Name: Una piattaforma di screening Luciferase basata multiplex per interrogare il cancro-associata trasduzione del segnale in cellule in coltura (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-07-03T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 13 s
Description: Scopri un metodo di screening multiplex con luciferasi per analizzare le vie di segnalazione P53, WNT e KRAS in cellule HCT116 di cancro colorettale. Questa piattaforma consente l'interrogazione a scala genomica delle funzioni geniche.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Noi riconosciamo il supporto di finanziamento da CPRIT (RP100119) e la Welch Foundation (I-1665).

Intero protocollo impiega circa 4 giorni. 1. Preparazione di cellule per siRNA e Reporter Transfezione Introdurremo qui un protocollo per interrogare librerie di siRNA utilizzando un piccolo insieme di siRNA (384 diversi siRNA piscine array in formato a 96 pozzetti con ogni pool composto da siRNA 4x Targeting per un singolo gene) da una libreria siRNA genoma a scopo illustrativo. Per questo particolare studio, sfrutteremo HCT116 cellule che esibiscono devianti segnalazione Wnt e Kras, e l&#39;attività di p53. La linea cellulare appropriata in studi volti a interrogare altri processi cellulari di interesse dovrà essere identificato e valutato in modo simile. <ol><li> Lavare 5 x 10 cm 2 piatti di 80-90% confluenti HCT116 cellule con PBS poi raccolto mediante tripsinizzazione cellule con 1 ml di soluzione di tripsinizzazione / piastra seguito da neutralizzazione con 10 ml di Dulbecco Modified Eagle Medium (DMEM) contenente 2% feTal siero bovino (FBS) e 1% di penicillina / streptomicina / piastra. </li><li> Trasferire le cellule in sospensione in una provetta da 50 ml e centrifugare a ~ 130 xg per 5 minuti, rimuovere il surnatante e risospendere il pellet cellulare in 10 ml di DMEM / 2% FBS / 1% di penicillina / streptomicina. </li><li> Contare il numero di cellule con un contatore di cellule, e poi fare una soluzione di cellule con 10 5 cellule / ml, 150 ml mantenere sospensione cellulare per il passaggio successivo. Piastra 10 4 cellule (100 microlitri) in ciascun pozzetto di una piastra di coltura cellulare 96 utilizzando un dosatore automatico multipunto (d&#39;ora in poi multipunto). La sospensione cellulare dovrebbe essere sufficiente in questo caso per placcatura 12 x 96 pozzetti. </li><li> Incubare le piastre con cellule a 37 ° C in un incubatore con il 5% di CO 2 durante la preparazione della miscela di trasfezione. </li></ol> 2. Preparazione della Construct Reporter Archivio Solution <ol><li> Isolare giornalista di alta qualità costruire DNA utilizzando kit standard di midiprep (NucleoBond Xtra MIDI prodotti daClontech) e diluire il DNA per una concentrazione finale di 1 mg / ml per ciascun giornalista. </li><li> Preparare 100 ml di soluzione madre giornalista costruire combinando 30 ml di p53-FL, 30 ml di 8X TCF-RL, 30 ml di ELK1-Gal4, 6 microlitri UAS-CL e 4 ml di H 2 O per ottenere una miscela di DNA con un 1:1:1:0.2 rapporto finale dei giornalisti. Concentrazione di DNA finale di questa soluzione madre di DNA misto è di 0,3 mg / ml. </li></ol> 3. Preparazione del siRNA / DNA Transfezione Mix In questa parte del protocollo, prepareremo siRNA / DNA mix di trasfezione che saranno sufficienti per trasfezione 12 x 96 pozzetti. Per questa libreria di test di 4 x 96 pozzetti di siRNA, saremo trasfettare ogni pool siRNA in triplice copia. Il reagente di trasfezione che useremo si chiama Effectene (Qiagen). Nelle nostre mani questo è l&#39;unico reagente che funziona per l&#39;erogazione contemporanea di siRNA e DNA in cellule coltivate. <ol><li> Diluire 80 ml di giornalista costrutto magazzino solution in 8 ml di tampone CE (Effectene Kit) per ottenere una soluzione di DNA con una concentrazione finale di 3 mg / ml. In generale, preparare abbastanza soluzione di miscela di DNA per uso immediato. </li><li> Piastra 20 ml di questa soluzione di DNA a ciascun pozzetto di