Name: 用ドリップ流れと回転円板の原子炉の使用黄色ブドウ球菌バイオフィルム分析 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-12-27T17:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 8 s
Description: 学ぶドリップ流れと回転円板リアクターを用いた黄色ブドウ球菌バイオフィルムの培養法。剪断力下での細菌コミュニティ形成と走査型電子顕微鏡による構造解析の手法を習得できます。

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1。ドリップフローバイオフィルムリアクター<ol><li>ドリップフローバイオリアクターが組み立てとオートクレーブされた（Biosurface技術またはカスタム設計されたバージョンから利用可能な通常の大学のマシンのお店で作ることができる、図1を参照してください）​​。アセンブリは、チャンバーと確保室の蓋に貼るクーポンを伴います。バイオフィルム培地（トリプシン大豆ブロス2グラム/ Lとグルコース2グラム/ L）、および流入栄養チューブと一緒にチャンバーは、オートクレーブによって滅菌されています。 </li><li>ドリップフローリアクターの接種は、平らな面に原子炉を配置排水配管ラインをクランプ、10 mLのトリプシン大豆ブロスでそれぞれのチャンバーに充填し、S.の10μLを加えることによって予備成形され黄色ブドウ球菌の培養には、トリプシン大豆ブロス中で一晩増殖。接種した原子炉は、18時間、37℃インキュベーター内の場所です。 </li><li>インキュベーションの18時間後、排水チューブがアンクランプされ、反応器は10 °の角度にカット木のブロックに配置されます。 </li><li>無菌的に連続的なフロー栄養ブロスを含む瓶に流入栄養チューブを接続してください。最大速度（ポンプのモデルによって異なります）でポンプを実行することにより、ポンプやプライムチューブを介してチューブラインを通します。 </li><li>一度流入管は、ポンプを停止し、各チューブの端に接続針（22ゲージ、1インチ）を取り付ける準備され。エタノールワイプと無菌的に口栓に針を挿入するとチャンバーの入口ストッパーを拭きます。 </li><li>ポンプの電源を入れ、クーポンを介して（流量〜125μL/分）メディアは徐々に滴下することができます。メディアは入口ストッパーのポートからの排水ポートにクーポンに沿って下方に流れる必要があります。時折、適切な排水のために原子炉をチェックし、2〜5日（アプリケーションに応じて）連続的な流れで原子炉を操作してください。 </li><li>ドリップ流反応器のバイオフィルムを回収するために、ポンプを停止し、慎重に反応器から針を取り除く。次いで反応器を平らな面に置くことができ、クーポンを無菌的に滅菌ピンセットを使用して削除することができます。顕微鏡が必要な場合は、クーポンが今それに応じて処理することができる（図2Bは、ドリップのバイオリアクターで成長させた黄色ブドウ球菌のバイオフィルムの走査型電子顕微鏡写真である）。バイオフィルムのバイオマスや生理学の研究の定量化は、研究の目的である場合、バイオフィルムは、セルスクレーパーを使用してクーポンから削除することができます。鉗子でクーポンを押しながら、静かにセルスクレイパーを用いてリン酸緩衝生理食塩水を含むコニカルチューブにクーポンからバイオフィルムをこすり落とす。注：バイオフィルムのコロニー形成単位を定量化するためには、それは、塊を分解し、均一な懸濁液を形成するために組織ホモジナイザーで収穫されたバイオフィルムを均一にする必要があります。組織ホモジナイザーの様々なモデルがこのアプリケーションに適しています。我々は、バイオフィルム試料を均質化するため1分間、フルスピードでフィッシャーサイエンティフィックTissuemiserホモジナイザー（製品＃15-338-420）を利用。バイオフィルムを均一に失敗すると、サンプル中に存在するコロニー形成単位の過小評価になります。 </li></ol> 2。回転円板のバイオフィルムリアクター<ol><li>回転ディスクのバイオリアクターは（作られた、図3を参照Biosurface Technologies社から入手できるから入手するか、カスタムすることができます）組み立てとオートクレーブされている。回転するディスクのスロットに最初の場所で回転するディスクのクーポンをリアクタを組み立て、オーバーフローのポートを備えた1リットルのガラスビーカーに置きます。