يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

رواية فأري موديل الفشل شرياني الناسور: العملية الجراحية في التفاصيل

13.4K مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/53294

⸱

فبراير 3, 2016

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Nephrology, Leiden University Medical Center, 2Einthoven Laboratory for Experimental Vascular Medicine, Leiden University Medical Center, 3Department of Surgery, Leiden University Medical Center, 4Division of Nephrology, University of Cincinnati

في هذه المقالة

ملخص

نقدم هنا نموذجا للفئران لفشل الناسور الشرياني الوريدي (AVF) حيث يتم دمج تكوين مفاغرة ذي صلة سريريا. يمكن استخدام هذا النموذج لدراسة الفيزيولوجيا المرضية واختبار التدخلات العلاجية الممكنة.

الملخص

لا يزال الناسور الشرياني الوريدي (AVF) يعاني من عدد كبير من الإخفاقات الناجمة عن عدم كفاية إعادة التشكيل وتضخم الوسط الحميمي الذي لا يزال الفيزيولوجيا المرضية الدقيقة منه غير معروفة. من أجل كشف الفيزيولوجيا المرضية ، تم تطوير نموذج الفئران لفشل AVF حيث يشبه تكوين مفاغرة الوضع المفضل في البيئة السريرية. تم وصف نموذج يتم فيه إنشاء التشوه الشرياني الوريدي عن طريق توصيل الطرف الوريدي الوريدي لفرع الوريد الوداجي الخارجي بجانب الشريان السباتي المشترك باستخدام خيوط متقطعة. على المستوى النسيجي ، لاحظنا آفات حميمة تضيقية تدريجية في مجرى التدفق الوريدي والتي تظهر أيضا في التشوه الشرياني الشرياني البشري الفاشل. على الرغم من أن هذا الإجراء يمكن أن يكون صعبا من الناحية الفنية بسبب الأبعاد الصغيرة للحيوان ، إلا أننا تمكنا من تحقيق معدل نجاح جراحي بنسبة 97٪ بعد التدريب الكافي. الميزة الرئيسية لنموذج الفئران هي توافر المعدلة وراثيا. في ضوء الآليات المختلفة المقترحة المسؤولة عن فشل التشوه الشرياني الوريدي ، فإن تعطيل الجينات التي قد تلعب دورا في إعادة تشكيل الأوعية الدموية يمكن أن يساعدنا في الكشف عن الفيزيولوجيا المرضية المعقدة لفشل التشوه الشرياني الوريدي.

المقدمة

وظيفية قناة الوصول الأوعية الدموية هي ذات أهمية حيوية لمرضى الفشل الكلوي التي تعتمد على غسيل الكلى المزمن للبقاء على قيد الحياة. بناء على ناسور شرياني (AVF) هو حاليا الخيار المفضل للوصول إلى الأوعية الدموية. ومع ذلك، مضاعفات AVF المتعلقة تشكل السبب الرئيسي لاعتلال المرضى على غسيل الكلى المزمن. وعلى الرغم من جهود علمية واسعة، فإن أيا من رواية نهج للحد من مضاعفات الوصول AVF لم تسفر عن تحسن كبير في AVF المتانة. جزء من هذا التقدم المخيب للآمال يتعلق الفهم الناقص من الفيزيولوجيا المرضية الكامنة وراء فشل وصول غسيل الكلى.

لكشف الفيزيولوجيا المرضية لفشل الوصول AV، النماذج الحيوانية التي تحاكي بشكل وثيق علم الأمراض البشرية هي في غاية الأهمية. في هذا الصدد، وليس فقط الأنواع الحيوانية ولكن أيضا موقع توصيلي، والعلاج المضاد للcoagulatory المطلوبة ومدة المتابعة بعد الزيادةينبغي أن تؤخذ في الاعتبار راي 1. بينما الحيوانات الكبيرة هي الأكثر ملاءمة للدراسات تدخل يهدف إلى وضع استراتيجيات علاجية جديدة، ونماذج الفئران لديها فرص كبيرة لكسب مزيد من التبصر في الآليات الجزيئية الكامنة وراء فشل وصول مركبات بسبب توفر الفئران المعدلة وراثيا. وبالإضافة إلى ذلك، فإن عددا كبيرا من الفئران يمكن أن تستخدم لهذا الغرض في انخفاض التكاليف مقارنة مع استخدام الحيوانات أكبر.

