הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

הדמיה לא פולשנית של דחיית שתל חריפה לאחר השתלת כליה באמצעות חולדה

16.5K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/4240

⸱

28 באפריל 2013

* These authors contributed equally

במאמר זה

סיכום

אנחנו בזאת להציג מודל חולדה להשתלת כליה הלא פולשני להעריך דחיית שתל אקוטית באמצעות טומוגרפיה פליטת פוזיטרונים עם 18F-fluorodeoxyglucose.

תקציר

מספר החולים עם מחלת הכליה סופנית, ומספר מקבלי שתל בכליות מגדילים ברציפות. פרקים של דחיית שתל תאית חריפה (AR) הם גורם מנבא שלילי להישרדות שתל לטווח ארוך, ובמועד האבחנה שלו היא קריטית לתפקוד שתל 1. נכון לעכשיו, AR ניתן בהחלט מאובחן רק על ידי ליבת מחט ביופסיה, שכשיטה פולשנית, חושפת סיכון משמעותי של פגיעת שתל או אפילו הפסד. יתר על כן, ביופסיות הן לא ריאלי בחולי נוטלי תרופות נוגדות קרישה ואתר הדגימה המוגבלת של טכניקה זו עלולה לגרום לתוצאות שליליות שגויות אם AR הוא מוקד או בלתי סדיר. כתוצאה מכך, זה שהוליד את חיפוש מתמשך לשיטות זיהוי AR החדשים, אשר לעתים קרובות צריכה להיעשות בבעלי חיים, כולל שימוש במודלים שונים להשתלה.

מאז תחילת שנות ה -60 עכברוש השתלת הכליה היא שיטה ניסיונית מבוססת היטב לexamination וניתוח של AR 2. אנו מציגים בזאת בנוסף פליטת פוזיטרונים חיה קטנה פוזיטרונים (PET) באמצעות 18-F-fluorodeoxyglucose (FDG) כדי להעריך את AR במודל השתלה אלוגנאית uninephrectomized חולדת כליות ולהציע הדמיה FDG-PET שתל כאפשרות חדשה עבור לא פולשנית, ספציפית והאבחון המוקדם של א.ר. גם למצב האנושי 3. יתר על כן, בשיטה זו ניתן ליישם לצורך המעקב כדי לשפר את הניטור של דחיית השתלת 4.

