Il fattore di trascrizione dimerico NF-B regola molte vie di risposta cellulare, comprese le vie infiammatorie inducendo l'espressione di varie citochine e chemiochine. La NF-B è espressa in modo conforme ed è sequestrata nel citosol dal fattore nucleare della proteina inibitoria del potenziatore del gene del polipeptide a luce kappa nell'inibitore delle cellule B, alfa (IB). L'attivazione di NF-B richiede la degradazione di I'B, che espone poi un segnale di localizzazione nucleare su NF-B e promuove il suo traffico al nucleo. Una volta nel nucleo, NF-B si lega alla regione promotore dei geni bersaglio NF-B come l'interleumina 6 (IL-6) e l'IL-23, per promuoverne l'espressione.
L'attivazione di NF-B si verifica indipendentemente dalla trascrizione o dalla traduzione. Pertanto, lo stato di attivazione di NF-B deve essere misurato quantificando nF-B in modo specifico nel nucleo, sia quantificando l'espressione dei geni bersaglio NF-B. In questo protocollo, le cellule trattate stabilmente con un costrutto reporter NF-B::luciferate vengono analisi per l'attivazione di NF-B utilizzando tecniche di coltura dei tessuti in vitro. Queste cellule sono infettate da Salmonella Typhimurium per attivare NF-B, che traffica verso il nucleo e si lega a siti bB nella regione promotrice di luciferasi, inducendone l'espressione. Le cellule vengono lisci e analizzate con il sistema di analisi luciferasi. La quantità di luciferasi prodotta dalle cellule è correlata all'intensità del segnale di luminescenza, che viene rilevato da un lettore di piastre. Il segnale di luminescenza generato da questa procedura fornisce un metodo rapido e altamente sensibile mediante il quale valutare l'attivazione di NF-B in una serie di condizioni. Questo protocollo utilizza anche la trascrizione inversa quantitativa PCR (RT-qPCR) per rilevare i livelli relativi di mRNA che sono indicativi dell'espressione genica.