وقد وصفت أول نموذج الفئران من فشل AVF في عام 2004 من قبل Kwei وآخرون. 2 وفي هذا النموذج، تم تشييد AVFs باستخدام الشريان السباتي والوريد الوداجي بطريقة نهاية إلى نهاية باستخدام القسطرة داخل الأوعية الدموية. يمكن أن يكون هذا نموذجا مفيدا لدراسة التكيف وريدي في وقت مبكر في AVFs على الرغم من أن التكوين نهاية إلى نهاية وجود القسطرة داخل الأوعية الدموية تحد من صلاحية هذا النموذج لAVFs الإنسان. وقدم نموذجا AVF محسن من قبل Castier وآخرون. 3 والذي في نهاية لتوصيل الشريان السباتي إلى جانب حبل الوريد. ومع ذلك، AVFs في مرضى غسيل الكلى عادة ما شيدت من قبل التشريح نهاية الوريد إلى جانب الشريان. التكوين الدقيق للAVF هو سمة حاسمة من نموذج وصول AV لأنه يحدد الشخصي الدورة الدموية داخل قناة 4. وهذا الأخير هو مساهما هاما في البطانية الخلل والتطور اللاحق للتضخم باطنة (IH) 5.

وقد تم تطوير نموذج الفئران رواية مؤخرا مع التكوين التشريحي متطابقة كما يستخدم في البشر 6. في هذا النموذج، يتم إنشاء AVF في C57BL / 6 الفئران عن طريق تفاغرية نهاية فرع من الوريد الوداجي الخارجي إلى جانب الشريان السباتي المشترك مع خيوط متقطعة. في هذه الورقة، ونحن نركز على إجراء المجهرية لهذا النموذج من أجل تسهيل الاستخدام واسع النطاق لهذا النموذج الفئران، والتي تهدف إلى كشف الفيزيولوجيا المرضية المعقدةفشل الوصول غسيل الكلى.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

تمت الموافقة على جميع التجارب من قبل اللجنة على الرفق بالحيوان من المركز الطبي لجامعة لايدن.

1. إعداد الحيوانية والتخدير

  1. تخدير الماوس (1-3 أشهر من العمر) في غرفة تحريض التخدير مستمرة مليئة 3-4٪ الأيزوفلورين.
  2. حلق الجانب البطني من الرقبة والجزء الداخلي من الساق الأيمن العلوي باستخدام الحلاقة الكهربائية واستخدام قطعة من شريط لإزالة الشعر.
  3. تطبيق مرهم العين في كلتا العينين.
  4. وضع الحيوان على بطانية التدفئة التي يتم إصلاح قناع الأنف التهوية. يحملق الرأس إلى قناع الأنف باستخدام شريط لاصق.
    1. تقديم الأيزوفلورين بتركيز 1،5-2،0٪ باستخدام الأكسجين المخصب مجموعة الهواء في تدفق التالية: الهواء 0.3 لتر / دقيقة، و 100٪ من الأكسجين 0.2 لتر / دقيقة. قرصة الجلد بين أصابع القدم لتقييم عمق التخدير وضبط تركيز الأيزوفلورين إذا لزم الأمر.
  5. يحملق الحيوان إلىبطانية للتدفئة مع شريط لاصق على كل الأطراف التي تم تعيينها في حوالي 37 درجة مئوية في موقف ضعيف.
  6. حقن البوبرينورفين الذائبة في كلوريد الصوديوم (كلوريد الصوديوم) بنسبة 0.9٪ إلى جرعة من 0.1 ملغ / كغ مع 0.5 مل من العقيمة كلوريد الصوديوم 0.9٪ تحت الجلد في الجهة الحيوان.
  7. تطبيق بالكلورهيكسيدين صبغة 0.5٪ في منطقة المعدة.

شق 2. الجلد

  1. وضع الحيوان تحت المجهر مع رئيسها نحو الجراح.
  2. جعل شق طولي حوالي 1.5 سم في خط الوسط من الرقبة بطني باستخدام مقص الجزئي.
  3. الاستيلاء على الغدد اللعابية مع ملقط وتهجير الغدة اللعابية الصحيحة cranially حتى يتم جزئيا خارج الجرح.

