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Methodenartikel

Einzigen Ebene Beleuchtungsmodul und Micro-Kapillar-Ansatz für ein Weitfeld-Mikroskop

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DOI:

10.3791/51993

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15. August 2014

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In diesem Artikel

Zusammenfassung

Ein Modul für einzelne Ebene Illumination Microscopy (SPIM) beschrieben, die leicht zu einer umgekehrten Weitfeld-Mikroskop angepasst ist und für 3-dimensionale Zellkulturen optimiert. Die Probe wird in einer rechteckigen Kapillare angeordnet ist, und über ein Mikrofluidiksystem Fluoreszenzfarbstoffe können pharmazeutische Mittel oder Arzneimittel in kleinen Mengen angewendet werden.

Zusammenfassung

Ein Modul für Lichtbogen oder einzelne Ebene Illumination Microscopy (SPIM) beschrieben, die leicht zu einem umgekehrten Weitfeld-Mikroskop angepasst ist und für 3-dimensionale Zellkulturen optimiert, zB mehrzelligen Tumorsphäroide (MCTS). SPIM Anregungsmodul Formen und lenkt das Licht, so dass die Probe durch einen Lichtschnitt senkrecht zur Detektion Gang des Mikroskops beleuchtet. Das System wird durch Verwendung einer rechteckigen Kapillare zur Aufnahme (und in einer erweiterten Version auch durch eine Mikrokapillare Ansatz zum Drehen) der Proben, durch synchrone Verstellung der Beleuchtungslichtbogen und der Objektivlinse für die Fluoreszenzdetektion verwendet wird, sowie dadurch gekennzeichnet, durch Anpassung eines mikrofluidischen Systems zur Anwendung von Fluoreszenzfarbstoffen, pharmazeutische Mittel oder Arzneimittel in kleinen Mengen. Ein Protokoll für die Arbeit mit diesem System gegeben wird, und einige technische Details berichtet. Repräsentative Ergebnisse umfassen (1) Messungen der bisnehmen eines Zytostatikums (Doxorubicin) und dessen teilweise Umwandlung in ein Abbauprodukt, (2) Redox-Messungen unter Verwendung einer genetisch codierten Glutathion Sensor bei Zugabe eines Oxidationsmittels, und (3) die Einleitung und Kennzeichnung Zellnekrose auf Hemmung der mitochondrialen Atmungskette. Unterschiede und Vorteile der vorliegenden SPIM Modul im Vergleich mit bestehenden Systemen diskutiert.

Einleitung

Neben den gut etablierten Methoden (oder konfokalen Multi-Photonen-Laser-Scanning-Mikroskopie 1-4, Structured Illumination Microscopy 5,6) Lichtbogen oder einzelne Ebene Illumination Microscopy (SPIM) hat sich als eine wertvolle Methode der 3D-Bildgebung 7,8 sein, 9. Von besonderem Interesse ist die Anwendung eines 3-dimensionalen Zellkulturen, beispielsweise multizellulären Tumor-Sphäroide (MCT), die zunehmend für die Wirkstoffforschung 10,11 verwendet werden. Darüber hinaus ist eine bevorzugte Methode SPIM, wenn auch bei langfristiger Exposition oder sich wiederholende Messungen schlechten Licht Dosen sind erford....

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Protokoll

1. Zell Sphäroid wächst und Inkubation

  1. Versuch 1: Zell Sphäroiden mit einem Chemotherapeutikum inkubiert
    1. Bereiten Agarose 1,5% im Kulturmedium durch Zugabe von 0,45 g Agarose auf 30 ml Kulturmedium (ausreichend für 6 Platten).
    2. Das Gemisch aus Schritt 1.1.1 auf mindestens 80 ° C unter Rühren von Zeit zu Zeit.
    3. Füllen Sie 50 ul der erhitzten Mischung aus Schritt 1.1.2 in jedes Well einer 96-Well-Platte und lassen Sie es in 1-2 Stunden fest werden. Lagern Sie die Platten geschlossen und abgedeckt im Kühlschrank bei 5 ° C bis zur Verwendung.
    4. Samen etwa 150 MCF-7-Brustkrebszellen in jeder Vertiefung der hergestellten Platte....