una ben 96 / piastra. Il numero delle piastre a 96 pozzetti dipenderà da quanti saranno testati piscine siRNA. Ad esempio, in questo caso avremo bisogno di 4 x 96 pozzetti per valutare 384 diverse piscine siRNA. </li><li> I siRNA da testare devono essere ad una concentrazione magazzino di 5 micron. Se non, possono essere replica placcato e diluito a questa concentrazione utilizzando il tampone di diluizione raccomandata associato a ciascuna libreria. </li><li> Trasferire 2 ml di ogni 5 micron siRNA magazzino al corrispondente pozzetto della piastra di PCR contenente il brodo DNA diluito con un Biomek Automated Liquid Handler. Seconda della scala dello studio, una pipetta multicanale può essere sufficiente. </li><li> Ora, aggiungeremo 1 ml di soluzione Enhancer (kit Effectene) in ciascun pozzetto del DNA / siRNA plaTE. Anche questo può essere realizzato sia con un gestore di liquido automatizzato o multicanale pipetta. </li><li> Lasciare che la reazione Enhancer avvenga a temperatura ambiente per 5 minuti poi aggiungere 3 ml di reagente di trasfezione Effectene a ciascun pozzetto e incubare a temperatura ambiente per altri 10 min. </li><li> Per interrompere trasfezione complesso formazione, aggiungere 10 ml di DMEM / 2% FBS / 1% di penicillina / streptomicina a ciascun pozzetto della piastra PCR. </li><li> Trasferire 10 microlitri della miscela di trasfezione per ciascun pozzetto della piastra a 96 pozzetti contenenti le cellule (recuperati dal termostato cella). Come ogni trasfezione verrà effettuata in triplicato, la stessa miscela sarà applicato a due ulteriori piastre 96 pozzetti contenenti cellule. </li><li> Incubare le cellule con miscele di trasfezione aggiunti a 37 ° C in ambiente umidificato al 5% di CO 2 per 36 hr. </li></ol> 4. Determinare attività luciferasi da campioni di cellule Dopo 36 ore, le attività di luciferasi sono pronti per la misurazionein cellule trasfettate. Il punto finale dovrebbe essere determinato su una base per-esperimento. Nel nostro studio, un tempo di incubazione di 36 ore aveva già dato un segnale sufficientemente robusto per significato determinazione esito. Poiché questo studio incorpora reporter multipli (uno secreta nel terreno di coltura, e altri due espressa nel citoplasma cellulare), otterremo misurazioni sia da mezzo di coltura così come un lisato cellulare. <ol><li> Rivelazione dell&#39;attività CL nel mezzo di coltura: <ol><li> 20 ml di terreno di coltura è replica-placcato in un bianco opaco 96 pozzetti (sia utilizzando il Liquid Handler Biomek o multicanale pipetta). </li><li> Aggiungere 20 ml di tampone CL (sistemi di puntamento) in ciascun pozzetto. </li><li> Aggiungere 10 ml di Cypridina substrato luciferina (Sistemi Targeting) a ciascun pozzetto e rilevare attività CL usando un luminometro (il lettore di piastre Pherastar prodotto da BMG per esempio). </li></ol></li><li> Rilevazione di FL e attività RL: <ol><li> Lyse il cells rimuovendo prima il terreno di coltura. Questo può essere realizzato rapidamente girando piastra capovolta e lanciare medie in un lavandino. Rimanendo mezzo può essere rimosso battendo leggermente la piastra di testa in giù su carta assorbente. Aggiungere 30 ml di 1X Passive Lysis Buffer (Promega) in ciascun pozzetto di celle usando il multipunto e posto su una sedia a dondolo piattaforma (Bellco è una ditta che produce questi) impostare una velocità media per 5 min a RT. </li><li> Aggiungere 20 microlitri della Luciferase Assay Reagent II (parte del kit Promega dual luciferasi) utilizzando l&#39;attività FL Multidrop e subito misurare usando il luminometro. Successivamente, aggiungere Stop &amp; Glo Reattivo (Promega) che spegnerà l&#39;attività FL e consentire la misurazione delle attività di RL. Nota: se non si sta utilizzando miscele di substrato che permettono durata del segnale prolungato (come Dual-Glo Kit luciferasi da Promega), l&#39;uso di kit flash richiede una rapida misurazione su substrato oltre (entro 5 minuti). </li></ol></li></ol>