3. تشريح وإعداد الوريد

  1. تحديد وبصراحة تشريح فرع الظهراني الإنسي من الصحيح الوريد الوداجي الخارجي تماما من نسيجه المحيطة بالأوعية عن طريق نشر مجردlongside وفي اتجاه الأوعية الدموية.
  2. ضع حلقة (10.0 خياطة) حول الوريد تشريح وتطبيق عقدة واحدة من دون قفل عليه.

4. إزالة العضلات القصية الترقوية الخشائية

  1. باستخدام ملقط، بصراحة تشريح العضلات القصية الترقوية الخشائية الصحيحة عن محيطها من خلال نشر على طول حدودها. وضع زوج من ملقط مفتوحة تحت العضلات المعزولة وligate أنه قريب وبشكل أقصى مع خياطة 6.0. وفي وقت لاحق، استئصال العضلات باستخدام cauterizer.

5. تشريح وإعداد الشريان السباتي المشترك

  1. تحديد وتشريح الصحيح الشريان السباتي المشترك باستخدام ملقط. وضع موضوع 6.0 خياطة حول الشريان للمساعدة في التلاعب في الشريان.
  2. تطبيق المشابك الأوعية الدموية كما بشكل أقصى وقريب ممكن.
  3. إجراء شق طولي في منتصف الشريان حوالي 1 مم باستخدام مقص الجزئي المتخصصة.
  4. شطفالشريان مع الحل الهيبارين [100 وحدة دولية / مل] حتى السفينة واضحة من الدم.
  5. قياس وضبط طول شق إذا لزم الأمر لتتناسب مع عرض المشبك الأوعية الدموية [1.1 مم].

6. من ربط الوريد

  1. تطبيق المشبك الأوعية الدموية قريب من الوريد استعداد لذلك ووضع خيوط الجروح حول الوريد.
  2. تطبيق الجر الذيلية لطيف إلى الوريد باستخدام haemostat التي يتم وضعها على خيوط الجروح وligate الوريد كما بشكل أقصى قدر ممكن باستخدام خياطة 10.0 الذي تم وضعه في وقت سابق.
  3. قطع الوريد باستخدام مقص فقط قريب للربط.
  4. باستخدام ملقط الأوعية الدموية، وفتح بلطف تجويف الوريد وشطفه بمحلول الهيبارين [100 وحدة دولية / مل].

7. إنشاء التحام الجزء 1

  1. ربط الوريد إلى الشريان مع خياطة متقطعة (10.0) باستخدام 2 عقدة مربع في موقف 0:00 تليها خياطة في س الستالموقف على مدار الساعة. تأكد من توصيل الوريد إلى الشريان دون السماح لها استدارة حول محورها الخاص. وتناوب على الحيوانات من أجل تحسين التعرض الجراحية.
  2. ضع خيط خياطة حول الوريد وتطبيق الجر الجانبي لطيف باستخدام haemostat.
  3. باستخدام نفس الغرز انقطاع، واستكمال مفاغرة عن طريق وضع ما يقرب من 3-4 خيوط إضافية في الجانب البطني المرئي من مفاغرة.

8. إدارة الهيبارين

  1. تدوير التدفئة بطانية 180 درجة وتركيز المجهر على الساق العلوية اليسرى.
  2. تحديد الفخذ حزمة الوريد / الشريان / العصبية التي تبحث عن بنية الأوعية الدموية التي تمتد طوليا في الجزء الأنسي من الساق العلوية ويمكن أن ينظر إليه من خلال الجلد. إجراء شق مع مقص الجزئي من حوالي 1 سم مباشرة فوق الوريد الفخذي بطريقة بالطول.
  3. بعناية تشريح الأنسجة المحيطة بالأوعية من الوريد الفخذي وحقن الهيبارين بجرعة سو 0.2 وحدة دولية / ز وزن الجسم في الوريد الفخذي.

9. إنشاء التحام الجزء 2

  1. العودة إلى منطقة الرقبة وإزالة خيوط الجروح التي وضعت حول الوريد.
  2. وضع خيوط الجروح (6.0) الذي يمر في وقت لاحق تحت الشريان السباتي، خلال الوريد، ومرة ​​أخرى تحت الشريان السباتي. (الشكل 1L)
  3. إزالة المشبك الأوعية الدموية الوريدية.
  4. بعد ذلك، تحريف نصف الانتهاء شرياني الناسور 180 درجة على طول محور الشريان السباتي بطريقة اتجاه عقارب الساعة من قبل التواء في وقت واحد كلا من المشابك الأوعية الدموية وتطبيق الجر وسطي إلى نهايات خيوط الجروح.
  5. استكمال مفاغرة بنفس الطريقة كما هو موضح في الخطوة 7.2.

