הרשמה ל-JoVE נדרשת לצפייה בתוכן זה. התחברו או התחילו בגרסת ניסיון בחינם.

מאמר שיטה

ניטור עצבית אינטרה-פעיל של ניתוח בלוטת התריס במודל חזירי

20.3K צפיות

⸱

DOI:

10.3791/57919

⸱

11 בפברואר 2019

במאמר זה

סיכום

מחקר זה שואפת לפתח פרוטוקול תקני של ניטור עצבית אינטרה-פעיל של ניתוח בלוטת התריס במודל חזירי. כאן, אנו מציגים פרוטוקול להפגין הרדמה כללית, כדי להשוות בין סוגים שונים של אלקטרודות, וכדי לחקור את מאפייני אלקטרופיזיולוגיות נורמלי ונפצעו העצבים בגרון חוזרים ונשנים.

תקציר

פוסט ניתוחית לפגיעה העצב בגרון חוזרים ונשנים (RLN) יכול לגרום שיתוק קולי, אשר משבשת את הנאום יכול שעלול להפריע לנשימה. בשנים האחרונות, ניטור עצבית פוסט ניתוחית (IONM) כבר מותאם באופן נרחב כמו טכניקה מן החוץ בתרגום של RLN, RLN פגיעה, ויוכל לחזות למיתרי פונקציה במהלך הפעולות. מחקרים רבים גם השתמשו בבעלי חיים כדי לחקור יישומים חדשים של טכנולוגיית IONM, לפתח אסטרטגיות אמין למניעת פגיעה RLN פוסט ניתוחית. מטרת מאמר זה היא להציג את פרוטוקול תקני באמצעות מודל חזירי במחקר IONM. המאמר מדגים את ההליכים עבור גרימת הרדמה כללית, ביצוע צנרור קנה, תכנון ניסויים כדי לחקור את מאפייני אלקטרופיזיולוגיות של פציעות RLN. יישומים של פרוטוקול זה יכול לשפר את היעילות הכוללת ביישום עקרון 3R (החלפת, צמצום, עידון) במחקרים IONM חזירי.

מבוא

למרות כמו בול הוא כעת הליך נפוץ שבוצעו ברחבי העולם, תפקוד לקוי של קול לאחר הניתוח הוא עדיין נפוצים. פוסט ניתוחית לפגיעה העצב בגרון חוזרים ונשנים (RLN) יכול לגרום שיתוק קולי, אשר משבשת את הנאום יכול שעלול להפריע לנשימה. בנוסף, פציעה של הענף החיצוני של העצב בגרון סופריור יכול לגרום שינוי קול גדול מאת המשפיעים על גובה היטל ווקאלית.

פוסט ניתוחית עצבית ניטור (IONM) במהלך פעולות בלוטת התריס השיג פופולריות רחב כמו טכניקה מן החוץ עבור מיפוי ולאשר את RLN של העצב התועה (VN), ענף חיצוני של העצב בגרון סופריור (EBSLN). מכיוון IONM הוא שימושי עבור המאשר, שחקרתי מנגנוני הפגיעה RLN ועבור מזהה RLN וריאציות אנטומיים, זה יכול לשמש כדי לחזות למיתרי פונקציה לאחר כמו בול. לכן, IONM מוסיף דינאמי פונקציונלי חדש בניתוח בלוטת התריס ולהתלהב מנתחים עם מידע זה אין אפשרות להשיג על-ידי פריט חזותי ישיר לבד1,2,3,4,5 , 6 , 7 , 8 , 9 , 10.

לאחרונה, מחקרים פוטנציאליים רבים השתמשו מודלים חזירי כדי למטב את השימוש בטכנולוגיית IONM ולהקים אמין אסטרטגיות למניעת פוסט RLN פגיעה11,12,13,14 ,15,16,17,18,19,20. מודלים חזירי גם שימשו כדי לספק מתרגלים חיוני חינוך והכשרה יישומים קליניים של IONM.

לכן, השילוב של מודלים בעלי חיים וטכנולוגיה IONM הוא כלי רב ערך עבור לימוד הפתופיזיולוגיה של פגיעה RLN21. מטרת מאמר זה היה כדי להדגים את השימוש מודל חזירי במחקר IONM. באופן ספציפי, במאמר מדגים כיצד לגרום הרדמה כללית, לבצע צנרור קנה, להגדיר ניסויים על חקירת המאפיינים אלקטרופיזיולוגיות של סוגים שונים של פגיעה RLN.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

פרוטוקול

הניסויים בבעלי חיים אושרו על ידי טיפול בעלי חיים מוסדיים ועל שימוש הוועדה (IACUC) של Kaohsiung הרפואי האוניברסיטאי, טייוואן (פרוטוקול לא: IACUC-102046, 104063, 105158).