פרוטוקול

1. שחזור איברים תורם

  1. להגדיר את המיקרוסקופ stereotactic, שיא המשקל של העכברוש הזקן 8-10 השבוע (תורם ומשקל גוף נמען צריך להתאים).
  2. הרדימי עכברוש התורם (לואיס בראון נורבגיה F1, LBN F1) תוך שימוש בחמצן / שאיפת isoflurane (4% / / חמצן isoflurane 2 ליטר דקות). לשמור על הרדמה על ידי הורדת isoflurane ל2-2.5%.
  3. מניחים את החולדה מורדמת על כרית הניתוח. תקן את הגפיים של העכברוש עם דבק על הכרית ולהחיל משחת עיניים (Bepanthen, באייר) לעיניו של העכברוש.
  4. לגלח ולחטא את הבטן של החולדה ולבצע חתך קו האמצע הגחון מהחיק לגבול הזנב של הכבד. לחשוף את הכליה השמאלית וכליו על ידי העברת המעי בזהירות לצד ימין. מניחים יריעה דקה של גזה על הכליה השמאלית וללחלח אותו עם תמיסת מלח איזוטוני חימם כדי למנוע התייבשות.
  5. בזהירות לנתח את רקמת השומן עם מלקחיים קצה בזווית דומון (SS-דומוןמלקחיים 45 Inox רפואי, כלים מדע פיין, cat.no. 11,203-25) העוטף את השופכן השמאלי. הימנע מכל מגע ישיר עם שופכן, במקום זאת, לגייס אותו עם רקמת שומן סביב מספיק.
  6. הפרד את וריד הכליה השמאלי מעורק הכליה באמצעות מלקחיים עצה בזווית דומונט. הסר את כל רקמות שומן וחיבור משני כלי ולצרוב את כלי יותרת הכליה ואשכים.
  7. לנתח אב העורקים ווריד נבוב נחות (IVC) מעל ומתחת לצומת עם עורק הכליה השמאלי ווריד, בהתאמה, ולצרוב את כל העורקים היוצאים.
  8. הצמד את אב העורקים suprarenal עם מהדק microsurgical (המייקר Serrefines, כלים מדע פיין, cat.no. 18,055-04) מעל לעורק הכליה השמאלי, קרוב ככל האפשר לעורק mesenteric מעולה. ולקשור את אב העורקים באמצעות infrarenal משי כירורגית (5-0, Vömel, לא אמנות. 14739) כ 5 מ"מ מתחת לעורק הכליה השמאלי.
  9. לקשור IVC infrarenal עם משי כירורגית (5-0, Vömel), ומהדק את IVC suprarenalעם מהדק microsurgical (Serrefines מיקרו, כלים מדע פיין, cat.no. 18,055-03).
  10. חותכים את וריד הכליה קרוב ככל האפשר לIVC באמצעות מספריים עדינים (איריס מספריים - 11.5 ס"מ ToughCut סטרייט, כלים מדע פיין, cat.no. 14,058-11).
  11. לאט perfuse הכליות באתרו עם פתרון 2 מ"ל קר כקרח HTK זלוף (CUSTODIOL HTK, ד"ר פרנץ קוהלר Chemie) על ידי החדרת canula (Microlance 3 27G ¾, BD, cat.no. 302,200) באב עורקי infrarenal. ודא ששינויי צבע הכליות (עכשיו שחמחם).
  12. ראשית, transect אב העורקים suprarenal, ולאחר מכן אב העורקים infrarenal ולבסוף שופכן הקרוב ככל האפשר לשלפוחית ​​השתן.
  13. הסר את הכליות ואספקת הדם שלו, יחד עם השופכן והחנות בפתרון זלוף HTK על קרח.
  14. להרדים את עכברוש התורם על ידי הסרת את מהדק של כלי הדם והכריתה ברציפות של הלב תחת הרדמה.