<ol><li>Bronstein, I., Fortin, J., Stanley, P. E., Stewart, G. S., Kricka, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chemiluminescent+and+bioluminescent+reporter+gene+assays%5BTitle%5D)+AND+%22Analytical+Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Chemiluminescent and bioluminescent reporter gene assays.</a> Analytical Biochemistry. 219, 169-181 (1994).</li>
<li>Miraglia, L. J., King, F. J., Damoiseaux, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Seeing+the+light%3A+luminescent+reporter+gene+assays%5BTitle%5D)+AND+%22Combinatorial+Chemistry+%26+High+Throughput+Screening%22%5BJournal%5D)">Seeing the light: luminescent reporter gene assays.</a> Combinatorial Chemistry & High Throughput Screening. 14, 648-657 (2011).</li>
<li>McGuire, S. E., Roman, G., Davis, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+expression+systems+in+Drosophila%3A+a+synthesis+of+time+and+space%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+in+Genetics%3A+TIG%22%5BJournal%5D)">Gene expression systems in Drosophila: a synthesis of time and space.</a> Trends in Genetics: TIG. 20, 384-391 (2004).</li>
<li>Smirnova, N. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+of+Neh2-luciferase+reporter+and+its+application+for+high+throughput+screening+and+real-time+monitoring+of+Nrf2+activators%5BTitle%5D)+AND+%22Chem.+Biol%22%5BJournal%5D)">Development of Neh2-luciferase reporter and its application for high throughput screening and real-time monitoring of Nrf2 activators.</a> Chem. Biol. 18, 752-765 (2011).</li>
<li>Chen, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Small+molecule-mediated+disruption+of+Wnt-dependent+signaling+in+tissue+regeneration+and+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Chem.+Biol%22%5BJournal%5D)">Small molecule-mediated disruption of Wnt-dependent signaling in tissue regeneration and cancer.</a> Nat. Chem. Biol. 5, 100-107 (2009).</li>
<li>Tang, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+genome-wide+RNAi+screen+for+Wnt%2Fbeta-catenin+pathway+components+identifies+unexpected+roles+for+TCF+transcription+factors+in+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">A genome-wide RNAi screen for Wnt/beta-catenin pathway components identifies unexpected roles for TCF transcription factors in cancer.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105, 9697-9702 (2008).</li>
<li>Multiplexed Luciferase Reporter Assay Systems. United States patent. , (2012).</li>
<li>Funk, W. D., Pak, D. T., Karas, R. H., Wright, W. E., Shay, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+transcriptionally+active+DNA-binding+site+for+human+p53+protein+complexes%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">A transcriptionally active DNA-binding site for human p53 protein complexes.</a> Mol. Cell Biol. 12, 2866-2871 (1992).</li>
<li>DasGupta, R., Kaykas, A., Moon, R. T., Perrimon, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+genomic+analysis+of+the+Wnt-wingless+signaling+pathway%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Functional genomic analysis of the Wnt-wingless signaling pathway.</a> Science. 308, 826-833 (2005).</li>
<li>Korinek, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Depletion+of+epithelial+stem-cell+compartments+in+the+small+intestine+of+mice+lacking+Tcf-4%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Genet%22%5BJournal%5D)">Depletion of epithelial stem-cell compartments in the small intestine of mice lacking Tcf-4.</a> Nat. Genet. 19, 379-383 (1998).</li>
<li>Korinek, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Two+members+of+the+Tcf+family+implicated+in+Wnt%2Fbeta-catenin+signaling+during+embryogenesis+in+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Two members of the Tcf family implicated in Wnt/beta-catenin signaling during embryogenesis in the mouse.</a> Mol. Cell Biol. 18, 1248-1256 (1998).</li>
<li><a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comprehensive+molecular+characterization+of+human+colon+and+rectal+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Comprehensive molecular characterization of human colon and rectal cancer.</a> Nature. 487, 330-337 (2012).</li>
<li>Koboldt, D. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comprehensive+molecular+portraits+of+human+breast+tumours%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Comprehensive molecular portraits of human breast tumours.</a> Nature. , (2012).</li>
<li>Wood, L. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+genomic+landscapes+of+human+breast+and+colorectal+cancers%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">The genomic landscapes of human breast and colorectal cancers.</a> Science. 318, 1108-1113 (2007).</li>
<li>Berndt, J. D., Biechele, T. L., Moon, R. T., Major, M. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Integrative+analysis+of+genome-wide+RNA+interference+screens%5BTitle%5D)+AND+%22Science+Signaling%22%5BJournal%5D)">Integrative analysis of genome-wide RNA interference screens.</a> Science Signaling. 2, pt4(2009).</li>
<li>Falschlehner, C., Steinbrink, S., Erdmann, G., Boutros, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-throughput+RNAi+screening+to+dissect+cellular+pathways%3A+a+how-to+guide%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnology+Journal%22%5BJournal%5D)">High-throughput RNAi screening to dissect cellular pathways: a how-to guide.</a> Biotechnology Journal. 5, 368-376 (2010).</li>
<li>Boutros, M., Bras, L. P., Huber, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+cell-based+RNAi+screens%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Biology%22%5BJournal%5D)">Analysis of cell-based RNAi screens.</a> Genome Biology. 7, R66(2006).</li>
<li>Gilbert, D. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+novel+multiplex+cell+viability+assay+for+high-throughput+RNAi+screening%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">A novel multiplex cell viability assay for high-throughput RNAi screening.</a> PLoS ONE. 6, e28338(2011).</li>
</ol>

