td></tr><tr><td>封入剤 VECTASHIELD</td><td></td><td>ベクター H-1000</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Fisher</td><td>S271-10</td><td></td></tr><tr><td>NaH2PO4</td><td>Fisher</td><td>S397-500</td><td></td></tr><tr><td>NaOH</td><td>フィ</td><td>ッシャーS318-1</td><td>注意:腐食性</td></tr><tr><td>パラホルムアルデヒド</td><td></td><td>P6148-500G</td><td>注意:アレルギー性、発がん性、毒性</td></tr><tr><td>プロパラカイン塩酸塩</td>シ<td>グマ</td><td>P4554-1G</td><td></td></tr><tr><td>はさみ(5mmブレード)、バナス</td><td></td>WPI14003<td></td><td></td></tr><tr><td>ヤギ血清</td><td>MPBio</td><td>92939249</td><td></td></tr><tr><td>顕微鏡スライド</td><td>フィッシャー12-550-15</td><td></td><td></td></tr><tr><td>トリトンX-100</td><td>シグマ</td><td>T8787-100ML</td><td></td></tr><tr><td>ワットマングレード1フィルターペーパー</td><td>ワットマン</td><td>1001-6508</td><td></td></tr><tr><td>キシラジン溶液</td><td>MedVet</td><td>RXANASED-20</td><td></td></tr></tbody></table>

マウス角膜血管新生のアルカリ熱傷損傷モデル

An Alkali-burn Injury Model of Corneal Neovascularization in the Mouse

通常の条件下では、角膜は無血管であり、この透明性が良好な視力を維持するために不可欠である。外傷、角膜移植や感染症が原因で発生することができ、角膜の新生血管形成（NV）は、角膜のいわゆる「血管新生の特権」を分解し、さらには失明につながる可能性があり、複数の視覚的な病理の基礎を形成します。利用可能ないくつかの治療の選択肢がありますが、角膜新生血管の病変によって提示された基本的な医学的必要性が満たされていないままです。 、安全で、有効で、標的療法を開発するために、角膜NVおよび薬理学的介入の信頼性のあるモデルが必要である。ここでは、マウスにアルカリ火傷角膜新生血管形成モデルについて説明します。このプロトコルは、角膜、興味のある薬理学的化合物を投与し、その結果の可視化への制御されたアルカリ火傷を適用するための方法を提供する。この方法は、instrumen証明することができた角膜NVと他の血管新生性疾患に介入するためのメカニズムと機会を研究するためのTAL。

アルカリ熱傷後、角膜NVは、予測可能な、時間依存的に発生します。1は 、未処理の動物（ 図1A）とHDAC阻害剤SAHA（ 図1Bで処理された動物の間での血管新生および角膜混濁の両方でスタークの違いを実証している）7日の時点で。 図2Aおよび2Bは 、一次PECAM-1とLYVE-1染色および二次のAlexa®488および594染色（それぞれ）で処理していない対照眼の角膜のフラットマウントを証明は2Cおよび2Dは ​​毎日処置した眼で同じ染色を示し HDAC阻害剤SAHAは、hemangiogenesisやリンパ管の両方の劇的な減少に注意してください。 図3Aと図3Bは、2...

角膜の新生血管形成（NV）は、複数の視覚的な病状を複雑にする可能性がある。制御、アルカリ火傷モデルを利用して、角膜NVの定量化可能なレベルは、血管新生性疾患のための潜在的な治療法の角膜NVと評価のメカニズムの研究のために製造することができる。

Under normal conditions, the cornea is avascular, and this transparency is essential for maintaining good visual acuity. Neovascularization (NV) of the ...