1. בעלי חיים והכנה הרדמה

  1. במודל חיה חזירי
    הערה: מחקר זה מיושם הפרוטוקול המתואר בספרות להקים מודל חזירי פוטנציאליים של IONM11,12,13,14,15,16, 17,18,19,22.
    1. השתמש חזירים KHAPS שחור או Duroc-צמחי תרבות מסורתיים (3-4 חודשים ישן; במשקל של 18-30 ק ג).
    2. ודא נסיוני בקנה אחד עם הנחיות לניסויים בבעלי חיים, כולל את העקרונות 3R (החלפת, הפחתת ו עידון) ותקנות לאומי/בינלאומי. להשיג אישור האתית של פרוטוקול נסיוני של הוועדה טיפול ושימוש של חיות ניסוי במוסד הרלוונטי.
  2. הרדמה אינדוקציה
    1. ההכנות לפני ההרדמה
      1. מניעת אוכל מבעל 8 שעות לפני ההרדמה, מסתיר מים 2 שעות לפני ההרדמה.
      2. טיפול תרופתי מראש עם azaperone תוך שרירית (4 מ"ג/ק"ג)-2 שעות לפני ההרדמה. השתמש בקבוק 500 מ"ל מלוחים כדי לפברק מסיכת פנים עבור כל חזרזיר. חתוך לפי הצורך כדי להבטיח התאמה המאובטח והאף.
      3. השתמש בפונקציה במשקל על שולחן הניתוחים כדי למדוד את המשקל נטו של חזרזיר כל (איור 1A).
      4. לשמור על טמפרטורת הגוף עם מזרון מים במחזור מוגדר כ- 40 ° C.
    2. לגרום הרדמה כללית (ג'י אי) עם 2-4% sevoflurane על זרם הגז טריים של 3 L/דקה דרך המסכה הפנים עם לופז במצב של שכיבה. GA יכולה להיגרם גם על ידי שרירית tiletamine ו- zloazepam. עומק נאותה הרדמה מושגת בדרך כלל 3-5 דקות. לאשר את העומק של הרדמה על ידי אין תנועה חמורות לכאב בשל היקפי צנתור ורידים.
    3. לזהות וריד שטחי על הצד החיצוני של אוזן אחת, לחטא את האזור שנבחר (כ 6 x 6 ס מ2) עם 75% אלכוהול. לבטיחות מירבית, השתמש צנתר תוך ורידי היקפיים 24-מד.
    4. לנהל הרדמה תוך ורידי כגון propofol (1-2 מ"ג/ק"ג) או thiamylal (5-10 מ"ג/ק"ג) להקלה על גירוי יתמודד על-ידי laryngoscopy ישירה.
      הערה: השימוש הסוכן חסימת עצב-שריר (NMBA) הוא לא הציע. בניסויים הבאים, NMBA עלולה לסבך את צנרור מאת מדכא נשימה ספונטנית, עשוי להפחית אותות אלקטרומיוגרפיה (EMG). בנוסף, שאיפה sevoflurane בשילוב עם סיילין propofol או קצרת ברביטורטים מספיקה הדיווחים להקלה צנרור קנה.
  3. צנרור קנה (איור 1B)
    1. הכנת הציוד והחומרים הנדרשים לצנרור צינור EMG: צינור אנדוטרכאליות גודל #6-EMG, מסיכת פנים אוורור בסיוע, במתלים שני להחזיק בפה פתוח, רצועה אחת גזה כדי למשוך את הלשון, קטטר שאיבה קצה קהה, laryngoscope וטרינרי עם להבים ישר 20 ס מ, על תתן אלסטי, מזרק 20-mL, הסטטוסקופ, דבק.
    2. מקם את חזרזיר במצב של שכיבה על שולחן הניתוחים. יישור ראש וגוף כדי להבטיח הדמיה ברורה של דרכי הנשימה העליונות.
    3. ישיר המסייע כדי להחיל המתיחה של הלסת עליון ותחתון כדי לשמור על פתח הפה נאותה וכדי למנוע סיבוב או overextension של הראש. מכסה את הלשון עם גזה, להוציא את הלשון כדי למטב את שדה הראיה.
    4. להחזיק את laryngoscope והנח אותו ישירות בחלל הפה כדי לדכא את הלשון.
    5. ישירות להמחיש האפיגלוטיס ולהשתמש laryngoscope את להקיש האפיגלוטיס כלפי מטה לכיוון בסיס הלשון.
    6. כאשר מיתרי מזוהות בבירור, בעדינות לקדם את תתן אלסטי לתוך קנה הנשימה. וסיבוב חלש של תתן אלסטי ייתכן שיהיה צורך להתגבר על ההתנגדות. בשלב הבא, מראש הצינור EMG בזווית הפה עד לעומק של 24 ס מ.
    7. מנפח שהקפל צינור EMG לאמצעי יותר מ- 3 מ. אם אוורור על ידי שאלסי ידנית מגלה דליפת אוויר ברור אין, בחיי עיר דפלציה של הצינור EMG הוא ריאלי.
    8. כאשר הצינור EMG ממוקם בעומק המתאים, אשר מעבר חופשי של גז טרי על-ידי שאלסי ידנית. נוסף לאשר את נאות צנרור קנה סוף-גאות פחמן דו-חמצני (etCO2) ניטור (capnography), auscultation החזה עבור זיהוי מוקדם של בהיסח הדעת הוושט או אם הם צנרור.
      הערה: Capnography הראו etCO2 waveform והן את הערך דיגיטלי מ מ כספית. כאשר אירעה צנרור הוושט, etCO2 היה נעדר או קרובה לאפס אחרי 6 נשימות. כאשר הצינור EMG נמצא במקום הנכון, את גל2 טיפוסי etCO והערך נאותה (בדרך כלל > 30 מ מ כספית) צוין. יתר על כן, צלילי נשימה ריאה דו-צדדיים מלאים הוא סימטרי כפי שנקבע על ידי החזה auscultation וברורה.
    9. להשתמש בקלטת רפואי כדי לתקן את הצינור EMG-זווית הפה. מאז ברכבת התחתית בדרך כלל דורש הסתגלות במהלך הניסויים IONM, לא להדק את הצינור והאף.
    10. לחבר את הצינור EMG ההנשמה. Capnography רציף מוגדרת כחובה עבור ניטור של etCO2 הערך העקומה לאורך כל הניסוי.
  4. הרדמה תחזוקה (איור 1C)
    1. אחרי הצינור EMG הוא קבוע, מקם את חזרזיר על גבו עם הצוואר המורחבת (איור 1C). לשמור על הרדמה כללית עם sevoflurane 1-3% חמצן ב 2 ל'/דקה.
    2. לאוורר את הריאות במצב עוצמת הקול--נפח ענק של 8-12 mL/kg, ולהגדיר את קצב הנשימה 12-14 נשימות לדקה.
    3. מתחילים הפיזיולוגיות ניטור, כולל capnography, אלקטרוקרדיוגרם (א) וניטור של חמצון (סאו2).

