Name: 열 충격이 치료와 제브라 피쉬 배아의 배수성 조작 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-12-16T13:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 19 s
Description: 배우세요 제브라피쉬 배아에서 열 충격을 이용한 배수성 조작 방법을. 이 기술은 세포질 분열 억제를 통해 이배체화를 촉진하며, 유전학 연구와 근교계 품종 생성에 활용됩니다.

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매디슨과 기관 동물 관리 및 사용위원회 (IACUC) 가이드 라인 (위스콘신 대학 - - 매디슨 보증 번호 A3368-01) 모든 동물 실험은 위스콘신 대학에 따라 실시 하였다. 1. 중단 된 결합을 통해 계란 컬렉션 여성을 선택 참고 : IVF 기반 프로토콜 수동 압력 9 여성의 성숙한 계란의 압출에 의존하고 있습니다. 이전 프로토콜 난자 방출 거동을받은 암컷없이 탱크 또는 쌍 교배 직접 암컷을 사용했지만 (제브라 피쉬 라인에 따라 약 20 % 이하)이 여성의 단지 작은 분획은 수동 압력에 압출하고 유능한 계란을 얻었다. 개선 된 절차에서, 여성은 사전 분류 직접 육안으로 달걀 누워 위해, 상대의 즉각적인 중단 다음에 있습니다. 이 절차는 거의 모든 여성이 돌출하고 유능한 계란이 중단 짝짓기 단계 수율을 통해 미리 선택, 매우 효과적이다수동 압력에 따라. <ol><li> 실험 전에 오후, 표준 제브라 피쉬 상대 상자에서 원하는 제브라 피쉬 변형의 결합 쌍을 설정합니다. 상대 상자 분할을 통해 또는 알을 낳는 삽입에서 남성과 삽입 내부에 여성을 배치하여 하나, 아직 물리적으로 분리 여성과 동일한 챔버 내에서 남성을 유지합니다. </li><li> 그 상대가 시작되도록 실험의 아침, 같은 알을 낳는 삽입 내에서 남성과 여성 모두를 배치, 물리적 파티션을 제거합니다. </li><li> 시각적으로 자연 교배 동안 계란의 압출을 검출하기 위해 결합 쌍을 포함하는 탱크를 검사합니다. 계란 돌출, 별도의 남성과 여성의 첫 번째 징후에서 번식을 중단합니다. 남성에서 분리 한 후, 미리 선택된 여성 개별적 또는 동일한 탱크에 모으고 유지. (일반적으로 50-150 계란 / 여성) 원하는 배아의 수에 따라 여러 암컷을 사용합니다. </li></ol> 2. 정자 솔루션을 준비 참고 : IVF r에정자 솔루션 성숙 계란의 노출에 elies. 이 솔루션은 (HS2 처리에 동형 접합 이배체 배아가) 반수체 접합체를 생성하기 위해, 또는 (HS2 처리 될 배체 배아에있는) UV 처리 이배체 접합체를 생성하기 위해, 치료가 될 수 있습니다. 이전 정자 제조 프로토콜은 실시간 남성의 항문 영역으로부터 이리를 수집 모세관의 사용을 제안하지만, 남성의 단지 작은 분획이 이리 9 수득 이것은 비효율적 인 방법이었다. 아래에 제시 프로토콜은보다 안정적인 결과를 얻을 수 전단 해부 고환에서 정자의 준비, 대신에 의존합니다. <ol><li> (해결 1, 2, 4 및 5)의 모든 구성 요소 포함하는 앞서 행크의 프리믹스 용액으로서 시간 행크 용액을 제조 중탄산 나트륨 용액을 제외하고 (용액 6). 실험 (표 1)의 아침을 해결 6 신선한를 준비하고 예비 혼합물에 추가 할 수 있습니다. 