إزالة 10. الأوعية الدموية المشبك

  1. إزالة خيوط الجروح وتدوير الأوعية الدموية المشابك 180 درجة عكس اتجاه عقارب الساعة.
  2. إزالة المشبك الأوعية الدموية البعيدة تليها المشبك الأوعية الدموية القريبة.
    3. <لى> تقييم المباح من مفاغرة التي تسد بلطف الجهاز تدفق الوريدي مع ملقط الأوعية الدموية. في حالة وجود مفاغرة براءات الاختراع، وقسم الوريدي قبل الاغلاق توسيع بطريقة نابض. نقل الغدة اللعابية الصحيحة للموقف باستخدام ملقط لها التشريحية الأصلية.

11. الجلد اختتام وبعد العملية الجراحية العناية

  1. إغلاق الجلد في الساق العلوي مع خياطة دون انقطاع (6.0).
  2. إغلاق جلد الرقبة مع خياطة دون انقطاع (6.0).
  3. إزالة الحيوان من بطانية التدفئة وحقن 0.5 مل كلوريد الصوديوم 0.9٪ تحت الجلد.
  4. وضع الحيوانات في قفص مظلم التي يتم تسخينها مع مصباح التدفئة والسماح لها يتعافى تماما. عندما لا تسترد حيوان تماما، تأكد من أنه لا يعاني من صدمة الدورة الدموية بسبب نزيف في منطقة العمليات الجراحية. بحث عن علامات مثل الرقبة منتفخة وتسرب الدم.
  5. بعد ما يقرب من 6 ساعات بعد الحقن الأول من buprenorphine، وضخ جرعة واحدة من صياغة الاستمرار في اطلاق سراح تحت الجلد البوبرينورفين في الجرعة التي ينصح من قبل الشركة المصنعة، من أجل توفير تسكين كافية ل72 ساعة إضافية.

12. الأنسجة حصاد

  1. تخدير الحيوانات مع-خليط مخدر تحتوي على ميدازولام (5 ملغ / كلغ)، medetomidine (0.5 ملغ / كلغ) والفنتانيل (0.05 ملغ / كلغ) تدار داخل الصفاق.
  2. يحملق الحيوان في موقف ضعيف عن طريق إدخال إبر من خلال الكفوف والخدين إلى حصيرة السيليكون غير ساخنة.
  3. إجراء شق حوالي 1،5-2،0 سم فوق الجرح في الرقبة مع مقص الجزئي.
  4. تشريح AVF، ووضع المواضيع خياطة (6.0) في جميع أنحاء proximal-، الشريان القاصي وريدي المسالك تدفق لسهولة تحديد.
  5. تقييم المباح من AVF كما هو موضح في القسم 10.3 من البروتوكول.
  6. فتح التجويف البريتوني عن طريق إجراء عملية فتح البطن وسطي شالغناء مقص الجزئي.
    1. قطع طريق القفص الصدري البطني الأيسر والأيمن باستخدام زوج من مقص البدء caudally في خط منتصف الترقوة. باستخدام مقص الجزئي، القطع الحجاب الحاجز التي تعلق على الجزء الأوسط من القفص الصدري البطني وتهجير في وقت لاحق هذا القسم cranially باستخدام ملقط.
    2. تحديد موقع الوريد الأجوف السفلي والقطع مع مقص الجزئي.
  7. اضافة الى وجود إبرة قياس 23 إبرة في البطين الأيسر ويروي مع برنامج تلفزيوني تحت ضغط ما يقرب من 100 ملم زئبقي حتى السائل intravasal واضح تقريبا.
  8. دون إزالة الإبرة، ويروي الآن مع 4٪ من الفورمالين لمدة 10 دقيقة عند ضغط حوالي 100 مم زئبق.
  9. استئصال AVF التي كتبها transecting كل من الشرايين والأوردة مع مقص الجزئي ويغرق في 4٪ محلول الفورمالين O / N.