2. נמען הכנה וTransplantation

  1. להגדיר את המיקרוסקופ stereotactic, שיא המשקל של החולדה.
  2. הרדימי עכברוש הנמען (לואיס) באמצעות 4% isoflurane. לשמור על הרדמה על ידי הורדת isoflurane ל2-2.5%.
  3. מניחים את החולדה מורדמת על כרית הניתוח. תקן את הגפיים של העכברוש עם דבק על הכרית ולהחיל משחת עיניים לעיני עכברוש `s. טמפרטורת גוף ליבה לפקח ולשלוט באמצעות חיישן טמפרטורה רקטלית וכרית חימום. במהלך ניתוח שוב ושוב לשלוט בטמפרטורה, נשימה וקצב לבו של בעל החיים.
  4. לגלח ולחטא את הבטן ולבצע חתך קו האמצע הגחון מהחיק לגבול הזנב של הכבד. השתמש forcutting אזמל העור על מנת למזער טראומת עור. לחשוף את הכליה השמאלית וכליו על ידי הזזת המעי לצד ימין.
  5. להסיר את הקפסולה הכליות באמצעות מלקחיים עצה בזווית דומון וצמר גפן בזהירות.
  6. לחסום את עורק הכליה השמאלי, ושופכן וריד בסמוך לכליותhilum עם שתי ligations באמצעות חוט כירורגית (Mersilene 4-0, Ethicon, חתול. לא. EH6732H). בלו חלק גדול יותר של הכליות, ומשאיר רק את hilum הכליות. נקה את פני השטח החתך עם צמר גפן ולבדוק לדימום. הוסף מייתר אחר במידת צורך.
  7. זהירות לנתח בוטות דרך רקמת חיבור המכסה את אב העורקים ווריד הנבוב infrarenal באתר הזנב עם צמר גפן.
  8. הפרד כל עצבים גלויים מאב העורקים ווריד הנבוב infrarenal באמצעות מלקחיים עצה בזווית דומונט.
  9. לנתח בזהירות מבעד לסדין רקמת חיבור בין אב העורקים ווריד הנבוב infrarenal, ויצר שני פתחים באורך 2-4 מ"מ: הראשונה מתחת להסתעפות של כלי האשכים, והשני מעל ההסתעפות של כלי הכסל המשותפים. לצרוב את העורקים וורידי iliolumbar שביניהם.
  10. צייר חוט כירורגית אחת (Mersilene 0;. Ethicon, חתול no.EH6665E) דרך כל אחד משני הפתחים. שימוש בנושאים אלה למשוך infrarenalאב העורקים ווריד נבוב בעדינות לצד ימינו של בעל החיים כדי לקבל גישה לכלי ההסתעפות באתר הגבי. לצרוב כל אחד מהכלים האלה בין שני הפתחים ולהסיר את החוטים כירורגית לאחר מכן.
  11. בשלב בא, אב העורקים ולחסום IVC על ידי יישום השעון של ארבעה מלחציים microsurgical (המייקר Serrefines, כלים מדע פיין, cat.no. 18,055-04) מתחילים בפתיחה העליונה עם אב העורקים וכלה בווריד הנבוב העליונה בפתיחה (המייקר Serrefines , כלי מדע פיין, cat.no. 18,055-03).
  12. לאחר מכן בזהירות פירס הסוף העליון של חלק המבודד של אב העורקים עם מחט (Microlance 3 27G ¾, BD, cat.no. 302,200), להכניס את הלהב התחתון של מספריים אביב נאה (מספריים אביב Vannas - 3 להבי מ"מ, פיין מדע כלים, cat.no 15,000-00) דרך הפתח לנקב ולבצע חתך אורכי קצר. לשטוף את אב העורקים מבודדים עם פתרון זלוף HTK קר כקרח כדי להסיר כל דם שנותר.
  13. כמו כן, בזהירות פירסהסוף התחתון של חלק המבודד של הווריד נבוב עם מחט, הכנס את הלהב התחתון של מספריים אביב נאה דרך הפתח לנקב ולבצע חתך אורכי שהסתיימו זמן קצר מתחת לחתך אב העורקים. שוב, שטוף את הכלי כדי להסיר כל דם שנותר.
  14. הסר את שתל הכליה מפתרון האחסון. הנח אותו מתחת לעמדה לשעבר של הכליה השמאלית, ולוודא שהיא מונחת בכיוון נכון.
  15. בדוק את הכיוון של עורק הכליה השתלים ולהבטיח שאין פיתולים. לאחר מכן הנח שכבה דקה של גזה על השתל וללחלח אותו עם פתרון זלוף HTK קר כקרח כדי לקרר אותו, ועל מנת למנוע התייבשות.
  16. לקבע את פתיחת חלק suprarenal של יצירת אב העורקים שבעורק הכליה של השתל פותח לעם חוט כירורגית (Ethilon 9-0, Ethicon, חתול לא 2809G..) - הראשונה בבית העליון, ולאחר מכן בקצה התחתון של חתך אב העורקים. סגירה החתך בכיוון השעון עם תפר מתמשך באמצעות חוט כירורגית(Ethilon 9-0), מלקחיים דומון בזווית עצה ובעל מחט Castroviejo מעוגל (כלים מדע פיין, חתול. לא. 12,061-01). לאחר מכן, לכסות את התפר הראשון עם רקמת חיבור דרך תפר מתמשך שני נגד כיוון השעון. עכשיו, רק את החלק התחתון של פיסת אב העורקים של השתל נותר סגור. באופן קבוע לקרר את השתל עם קר כקרח פתרון זלוף HTK.
  17. Perfuse השתל עם 1 מ"ל של קר כקרח פתרון זלוף HTK באמצעות מחט בוטה מוכנסת לתוך הקצה הפתוח של אב העורקים שתלי חתיכת אימות אטימות והיושרה של התפר, כמו גם הסרת דם שנותר בשתל. לאחר מכן, לקשור את הקצה הפתוח של אב העורקים עם חתיכת משי כירורגית (5-0, Vömel).
  18. בדוק את הכיוון של עורק הכליה שתלים ולהבטיח שאין פיתולים.
  19. לקבע את פתיחת הווריד של השתל עם חוט כירורגית (Ethilon 9-0) - ראשון בבית העליון, ולאחר מכן בקצה התחתון של החתך בווריד הנבוב. סגירה החתךבכיוון השעון עם תפר מתמשך באמצעות חוט כירורגית (Ethilon 9-0), מלקחיים עצה בזווית דומון ובעל מחט Castroviejo מעוקל. באופן קבוע לקרר את השתל עם קר כקרח פתרון זלוף HTK.
  20. נגד כיוון השעון להסיר את מהדק microsurgical, החל במהדק הווריד הנבוב העליון. לאחר הסרת מהדק אב העורקים שעבר, לעצור בזהירות סופו של דבר דימום קל עם צמר גפן. לאחר מספר שניות את השתל יהפוך ורודה כהה, והתכווצויות uretric אמורות להופיע.
  21. להחדרה שתלי של השופכן לתוך שלפוחית ​​השתן של נמען ג `להסיר תיקון קטן של השרירים בזהירות בחלק העליון של שלפוחית ​​השתן באמצעות מספריים אביב Vannas (כלים מדע פיין סטודנטים מספריים אביב Vannas ישר,, cat.no. 91,500-09 ). לאחר מכן, להסיר רקמות (בעיקר שומן) משופך השתל באמצעות מלקחיים עצה בזווית דומונט. לכן, בזהירות לתפוס את הקצה של השופכן ובעדינות להפריד את רקמת השומן, חיבור המקיף הלוך ושוב את כלי המשובציםמ 'אותו על ידי משייכתם בכיוון ההפוך. לקבע את קצה uretric בסוף חוט כירורגית (Prolene 6-0, Ethicon, חתול. לא. 8697H) ולנקב העליון הכין בעבר של שלפוחית ​​השתן עם המחט המצורפת. משוך את השופכן דרך שלפוחית ​​השתן ולצאת אותו בבסיס דרך נקב שני.
  22. לקבע בעבר מהשופכן מופרד רקמה בחלק העליון של שלפוחית ​​השתן עם חוט כירורגית (Ethilon 9-0). חותכים את הקצה של השופכן עם החוט כירורגית המצורף ולמשוך בחזרה השופכן לתוך שלפוחית ​​השתן על ידי בעדינות דוחף מלמטה. לאחר מכן, סגור את ניקור שלפוחית ​​השתן השני עם חוט כירורגית (Ethilon 9-0).
  23. סגור את הקיר ועור הבטן על ידי שני תפרים רצופים אך נפרדים באמצעות חוט תפירה כירורגית (Mersilene 0). לחטא את הפצע בעזרת יוד Pividon ולנהל עצירות (0.1 מ"ג לכל ק"ג / BW / הצעה) SC במשך שלושה ימים לאחר ניתוח כדי לשלוט בכאב פצע.

