Name: 포유류의 전체 배아 문화에 적합 쥐 혈청의 제조 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-08-03T22:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 48 s
Description: 배우세요 포유류 전체 배아 배양을 위한 고품질 쥐 혈청 제조 방법을. 즉시 원심분리로 용혈을 최소화하여 배아 생존율을 높이고 발달생물학 연구의 신뢰성을 향상시킵니다.

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이치죠 하지메 씨의 동영상 녹화와 동영상 편집에 관한 유용한 조언에 감사드립니다. 또한 동물의 보살핌에 대해 오스미 연구실 멤버분들께도 감사드립니다. 이 연구는 일본 문부과학성(MEXT)에서 N. O.까지 혁신 영역, 신경 다양성 및 신피질 조직에 대한 과학 연구를 위한 보조금(Grant-in-Aid for Scientific Research on Innovative Area, Neural Diversity and Neocortical Organization)의 지원을 받습니다. T. K.는 JSPS for Young Scientists의 Research Fellowship의 지원을 받았습니다.

참고 : 동물 실험은 실험 동물의 관리 및 사용을위한 건강 가이드의 국립 연구소에 따라 수행 하였다. 의학의 동북 대학 의과 대학의 동물 실험에 대한위원회는 여기에 기술 된 실험 절차를 승인했다. 1. 마취와 개복술 <ol style="margin-left: 40px;"><li> 혈액 수집의 경우, 특정 병원균이없는 수컷 흰쥐를 사용합니다. 물을 제공하는 동안 적어도 18 시간 동안 쥐를 빨리. 혈액을 수집하기 위해 연령 (550-650그램) 6-8 개월에 은퇴 한 남성 개종 쥐를 사용합니다. </li><li> 10 분 동안 2.0-3.5 L / min으로 마취를 소개하는 마취 장치에 연결 상자에, 흡입 마취제 2.5-4.0 % 이소 플루 란 (isoflurane)을, 흐름. 마취를 소개하는 상자에 쥐를 전송합니다. <ol><li> 집게와 발에 자극에 대한 반응의 손실을 확인하여 마취를 확인합니다. 쥐 위스콘신의 코를 커버깊게 채혈 동안 래트를 마취 마취 장치에 접속 마스크를 토륨. 농도 및 유량은 각각 2.5-4.0 %에서 유지 2.0-3.5 L / 분됩니다. 참고 : 배아이 시약 전시 이소 플루 란 (22) 마취 쥐에서 얻은 혈청에서 배양 된 배아에 비해 배아 발달의 지연으로 마취 쥐에서 수집 된 혈청에서 배양하기 때문에 할로 세인은 흡입 마취에 사용해서는 안된다. </li></ol></li><li> 모피의 오염을 방지하기 위해, 마취 된 쥐의 복부에 70 % 에탄올을 주입하여 피부를 소독. 포셉 한 쌍의 하부 영역에서 소독 된 피부와 복부 벽을 선택하고 내부 장기를 노출하는 큰 가위로 가슴 지역으로 동시에 이러한 레이어를 잘라. 포셉 한 쌍의 복강 외부의 창자를 반영합니다. </li><li> 와 함께 두 다리쪽으로 피부와 복부 벽을 잘라큰 가위의 쌍은 더 뒤 복부를 노출합니다. 포셉 한 쌍의 복강 외부에 여분의 지방을 반영한다. </li><li> 포셉 두 쌍을 사용하여 중간 선에서 내장 지방을 선택하고 복부 대동맥을 노출 평행 방향으로 조심스럽게 지방을 분할. 쉽게 복부 대동맥의 분기점을 식별 할 수있는 길이 방향으로 내장 지방을 분할하려면이 절차를 반복합니다. 또, 대동맥 박동성이며,이 특성을 이용하여 인접 대정맥으로부터 구별 될 수있다. </li><li> 포셉 두 쌍의 신중 복부 대동맥 주위에 지방과 분기를 들고 복부 대동맥에 지방을 분리합니다. </li></ol> 2. 혈액 수집 <ol style="margin-left: 40px;"><li> 조심스럽게 아래 방향으로 경사와 대동맥의 분기점, 즉시 두개골 20 ML의 주사기에 연결된 21 G 바늘의 끝 부분을 삽입합니다. 하나와 주사기를 잡고손과 남성 쥐의 혈액 15 ㎖를 수집하기 위해 천천히 주사기를 잡아 당깁니다. </li><li> 주사기에서 바늘을 제거하고, 두 개의 얼음처럼 차가운 10-ML 멸균 테스트 튜브 (그림 1A)에 혈액을 붓는다. 원심은 혈액 응고의 형성을 지연 할 때까지 얼음에 튜브를 유지합니다. 한 번에 여러 개의 튜브를 원심 분리하여 원심 분리 시간을 줄일 수 있습니다. </li><li> 개흉술 및 심장이나 잘린 절단에 의해 마취 된 쥐를 안락사. </li></ol> 3. 쥐 혈청 준비 <ol style="margin-left: 40px;"><li> 상부층과 하부층 (도 1C)에 혈액을 분리하기 위해 1200 XG 실온 (RT)에서 5 분 동안 수집 된 혈액을 원심 분리기. </li><li> 섬유소의 응고를 해결하기 위해 1.5 ~ 2 시간 동안 4 ° C에서 튜브를 유지합니다. </li><li> 곡선 포셉 한 쌍을 사용하여 상위 계층에있는 섬유소의 응고를 선택하고, 혈청을 분리하는 섬유소 응고를 짠다. 그런 다음 할 일에 직면 곡선 집게와 섬유소 응고를 눌러두 개의 레이어 (그림 1D) 사이의 인터페이스 근처 wnwards. </li><li> 또한 섬유소의 응고를 분리하는 단계 3.3를 반복합니다. </li><li> 1,200 XG 및 RT (그림 1E)에서 5 분 동안 테스트 튜브를 원심 분리기. </li><li> 조심스럽게 층류 공기 흐름 캐비닛에 멸균 피펫을 사용하여 15 ㎖의 멸균 튜브에 혈청을 전송합니다. </li><li> 남아있는 붉은 세포를 제거하기 위해 1,200 XG와 RT에서 5 분 동안 수집 된 쥐의 혈청을 원심 분리기. </li><li> 튜브 (그림 1 층)의 하단에 잔류 붉은 세포에 의한 오염을 방지하기 위해 멸균 피펫을 사용하여 관을 소독 새로운 15 ㎖의주의 혈청 해변. </li><li> 보체계를 실활 30 분 동안 56 ℃에서 수욕 혈청을 배양한다. </li><li> 층류 공기 흐름 캐비닛에 RT로 쥐의 혈청 튜브를 냉각. 혈청 개별 멸균 튜브에 10 ml로 분주합니다. 사용 (그림 1H)까지 -20 ° C에서 튜브를 저장합니다. </li></ol>