13. الأنسجة التضمين وباجتزاء

  1. معالجة الأنسجة لالبارافين وفقا لprotoco تصنيع لل. البروتوكول يطبق تتألف مما يلي:
    1. تزج في الإيثانول 70٪ لمدة 1 ساعة على RT. كرر 2X.
    2. تزج في الإيثانول 96٪ لمدة 1 ساعة على RT. كرر 2X.
    3. تزج في الإيثانول 99.5٪ لمدة 1 ساعة على RT. أكرر مرة واحدة.
    4. تزج في الإيثانول 99.5٪ مقابل 1.5 ساعة عند RT.
    5. تزج في زيلين 100٪ لمدة 1 ساعة على RT. أكرر مرة واحدة.
    6. تزج في Parafin لمدة 1 ساعة عند 62 درجة مئوية. كرر 2X.
  2. تضمين AVF في البارافين بحيث يتم الموجه تدفق الجهاز الوريدي عمودي على كاسيت التضمين.
  3. باستخدام مبضع للفحص المجهري، إنشاء 12 مسلسل أقسام يتألف كل منها من 30 أقسام بسمك 5 ميكرون. ثم كل قسم المسلسل، وضع مقطع واحد على تركيب الزجاج واحد بدءا من موقف واحد تصل إلى اثني عشر بشكل منظم بدءا من المنطقة الأقرب إلى مفاغرة.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

بعد إنشاء مفاغرة (الشكل 1)، ينبغي تقييم المباح من قبل الاغلاق وقت قصير من المسالك تدفق الوريدي مع ملقط الأوعية الدموية. عندما مفاغرة هي براءات الاختراع، يجب المسالك القريبة الأوعية الدموية إلى انسداد توسيع بوضوح على نحو نابض. وبالإضافة إلى ذلك، يتم تأكيد المباح باستخدام بالقرب التنظير بالأشعة تحت الحمراء (NIRF) الذي يعمل بشكل فعال باعتبارها الأوعية (الشكل 2). فشل في إجراء العمليات الجراحية يمكن أن يؤدي إلى انسداد مفاغرة كما هو مبين في الشك...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

يعتبر AVF أن يكون كعب أخيل "في علاج غسيل الكلى. وللأسف، فإن AVF ما زال يعاني من عدد كبير من الفشل 8-10. وعلى الرغم من أبحاث مكثفة حول الآليات الكامنة، يبقى الفيزيولوجيا المرضية المحدد غير معروف. وقد تم بالفعل وصف نماذج الفئران عديدة لفشل AVF في الأدب 2،3،11،12. ومع ذلك، فإن أيا من هذه النماذج تتضمن نهاية الوريدية لتكوين مفاغرة الجانب الشرياني الذي هو الأكثر تستخدم في الوضع السريري. وهذا مهم جدا لأن التعريف الدورة الدموية الناتجة يلعب دورا مهما في إعادة ت...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

الكتاب ليس لديهم ما يكشف.

شكر وتقدير

تم دعم هذه الدراسة بمنحة من مؤسسة الكلى الهولندية (KJPB 08.0003).

تم الاعتراف بكاروليان روتويزن لمساهمتها في الدراسة. تم الاعتراف بهوانغ فام لمساعدته في عمل علم الأمراض.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
تشريح microsocpeLeicaM80
ملقطMedicon07.61.25
ملقط الأوعيةS & TJFL-3D.2
ملقط الأوعية الدمويةS & TD-5a.2
ملقطRobozSS / 45
مقص دقيق 5 مم شفرةأدوات العلوم الدقيقة15000-08
مقص دقيق 2 مم شفرةأدوات العلوم الدقيقة15000-03
مقصميديكون05.12.21
مشبك التطبيق 1S & TCAF-4
المشبك الوعائي 1S & TB-1V
مشبك 2BBraunFE572K
المشبك الوعائي 2BBraunFE740K
ملقط مرقئBBraunBH110
10.0 خيوطBBraunG1117041
6.0 خيوطBBraun768464
الكيأدوات العلوم الدقيقة18010-00
حامل إبرةMedicon11.82.18
مرهم العينPharmachemie41821101
صبغة الكلورهيكسيدين 0,5٪المركز الطبي بجامعة ليدنNA
HeparinLeo Pharma012866-08
BuprenorphinRB Pharmaceuticals 283732
IsofluranePharmachemie45،112،110
قناع التخديربجامعة ماستريختصنع حسب الطلب
MidazolamActavisAAAC6877
DexmedetomidineOrion141-267
FentanylBipharma15923002
غرفة تحريض التخدير المستمرحلول التكنولوجيا البيطريةAN010R
الدموية