OK e LL sono autori di un brevetto relativo alla tecnologia multiplex luciferasi.

Ci sono diversi fornitori dei sistemi reporter luciferasi-based (come ad esempio Promega, sistemi di puntamento, New England Biolabs, e Thermo Fisher) che forniscono utili risorse on-line per coloro intrattenere uno schermo ad alta produttività per la prima volta. Inoltre, una serie di ottime recensioni riguardo ottimizzare l&#39;uso di schermi high-throughput per la scoperta del gene e come base di RNAi risultati di screening possono essere integrati con altri dataset-omiche basate dovrebbe essere utile 15,16.</su...

Una varietà di reporter luciferasi-based per il monitoraggio di una gamma diversificata di processi biologici cellulari sono disponibili in commercio. La maggioranza di questi DNA costruisce codificare proteine ​​luciferasi che sono indotte ad esprimere da stimoli specifici delle cellule o perturbazioni. La maggior parte dei giornalisti robusti transcriptionally basati inserire l&#39;espressione di un enzima luciferasi sotto il controllo di elementi enhancer sintetici o regioni promotore del gene ben stabiliti per la loro affidabilità nel riportare una fisiologicamente rilevanti 1,2 evento trascrizionale. Ci sono anche sistemi trans-reporter luciferasi che utilizzano GAL4-UAS per guidare l&#39;espressione della proteina luciferasi. GAL4 è un lievito attivatore trascrizionale e la SUP è un enhancer di GAL4 che si lega specificamente ad attivare la trascrizione di sequenze geniche poste a valle di esso 3. Questi tipi di sistemi di luciferasi sono tipicamente supportate da due plasmidi DNA - una codifica la proteina GAL4 fusa al regulatory porzione di una proteina di interesse, e il secondo codifica una proteina luciferasi posto sotto il controllo di una o più sequenze UAS. Così, il segnale luciferasi cellulare riflette il livello di attività della proteina di interesse. Un altro uso comune di reporter luciferasi è basati per monitorare la stabilità proteica quale una proteina di interesse è fuso ad un enzima luciferasi 4. Indipendentemente dal tipo di giornalista, un caveat emptor viene qui notare come non si può assumere la specificità di qualsiasi reporter di essere stato ben interrogato. Così, due diligence è richiesta la costituzione di nuovi costrutti reporter di qualsiasi strategia di ricerca. La selezione dell&#39;enzima luciferasi read-out può essere importante quanto l&#39;affidabilità dei elementi di DNA che controllano l&#39;espressione. Considerando lucciola luciferasi (FL) è l&#39;enzima più comunemente usato in costrutti disponibili in commercio, l&#39;avvento di nuovi sistemi di luciferasi che non richiedono ATP (come nel casodi reazioni FL-based), o che incorporano enzimi più stabili che emettono segnali forti promettono di migliorare l&#39;efficienza e l&#39;affidabilità di questa piattaforma di ricerca. Una nota importante per quanto riguarda la selezione dei reporter luciferasi in studi chimici è la suscettibilità di FL di inibizione chimica che potrebbe dare luogo a falsi rapporti. Nella nostra esperienza, altri enzimi come Renilla o Gaussia luciferasi (RL e GL, rispettivamente) che utilizzano come substrato coelenterazina sono meno facilmente inibito da piccole molecole 5. Il formato più comune per multiplazione luciferasi read-out comporta l&#39;uso di FL e RL largamente data la disponibilità di facile da usare kit con la capacità di misurare sequenzialmente attività enzimatiche da un singolo campione. Nella maggior parte kit, i campioni vengono prima esposti a luciferina per rivelare livelli di attività FL seguiti da un reagente tempra che viene contemporaneamente depositati presso coelenterazina per produrre una secondasegnale RL dary. Con l&#39;aggiunta di altri luciferases che possono essere secreti come GL o che utilizzano ancora un altro substrato quale Cypridina luciferasi (CL), un numero maggiore di possibilità per la generazione di dati di alta contenuti utilizzando luciferases sono emerse. Un esempio di un genoma schermo RNAi utilizzando questa tecnica può essere trovato qui 6. Questi progressi tecnologici hanno a loro volta stimolato lo sviluppo di meccanismi specifici per placare ogni tipo di enzima luciferasi per limitare diafonia 7. Nelle nostre mani, si nota una maggiore frequenza di &quot;effetti di bordo&quot; (tendenze inspiegabili in attività cellulare associato alla periferia di piastre di coltura ad alto titolo), con luciferases secrete come GL o CL. D&#39;altra parte, tali luciferases secrete sono utili per saggi cinetici quanto consentono di campionamento del segnale senza adulterare vitalità cellulare. Per il nostro studio qui presentato, avremo contemporaneamente monitorare l&#39;attività dei tre cancro rilevantiprocessi cellulari: il p53, Kras, e Wnt vie di trasduzione del segnale. I giornalisti incorporati nel nostro studio sono il pp53-TA-Luc FL giornalista Clontech (d&#39;ora in poi indicato come il giornalista p53-FL) 8, un sistema giornalista Elk1-GAL4/UAS-CL (d&#39;ora in poi Elk-1 giornalista, Agilent), e la 8X TCF RL giornalista che incorpora più elementi enhancer sintetici riconosciuti dalle Wnt pathway regolatori trascrizionali noti come fattori di cellule T (o TCF) 9-11.