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이해 상충은 선언되지 않습니다.

WEC 실험 결과의 재현성이 높은 품질의 IC 쥐의 혈청과 정확한 배아 해부 기술 3의 사용에 의존하고 있습니다. 금식은 혈액에있는 포도당의 농도를 표준화 할 필요가 있기 때문에 혈액을 수집하기 전에 금식의 기간을 단축하지 마십시오. 호르몬 수준은 발정주기에 따른 여성 동물에서 변화하기 때문에 암컷 쥐 혈청의 제조에 사용되지 않아야하고, 에스트라 디올과 같은 호르몬 변화는 배아 배양에 부적합하다. 또, 극단적 지방산 수컷 래트 혈액 지질 오염 고액 피하기 위해 혈청 제조에 사용되어서는 안된다. 피를 수집 할 때, 먼저 동맥 혈액의 색이 마취 정상적인 호흡을 반영, 밝은 붉은 색 있는지 확인합니다. 감소 호흡 수집 혈액의 양의 감소에 이르게한다. 이러한 경우에 복구하려면 일시적 주사기 PU되는 속도를 줄이기LLED. 혈청 준비에서 가장 중요한 문제는 용혈입니다. 수집 된 혈액 샘플이 심한 용혈을 나타낼 경우에, 혈액은 원심 분리에 의해 2 층으로 분리하지 못...