3. דחיית שתל הדמיה

  1. הרדימי עכברוש ללא צום באמצעות 2-2.5% isoflurane.
  2. 30 MBq FDG (30 MBq FDG ב0.1 מ"ל של 0.9% NaCl) מנוהל IV דרך catheterizing וריד זנב לרוחב באמצעות 24 G קטטר (בראון, Introcan, 4,252,500-01). לאחר מכן, לטהר את הקטטר עם פתרון NaCl 0.9% 0.9 מ"ל.
  3. השאר את העכברוש בעוצר ללא הרדמה עד תחילת הסריקה ומימה בעלי החיים על ידי הזרקת IV של 1 מ"ל של 0.9% NaCl פתרון לפי שעה.
  4. עכברוש מחדש הרדם באמצעות 2% isoflurane מייד לפני הסריקה מתחילה.
  5. הנח עכברוש הרדים ברזולוציה גבוהה המבוסס על תא מרובה חוט חי המחמד המצלמה quadHIDAC (אוקספורד פוזיטרונים מערכות בע"מ, אוקספורד, אנגליה). הרזולוציה מרחבית של סורק PET היא 1.0 מ"מ, והוא קבוע לאורך כל FOV (קוטר, 165 מ"מ, אורך צירי, 280 מ"מ). טמפרטורת גוף לפקח ולשלוט במהלך הסריקה באמצעות חיישן טמפרטורה רקטלית והרדמת שליטה עם oxymeter דופק.
  6. התחל רכישה דינמית עבור 60 מ 'בהתחלת 180 דקות לאחר הזרקת FDG-להפחית הצטברות נותב בכליות שנגרמו על ידי הפרשת כליות של FDG.
  7. החל 5 MBq של 18-F-IV פלואוריד ולבצע סריקת PET אחרת מייד לאחר הזרקת ה-F-18 פלואוריד למשך 60 דקות מבלי להזיז את מיקומו של העכברוש בסורק לזיהוי הכליות parenchyma ולחישוב ה-F-18 אישור 5. לשחזר תמונות משני הסריקות. מעקב באופן ידני נפח של עניין (VOI) על תמונות משוחזרות 2 דקות לאחר הזרקת ה-F-18 פלואוריד (זלוף שלב) סביב קליפת כליה ולהעביר את התמונות לVOI FDG. להוציא את אגן הכליה מVOI בזהירות. לשחזר תמונות משני הסריקות ולאתר באופן ידני נפח של עניין (VOI) סביב קליפת כליה. נתונים רשימה של מצב שוחזרו לתוך תמונות עם גודל voxel של 0.4 × 0.4 × 0.4 מ"מ 3. להוציא את אגן הכליה מVOI בזהירות.
  8. לחשב ספיגת FDG לפי היחס Of ספירה כלל ונפח ולחשב את אחוז החומר מוזרק (% ID). אנחנו השתמשנו MATLAB (גרסת R2011b, MathWorks, Natick, מסצ'וסטס, ארה"ב) והדמיה טומוגרפית גרסה (TIM) 2.8 לניתוח תמונה.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