2. ציוד הגדרה ותפעול בעלי חיים (איור 1D)

  1. התקנת ציוד
    1. לחבר את ההפניות ערוץ מהצינור EMG למערכת ניטור.
    2. הגדרת המערכת כדי להפעיל את חלון הזמן 50 מילישניות. סט פעמו גירויים כדי 100 μs, הרץ 4. להגדיר את הסף לכידת האירוע כדי 100 μV.
  2. הליך כירורגי
    1. יש ללבוש כפפות כירורגי סטרילי והשתמש povidone יוד עם ספוגיות כותנה לחטא באתר כירורגית הצוואר.
    2. עושים חתך רוחבי צווארון כ 10-15 ס מ אורך עם איזמל כדי לחשוף את הצוואר ואת הגרון.
    3. להעלות את הכנף subplatysmal 1 ס מ cranially של עצם הבריח לעצם הלשון.
    4. הסר את השרירים רצועה והמחש את הטבעות והכו אותי ואת העצבים. להשתמש monopolar, הפרעה דו קוטבית electrocautery לסייע ניתוח כירורגי של hemostasis.
    5. בתרגום, לזהות, בזהירות לחשוף את EBSLN, RLN ו- VN גשש גירוי כף יד.
    6. הצב אלקטרודה גירוי תקופתי אוטומטי (APS) בצד אחד של VN לעירור במהלך IONM רציף (CIONM). חיבור האלקטרודה APS עם מערכת ניטור. הגדר גירויים פעמו 1 Hz 100 µs, 1 mA.
  3. בסוף הניסויים, המתת חסד כל החזרזירונים על ידי הוטרינר.

3. גירוי חשמלי

הערה: כדי להחיל את העיקרון 3R במחקרים IONM חזירי, תמיד לבצע מחקרים אלקטרופיזיולוגיה הדיר לא תגרום לפגיעה עצבים לפני ביצוע ניסויים שעלולות לגרום עצב פציעה. זה יכול לשמש כדי לחקור את עוצמת בטיחות, אפקטים ריאות11,17. ניתן לסווג את הציוד IONM כמו גירוי ציוד או ציוד הקלטה (איור 2 א).