المراجع

  1. Rotmans, J. I. Animal Models for Studying Pathophysiology of Hemodialysis Access. The Open Urology & Nephrology Journal. 7, 14-21 (2014).
  2. Kwei, S., et al. Early adaptive responses of the vascular wall during venous arterialization in mice. Am.J.Pathol. 164 (1), 81-89 (2004).
  3. Castier, Y., et al. Characterization of neointima lesions associated with arteriovenous fistulas in a mouse model. Kidney Int. 70 (2), 315-320 (2006).
  4. Krishnamoorthy, M. K., et al. Hemodynamic wall shear stress profiles influence the magnitude and pattern of stenosis in a pig AV fistula. Kidney Int. 74 (11), 1410-1419 (2008).
  5. Ene-Iordache, B., Cattaneo, L., Dubini, G., Remuzzi, A. Effect of anastomosis angle on the localization of disturbed flow in 'side-to-end' fistulae for haemodialysis access. Nephrol. Dial. Transplant. 28 (4), 997-1005 (2013).
  6. Wong, C. Y., et al. Vascular remodeling and intimal hyperplasia in a novel murine model of arteriovenous fistula failure. J.Vasc.Surg. 59 (1), 192-201 (2014).
  7. Rekhter, M., Nicholls, S., Ferguson, M., Gordon, D. Cell proliferation in human arteriovenous fistulas used for hemodialysis. Arterioscler. Thromb. 13 (4), 609-617 (1993).
  8. Falk, A. Maintenance and salvage of arteriovenous fistulas. J. Vasc. Interv. Radiol. 17 (5), 807-813 (2006).
  9. Tordoir, J. H., et al. Prospective evaluation of failure modes in autogenous radiocephalic wrist access for haemodialysis. Nephrol. Dial. Transplant. 18 (2), 378-383 (2003).
  10. Dixon, B. S., Novak, L., Fangman, J. Hemodialysis vascular access survival: upper-arm native arteriovenous fistula. Am. J. Kidney Dis. 39 (1), 92-101 (2002).
  11. Yang, B., Shergill, U., Fu, A. A., Knudsen, B., Misra, S. The mouse arteriovenous fistula model. J. Vasc. Interv. Radiol. 20 (7), 946-950 (2009).
  12. Kang, L., et al. Regional and systemic hemodynamic responses following the creation of a murine arteriovenous fistula. Am. J. Physiol Renal Physiol. 301 (4), F845-F851 (2011).
  13. Wong, C. Y., et al. Elastin is a key regulator of outward remodeling in arteriovenous fistulas. Eur. J. Vasc. Endovasc. Surg. 49 (4), 480-486 (2015).
  14. Kennedy, R., et al. Does renal failure cause an atherosclerotic milieu in patients with end-stage renal disease. Am. J. Med. 110 (3), 198-204 (2001).
  15. Cheung, A. K., et al. Atherosclerotic cardiovascular disease risks in chronic hemodialysis patients. Kidney Int. 58 (1), 353-362 (2000).
  16. Lee, T., et al. Severe venous neointimal hyperplasia prior to dialysis access surgery. Nephrol. Dial. Transplant. 26 (7), 2264-2270 (2011).
  17. Kokubo, T., et al. CKD accelerates development of neointimal hyperplasia in arteriovenous fistulas. J. Am. Soc. Nephrol. 20 (6), 1236-1245 (2009).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

استكشف المزيد من المقالات

نموذج الناسور الشرياني الوريدي الفأريتفاصيل الإجراء الجراحيتحليل إعادة تشكيل الأوعية الدمويةدراسة فرط تنسج البطانةمسار التصريف الوريدياستخدام الحيوانات المعدلة وراثياًالفحص النسيجيتقييم النفاذيةالتصوير الفلوري بالأشعة تحت الحمراء القريبة
رواية فأري موديل الفشل شرياني الناسور: العملية الجراحية في التفاصيل
تواصل معنا
أوصِ به للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

حقوق الطبع والنشر © 2026 MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.