メディアフローと曝気を許可するようにあけられた穴を持つ数15ゴム栓は、原子炉のキャップとして使用されます。リアクター、バイオフィルムメディア（トリプシン大豆ブロスを2g / L、グルコース2g / Lの）、およびインレットチューブはその後オートクレーブによって滅菌されています。 </li><li>回転ディスクのバイオリアクターは、リアクターに無菌培地250 MLSを配置することにより接種し、一晩S.の0.5 mLを加えている黄色ブドウ球菌の培養には、トリプシン大豆ブロス中で増殖させた。次いで反応器を250回転に設定されて撹拌プレート上に配置し、所望の温度で一晩インキュベートする。 </li><li>インキュベーションの16時間は、メディアタンクのポートにインレットチューブを接続し、蠕動ポンプに接続した後。ポンプは、システムの電源をオンにします。されて​​おり、流れは〜0.25 mL /分（フローが望ま成長率に応じて変更可能）に設定します。 </li><li> 24時間後に原子炉を停止し、無菌的にバイオフィルムのクーポンを触れることなく、ディスクを取り出します。滅菌ピンセットを使ってクーポンを削除し、リン酸にそれぞれを浸すにはどんな緩く付着細菌を除去するために緩衝生理食塩水。 </li><li>抗菌性化合物のテストのために、チップは、関心のある化合物を含有する96ウェルプレートの個々のウェルに配置することができます。インキュベーション後、チップを1 mLのリン酸緩衝生理食塩水を含む1.5 mlのマイクロチューブに移し、そのままバイオフィルムを分散させるためにホモジナイザー組織でホモジナイズ。 </li><li>次いで、細胞をシリアル希釈し、実行可能なコロニーformiを決定するために栄養寒天培地上にプレーティングされていますngの単位。 </li><li>注：多くの変化が上記のプロトコルで行うことができます。有効性をテストする例については、回転するディスクのクーポンをコーティングすることができるまたは潜在的な抗バイオフィルムの化合物から作ら。バイオフィルムの分散剤は、分散剤の化合物と接続されている対切り離さ定量化する細菌のクーポンをインキュベートすることを評価することができる。 </li></ol> 3。代表的な結果ドリップ流反応器までセットの例を図1の場合は示されています。流れの三日後にバイオフィルムのおびただしい量は、クーポンの表面に図2Aを蓄積することになります。総バイオマスは菌株と正確な成長条件によって異なります。 S.の走査型電子顕微鏡写真ドリップフロー反応器内で栽培ブドウ球菌のバイオフィルムは、図2Bに示されています。 回転するディスクの原子炉は、図3Aに示されています。記述されたプロトコルは、バイオフィルムを形成することが可能な一般に任意の微生物の特定の要件に適合させることができます。図3Bは、18プラスチック製のディスクが添付さで回転するディスクを示しています。これらのディスクに成長したバイオフィルムは、特に抗菌性試験に適しており、再現性の高い結果が11を得ています。 <img src="/files/ftp_upload/2470/2470fig1.jpg" alt="図1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図1"> 図1。ドリップ流反応器のセットアップ。重要なコンポーネントが表示されています。 <img src="/files/ftp_upload/2470/2470fig2.jpg" alt="図2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図2"> 図2。ドリップフローの例S.黄色ブドウ球菌のバイオフィルム。 A）このバイオフィルムは、記述されているプロトコルは、次の三日間成長させた。原子炉の最初の二つのチャンバーからのふたは黄色S.を表示するために削除されます。 黄色ブドウ球菌のバイオフィルムのバイオマス。 S.のB）Sacnning電子顕微鏡写真黄色ブドウ球菌のバイオフィルムは、ドリップフロー反応器内で栽培。 <img src="/files/ftp_upload/2470/2470fig3.jpg" alt="図3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図3"> 図3。回転ディスク型原子炉。 A）実行されている回転ディスクの原子炉の例。キーコンポーネントが表示されています。 B）回転するディスクのビューをクローズアップ。