היסטולוגיה

במהלך לויקוציטים AR, כלומר בעיקר לימפוציטים מגויסים להשתלה, ואילו את חומרת הדחייה מתבטאת במידה המסוימת של דלקת. בצביעה (PAS) תקופתית, חומצה שיף המתוארת כאן (איור 1), שתל הכליה מראה סימנים היסטולוגית משמעותיים של AR, כלומר glomerulitis, tubulitis, endothelialitis וחדירת השתל (איור 1, ATX POD4) (POD = יום לאחר ניתוח) בעוד סימנים של דחייה נעדרים בכליות שליטת ילידים ...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

FDG-PET הדמיה היא אופציה חדשה לאבחון של דחייה חריפה. בגלל האופי פולשני וספציפי שלה, FDG-PET הוא יתרונות בהשוואה לאבחון על ידי הקלסיים ליבת מחט ביופסיה. בניגוד לגודל המדגם המצומצם של ביופסיה, ניתוח FDG-PET כל השתל. יתר על כן, ניתן להחיל אותו על מטופלים בתרופה נוגדת קרישה, ואחד יכול לבצע צעדי PET גו שוב ושוב כדי לפקח על יעילות טיפול 4. בנוסף, יש לנו כבר הראה כי שתיים אבחנה מבדלת עיקרית של AR, נמק אבובית כלומר חריף הנגרם על ידי פגיעת reperfusion איסכמיה ורעילות מע...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

אין ניגודי האינטרסים הכריזו.

תודות

עבודה זו נתמכה על ידי Forschungsgemeinschaft דויטשה (656 SFB, מינסטר, גרמניה, פרויקטים וC7 C6) ומינסטר IZKF (Core היחידה SMAP). המחברים מודים לTruc ואן לה, אן Kanzog, אוטה Neugebauer, יבקה Gottschlich וPriebe הרומי לקבלת סיוע טכני ומצוין לדניאל Burkert וסוון Fatum לייצור radiotracers.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
ציוד
מחזיק מחטים Mathieu - 14 cmFine Science Tools12010-14
מחזיק מחטים מיקרו Castroviejo - 9 cmFine Science Tools12061-01
מספריים כירורגיים - חד/קההFine Science Tools14001-12
מספריים איריס - ToughCut ישרים 11.5 cmFine Science Tools14058-11
מספרי קפיץ Vannas לסטודנטיםFine Science Tools91500-09
מספרי קפיץ Vannas - להבים 3 mmFine Science Tools15000-00
פינצטת רקמה לסטודנטים - 1x2 שיניים 12 cmFine Science Tools91121-12
פינצטת Dumont SS-45 - Inox MedicalFine Science Tools11203-25
מפעיל קליפס Micro-Serrefine עם נעילהFine Science Tools18056-14
Micro-Serrefine 6 mm x 1 mmFine Science Tools18055-03
Micro-Serrefine 4 mm x 0.75 mmFine Science Tools18055-04
ריאגנט
איסופלורן (למשל Forene 100% v/v)Abott
חומר חיטוי לעור (למשל Octeniderm)Schülke
פובידון יוד (למשל Betaisodona)Mundipharma
משחה אופתלמית (למשל Bepanthen)Bayer
בופרנורפין (למשל Temgesic)RB Pharmaceuticals
תמיסת פרפוזיה HTK (למשל CUSTODIOL HTK)Dr. Franz Köhler Chemie
חוט כירורגי Mersilene 0EthiconEH6665E
חוט כירורגי Mersilene 4-0EthiconEH6732H
חוט כירורגי Prolene 6-0Ethicon8697H
חוט כירורגי Ethilon 9-0Ethicon2809G
משי כירורגית 5-0Vömel14739
קנולה (למשל Microlance 3, 27G ¾)BD302200