<table><tbody><tr><td colspan="4">REAGENTS</td></tr><tr><td>PathDetect Elk1 Sistema di Trans-Segnalazione</td><td>Agilent Technologies Inc.</td><td></td><td></td>219005</tr><tr><td>Sistema di luciferasi per la profilazione del percorso 4 pp53-TA-Luc Vector</td><td>Clontech Lab Inc.</td><td></td><td></td>631914</tr><tr><td>Reagente di trasfezione Effectene</td><td>Qiagen Inc.</td><td></td><td></td>301427</tr><tr><td>Sistema di analisi reporter a doppia luciferasi</td><td>Promega Corp.</td><td>E1960</td><td></td></tr><tr><td>Cypridina Luciferase Reagente del saggio</td><td>Sistemi di puntamento</td><td>VLAR-1</td><td></td></tr><tr><td>HCT116 cellule</td><td>ATCC</td><td>CCL-247</td><td></td></tr><tr><td>CytoTox-Fluo Cytotoxicity Assay</td><td>Promega Corp.</td><td>G9260<</td><td></td></tr><tr>td colspan="4">EQUIPMENT</td></tr><tr><td>MultiFlo Microplate Dispenser</td><td>Labsystems Inc.</td><td>Modello 832</td><td></td></tr><tr><td>Biomek FXP Stazione di lavoro per l'automazione di laboratorio</td><td>Beckman Coulter Inc.</td><td>A31842</td><td></td></tr><tr><td>PHERAstar FS-lettore di micropiastre HTS multimodale</td><td>BMG Labtech Inc.</td><td>0471-101A</td><td></td></tr><tr><td>Ematocitometri Reichert a linea chiara</td><td>Hausser Scientific Company</td><td>1490</td><td></td></tr></tbody></table>

una piattaforma di screening luciferase basata multiplex per interrogare il cancro-associata trasduzione del segnale in cellule in coltura

A Multiplexed Luciferase-based Screening Platform for Interrogating Cancer-associated Signal Transduction in Cultured Cells

Interrogatorio genoma scala della funzione genica mediante RNA interference (RNAi) è di enorme speranza per l&#39;identificazione rapida delle chimicamente trattabili vulnerabilità delle cellule tumorali. Limitando il potenziale di questa tecnologia è l&#39;incapacità di delineare rapidamente la base meccanicistica dei risultati fenotipici e quindi informare lo sviluppo di strategie terapeutiche a bersaglio molecolare. Noi descriviamo qui i metodi di decostruire fenotipi cellulari indotti dal gene di RNAi mediato il targeting utilizzando sistemi reporter canalizzati che permettono il monitoraggio del cancro chiave processi associati alle cellule. Questa metodologia screening ad alto contenuto è versatile e può essere facilmente adattato per lo screening di altri tipi di grandi librerie molecolari.