행크스 &#39;솔루션 (최종 솔루션을 위해 아침을 준비IVF 절차) 행크의 프리믹스 990 UL 및 갓 만든 용액 (6)의 10 μL를 결합한다. </li><li> 에어컨 물에 0.016 % 용액으로 tricaine에 과다 노출로 남성을 안락사. <ol><li> 물에 0.2 % 원액으로 tricaine을 준비합니다 (1M 트리스 pH를 9.0으로 pH 7.0 버퍼)와 4 ℃에서 보관하십시오. 비커에 물 100ml 당 tricaine 주식 솔루션 8 ML을 추가하고 tricaine 솔루션에 남성을 전송 그물을 사용합니다. </li><li> (100 μL / 클러치 (10) 클러치를 비옥하게하기 위해, 1 ml의 행크의 솔루션에서 수집 된 10 명의 남성에서 예를 들어 고환) 남성 당 100 μL에 해당하는 행크의 솔루션의 볼륨에 수정 된 될 필요가 클러치 당 하나의 남성에 대한 고환의 동등한를 사용합니다. </li><li> 15 분 동안 아가미 운동의 중단에 의해 안락사를 확인합니다. 안락사 후, 숟가락 비커에서 남성을 제거합니다. 컨디셔닝 물을 간략하게 남성을 씻어과의 여러 위치에 간단히 배치하여 그들을 가볍게 건조종이 타월. </li></ol></li><li> 고환, 해부 가위 또는 면도날을 사용하여 첫 번째 목을 벨 안락사 남성을 제거하고, 반사 된 광원 scissors.Under에게 해부 현미경을 해부와 복부를 따라 길이 절단을, 해부 집게와 내부 장기를 제거하십시오. 집게와 고환의 질량을 각각 잡아 당겨 행크의 솔루션을 포함하는 microcentrifuge 관 내부에 배치합니다. 주 : 고환 배설강 근처 수렴 개의 기다란 몸체 벽 옆에 발견 반투명 외관 구조 및 각각 식별 할 수있다. 고환은 절개 후 페트리 접시 표면에와 ​​행크의 솔루션에 배치하기 전에 2 ~ 3 분을 머물 수 있습니다. </li><li> 좁은 주걱으로 고환 전단 및 / 또는 부드럽게 공기 방울 형성을 피하면서, 최대 피펫 팅과 1000 μL 팁 마이크로 피펫과 솔루션에서 아래로 5 ~ 6 배의 고환에 의해 용액에 정자를 놓습니다. 고환 파편 정착하자. </li><li> 이 최대 2 ~ 3 시간 동안 그 효력을 유지할 수 얼음의 정자 솔루션을 저장합니다. 정자 용액의 UV 처리로 진행하는 경우, 뒤에 고환의 조각을 떠나 깨끗한 microcentrifuge 관에 솔루션을 전송합니다. </li></ol> 3. UV 처리 주 : UV 처리는 배아 비활성 렌더링하기 위하여 정자 DNA를 가교하기 위해 사용된다. gynogenetic 반수체 또는 동형 접합 gynogenetic 배체 배아를 생성 할 때이 단계에만 사용됩니다. UV 처리를위한 정자 용액이 고환 (단계 2.4)의 조각에서 분리되어야, 큰 조각은 UV 처리에서 정자를 보호 할 수 있습니다. <ol><li> 얼음 침대에 앉아 우울증 유리판의 깨끗하고 마른 우물 (페트리 접시 안에 예를 들어 얼음)에 정자 솔루션을 전송합니다. 물론 유리 접시 당 정자 액 1ml까지 사용할 수 있습니다. </li><li> 자외선 램프 하에서 얼음 침대에 오목 유리판을 배치하여 UV에 정자 용액을 노출. 115 V (60 Hz에서 90 초 동안 정자 솔루션을 치료, 0.68A)는 19cm (7.5 인치) 거리에서 UV 램프. 