  1. להעריך את התגובות EMG בסיסית של העצבים היעד, לרבות EBSLN, RLN, VN (דמויות 2B, 2 C).
    1. להתחיל עם זרם גירוי ראשוני של 0.1-mA זרם ולהגדיל גירוי במרווחים של 0.1-mA עד מענה EMG הוא זוהה והקליט.
    2. עוד יותר את הזרם עד התגובה EMG מירבית המושגת.
    3. להקליט את משרעת בסיסית, השהיה, צורת גל של התגובה EMG.
    4. מגדירים את רמת הגירוי מינימלי הנוכחי הנמוך (תואר שני) זה ברור עורר EMG לפעילות > 100 µV. להגדיר את רמת הגירוי מקסימלי הנוכחית הנמוך זה עורר את התגובה EMG מקסימלי.
  2. להעריך את הבטיחות של גירוי חשמלי11,19
    1. החל גירוי דקה רצוף באותה רמת הנשימה טבעת החמישי של VN או RLN.
    2. בהדרגה להגביר את הגירוי הנוכחי מ- 1 מ- 30 תואר שני.
    3. במהלך גירוי VN, הערכת יציבות והמודינמיקה על-ידי ניטור של קצב הלב, אק ג, לחץ דם עורקי פולשני.
    4. לבסוף, הערכת תקינות תפקוד העצבים על-ידי השוואת התגובות EMG proximal לאתר גירוי עצבי לפני ואחרי כל רמה של גירוי מוחל.
  3. השפעת הרדמה (מרפה שרירים, ביטולי שלהם)12,20
    הערה: שימוש לא תקין של NMBAs היא הגורם הפוטנציאלי IONM לא מוצלח. המודל המוצע בעלי חיים שימש כדי להשוות בין פרופילים התאוששות בין NMBAs depolarizing שונים (למשל, סוקצינילכולין) NMBAs nondepolarizing (למשל, rocuronium) במינונים שונים כדי לזהות את NMBA האופטימלי לשימוש ב- IONM. המודל בעלי חיים יכול לשמש גם כדי להעריך את היעילות של תרופות היפוך NMBA (למשל, sugammadex) עבור במהירות שחזור פונקציה neuromuscular ודוכאה על-ידי rocuronium.
    1. ראשית, להחיל C-IONM, להשתמש בסיסית באופן אוטומטי מכוילת השהיות ארוכות יותר amplitudes של EMG כנתונים שליטה.
    2. לניהול זריקה בולוס של 0.3 מ"ג/ק"ג rocuronium באמצעי אחסון של 10 מ"ג/מ"ל, לבחון את השינויים EMG בזמן אמת.
    3. שלוש דקות לאחר ההזרקה, לבצע זריקה אחת של 2 מ"ג/ק"ג sugammadex נפח של 100 מ"ג/מ"ל כמו סם מהירה. להקליט את הפרופיל שחזור של EMG בגרון במשך 20 דקות.
  4. גירוי אלקטרודות (גירוי רגשים/dissectors) (איור 3)17
    הערה: קיימים סוגים שונים של אלקטרודות גירוי, גירוי עצבי במהלך IONM, למשל, יכול לשמש monopolar רגשים (איור 3 א) הפרעה דו קוטבית רגשים (איור 3B), גירוי dissectors (איור 3C ).
    1. כדי לחקות גירוי ישיר של עצבים במהלך הניתוח, החל גירוי אמא 1 EBSLN, RLN ו- VN ללא fascia שמעליה.
    2. כדי לחקות מיפוי עקיף, לוקליזציה של העמדה עצבים לפני זיהוי חזותי במהלך הניתוח, החל גירוי אמא 1 ממרחק 1 ו- 2-מ מ מן העצבים-המכסים fascia.
    3. להקליט, להשוות את התגובות EMG בין סוגים שונים של אלקטרודות גירוי.
  5. הקלטה אלקטרודות (EMG צינורות/מחט לעור אלקטרודות/טרום-gelled אלקטרודות) (איור 4)
    1. השתמש בבעלי חיים כדי להעריך כיצד סיבוב או תזוזה כלפי מעלה/מטה של האלקטרודה צינור EMG (איור 4A) משפיע על היציבות של האות EMG. בנוסף, להשתמש בבעלי חיים כדי להשוות את התגובות EMG בין סוגי אלקטרודה שונים (למשל, המחט אלקטרודות ו דבק אלקטרודות מראש וג'ל, איור 4B) וגישות שונים הקלטה (למשל, transcutaneous/מלעורית transcartilage גישות, דמויות 4C ו- 4 D) מבחינת היתכנות, יציבות ודיוק במהלך IONM.
    2. עבור בדיקת התכנות, להחיל 1 mA גירוי נוכחי EBSLNs דו-צדדיים, VNs ושל RLNs. שיא השווה EMG תגובות עורר על ידי כל אלקטרודה נבדק (קרי, EMG שפופרת, transcutaneous, מלעורית, ואלקטרודות transcartilage).
    3. עבור מחקר יציבות, להעריך ולהשוות EMG אות יציבות ב- C-IONM תחת הזחה הסחוס הטבעתי השפעול המושרה/הנשימה.
    4. במחקר דיוק, להעריך ולהשוות את הדיוק של האלקטרודות נבדק ב- C-IONM לזיהוי EMG אות השפלה תחת RLN פציעה.