모델 동물의 다양한 분자 및 세포 수준에서 발달 메커니즘을 조사하기 위해 발달 생물학에 사용됩니다. 예를 들어, 양서류와 조류 종은 널리 이러한 태아가 어머니의 외부 개발하기 때문에 태아의 직접 조작에 적합한 클래식 모델 동물로 사용되어왔다. 이 동물과는 달리, 포유류의 태아는 엄마의 자궁에서 성장하고, 이후 단계에서의 성장은 자궁의 기능에 결정적으로 의존한다. 따라서, 직접적 초기 단계에서 마우스 및 래트에서 것과 포유류 배아를 조작하는 통상적 어렵다. 1960 년대에, 데니스 새로운 지속적인 산소 공급 및 열 제어 1 WEC 장치를 사용하여 포유류의 전체 배아 문화 (WEC) 기술을 설립했다. WEC에서, 마우스 및 쥐의 배아는 생체, (즉, 자궁의 이상으로) 증가 할 수 있습니다. WEC 기술은 종종 다양한 Chemic의를 추가하여 기형에 사용되었지만AL은 배양액에 화합물이 기술은 또한 포유 동물 2-4에서 고유 발달 메카니즘을 조사하기 위해 다양한 개발 생물학 연구에서 사용되었다. 예를 들어, WEC는 형광 염료 4.0, 세포 이식 (6) 및 리포 펙션 (7) 및 일렉트로 8-13 통한 유전자 도입을 이용하여 야생형과 돌연변이 등의 배아 세포 라벨링 등의 다른 기술과 결합된다. 최근 자궁 조작에 나중 단계에서 쥐의 배아에서 발달 과정을 분석하는 데 사용되었으며, 일렉트로 기술 14 ~ 16과 결합되어 있습니다. 그러나, 이들 기술은 초기 단계 배아에 DNA 용액의 정확한 로컬 주입을 달성 어려움으로 인해 postimplantation 및 midgestation 배아의 조작에 적합하지 않다. 비록 초기 배아 (에 초음파 유도 세포 이식 및 바이러스 벡터를 주입 즉,, E8.5-E-9.5 마우스의) 자궁 내 이전에 17, 18, ​​우수한 기술은 높은 성공률로이 실험을 수행하는 데 필요한보고되었습니다. 따라서, 높은 접근성 생체와 WEC는 마우스와 쥐 배아의 조작에 대한 장점이 있습니다. 수컷 쥐에서 준비 즉시 원심 분리 (IC) 쥐의 혈청은 종종 WEC 매체에 사용됩니다. 배아 (쥐 마우스 나 E10.0에서 E8.0 이전 즉,) postimplantation 단계에서 배양하면, 합성 중간 IC 쥐 혈청의 혼합물은 종종 WEC 19을위한 매체로 사용됩니다. 더 현재 대안 미디어가 할 수 없기 때문에 그러나, 중반 임신에서 문화 배아에 (즉., E8.0 12.5 마우스 배아 또는 쥐의 배아에서 E10.0-E14.5에서), 100 %의 혈청 매체로 사용한다 2 일 이상 체외에서 정상적으로 성장하는 배아. 고품질 쥐 혈청의 제조는WEC 실험에서 재현성을 달성하기위한 중요한 단계. 연기를 원심 분리에 비해, IC는 적혈구의 대부분이 이미 피브린 응괴로부터 분리 되었기 때문에 혈청 피브린 응괴를 짜내 수집 될 때 용혈을 줄이는 이점이있다. 용혈성 쥐의 혈청은 래트 및 마우스 배아의 정상적인 성장을 지원하는 데 실패 할 때, 즉시 원심 분리하여 혈청을 준비 지연 원심 분리를 사용하여 제조하는 것이 바람직하다. 우리의 프로토콜이 다른 프로토콜에 비해 두 단계를 추가로 포함 18 ~ 20 (예., 이전에 첫 번째 원심 분리에 얼음에 수집 된 혈액을 저장하고 처음으로 원심 분리 한 후 4 ° C에서 2 시간 동안 수집 된 혈액 샘플을 유지). 전반 단계는 혈병의 형성을 지연시킬 수 있고, 후자의 단계는 락 스퀴즈 피브린 응괴의 응고를 촉진시킨다. 따라서, 우리의 프로토콜은 초보자를 사용할 수 있습니다. 그러나, 재생 채혈하고 혈청단순히 프로토콜 책을 참조하여 정확하게 추출은 19 ~ 21 매우 어렵습니다. 이 비디오 문서에서는, 우리는 수컷 쥐와 원심 분리하여 혈청을 추출의 복부 대동맥에서 채혈을 포함 최적의 IC 쥐 혈청의 준비를위한 우리의 표준 프로토콜을 보여줍니다.

