Le mutazioni ereditarie o de novo nei canali cationico-selettivi possono portare alla morte cardiaca improvvisa. Spesso si ipotizza che l'alterazione del traffico di membrana plasmatica di queste proteine transmembrana multi-spanning, con o senza cambiamento nel gating del canale, contribuisca in modo significativo a questo processo. È quindi diventato fondamentale sviluppare un metodo per quantificare il cambiamento dell'espressione relativa della superficie cellulare dei canali ionici cardiaci su larga scala. In questo articolo, viene fornito un protocollo dettagliato per determinare l'espressione relativa totale e della superficie cellulare dei canali del calcio cardiaci di tipo L CaV1.2 e delle subunità associate alla membrana nelle cellule tsA-201 utilizzando saggi di citometria fluorescente a due colori. Rispetto ad altri metodi qualitativi basati sulla microscopia o sull'immunoblotting, gli esperimenti di citometria a flusso sono saggi veloci, riproducibili e di grande volume che forniscono endpoint quantificabili su grandi campioni di cellule vive (che vanno da 104 a 106 cellule) con caratteristiche cellulari simili in un unico flusso. I costrutti sono stati progettati per esprimere costitutivamente mCherry al C-terminale intracellulare (consentendo così una rapida valutazione dell'espressione proteica totale) ed esprimere un epitopo di emoagglutinina (HA) rivolto verso l'extracellula per stimare l'espressione della superficie cellulare delle proteine di membrana utilizzando un anticorpo coniugato a fluorescenza anti-HA. Per evitare falsi negativi, sono stati condotti esperimenti anche su cellule permeabilizzate per confermare l'accessibilità e la corretta espressione dell'epitopo HA. La procedura dettagliata prevede: (1) progettazione di costrutti di DNA marcati (acido desossiribonucleico), (2) trasfezione lipidica-mediata di costrutti in cellule tsA-201, (3) coltura, raccolta e colorazione di cellule non permeabilizzate e permeabilizzate e (4) acquisizione e analisi di segnali fluorescenti. Inoltre, vengono spiegati i principi di base della citometria a flusso e viene discusso in modo approfondito il disegno sperimentale, compresa la scelta dei fluorofori, la titolazione dell'anticorpo HA e gli esperimenti di controllo. Questo approccio specifico offre una quantificazione relativa oggettiva dell'espressione totale e della superficie cellulare dei canali ionici che può essere estesa allo studio delle pompe ioniche e dei trasportatori di membrane plasmatiche.