<ol><li>Costerton, J. W., Lewandowski, Z., Caldwell, D. E., Korber, D. R., Lappin-Scott, H. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microbial+Biofilms%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Microbial Biofilms.</a> Annu. Rev. Microbiol. 49, 711-745 (1995).</li>
<li>Costerton, J. W., Cheng, K. J., Gessey, G. G., Ladd, T. I., Nickel, J. C., Dasgupta, M., Marrie, T. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bacterial+biofilms+in+nature+and+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Ann.+Rev.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Bacterial biofilms in nature and disease.</a> Ann. Rev. Microbiol. 41, 435-464 (1987).</li>
<li>O'Toole, G. A., Kolter, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Initiation+of+biofilm+formation+in+Pseudomonas+fluorescens+WCS365+proceeds+via+multiple%2C+convergent+signaling+pathways%3A+a+genetic+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Micro%22%5BJournal%5D)">Initiation of biofilm formation in Pseudomonas fluorescens WCS365 proceeds via multiple, convergent signaling pathways: a genetic analysis.</a> Mol. Micro. 28, 449-461 (2002).</li>
<li>Boles, B. R., Horswill, A. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Agr-mediated+dispersal+of+Staphylococcus+aureus+biofilms%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Pathog%22%5BJournal%5D)">Agr-mediated dispersal of Staphylococcus aureus biofilms.</a> PLoS Pathog. 4, e1000052-e1000052 (2008).</li>
<li>Goeres, D. M., Haamilton, M. A., Beck, N. A., Buckingham-Meyer, K., Hilyard, J., Loetterle, L. A., Walker, D. K., Stewart, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+method+for+growing+a+biofilm+under+low+shear+at+the+air-liquid+interface+using+the+drip+flow+biofilm+reactor%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">A method for growing a biofilm under low shear at the air-liquid interface using the drip flow biofilm reactor.</a> Nature Protocols. 4, 783-788 (2009).</li>
<li>Fu, W., Forster, T., Mayer, O., Curtin, J. J., Lehman, S. M., Donlan, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bacteriophage+cocktail+for+the+prevention+of+biofilm+formation+by+Pseudomonas+aeruginosa+on+catheters+in+an+in+vitro+model+system%5BTitle%5D)+AND+%22Antimicrob+Agents+Chemother%22%5BJournal%5D)">Bacteriophage cocktail for the prevention of biofilm formation by Pseudomonas aeruginosa on catheters in an in vitro model system.</a> Antimicrob Agents Chemother. 54, 397-404 (2010).</li>
<li>Xu, K. D., McFeters, G. A., Stewart, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biofilm+resistance+to+antimicrobial+agents%5BTitle%5D)+AND+%22Microbiology%22%5BJournal%5D)">Biofilm resistance to antimicrobial agents.</a> Microbiology. 146, 547-549 (2000).</li>
<li>Xu, K. D., Stewart, P. S., Xia, F., Huang, C. T., McFeters, G. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spatial+physiological+heterogeneity+in+Pseudomonas+aeruginosa+biofilm+is+determined+by+oxygen+availability%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Environ.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Spatial physiological heterogeneity in Pseudomonas aeruginosa biofilm is determined by oxygen availability.</a> Appl. Environ. Microbiol. 64, 4035-4039 (1998).</li>
<li>Boles, B. R., Thoendel, M., Singh, P. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Self-generated+diversity+produces+%22insurance+effects%22+in+biofilm+communities%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+USA%22%5BJournal%5D)">Self-generated diversity produces "insurance effects" in biofilm communities.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 101, 16630-16635 (2004).</li>
<li>Pitts, B., Willse, A., McFeters, G. A., Hamilton, M. A., Zelver, N., Stewart, P. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+repeatable+laboratory+method+for+testing+the+efficacy+of+biocides+against+toilet+bowl+biofilms%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Appl.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">A repeatable laboratory method for testing the efficacy of biocides against toilet bowl biofilms.</a> J. Appl. Microbiol. 91, 117-11 (2001).</li>
<li>Boles, B. R., Thoendel, M., Singh, P. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rhamnolipids+mediate+detachment+of+Pseudomonas+aeruginosa+from+biofilms%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Rhamnolipids mediate detachment of Pseudomonas aeruginosa from biofilms.</a> Mol. Microbiol. 57, 1210-1223 (2005).</li>
<li>Hentzer, M., Teitzel, G. M., Balzer, G. J., Heydorn, A., Molin, S., Givskov, M., Parsek, M. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Alginate+overproduction+affects+Pseudomonas+aeruginosa+biofilm+structure+and+function%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Bacteriol%22%5BJournal%5D)">Alginate overproduction affects Pseudomonas aeruginosa biofilm structure and function.</a> J. Bacteriol. 183, 5395-5401 (2001).</li>
<li>Lin, H. Y., Chen, C. T., Huang, C. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+merocyanine+540+for+photodynamic+inactivation+of+Staphylococcus+aureus+planktonic+and+biofilm+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Environ.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Use of merocyanine 540 for photodynamic inactivation of Staphylococcus aureus planktonic and biofilm cells.</a> Appl. Environ. Microbiol. 70, 6453-6458 (2004).</li>
</ol>