<table><tbody><tr><td>Isoflurane</td><td>Abbott</td><td>B506</td><td>쥐 마취용.</td></tr><tr><td>대형 가위</td><td>Napox</td><td>B-7H</td><td>쥐의 피부와 근육을 절단하기위한 스텔 화 가위.&nbsp;</td></tr><tr><td>구부려진 집게</td><td>Napox</td><td>A-3-2</td><td>쥐의 피부를 줍고 피브린 응고를 짜내기를 위한 Stelized 집게</td></tr>.<tr><td>Sprague-Dawley (SD) 쥐</td><td>Charles Rivers Laboratories</td><td></td><td>실험실의 식민지에서 은퇴 한 수컷 쥐 또는 은퇴 한 수컷 쥐를 구입했습니다.</td></tr><tr><td>주사기 (20 ml)</td><td>TERUMO</td><td>SS-29ESZ</td><td></td></tr><tr><td>바늘 (21 G x 5/8")</td><td>TERUMO</td><td>NN-2116R</td><td></td></tr><tr><td>멸균 테스트 (spitz) 튜브 (10 ml)</td><td>ASIAKIZAI</td><td>1101C000B-10</td><td>boold</td></tr><tr><td>멸균 일회용 피펫</td><td>수집용 Eiken Chemical</td><td>CD2000 No.4</td><td></td></tr><tr><td>살균 일회용 튜브 (15 ml)&nbsp;</td><td>팔콘</td><td>2196</td><td></td></tr></tbody></table>

포유류의 전체 배아 문화에 적합 쥐 혈청의 제조

Preparation of Rat Serum Suitable for Mammalian Whole Embryo Culture

포유류 전체 배아 배양(WEC)은 마우스 및 랫드 배아 발달 시 약리학적 독성을 조사하고 발달 과정의 메커니즘을 조사하는 데 널리 사용되는 기술입니다. 즉시 원심분리(IC) 랫드 혈청은 WEC에 일반적으로 사용되며 체외에서 배양된 마우스 및 랫드 배아의 성장 및 발달에 필수적입니다. 중임신 배아(즉, 마우스의 경우 E8.0-12.5, 랫드의 경우 E10.0-14.5)의 배양을 위해 100% 랫트 혈청은 체외 배아의 성장을 지원하는 데 가장 적합한 배지입니다. WEC에 적합한 랫트 혈청을 준비하려면 수집된 혈액을 즉시 원심분리하여 혈장 분획에서 혈액 세포를 분리해야 합니다. 원심분리 후, 피브린 응고는 상층에서 형성됩니다. 이 혈전은 한 쌍의 멸균 집게를 사용하여 부드럽게 짜낸 다음 혈청에서 혈액 세포를 완전히 분리하기 위해 원심 분리해야 합니다. 이 동영상 기사에서는 수컷 쥐의 복부 대동맥에서 채혈 및 원심분리를 통한 혈청 추출을 포함하여 최적의 IC 쥐 혈청을 준비하기 위한 표준 프로토콜을 보여줍니다.

도 1은 혈액 세포 및 혈청의 분리에 개시된 방법의 대표적인 결과를 나타낸다. 우리는 일반적으로 은퇴 한 남성 쥐 (그림 1A)에서 혈액 15 ㎖를 얻을 수 있습니다. 원심 분리에 의해 수집 된 혈액 혈청과 화살표로 표시되는 피브린 응고, 및 혈액 세포 (도 1c)를 포함하는 하부층을 포함하는 상부 층으로 분리 될 수있다. 중요한 사실은, 용혈성 혈액 샘플은 혈청, 혈액 층 (도 1b)로 분리 될 수 없다. 2 시간 동안 4 ° C에서 튜브를 떠난 후, 섬유소 응고 고체가됩니다. 이 응고 곡선 포셉 한 쌍의 (그림 1D)를 사용하여 섬유소 응고에서 혈청을 분리하는 데 편리합니다. 시험관이어서 원심 분리 하였다. 섬유소 응고 혈청과 혈구 층 (그림 1E) 사이의 인터페이스에서 볼 수 있습니다. 두 개의 테스트 튜브에서 혈청에 정리 된일회용 피펫을 사용하여 새 관. 전체 절차가 성...

포유류 전체 배아 배양 (WEC)은 기형학 및 발달 생물학에서 널리 사용됩니다. 즉시 원심분리된 랫드 혈청은 일반적으로 마우스 및 랫드 WEC 모두를 위한 배지로 제공됩니다. 이 비디오에서는 포유류 WEC에 적합한 고품질 쥐 혈청을 준비하기 위한 표준 프로토콜을 보여줍니다.