Nonostante i progressi nella mappatura del paesaggio mutazionale di vari tipi di cancro che utilizzano enormi sforzi di sequenziamento del genoma 12-14, noi ancora non abbiamo in atto un approccio sistematico per la traduzione di queste osservazioni nelle strategie di intervento. Nel cancro del colon-retto (CRC), le mutazioni che si prevede di colpire i componenti di tre processi cellulari - Wnt / β-catenina, p53, e Kras segnalazione - si trovano nel 99% di tutti i tumori che suggeriscono che i fattori traina...

Il raggiungimento di un livello di sistemi di comprensione dei processi cellulari è un obiettivo di biologia cellulare moderna. Descriviamo qui le strategie per multiplazione reporter luciferasi di varia funzione cellulare end-point per interrogare la funzione del gene utilizzando genoma scala librerie di RNAi.

Una piattaforma di screening Luciferase basata multiplex per interrogare il cancro-associata trasduzione del segnale in cellule in coltura

Genome-scale interrogation of gene function using RNA interference (RNAi)  holds tremendous promise for the rapid identification of chemically tractable  ...

L'obiettivo generale del seguente protocollo è consentire l'analisi su scala genomica della funzione genica monitorando contemporaneamente diverse risposte cellulari. In questa dimostrazione, vengono utilizzati reporter basati sulla luciferasi di Firefly RAN e sulla luciferasi Cipro Dina per monitorare rispettivamente l'attività della via P 53 WINT e della via KRAS. Questi tre reporter vengono cotrasfettati insieme a irna diretti verso un gene di interesse in cellule HCT one 16, una linea cellulare di cancro del colon-retto.Successivamente, le attività della luciferasi di firefly e della luciferasi vanilla vengono misurate nei lisati cellulari, mentre l'attività della luciferasi Cipro DEA viene misurata in un enzima secreto nel mezzo di coltura. Si ottengono risultati che dimostrano la riproducibilità del sistema saggio nonché la capacità di rivelare azioni condivise e specifiche dei geni all'interno di questi tre percorsi biologici rilevanti per il cancro.Il principale vantaggio di questa tecnica rispetto ai metodi esistenti come microray o pries multicolore è che rappresenta un approccio economico, universale ed efficiente dal punto di vista dei costi per analizzare i prodotti ce

a-multiplexed-luciferase-based-screening-platform-for-interrogating

Research

Ricerca

JoVE Journal

Medicine

Medicina

Orologi circadiani funzionare all'interno di singole celle, cioè, sono cellule autonome. Qui, descriviamo i metodi per la generazione di cellule autonome modelli di orologio con tecniche non invasive, luciferasi a base di tecnologia in tempo reale bioluminescenza. Cellule Reporter fornire trattabili, sistemi modello per lo studio della biologia funzionale circadiano.

Monitoraggio Cell-autonome Ritmi orologio circadiano di espressione genica mediante bioluminescenza Reporter luciferasi

In questo video, descriviamo un metodo che evidenzia l'utilità del saggio di bioluminescenza per lo screening sensibile e rapido dei farmaci. Questi farmaci possono essere testati da soli o in combinazione per valutare il sinergismo nel loro meccanismo d'azione.

Saggio basato sulla bioluminescenza cellulare: un metodo ad alto rendimento per lo screening combinatorio di farmaci

In questo video, dimostriamo un test rapido a singola aggiunta per valutare la vitalità cellulare in organoidi derivati da pazienti dopo il trattamento con un agente di prova che utilizza i livelli intracellulari di ATP come marcatore per l'attività metabolica cellulare. I livelli intracellulari di ATP sono misurati utilizzando la reazione luciferasi/luciferina, dove l'intensità della luce emessa indica la vitalità cellulare e, a sua volta, la potenza inibitoria della crescita dell'agente in...