4. RLN פגיעה המחקר (איור 5)

  1. לעקרון 3R, לבצע ניסויים פציעה RLN במודל חזירי אלקטרופיזיולוגיה הדיר אחרי כל מחקרים שהושלמו. לבצע בדיקות של עצב מקטעים מן העצב proximal מקטעים כדי מקטעי העצב (קרי, המשך מהחלק סימטרית של RLN חלק RLN הגולגולת).
  2. השימוש C-IONM לאמת ולהשוות בין דפוסים של שינויים בזמן אמת ב- EMG בגרון עורר אותות במהלך ואחרי פציעות RLN חריפה עם מנגנוני פגיעה שונים (למשל, המתיחה, מחבר חובק למעקה, חיתוך או פציעות תרמי) (דמויות 5A, 5B) . השתמש C-IONM עבור רציף להציג בזמן אמת ואת recordation של EMG שינויים ושחזורים רציפים לאורך כל הניסוי (איור 5C).
  3. איסוף הפצועים קטעים RLN ניתוח histopathological של שינויים מורפולוגיים הנגרמת על ידי עצב פציעה הניסויים.
  4. המתיחה דחיסה/מתיחה פציעה
    הערה: המתיחה דחיסה או מתיחה הפציעות הן הפגיעות הנפוצות ביותר RLN פוסט ניתוחית. השפעול לגרום מתח המתיחה ולבחון את השינויים הנובעים מכך EMG אלקטרופיזיולוגיות ושינויים histopathological.
    1. המתיחה דחיסה פציעה13
      1. לעטוף לולאה פלסטיק דק (למשל, לולאה וסקולרית 1.3-מ מ רחב) סביב RLN שימוש מד כוח כדי להחיל הכחשה עם 50 גרם למתח (איור 5A). ערכה זו מחקה RLN לכוד נגד להקה צפוף, סיבית או עורק מעבר על האזור של רצועה של ברי במהלך המתיחה המדיאלי של האונה בלוטת התריס.
    2. המתיחה למתוח פציעה16
      1. לעטוף את RLN עם חומר אלסטי רחב יותר (למשל, ניקוז פנרוז סיליקון רחב 10 מ מ), ולהשתמש לאמוד כוח כדי לבטל את RLN עם 50 גרם של מתח) ערכה זו מחקה RLN מודבקת על או הרקובה הקפסולה זפק, מתוחה קדימה במהלך המדיאלי המתיחה.
  5. פציעה clamping
    הערה: פוסט טראומה מכנית RLN בדרך כלל נובעת חשיפה עניים או לפציעות חזותית RLN. 13 , 16
    1. אחרי הדחיסה המתיחה RLN הפגיעה להתנסות, צבוט חלקו הדיסטלי של RLN עם מלקחיים hemostatic לשניה אחת. ערכה זו מחקה את האומץ להיות בשוגג כשכרטיס בשל לפציעות החזותית ככלי במהלך המבצע. רשומה האות EMG הנלווה לשנות לשם השוואה עם עוד יותר histopathological ממצאים של הדגימה עצב.
  6. פציעה תרמי
    הערה: רוב הפציעות תרמי פוסט ניתוחית של RLN כתוצאה תרמי התפשט כאשר electrocautery מכשירים והתקנים שונים המבוסס על אנרגיה (EBDs) משמשים לזירוז hemostasis ליד RLN. כמו המתיחה פגיעה, פציעה תרמית היא לעתים רחוקות לעין בלתי מזוינת. לכן, לבצע ניסויים בבעלי חיים IONM כדי לקבוע את המודל הטוב ביותר להערכת הפתופיזיולוגיה של פציעה התרמי RLN וכדי לבדוק את עמידות תרמית14 והביטחון של15,EBDs18.
    1. להשתמש C-IONM לרישום השינויים EMG ברציפות לאורך כל הניסוי.
    2. לצורך המחקר הפעלה, לחקור איך מבוסס על אנרגיה התקנים (EBD) יכול להיות מיושם בבטחה hemostasis ואת הקרע ליד RLN במהלך הניתוח (איור 5B).
      1. להפעיל את EBD (כלי דו קוטבית אלקטרותרמי איטום מערכת החשמל קבע ברמה 2, האנרגיה discontinues באופן אוטומטי על-ידי 2-4 שניות) במרחק 5 מ מ בלבד RLN.
      2. אם אותות EMG להישאר יציב לאחר מספר בדיקות, לבצע בדיקה נוספת ממרחק צר יותר (למשל, 2-מ מ ושהופעלו על ידי מרחק 1 מ"מ).
      3. אם יש שינוי משמעותי של EMG מתרחשת לאחר כל מבחן הניסוי הוא שלם, שהופעלו על ידי הקלטה רציפה EMG בזמן אמת לפחות 20 דקות.
    3. לצורך המחקר קירור, להעריך את הזמן קירור כדי לקבוע פוסט-הפעלה EBD אופטימלית קירור פרמטרים.
      1. פנה ב- EBD שהופעל על RLN ישירות לאחר שניה 5 קירור זמן.
      2. אם האותות EMG להישאר יציב לאחר שלוש בדיקות, בדיקת זמן קירור קצר יותר (למשל, 2 שניות, ולאחריה לשנייה אחת).
      3. אם EMG נשאר יציב לאחר בדיקות חוזרות ונשנות, לאשר את הבטיחות ב- EBD על-ידי נגיעה את RLN מיד לאחר הפעלת.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

תוצאות

המחקר אלקטרופיזיולוגיה
נתוני התוכנית הבסיסית EMG, ורמת גירוי מינימלי/מקסימלי את עקומות גירוי-תגובה
שימוש רגיל monopolar ממריץ של בדיקה, רמת גירוי מינימלי שהושג עבור VN, RLN גירוי נע בין 0.1 ל 0.3 mA, בהתאמה. באופן כללי, הגירוי הנוכחי בקורלציה חיובית עם וכתוצאה מכך EMG amplituderesponse11,17. משרעת EMG plateaued ברמות גירוי מקסימאלית של 0.7 mA לגירוי VN, ו- 0.5 מא RLN גירוי11.