피펫 팁의 끝으로 부드럽게 UV 치료 중 매 30 초 (깨끗한 피펫 팁 매 30 초를 사용) 솔루션을 섞는다. </li><li> 깨끗한 피펫 팁 및 마이크로 피펫을 사용하여, 새로운 마이크로 원심 튜브에 처리 정자 용액 옮긴다. (추출 2-3 시간보다 더 이상) IVF에 필요한까지 얼음에 보관하지 않는다. </li></ol> 성숙한 계란 4. 수동 압출 참고 : 쉽게 마취 및 수동 압력 계란을 얻을 것입니다 자연 교배의 중단에 의해 얻어진 여성. 이 절차를 수행하는 동안, tricaine 처리는 신중하게 여성의 복구를 방지 할 수있다 과다 노출을 방지하기 위해 제어되어야한다. <ol><li> tricaine 솔루션에 빛 노출에 의한 여성 마취 : 컨디셔닝 물에 솔루션을 tricaine하는 순으로 전송 암컷 물고기 정지 할 때까지 약 2-5 분 동안 (조건 물고기 물 8 Tricaine 0.2 % 원액의 ml를 100 ml에 첨가하여 만든) 아가미 운동. </li> &lt;리는&gt; 곧 여성이 아가미의 움직임을 정지 한,를 수집하고 간략하게 조절 된 물에 씻어 숟가락을 사용합니다. 그럼에도 불구하고, 물고기를 이동 종이 타월의 여러 위치에 간단히 반복 배치하여 가볍게 건조하고 깨끗하고 마른 10cm 직경 페트리 접시에 전송하는 숟가락을 사용. 잠재적으로 아가미 아가미 손상을 방지하기 위해, 후방 방향으로 전방에있는 스푼으로 물고기를 접근. </li><li> 중간에 물에 의해 활성화되는 모든 발표 계란을 방지하기 위해, 부드럽게 더 뒷 지느러미 영역을 건조 실험실 천이나 부드러운 티슈를 사용합니다. 손가락을 완충하는 것은 물을 살짝 (그들에게 물고기 비늘을 고집 피하기 위해) 지원 등 여성의 뒤쪽에 한 손의 손가락 하나를 배치하고 계란이 돌출 될 때까지 다른 손의 손가락으로 여성의 복부를 따라 약간의 압력을 적용합니다. </li><li> 여성의 몸에서 계란을 멀리 이동하는 좁은 주걱을 사용합니다. 복구를위한 조절 된 물 탱크로 다시 여성을 놓습니다. <br/&gt; 참고 : 여성이 그녀의 몸의 한쪽에 누워있는 동안 계란 압출되면, 그녀가 뒤집어 될 수 있으며, 그녀의 다른 측면에 반복 프로세스가 추가 계란을 얻었다. , 여성의 전체 복구를 보장 복부 만 부드러운 수동 압력을, 미만 2 분 물로 돌아 아가미 운동 정류장에서 절차를 수행합니다. </li><li> (물 노출) 활성화 및 압출 후 동시에 90 초 이내에 (정자 솔루션 첨가) 계란을 기름지게 (5 장 참조). </li></ol> 시험관 아기 (5) 참고 : 자연 십자가에서 Zebrafish의 수정은, 외부 결합 동안 달걀 물과 정자에 의해 동시 발매 및 활성화에 따라 달라집니다. 물의 존재에 정자 용액에 계란을 노출하여 체외 수정을 모방에서이 과정. 물의 양이 유효 정자의 농도를 증가시키기 위해 (1 mL)을 원래 작다. 정자에 의해 바인딩 15 ~ 20 초 10 &lt;내에서 발생/ SUP&gt;, 물 체적은 증가 될 수있다. 융모막 정자가 11, 12 바인딩에 대한 능력의 창을 제한하여 클러치의 마지막 동기화에 더 기여를 해제. 생성 된 배아 따라서 초기 절단 단계 동안 거의 동시에, 세포 분열주기를 나타낸다. <ol><li> (한 남성의 고환에 해당에 해당 - 제 2 부 참조) 정자 용액 100 μl를 추가 페트리 접시에 압출 계란의 클러치를. 