Die Rolle von sezernierten löslichen Faktoren bei der Modifikation zellulärer Reaktionen ist ein wiederkehrendes Thema in der Erforschung aller Gewebe und Systeme. In dem Versuch, die sehr komplexen Beziehungen zwischen den verschiedenen zellulären Subtypen, aus denen sich mehrzellige Organismen zusammensetzen, zu verdeutlichen, wurden In-vitro-Techniken entwickelt, die den Forschern helfen, ein detailliertes Verständnis einzelner Zellpopulationen zu erlangen. Bei einer dieser Techniken werden Einsätze mit einer durchlässigen Membran verwendet, die es den sezernierten löslichen Faktoren ermöglichen, zu diffundieren. So kann eine Population von Zellen, die in Inserts gezüchtet wurden, in einer Vertiefung oder Schale, die einen anderen Zelltyp enthält, co-kultiviert werden, um zelluläre Veränderungen nach parakriner Signalübertragung in Abwesenheit von Zell-Zell-Kontakt zu bewerten. Solche Insert-Co-Kultursysteme bieten verschiedene Vorteile gegenüber anderen Co-Kulturtechniken, nämlich bidirektionale Signalübertragung, konservierte Zellpolarität und populationsspezifische Detektion zellulärer Veränderungen. Neben ihrer Verwendung im Bereich der Entzündung, des Krebses, der Angiogenese und der Differenzierung sind diese Co-Kultursysteme von größter Bedeutung für die Erforschung der komplizierten Beziehungen, die zwischen den verschiedenen zellulären Subtypen im Zentralnervensystem bestehen, insbesondere im Zusammenhang mit der Neuroinflammation. Dieser Artikel bietet allgemeine methodische Richtlinien für den Aufbau eines Experiments, um zelluläre Veränderungen, die durch sezernierte lösliche Faktoren vermittelt werden, unter Verwendung eines Insert-Co-Kultursystems zu bewerten. Darüber hinaus wird ein spezifisches Protokoll zur Messung der neuroinflammatorischen Wirkungen von Zytokinen, die von Lipopolysaccharid-aktivierten N9-Mikroglia auf neuronale PC12-Zellen sezerniert werden, detailliert beschrieben, was ein konkretes Verständnis der Insert-Co-Kultur-Methodik bietet.