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

דיון

פגיעה RLN ו- EBSLN נשאר מקור משמעותית של תחלואה הנגרמת על ידי ניתוח בלוטת התריס. עד לאחרונה, עצב פציעה יכול רק להיות מזוהה על ידי פריט חזותי ישיר של טראומה. השימוש IONM עכשיו מאפשר עוד יותר פונקציונלי זיהוי RLN על-ידי החלת גירוי והקלטה ההתכווצות של השרירים היעד. כיום, עם זאת, שתי מערכות IONM המקובלת של לסירוגין ורציפה יש כמה מגבלות טכניות פרשנויות חיוביות שגויות ו- false-שלילי. לפיכך, בדגמים בעלי חיים מסוימים נחוצים לנושאים הללו קליניים.

לאחרונה, שפע של מחקרים שנעשו בבעלי חיים ניסיוני ניסו להת...

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

גילויים

המחברים אין לחשוף.

תודות

מחקר זה נתמך על ידי מענקים Kaohsiung הרפואי בית החולים האוניברסיטאי, Kaohsiung הרפואי האוניברסיטאי (KMUH106-6R49), משרד המדע והטכנולוגיה (רוב 106-2314-B-037-042-MY2.), טייוואן

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

חומרים

רשימת החומרים שנעשה בהם שימוש במאמר זה
שםחברהמספר קטלוגהערות
מערכות ביקורתnGenuity8100Eניטור פיזיולוגי, כולל קפנוגרפיה, אלקטרוקרדיוגרפיה (ECG) וניטור חמצון (SaO2)
מערכות ניטור עצב NIM תוך ניתוחימדטרוניקNIM-Response 3.0מנטרות את פעילות ה-EMG ממספר שרירים. אם יש שינוי בתפקוד העצבי, מערכת ה-NIM עשויה לספק אזהרות קוליות וויזואליות כדי לסייע בהפחתת הסיכון לנזק עצבי.
צינור EMG NIM TriVantageמדטרוניק82297066 מ"מ ID, 8.2 מ"מ OD. צינור ה-NEM TriVantage EMG הוא צינור PVC בגודל סטנדרטי, לא מחוזק, נטול DEHP הכולל אלקטרודות דיו כסף חלקות ומוליכות ופס צולב להנחיית המיקום. יש לו רגישות מופחתת לסיבוב ותנועה תוך שהוא מציע תגובות EMG מוגברות המאפשרות דיסקציה עצבית משופרת.
צינור אנדוטרכאלי EMG מחוזק במגע NIMמדטרוניק82295066 מ"מ ID, 9 מ"מ OD. צינור ה-EMG של NIM Contact עוקב באופן רציף אחר פעילות האלקטרומיוגרפיה (EMG)
במהלך הניתוח. עיצוב חדשני מאפשר לצינור לשמור על מגע,
גם בעת סיבוב. מיתרי הקול נראים ביתר קלות כנגד הפס הלבן.
מובילי אלקטרודות הקלטה הם זוג מעוות. ארוז סטרילי עם מחט תת-עורית אחת ירוקה ו
לבנה. לשימוש חד פעמי.
צינור אנדוטרכאלי EMG מחוזק תקן NIMמדטרוניק82293066 מ"מ ID, 8.8 מ"מ OD. צינור ה-EMG הסטנדרטי של NIM עוקב באופן רציף אחר פעילות האלקטרומיוגרפיה (EMG)
במהלך הניתוח. מובילי אלקטרודות הקלטה הם זוג מעוות. ארוז
סטרילי עם מחט תת-עורית אחת ירוקה ואחת לבנה. לשימוש חד פעמי.
NIM Flex EMG צינור אנדוטרכאלימדטרוניק82299606 מ"מ. צינור ה-NIM Flex EMG עוקב אחר מיתרי הקול ופעילות EMG
חוזרת של עצב הגרון במהלך הניתוח. עיצוב מעודכן ודו-ערוצי מאפשר לצינור לשמור על קשר עם מיתרי הקול, גם בעת סיבוב. הקלטת אלקטרודה
מובילים הם זוג מעוות. ארוז סטרילי עם מחט תת-עורית אחת ירוקה ואחת לבנה
. לשימוש חד פעמי.
בדיקה סטנדרטית של ממריץ חד קוטבי עם קצה סומק שלמדטרוניק8225101טיפים וידיות. לאיתור ומיפוי עצבי גולגולת בתחום הכירורגי, הגשושית החד-פעמית
Standard Prass Monopolar Stimulating כוללת קוטר קצה
שטוח של 0.5 מ"מ. הגשושית מבודדת לקצה כדי למנוע עיתוק זרם. בנפרד
באריזה סטרילית.
בדיקה ממריץ חד קוטבית עם קצה כדורימדטרוניק8225275 / קצה 8225276וידית, 1.0 מ"מ / 2.3 מ"מ. עם קצה כדורי גמיש וציר גמיש, הגשושית החד-פעמית Ball-Tip Monopolar
Stimulating Probe מאפשרת גישה רבה יותר למבנים עצביים. קוטר הקצה
1.0 מ"מ מאפשר מגע א-טראומטי למבנים עצביים גדולים יותר. הגשושית מבודדת
לקצה כדי למנוע עיתוק זרם. אריזה סטרילית בנפרד.
Yingling Flex Tip Monopolar Stimulator בדיקהמדטרוניק8225251טיפים וידיות. הבדיקה הגמישה ביותר לשימוש חד פעמי Yingling Monopolar Stimulating מאפשרת גירוי
באזורים מחוץ למנתח' שדה הראייה. חוט הפלטינה-אירידיום
של הגשושית מבודד במלואו לקצה הכדור כדי למנוע עיתוק זרם. בנפרד
באריזה סטרילית עם אלקטרודה תת-עורית ירוקה אחת.
Prass Bipolar Stimulator ProbeMedtronic8225451הבדיקה החד-פעמית Prass Bipolar Stimulating Probe כוללת קצה דק וגמיש ש><מאפשר גישה רבה יותר למבנים עצביים. קצה הגשושית הוא במרחק של 0.5 מ"מ
בין הקתודה לאנודה לעיתוק מינימלי. אריזה סטרילית בנפרד.
בדיקה ממריץ דו קוטבית קונצנטריתמדטרוניק8225351הגשושית החד-פעמית לגירוי דו-קוטבי קונצנטרי כוללת 360°
אזור מגע. בידוד שלם לקצה הפעיל; הכבלים והידיות מקוטבים
. אריזה סטרילית בנפרד.
בדיקה ממריץ דו קוטבית זו לצד זומדטרוניק8225401הגשושית החד-פעמית זה לצד זה כוללת קצות בדיקה המרוחקים 1.3 מ"מ זה מזה, מה ><שמאפשר לגרות מבנים עצביים בין הקצוות.
הבידוד הושלם עד לקצה הפעיל; הכבלים והידיות מקוטבים.
ארוז סטרילי בנפרד.
אלקטרודת APS (גירוי תקופתי אוטומטי) *מדטרוניק8228052 / 82280532 מ"מ / 3 מ"מ. האלקטרודה APS מציעה ניטור רציף בזמן אמת. האלקטרודה מונחת
על העצב ויכולה לספק התראה מוקדמת על שינוי בתפקוד העצב.
אלקטרודות א.ק.ג של NeotrodeConMed1741C-003האלקטרודה עשויה מחומר סרט שקוף, המאפשר התבוננות רציפה בעור המטופל במהלך הניטור.
LigaSure Small JawMedtronicLF1212מערכת אלקטרותרמית לאיטום כלי דם דו-קוטביים מאושרת על ידי ה-FDA
לניתוח