מקורות

  1. Wu, O., Levy, A. R., Briggs, A., Lewis, G., Jardine, A. Acute rejection and chronic nephropathy: a systematic review of the literature. Transplantation. 87, 1330-1339 (2009).
  2. Miller, B. F., Gonzales, E., Wilchins, L. J., Nathan, P. Kidney transplantation in the rat. Nature. 194, 309-310 (1962).
  3. Reuter, S., Schnöckel, U., Schröter, R., Schober, O., Pavenstädt, H., Schäfers, M., Gabriëls, G., Schlatter, E. Non-invasive imaging of acute renal allograft rejection in rats using small animal F-FDG-PET. PLoS. One. 4, e5296(2009).
  4. Reuter, S., Schnöckel, U., Edemir, B., Schröter, R., Kentrup, D., Pavenstädt, H., Schober, O., Schlatter, E., Gabriëls, G., Schäfers, M. Potential of noninvasive serial assessment of acute renal allograft rejection by 18F-FDG PET to monitor treatment efficiency. J. Nucl. Med. 51, 1644-1652 (2010).
  5. Schnöckel, U., Reuter, S., Stegger, L., Schlatter, E., Schäfers, K. P., Hermann, S., Schober, O., Gabriëls, G., Schäfers, M. Dynamic 18F-fluoride small animal PET to noninvasively assess renal function in rats. Eur. J. Nucl. Med. Mol. Imaging. 35, 2267-2274 (2008).
  6. Grabner, A., Schnöckel, U., Kentrup, D., Schäfers, M., Reuter, S. Strategies for Non-Invasive Molecular Imaging of Acute Allograft Rejection by Gamma Scintigraphy and Positron Emission Tomography. Curr. Radiopharm. 4, 10-23 (2011).
  7. Racusen, L. C., Solez, K., Colvin, R. B., Bonsib, S. M., Castro, M. C., Cavallo, T., Croker, B. P., Demetris, A. J., Drachenberg, C. B., Fogo, A. B., et al. The Banff 97 working classification of renal allograft pathology. Kidney Int. 55, 713-723 (1999).
  8. Edemir, B., Reuter, S., Borgulya, R., Schröter, R., Neugebauer, U., Gabriëls, G., Schlatter, E. Acute rejection modulates gene expression in the collecting duct. J. Am. Soc. Nephrol. 19, 538-546 (2008).
  9. Velic, A., Gabriëls, G., Hirsch, J. R., Schröter, R., Edemir, B., Paasche, S., Schlatter, E. Acute rejection after rat renal transplantation leads to downregulation of Na+ and water channels in the collecting duct. Am. J. Transplant. 5, 1276-1285 (2005).
  10. Reuter, S., Velic, A., Edemir, B., Schröter, R., Pavenstädt, H., Gabriëls, G., Bleich, M., Schlatter, E. Protective role of NHE-3 inhibition in rat renal transplantation undergoing acute rejection. Pflugers Arch. 456, 1075-1084 (2008).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

דימות FDG PET‏18F-FDG PETמודל השתלה אלוגניתחולדה לאחר כריתת כליה אחתFDG-PET של השתלניטור דחייה של השתלהטומוגרפיה במיסyon פוזיטרונים