利害の衝突は宣言されません。

別の炉で成長させたバイオフィルムは、多くの異なる特性を持つことになりますし、各反応器は、異なるアプリケーションを持っています。ドリップフローバイオリアクターと回転ディスク型原子炉：この作品では、我々は2つ​​のバイオフィルムリアクターの使用を説明しています。フロー炉ドリップ空気 - 液体界面での低せん断バイオフィルムを成長させるために有用であり、様々な条件に適応可能です。我々は、バイオフィルムのバイオマスの大規模な量が望ましいの研究のためにそれらは非常に便利です。このセットアップは、簡単にマイクロセンサ監視し、潜在的なantibiofilm面のテストを対象とした研究に適応することができます。 回転するディスクの原子炉は、中程度のせん断環境下でディスクを取り外すに複数の同一のバイオフィルムを成長させるために便利です。リムーバブルディスク上に複数の同一のバイオフィルムを生成するためにこの原子炉の能力は、抗菌性化合物およびバイオフィルム抵抗力面のテストを対象とした研究に最適です。これらのバイオリアクターを使用して、研究者が最適なモデル、その特定の研究ニーズをするプロトコルを変更することが...

Erratum: The Use of Drip Flow and Rotating Disk Reactors for Staphylococcus aureus Biofilm Analysis

<table><tbody><tr><td>ドリップフローリアクター</td><td>BioSurface Technologies Corporation</td><td>DFR 110</td><td></td></tr><tr><td>回転ディスクリアクター</td><td>BioSurface Technologies Corporation</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

用ドリップ流れと回転円板の原子炉の使用黄色ブドウ球菌バイオフィルム分析

The Use of Drip Flow and Rotating Disk Reactors for Staphylococcus aureus Biofilm Analysis

自然の中で最も微生物が1細菌のバイオフィルムは、マトリックス内に収められています。バイオフィルムの表面に関連したコミュニティとして存在すると考えられ、表面2バイオフィルム形成と発展に添付されるかは、一般的にこのようなマイクロタイタープレートやフローなどのバッチシステムを使用して実験室で検討されていますこのようなフローセルなどのシステム、。これらの手法は、可視化（フローセル）4の（マイクロタイタープレート）3または成長するバイオフィルムの変異体、化学ライブラリーをスクリーニングするのに便利です。ドリップフローバイオリアクターと回転するディスクのバイオリアクター：ここでは、フローシステムのバイオフィルムの追加の2種類で成長している黄色ブドウ球菌の詳細なプロトコールを提示する。 ドリップフローバイオリアクターは、低剪断条件下で栽培したバイオフィルムの研究のために設計されています。5ドリップ流反応器は、4つの並列テストチャネル、一つの標準ガラスの顕微鏡スライドサイズのクーポンを持ってそれぞれの能力、またはカテーテルまたはスティントの長さで構成されています。ドリップ流反応器はマイクロセンサのモニタリング、一般的なバイオ研究、バイオフィルムcryosectioningサンプル、高いバイオマス生産、医療材料の評価、および留置医療機器のテストに最適です。6,7,8,9は 回転するディスクの原子炉は、取り外し可能なクーポンのための凹部を含むテフロンディスクで構成されています。10リムーバブルクーポンは、任意の被削材から作らできます。回転ディスクの底面は、ディスクの回転が表面フラッシュクーポンを越え液体表面のせん断を作成できるように棒磁石が含まれています。 18クーポンを含むディスク全体を1000mLのガラスサイドアームの原子炉容器内に配置されます。ディスクは、マグネチックスターラーで回転させながら液体増殖培地は、血管を通して循環される。クーポンは、原子炉容器から除去し、さらに研究や顕微鏡イメージングのためのバイオフィルムのサンプルを収集するようにこすりされています。回転するディスクの原子炉は、殺生物剤の有効性、バイオフィルムの除去、及び防汚材料の性能の実験評価用に設計されています。9,11,12,13