Mammalian whole embryo culture (WEC) is a widely used technique for examining pharmacological toxicity in developing mouse and rat embryos and for ...

기억 농업은 발달 중인 마우스 및 쥐 배아의 약리학적 독성을 조사하고 발달 과정의 메커니즘을 해결하기 위해 널리 사용되는 기술입니다. 즉각적인 센트 필드, 수컷 쥐에서 제조 된 쥐 혈청은 일반적으로 전체 농업 매체에 사용되었습니다. 농업용 배아가 임플란트 조직 단계와 반대로, 즉 마우스의 E 0.0 이전 또는 RUS 합성 배지의 E 10.0 이전에 IIC 쥐 혈청이 보충된 경우, 전체 배아 배양을 위한 배지로 자주 사용됩니다.그러나 임신 중기의 배아를 장기간 배양하기 위해서는 배아가 2일 이상 체외에서 정상적으로 성장할 수 있는 다른 대체 배지가 없기 때문에 100% 막대 혈청을 적절한 배지로 사용해야 합니다. 용혈성 적색 혈청은 혈액 샘플의 지연된 원심분리와 비교하여 자동차 배아의 정상적인 성장을 가정하지 않습니다. 즉시. 원심분리는 대부분의 적혈구가 피브로인 cr이 형성되기 전에 분리되기 때문에 용혈을 감소시킬 수 있습니다.따라서 hor 배양에 적합한 레드 세럼을 준비하기 위해서는 즉각적인 ification이 필수적입니다. 이 비디오에서는 쥐 혈청 준비를 위한 표준 프로토콜을 시연합니다. 혈액 수집을 위해 우리는 특정 병원체가 없는 확산을 사용합니다.돌리 쥐 암컷 쥐는 암컷 동물의 호르몬 수치 변화, ESRA 주기에 따른 및 과꽃 호르몬의 이러한 변화가 배양당 호르에 적합하지 않기 때문에 표면 혈청의 제조에 사용해서는 안 됩니다. 혈액을 채취하기 전에, 혈류 내 포도당 함량 농도를 표준화하기 위해 적어도 18 시간 동안 수컷 쥐를 단식하고, antheia 장치에 연결된 상자에 aslu 비를 뿌린 다음 상자에 쥐를 옮긴 다음 antheia를 도입하기 위해 집게로 막대기의 자극에 대한 반응 상실을 확인하여 마취를 확인합니다. 마취 장치에 연결된 마스크로 쥐의 코를 덮습니다. 쥐를 소독하십시오 혈액을 채취하는 동안 아니즈 쥐의 복부에 70 % 에탄올을 부어 피부를 소독하십시오. 털의 코가 오염되는 것을 방지하려면 한 쌍의 수도꼭지로 아래쪽 부위의 피부와 복벽을 집어 올리고 큰 가위로 흉부 부위쪽으로 이러한 층을 동시에 잘라 내부 장기를 노출시키고 한 쌍의 fps로 복강 외부의 장을 반사합니다.또한 큰 가위로 뒷다리 쪽의 피부와 복벽을 절개하여 한 쌍의 집게로 복강 외부의 여분의 지방이 적은 후복부 부위를 더 노출시키고 두 쌍의 집게를 사용하여 정중선의 내장 지방을 집어 올리고 평행 방향으로 지방을 조심스럽게 분할

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Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

배아 쥐의 두뇌 집합의 문화 시스템을위한 프로토콜이 설명되어 있습니다. 집계에 Multipotent progenitors 개발하고 뉴런, astrocytes 및 oligodendrocytes로 구별하실 수 있습니다.

신경 세포와 Glia 개발 연구 랫 두뇌 집계 문화의 준비

전체 배아 문화 기술 문화 마우스 및 쥐 배아 우리에게...

회전 형 바틀 문화 시스템을 사용 로던트 전체 엠브료 문화의 방법

우리는 쥐 배아에서 hippocampal과 대뇌 피질의 신경 세포를 분리하고 문화에 빠른 방법을 설명합니다. 이 프로토콜은 우리가 거​​의 순수의 연결을 문화가 요구되는 실험을 수행할 수 있습니다.

