Method Article

Двухслойный сотрудничества культуре первичных Крыса корковых нейронов и глии

DOI:

10.3791/3257

November 12th, 2011

In This Article

Summary

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Здесь мы предлагаем протокол для культивирования нейронов коры крысы в ​​присутствии глиальных слой подачи. Культурный нейронов установить полярность и создать синапсов, и может быть отделена от глии для использования в различных приложениях, таких как электрофизиологии, кальция изображений, анализы выживаемость клеток, иммуноцитохимия, и РНК / ДНК / белок изоляции.

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Это видео проведет вас через процесс культивирования нейронов коры головного мозга крысы в присутствии глиального питающего слоя, системы, известной как биламинар или модель совместного культивирования. Эта система подходит для различных экспериментальных нужд, требующих либо стеклянного, либо пластикового субстрата для выращивания, а также может быть использована для культивирования других типов нейронов.

Нейроны коры головного мозга крысы, полученные на поздней эмбриональной стадии (E17), наносятся на стеклянные покровные стекла или чашки для культуры тканей, обращенные к питающему слою глии, выращенной на чашках или пластиковых покровных накладках (известных как Thermanox) соответственно. Выбор между двумя конфигурациями зависит от конкретной используемой экспериментальной техники, которая может требовать или не требовать, чтобы нейроны выращивались на стекле (например, визуализация кальция в сравнении с вестерн-блоттингом). Глиальный питательный слой, обогащенная астроглией вторичная культура смешанной глии, получают отдельно из коры новорожденных крысят (P2-4) перед рассечением нейронов.

Основным преимуществом этой системы культивирования по сравнению с культурой только нейронов является поддержка роста, выживания и дифференцировки нейронов, обеспечиваемая трофическими факторами, секретируемыми глиальным фидерным слоем, который более точно напоминает среду мозга in vivo. Кроме того, кокультура может быть использована для изучения нейронально-глиальных взаимодействий1.

В то же время, загрязнение глии в нейрональном слое предотвращается различными способами (культура низкой плотности, добавление ингибиторов митоза, недостаток сыворотки и использование оптимизированной питательной среды), что приводит к практически чистому нейронному слою, сравнимому с другими установленными методами1-3. Нейроны могут быть легко отделены от глиального слоя в любое время во время культивирования и использованы для различных экспериментальных приложений, начиная от электрофизиологии4, клеточной и молекулярной биологии5-8, биохимии5, визуализации и микроскопии4,6,7,9,10. Первичные нейроны удлиняют аксоны и дендриты, образуя функциональные синапсы11, процесс, который не наблюдается в нейрональных клеточных линиях, хотя некоторые клеточные линии удлиняют эти процессы.

Подробный протокол культивирования нейронов гиппокампа крысы с использованием этой системы совместного культивирования был описан ранее4,12,13. Здесь мы подробно описываем модифицированный протокол, подходящий для корковых нейронов. Поскольку из каждого эмбриона крысы извлекается примерно 20x106 клеток, этот метод особенно полезен для экспериментов, требующих большого количества нейронов (но не связанных с высокой однородностью популяции нейронов). Подготовка нейронов и глии должна быть спланирована в зависимости от времени. Мы предоставим пошаговый протокол культивирования нейронов коры головного мозга крысы, а также культивирования глиальных клеток для поддержки нейронов.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. Глия Dissection (~ 2 недели до покрытия нейронов)

  1. Чтобы подготовиться к месту вскрытия стерильной инструменты в 70% этанола, добавляют 4 мл холодной среды вскрытия до 60 блюд мм (одно блюдо на головной мозг), и место 2,5% трипсина и ДНКазы на льду таять (см. подробную информацию о хирургических инструментов в таблице VI ).
  2. Используйте большие ножницы, чтобы обезглавить 2-4 дневных щенков и места головы в 100 мм стерильную чашку.
  3. Для использования средне ножницы, чтобы вырезать средней линии через кожу и отступить кожи подвергать черепа. Используйте изогнутые ножницы, чтобы вырезать средней линии и две боковые разрезы через череп, не ....

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Этот протокол обеспечивает метод культивирования крысы первичных корковых нейронов в присутствии клетки глии, позволяя при этом нейроны, чтобы быть легко выделен экспериментальный анализ. Развитие глии поддержку здорового нейронов фенотипа, а также модулирующих нейронов ответы на экспериментальных процедур в физиологически соответствующим образом. Кроме того, по пассажей первичной глии до культивирования с нейронами этой клеточной популяции становится выборочно обогащенный астроцитов, тем самым предотвращая воспалительн.......

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Нет конфликта интересов объявлены.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Авторы выражают благодарность предыдущих членов лаборатории, которые способствовали уточнению этого протокола, и НИЗ для поддержки в течение года (DA19808 и DA15014 к ОМ). Анна Abt 1 является членом "Междисциплинарные и трансляционных подготовки научных кадров в neuroAIDS" (T32-MH078795), таким образом, эта работа была выполнена при частичной поддержке Национального института здоровья под Рут Л. Kirschstein Национальный исследовательский Service Award 5T32MH079785.

....

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Cook, A. Interactions between chemokines: regulation of fractalkine/CX3CL1 homeostasis by SDF/CXCL12 in cortical neurons. J. Biol. Chem. 285, 10563-10563 (2010).
  2. Nicolai, J., Burbassi, S., Rubin, J., Meucci, O.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Bilaminar Co culturePrimary NeuronsGlial Feeder LayerRat Cortical NeuronsNeuronal Glial Co cultureCortical Neuron CultureGlial Cell CultureNeuronal IsolationNeuron Glia InteractionPrimary Cell Culture

Related Articles