ドリップ流反応器と回転するディスクの原子炉とオープンシステムの流れのバイオフィルムを利用するためのプロトコルを詳細に表示されます。

自然界のほとんどの微生物は、バイオフィルムにおける表面結合コミュニティとして存在していると考えられています(1)。細菌のバイオフィルムはマトリックスに包まれ、付着して...

この手順の全体的な目的は、ドリップフローバイオフィルムリアクターまたは回転ディスクリアクターを用いて、低または中程度のせん断力の下で細菌バイオフィルムを育成することです。バイオフィルムリアクター内のクーポンにまず細菌を接種し、37 °Cでインキュベートして、細菌細胞を成長表面に付着させます。細胞がクーポンに付着した後、成長培地を流し、バイオフィルムの形成中に作用するせん断力を発生させます。その後、成熟したバイオフィルムを回収し、解析および観察を行います。走査電子顕微鏡を用いることで、形成されたバイオフィルムの超微細構造を決定できます。私はブレイズ・ボールズです。フローセルなどの既存の手法に対するこの技術の主な利点は、高いバイオマス生産量と、同一の複数のバイオフィルムを容易に得られることです。本手順の実演は、私の研究室のテクニシャンであるRachel Stevensonと大学院生のKelly Schwartzが行います。ドリップフローバイオフィルムリアクターは、培地注入用の入力ポートと廃棄物排出用の流出ポートを備えた4つのチャンバーで構成されています。各チャンバーの内部には、バイオフィルムを増殖させるための取り外し可能なクーポンが配置されています。ドリップフローバイオフィルムリアクターを組み立てるには、クーポンを各並列チャンバーに配置し、チャンバーの蓋を固定します。使用前にシステムを滅菌するため、組み立てたリアクターおよび流入栄養剤チューブをオートクレーブで滅菌してください。また、滅菌済みのドリップフローリアクターに接種するため、バイオフィルム増殖培地をオートクレーブで滅菌します。装置を平らな面に置き、流出ラインをクランプします。次に、各チャンバーに10 millilitersの滅菌済みトリプチカソイブロスベースの増殖培地を満たし、100 microlitersのstaphylococcus aureusを添加します。各チャンバーに個別に、同じ培地で培養した overnight culture を分注します。接種後のリアクターを 37 °C のインキュベーターに 18 時間置き、細胞をクーポン表面に接着させます。インキュベーション後、流出チューブのクランプを外し、リアクターを 10 度の角度に傾斜させた木製ブロック上に設置します。この操作は無菌的に行います。流動 nutrient チュービングを、連続フロー nutrient ブロスが入ったボトルに接続します。チューブラインをポンプに通し、ポンプを全速で運転してチューブ内をプライミングします。流動チューブのプライミングが完了したら、ポンプを停止し、各チューブの末端に 22 gauge の 1 インチ針を取り付けます。チャンバーのインレットストッパーをエタノール綿で無菌的に拭き取ります。インレットストッパーから針を挿入します。ポンプを起動し、培地がクーポン上に滴下するようにします。約125 µL/minの流速で、培地がインレットストッパーポートからエフルエントポートに向かって下方へ流れるようにします。リアクターを連続フローで3日間運転し、適宜、適切に排液されているかを確認してください。チャンバー内に培地が溜まっていないことを確認するため、目視で排水状態をチェックします。培地が溜まっている場合は、通常、流出チューブをピンチすることでバイオフィルム回収のための適切な排水が促進されます。ポンプを停止し、リアクターから針を取り外してください。その後、リアクターを平らな面に置きます。3日間の連続流の後、黄色ブドウ球菌（staphylococcus aureus）のバイオフィルムは、接種したクーポンに沿って広がる黄色のバイオマスとして現れます。