本実験の全体的な目的は、角膜新生血管のマウスモデルにおいて抗血管新生療法の効果を観察することです。これは、1 molarの水酸化ナトリウム溶液をマウスの眼に短時間適用し、制御されたレベルの角膜新生血管を誘発させることで達成されます。次に、抗血管新生化合物を毎日投与し、損傷した角膜への新しい血管の増殖を抑制します。次に、マウスを安楽死させ、損傷した眼球を採取・解剖し、免疫染色を行います。新生血管形成および炎症のレベルを定量化した結果、臨床観察と免疫染色の両方において、新生血管形成の定量的な減少が認められました。この手法は、新しい化合物や治療法をテストするための再現可能な新生血管形成レベルを提供するため、角膜失明に対する新たな治療法への展開が期待されます。したがって、本手法は病的な角膜新生血管に関する洞察を提供することができます。また、血管新生および炎症全般のメカニズムを探索するためのモデルとしても利用可能です。私の研究室では、アルカリ火傷傷害の準備として、この手順の実演を行う予定です。まず、直径約2 mmの円形のフィルターペーパーを1 Mの水酸化ナトリウム溶液に浸します。次に、マウスにケタミン100 mg/kgおよびキシラジン5 mg/kgを注射して麻酔をかけます。1〜2分後、動物のつま先または尾を軽くつまんで反応がないことを確認し、麻酔深度をテストします。スポイトを用いて0.5%propane hydrochlorideを眼球の角膜表面に点眼し、局所麻酔を行います。その後、マウスを手術顕微鏡下に配置します。次に、滅菌鉗子を用いて水酸化ナトリウムに浸したフィルターペーパーを取り出し、顕微鏡で確認しながら、角膜中央にフィルターペーパーを配置します。約2×2 mm²の急性アルカリ焼灼を惹起させるため、そのまま30秒間放置します。マウスのもう一方の目は損傷させていないため、内部コントロールとして用います。ろ紙を取り除いた後、シリンジを使用して10 mLの1×PBSで眼球を2回優しく洗浄し、残留している1 M水酸化ナトリウムを洗い流します。洗浄後、直ちに1×Saha作動溶液を角膜に局所的に1滴滴下します。コントロールマウスでは、この投与を1日3回、14日間繰り返します。アルカリ火傷後、PBSで2回すすぎ、Sahaを含まないPBS希釈DMSOを14日間毎日投与します。この2週間の期間中、Saha投与群とコントロールマウスの両方に、3%ゲンタマイシン溶液を毎日投与します。臨床評価は、手術用顕微鏡を用いて、盲検法によりマウスを毎日検査することで行います。少なくとも2人の観察者が評価を行い、その2人のスコアの平均値を最終スコアとして記録します。角膜混濁を0から4のスケールでスコア化し、0を完全に透明、1を虹彩と瞳孔が視認できる程度のわずかな混濁とします。2点はわずかに不透明で

an-alkali-burn-injury-model-of-corneal-neovascularization-in-the-mouse

Research

JoVE Journal

Medicine

医学

このプロトコルでは、マウスの眼球の表面に耐摩耗性を与えるし、創傷の治癒過程をその後に従うメソッドについて説明します。ハイパーカプニア...

角膜上皮摩耗眼はりのモデルとして角膜創傷治癒

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このプロトコルはマウスのアルカリの焼跡誘発されたcorneal neovascularizationに焦点を合わせる。この方法は、病理学的血管新生と関連する分子メカニズムを研究し、角膜血管新生を予防するための新しい薬理学的薬剤をテストするための、再現性と制御性のある角膜疾患モデルを生成します。...

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マウスモデルにおけるパンチトレフィン法を用いた角膜および辺縁部のアルカリ損傷誘導

ここで説明されている腎虚血再灌流障害のマウスモデルは、制御組織を提供する右腎摘出術と、急性腎障害をもたらす虚血を誘発するための左腎椎弓根のクランプで構成されています。このモデルは、正中線開腹術アプローチを使用しており、すべてのステップが 1...

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ここでは、マウスレーザー誘導性脈絡膜新生血管(CNV)プロトコル、つまり血管新生加齢黄斑変性症(AMD)の血管特性を再現する実験モデルを紹介します。習得すれば、CNVをモデルシステムとして確実かつ効果的に誘導し、さまざまな実験手段を試験することができます。...

レーザ誘起脈絡膜血管新生のためのマウスモデル

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片性および反復性軽度外傷性脳損傷のマウスモデル

虹彩新生血管、網膜虚血性疾患の一般的な合併症は、血管新生緑内障の視力を脅かす可能性があります。ここでは、血管新生調節物質の非侵襲的評価に使用するかもしれない実験虹彩血管新生を誘導するためのマウス...

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ワイヤー図法を使用してマウスの腸間膜動脈の等尺性収縮力測定

本研究では、レーザー レーザースペックル コントラスト...

ひと歯肉移植血管新生を監視への新しいアプローチ

学ぶマウス角膜血管新生のアルカリ熱傷モデルによる抗血管新生療法の効果評価法。免疫染色と臨床観察で定量化し、角膜疾患の新規治療開発に応用可能な再現性の高い実験系を構築します。

マウス角膜血管新生のアルカリ熱傷損傷モデル

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