מקורות

  1. Randolph, G. W., et al. Electrophysiologic recurrent laryngeal nerve monitoring during thyroid and parathyroid surgery: international standards guideline statement. Laryngoscope. 121, Suppl 1. S1-S16 (2011).
  2. Barczynski, M., et al. External branch of the superior laryngeal nerve monitoring during thyroid and parathyroid surgery: International Neural Monitoring Study Group standards guideline statement. Laryngoscope. 123, Suppl 4. S1-S14 (2013).
  3. Chiang, F. Y., et al. The mechanism of recurrent laryngeal nerve injury during thyroid surgery--the application of intraoperative neuromonitoring. Surgery. 143 (6), 743-749 (2008).
  4. Chiang, F. Y., et al. Standardization of Intraoperative Neuromonitoring of Recurrent Laryngeal Nerve in Thyroid Operation. World Journal of Surgery. 34 (2), 223-229 (2010).
  5. Chiang, F. Y., et al. Anatomical variations of recurrent laryngeal nerve during thyroid surgery: how to identify and handle the variations with intraoperative neuromonitoring. The Kaohsiung Journal of Medical Sciences. 26 (11), 575-583 (2010).
  6. Chiang, F. Y., et al. Intraoperative neuromonitoring for early localization and identification of the recurrent laryngeal nerve during thyroid surgery. The Kaohsiung Journal of Medical Sciences. 26 (12), 633-639 (2010).
  7. Chiang, F. Y., et al. Detecting and identifying nonrecurrent laryngeal nerve with the application of intraoperative neuromonitoring during thyroid and parathyroid operation. American Journal of Otolaryngology. 33 (1), 1-5 (2012).
  8. Wu, C. W., et al. Vagal nerve stimulation without dissecting the carotid sheath during intraoperative neuromonitoring of the recurrent laryngeal nerve in thyroid surgery. Head Neck. 35 (10), 1443-1447 (2013).
  9. Wu, C. W., et al. Loss of signal in recurrent nerve neuromonitoring: causes and management. Gland Surgery. 4 (1), 19-26 (2015).
  10. Wu, C. W., et al. Recurrent laryngeal nerve injury with incomplete loss of electromyography signal during monitored thyroidectomy-evaluation and outcome. Langenbeck's Archives of Surgery. 402 (4), 691-699 (2017).
  11. Wu, C. W., et al. Investigation of optimal intensity and safety of electrical nerve stimulation during intraoperative neuromonitoring of the recurrent laryngeal nerve: a prospective porcine model. Head Neck. 32 (10), 1295-1301 (2010).
  12. Lu, I. C., et al. A comparison between succinylcholine and rocuronium on the recovery profile of the laryngeal muscles during intraoperative neuromonitoring of the recurrent laryngeal nerve: A prospective porcine model. The Kaohsiung Journal of Medical Sciences. 29 (9), 484-487 (2013).
  13. Wu, C. W., et al. Intraoperative neuromonitoring for the early detection and prevention of RLN traction injury in thyroid surgery: A porcine model. Surgery. 155 (2), 329-339 (2014).
  14. Lin, Y. C., et al. Electrophysiologic monitoring correlates of recurrent laryngeal nerve heat thermal injury in a porcine model. Laryngoscope. 125 (8), E283-E290 (2015).
  15. Wu, C. W., et al. Recurrent laryngeal nerve safety parameters of the Harmonic Focus during thyroid surgery: Porcine model using continuous monitoring. Laryngoscope. 125 (12), 2838-2845 (2015).
  16. Dionigi, G., et al. Severity of Recurrent Laryngeal Nerve Injuries in Thyroid Surgery. World Journal of Surgery. 40 (6), 1373-1381 (2016).