バイオフィルムの走査電子顕微鏡写真では、staphylococcus aureusが表面結合バイオフィルムコミュニティとしてクーポンを覆っていることがわかります。得られたバイオマスを定量するために、滅菌鉗子を用いて無菌的にクーポンを取り出し、セルスクレーパーで細菌を回収し、5 mLの滅菌PBSを含むコニカルチューブに移します。組織ホモジナイザーを使用して、均一な懸濁液が得られるまで細菌の凝集体を分散させます。コロニー形成単位は、triptych soja agarプレートに段階希釈液を塗布し、37 °Cで24時間培養してコロニー数をカウントすることで定量します。回転ディスクバイオフィルムリアクターは、増殖培地がポンプで送られるケモスタットで構成されています。スターバーを備えた回転ディスクと、そのディスクに適合するように設計された18枚のクーポンです。リアクターを組み立てるには、まず回転ディスクのスロットにクーポンを装着します。次に、クーポンを装着したディスクをオーバーフローポート付きの1リットルガラスビーカーに入れ、培地流用の孔と通気用の孔がそれぞれ1つずつ開いた15番ゴムストッパーでリアクターを密閉します。システムを滅菌するため、オートクレーブで組み立て済みのリアクターと入口チューブを処理します。リアクターに接種するには、ビーカーに250 millilitersの滅菌培液を満たし、triptych soy brothで overnight培養したstaphylococcus aureusの培養液を500 microliters加えます。リアクターを250 rotations per minuteに設定したスターラープレートに置き、37 degrees Celsiusで overnightインキュベートして、細胞をクーポンに付着させます。一晩のインキュベーション後、入口チューブを培地リザーバーのポートとペリスタルティックポンプに接続します。ポンプの電源を入れ、流量を0.25 milliliters per minuteに設定します。リアクターを37 degrees Celsiusで24時間作動させ、得られたバイオフィルムを回収します。リアクターを停止させ、無菌的に操作します。クーポンに触れないようにディスクを取り出します。滅菌済みピンセットを使用してクーポンを取り出し、抗菌化合物の試験に向けて、緩く付着している細菌を除去するために、各クーポンを滅菌済みPBSに慎重に浸します。無菌的に、目的の化合物を含む96ウェルプレートの各ウェルにクーポンを配置します。プレートを37 °Cで4時間インキュベートします。その後、クーポンを1×PBSを含む1.5 mLマイクロ遠心チューブに移し、ホモジナイザーを用いてバイオフィルムを分散させます。最後に、前述の手順に従って、細胞の段階希釈液を栄養寒天培地に塗抹し、サンプルあたりの生存コロニー形成単位数を測定します。このグラフは、回転ディスクリアクターを用いて作製し、過酸化水素に曝露させたバイオフィルムにおけるコロニー形成単位数を示しており、最大18個の同一なバイオフィルムを作製できる能力を示しています。回転ディスクリアクターを使用することで、この手法は抗菌化合物の試験に最適となります。このビデオを視聴することで、ドリップフローおよび回転ディスクリアクターを用いたバイオフィルムの作製方法について深く理解することができます。これらのバイオフィルムリアクターは、フローセルやマイクロタイタープレートを用いたバイオフィルム作製に代わる選択肢となり、大量のバイオフィルムバイオマスが必要な場合や、形成済みのバイオフィルムに対して抗菌試験を行いたい場合に最適です。

the-use-drip-flow-rotating-disk-reactors-for-staphylococcus-aureus

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