쥐 배아 신경 세포의 분리 및 문화 : 빠른 프로토콜

배아 배양에 활용 혈청 특히 신호의 상호 작용을 포함하는 연구 실험의 결과에 영향을 미칠 수있는 알 수없는 구성 요소가 포함되어 있습니다. 여기서 우리는 혈청 산소 배양 시스템을 활용하고 16-40 시간 동안 배양 한 중간 회임 마우스 배아가 자궁에서 개발 태아에 비해 형태 개발을 전시 것을 보여줍니다.

무 혈청 전체 배아 배양 시스템에서 마우스 배아 개발

유도만능줄기세포(iPSC), 일차 피질 뉴런 및 성상세포에서 유래한 뉴런으로 구성된 공동 배양 시스템을 생성하는 프로토콜에 대해 설명합니다. 이 공동 배양 시스템을 통해 새로운 iPSC 유래 뉴런과 채널로돕신-2를 발현하는 기존 피질 뉴런 사이의 시냅스 접촉 및 회로 형성을 감지할 수 있습니다.

공동 문화 시스템에 신경 연결의 형성을 평가하기위한 Optogenetic 접근

이 프로토콜은 무혈청 단층 방법을 사용하여 배아 줄기 세포에서 신경 전구 세포를 생성하는 방법을 자세히 설명합니다. 이러한 전구 세포는 성숙한 신경 세포 유형을 유도하거나 신경 사양 과정을 연구하는 데 사용할 수 있으며 복합 스크리닝을 위한 멀티웰 형식 확장에 적합합니다.

혈청이없는 단층 문화 마우스 배아 줄기 세포의 신경 분화

우리는 배양된 세포를 초기 마우스 배아의 정의된 부위에 이식하여 생체 내 잠재력을 결정하는 방법을 보여줍니다. 또한 알려진 직경의 유리 모세혈관을 사용하는 최적화된 전기천공법(electroporation method)을 도입하여 배아의 몇 개의 세포에 외인성 DNA를 정확하게 전달할 수 있습니다.

초기 Postimplantation 마우스 배아로 세포 나 DNA를 정확하게 현지화 전송하는 방법

희소돌기아교세포는 중추신경계의 수초세포입니다. 이 프로토콜은 쥐 피질에서 전구체인 희소돌기아교세포 전구 세포를 분리 및 배양하는 방법과 실험 요인에 따라 체외에서 희소돌기아교 형성을 평가하기 위한 빠르고 신뢰할 수 있는 정량적 방법을 설명합니다.

쥐 희소 돌기 아교 세포 전구 문화의 준비 및 Oligodendrogenesis의 정량화 이중 적외선 형광 스캔을 사용하여

조혈 줄기 및 전구 세포 (HSPC)는 아직 작은 일부 내피 세포는 혈액이 형성되기 위해 지정하는 과정에 대해 알려진, 개발 과정에서 전문 (hemogenic) 내피 세포에서 파생. 우리는 뮤린 배아 조직으로부터 hemogenic 내피 세포 HSPC 동시에 아이솔레이션을 허용하는 유동 세포 계측법 기반 방법을 보여준다.

쥐 배아 Hemogenic 내피 세포의 분리

여기서, 우리는 높은 수율과 재현성을 가진 배아 피질에서 뉴런 및 성상세포 농축 배양, 또는 뉴런 glia 배양을 확립할 수 있는 특정 배양 매체를 사용하여 간단한 접근법을 제시합니다.

이혈증에서 신경 신경-Glia 상호 작용의 역할을 공부 하기 위한 세포 배양 모델

전체 배아 배양을 위한 향상된 플랫폼은 사전 배기 단계부터 고급 유기발생까지 최대 6일 동안 이식 후 마우스 배아의 연속적이고 강력한 전자궁 개발을 가능하게 합니다. 이 프로토콜에서는 정적 플레이트와 회전 병 시스템을 사용하여 성공적인 배아 배양을 위한 표준 절차를 자세히 설명합니다.

엑스 우테로 사전 배후에서 고급 유기발생에 이르는 마우스 배아의 배양

배우세요 포유류 전체 배아 배양을 위한 고품질 쥐 혈청 제조 방법을. 즉시 원심분리로 용혈을 최소화하여 배아 생존율을 높이고 발달생물학 연구의 신뢰성을 향상시킵니다.

포유류의 전체 배아 문화에 적합 쥐 혈청의 제조

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