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Ergebnisse

Versuch 1: Zell Sphäroiden mit einem Chemotherapeutikum inkubiert

Ein Z-Stapel-Scan eines zuvor inkubiert MCF-7-Zell-Sphäroiden (8 uM Doxorubicin, 6 h) wird in Abbildung 3 dargestellt. Es gibt ausführliche Informationen über die zelluläre Aufnahme und Verteilung von Doxorubicin 17 und seinem Abbauprodukt 18,19. In der äußeren Zellschicht der Sphäroid roten Fluoreszenz Doxorubicin wird hauptsächlich im Zellkern lokalisiert, während in de.......

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Diskussion

Die vorliegende Manuskript beschreibt ein Lichtbogen oder einzelne Ebene Illumination Microscopy (SPIM) Gerät, das für 3-dimensionale Zellsysteme optimiert ist, zB, mehrzelligen Tumorsphäroide (MCTS). Drei beispielhafte Anwendungen umfassen (1) die Aufnahme eines Zytostatikums und dessen teilweise Umwandlung in ein Abbauprodukt (deren Beitrag zur chemotherapeutischen Wirksamkeit bleibt ausgewertet werden), (2) Messung des Redox-Zustand durch Verwendung einer genetisch codierten Glutathion Sensor auf Zugabe eine.......

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Offenlegungen

Keine Interessenskonflikte erklärt.

Danksagungen

Dieses Projekt wurde vom Land Baden-Württemberg sowie von der Europäischen Union, Europäischer Fonds finanziert für sterben Regionale entwicklung. Die Autoren danken Rainer Wittig (ILM Ulm) für die Bereitstellung der U251-MG-L106-Grx1-roGFP2 Zelllinie und Claudia Hintze für geschickte technische Hilfe.

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Materialien

Liste der in diesem Artikel verwendeten Materialien
NameUnternehmenKatalognummerKommentare
MikrotiterplatteOrange Scientific4430100Für das Wachstum von Sphäroidzellen
Agarose Carl Roth GmbH3810.1Für die Zellsphäroid-Züchtung
MCF-7 ZelllinieCLS Cell Lines Service GmbH300273
Zelllinie U251-MG-L106 Zelllinie
Zelllinie DMEMBiochrom AG (Merck Millipore)FG0435Kulturmedium
DMEM/Ham's F-12Biochrom AG (Merck Millipore)FG4815Kulturmedium
FCSBiochrom AG (Merck Millipore)S0615Zellkulturergänzungsmittel
Penicillin/StreptomycinBiochrom AG (Merck Millipore)A 2213Antibiotika
Hygromycin BPAA Laboratorien   P02-015Antibiotikum
EBSSSigma-Aldrich Inc.E3024Nahrungsergänzungsmittel für Zellkulturen
DoxorubicinSigma-Aldrich Inc.D1515Fluoreszierender Farbstoff (ACHTUNG: akute Toxizität)
Grüner ZytotoxizitätsfarbstoffPromega GmbHG8742CellTox - fluoreszierender Zytotoxizitätsfarbstoff
RotenonSigma-Aldrich Inc.R8875Zellulärer Inhibitor (VORSICHT: akute Toxizität)
Wasserstoffperoxid (H2O2)Sigma-Aldrich Inc.95302Reagenz zur Oxidation (ACHTUNG: akute Toxizität)
KapillaresVitroCom 8260-050Probenvorbereitung
MikroskopCarl Zeiss JenaAxiovert 200M
AxioCam MRc CCD-KameraCarl Zeiss MicroImaging GmbH426508-9901-000CCD-Kamera
AxioVision DatenerfassungssoftwareCarl Zeiss MicroImaging GmbHVersion 4.8.2.
LaserdiodePico Quant GmbHLDH-P-C-470Verwendet mit Treiber PDL800-B
SchlauchpumpeIsmatec LabortechnikMS-1 RegloNeu kalibriert, um die minimale Pumpendrehzahl um 1/10 
SilikonschläucheIDEX Health & Germany Science GmbHTYGON R3607

Referenzen

  1. Pawley, J. Handbook of biological confocal microscopy. , Plenum Press. New York. (1990).
  2. Webb, R. H. Confocal optical microscopy. Rep. Prog. Phys. 59, 427-471 (1996).
  3. Denk, W., Strickler, J. H., Webb, W. W.

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Nachdrucke und Genehmigungen

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