  17. Wu, C. W., et al. Optimal stimulation during monitored thyroid surgery: EMG response characteristics in a porcine model. Laryngoscope. 127 (4), 998-1005 (2017).
  18. Dionigi, G., et al. Safety of LigaSure in recurrent laryngeal nerve dissection-porcine model using continuous monitoring. Laryngoscope. 127 (7), 1724-1729 (2017).
  19. Lu, I. C., et al. Safety of high-current stimulation for intermittent intraoperative neural monitoring in thyroid surgery: A porcine model. Laryngoscope. , (2018).
  20. Lu, I. C., et al. Reversal of rocuronium-induced neuromuscular blockade by sugammadex allows for optimization of neural monitoring of the recurrent laryngeal nerve. Laryngoscope. 126 (4), 1014-1019 (2016).
  21. Wu, C. -W., et al. Intraoperative neural monitoring in thyroid surgery: lessons learned from animal studies. Gland Surgeryery. 5 (5), 473-480 (2016).
  22. Lu, I. C., et al. Reversal of rocuronium-induced neuromuscular blockade by sugammadex allows for optimization of neural monitoring of the recurrent laryngeal nerve. Laryngoscope. , (2016).
  23. Scott, A. R., Chong, P. S., Brigger, M. T., Randolph, G. W., Hartnick, C. J. Serial electromyography of the thyroarytenoid muscles using the NIM-response system in a canine model of vocal fold paralysis. Annals of Otology, Rhinology, and Laryngology. 118 (1), 56-66 (2009).
  24. Puram, S. V., et al. Vocal cord paralysis predicted by neural monitoring electrophysiologic changes with recurrent laryngeal nerve compressive neuropraxic injury in a canine model. Head Neck. 38, E1341-E1350 (2016).
  25. Puram, S. V., et al. Posterior cricoarytenoid muscle electrophysiologic changes are predictive of vocal cord paralysis with recurrent laryngeal nerve compressive injury in a canine model. Laryngoscope. 126 (12), 2744-2751 (2016).
  26. Brauckhoff, K., et al. Injury mechanisms and electromyographic changes after injury of the recurrent laryngeal nerve: Experiments in a porcine model. Head Neck. 40 (2), 274-282 (2018).
  27. Brauckhoff, K., Aas, T., Biermann, M., Husby, P. EMG changes during continuous intraoperative neuromonitoring with sustained recurrent laryngeal nerve traction in a porcine model. Langenbeck's Archives of Surgery. 402 (4), 675-681 (2017).
  28. Schneider, R., et al. A new vagal anchor electrode for real-time monitoring of the recurrent laryngeal nerve. The American Journal of Surgery. 199 (4), 507-514 (2010).
  29. Kim, H. Y., et al. Impact of positional changes in neural monitoring endotracheal tube on amplitude and latency of electromyographic response in monitored thyroid surgery: Results from the Porcine Experiment. Head Neck. 38, E1004-E1008 (2016).
  30. Sterpetti, A. V., De Toma, G., De Cesare, A. Recurrent laryngeal nerve: its history. World Journal of Surgery. 38 (12), 3138-3141 (2014).
  31. Kaplan, E. L., Salti, G. I., Roncella, M., Fulton, N., Kadowaki, M. History of the recurrent laryngeal nerve: from Galen to Lahey. World Journal of Surgery. 33 (3), 386-393 (2009).
  32. Lu, I. C., et al. In response to Reversal of rocuronium-induced neuromuscular blockade by sugammadex allows for optimization of neural monitoring of the recurrent laryngeal nerve. Laryngoscope. 127 (1), e51-e52 (2017).

הגישה מוגבלת. התחברו או התחילו תקופת ניסיון כדי לצפות בתוכן זה.

הדפסות חוזרות והרשאות

תגיות

ניטור עצבי תוך-ניתוחיהעצב הלרינגיאלי חוזרצינור אלקטרומיוגרפיהגרייה של עצבסימולציה של פגיעה עצביתהשראת הרדמהאינטובציה של קנה הנשימהניטור אות EMG