Saggio di vitalità della luciferasi basato su ATP: un metodo omogeneo per valutare il potenziale inibitorio della crescita degli agenti di prova su organoidi tumorali

Il video mostra il dosaggio della luciferasi utilizzato per quantificare le proteine marcate con luciferasi. Il test utilizza un enzima luciferasi ingegnerizzato composto da un frammento di grandi dimensioni che si lega al frammento piccolo, che è coniugato con una proteina di interesse. Le subunità legate formano un enzima attivo che, in presenza del substrato, rilascia un segnale luminescente. Questo segnale viene quindi quantificato utilizzando un luminometro.

Il saggio della luciferasi: un test ad alto rendimento per misurare i segnali luminescenti utilizzando bioreporter ingegnerizzati basati su sistemi di nanoluciferasi

Vi presentiamo un metodo di screening rapido e poco costoso per identificare regolatori trascrizionali utilizzando high-throughput transfezioni robotici e un dual-bagliore saggio di luciferasi in casa. Questo protocollo genera rapidamente dati scalo side-by-side funzionali per migliaia di geni ed è facilmente modificabile per indirizzare qualsiasi gene di interesse.

High-throughput screening funzionale utilizzando una casalinga Dual-glow Luciferase Assay

Presentiamo in questo studio un test basato sulla fluorescenza romanzo utilizzando linfociti derivati ​​da un topo transgenico. Questo test è adatto per high-throughput screening (HTS) di piccole molecole dotate di capacità di una inibizione o la promozione di attivazione dei linfociti.

Una fluorescenza a base di linfociti Assay Adatto per high-throughput screening di piccole molecole

Qui presentiamo un biosensore basato su luciferase per quantificare l'attività della chinasi del soppressore del tumore grande (LATS)-una centrale chinasi della via di segnalazione di Ippona. Questo biosensore ha diverse applicazioni nella ricerca di base e traslazionale, volta ad indagare Hippo pathway regolatori in vitro e in vivo.

Monitoraggio di Hippo segnalazione attività di via utilizzando un biosensore di basati su Luciferase grande tumore soppressore (LATS)

Per identificare nuovi regolatori dei fattori di trascrizione, abbiamo sviluppato un approccio per lo screening delle librerie di arumani lentivirali o retrovirali con array utilizzando un saggio di reporter trascrizionale basato sulla doppia luciferasi. Questo approccio offre un modo rapido e relativamente poco costoso per vagliare centinaia di candidati in un unico esperimento.

Identificazione dei regolatori dei fattori di trascrizione mediante lo screening a media velocità di lettura di librerie in serie e un reporter basato su Dual-Luciferase

Questo protocollo descrive un metodo semi-automatico per screening di farmaci organoidi a medio-alto rendimento e un software di analisi delle immagini automatizzato indipendente dal microscopio per quantificare e visualizzare risposte multiparametriche a singolo organoide per catturare l'eterogeneità intratumorale.

Screening multiparametrico di farmaci organoidi tumorali mediante imaging a cellule vive a campo ampio per analisi di massa e organoidi singoli

Gli organoidi tumorali derivati da pazienti sono un sofisticato sistema modello per la ricerca di base e traslazionale. Questo articolo sui metodi descrive in dettaglio l'uso dell'imaging fluorescente multiplexato di cellule vive per la valutazione cinetica simultanea di diversi fenotipi organoidi.

Imaging multiplexato di cellule vive per le risposte ai farmaci in modelli di organoidi derivati da pazienti

Una delle principali sfide nello sviluppo di nuove terapie per il cancro del polmone include la modellazione del microambiente tumorale man mano che la malattia regionale progredisce verso la malattia metastatica. Qui, descriviamo un metodo semplice per stabilire un modello singenico ortotopico del cancro del polmone che consente il monitoraggio in vivo della malattia nel tempo.

Un metodo minimamente invasivo per la generazione di un modello murino ortotopico singenico di carcinoma polmonare

Scopri un metodo di screening multiplex con luciferasi per analizzare le vie di segnalazione P53, WNT e KRAS in cellule HCT116 di cancro colorettale. Questa piattaforma consente l'interrogazione a scala genomica delle funzioni geniche.

Una piattaforma di screening Luciferase basata multiplex per interrogare il cancro-associata trasduzione del segnale in cellule in coltura (Video) | JoVE Journal

Una piattaforma di screening Luciferase basata multiplex per interrogare il cancro-associata trasduzione del segnale in cellule in coltura

Esplora altri video