조심스럽게 달걀 손상을 방지하기 위해 배양 접시의 표면에서 팁을 들어 올리지해야되고, 함께 정자와 계란을 섞어 계란 중 정자의 솔루션을 추가하는 데 사용 피펫 팁을 소용돌이 친다. </li><li> 즉시 배아 매체 (E3) 용액 1 ㎖를 추가하여 계란을 활성화 부드럽게 피펫 팁과 소용돌이로 다시 부드럽게 계란을 섞어 정자 (에어컨 물은 또한 부품 (7)을 통해 5 E3에 대한 대체 가능). 수정에 타이밍 상대를 시작하는 타이머를 시작합니다. </l난&gt; <li> 1 ml의 볼륨 1 MPF에, E3와 함께 접시 홍수. 계속하기 전에 전체 융모막 확장을 포함하여 계란 활성화를 허용하기 위해 10 ~ 12 MPF 때까지 그대로 둡니다. </li></ol> 6. 열 충격 치료 주 : 초기 배아 적용 열충격 후속 세포주기 중에 2 스핀들 형성을 구동 중심 소체 불완전한 보수 결과 중심 소체 복제를 억제한다. 고랑 형성 (13)의 부족 턴 결과 스핀들의 부재. <ol><li> chorions의 확장 (10 ~ 12 MPF) 후, 차 여과기에 페트리 접시에서 배아를 붓는다. 차 여과기에 남아있는 배아를 수집하기 위해 E3와 세척 병을 사용하여 배양 접시를 씻어. </li><li> 28.5 ° C에서 E3와 예열 목욕 비커 내부의 배아와 차 여과기를 놓습니다. 수조 온도 비커와 E3 사전 평형, 충분한 E3가 확인되도록 차의 모든 배아스트레이너는 상기 매체에 노출된다. </li><li> 22 MPF에서 짧게는 28.5 ° C의 물을 욕조에서 차 여과기를 제거 여분의 수분을 제거하고 종이 타월에 그것을 가릴 및 41.4 ° C에서 열 목욕 유사 예열 E3 비커 내부에 배치합니다. </li><li> 24 MPF에서 간단한 블로 팅 후 28.5 ° C의 물을 욕조에 다시 E3에 차 여과기를 전송합니다. 29 MPF에서, 10cm 페트리 접시에 차 여과기에서 배아를 전송하는 E3와 세척 병을 사용합니다. </li></ol> 한 번의 사이클 세포질 분열 스톨와 태아 7. 선택 <ol><li> 기간 35-45 MPF 동안 송신 광원 해부 현미경 하에서 2- 세포 단계로 대칭 분해가 진행하고있는 그 배아 따라서 수정 된 선택된다. 세포 분열을 겪고되지 않은 배아를 제거합니다. </li><li> 최초의 세포주기 동안 정상적인 세포 분열에 대해 선택한 수정 된 배아를 관찰 계속하고 초 동안번째 세포주기 (50-65 MPF). </li><li> 4 셀 ( &quot;아니오 스톨&quot;를 2 : 4 셀 배아 2 배치 표준) 다음과 같은 범주 (그림 2C)에 따라 정렬 배아; 3 세포 (탈선이 작은 세포에서 &quot;부분 스톨 &#39;1 대 세포 배열); 2 셀 (: 2 세포 배아의 것과 동일한 구성 일 배아 1에서 하나의 세포주기의 지연을 나타내고, &quot;정체&quot;). 신선한 페트리 접시에 멈춘 배아를 정렬합니다. 주 :이 단계에서, 배아 2 : 두 배열은도 할구는 세포 분열 스톨을받은 제 세포주기 중 어느 형태와 대응한다; 탈선이 작은 세포 배아 1 대 세포 배열 열충격 한 할구의 두번째 세포주기 동안에 세포주기 스톨을 야기하지만, 다른 곳없는 것에 대응한다; 배아 1의 &quot;정체&quot;1 배열은 제 2 셀 사이클 동안 모두 할구 원하는 세포 분열을 시행 여기서 그 대응마구간. 지연된 배아 다음 세포주기의 기간 (65-80 MPF) 동안 세포 분열을 계속한다. 할구의 배열은 스핀들 2,14 안정화에 의한 이전의 세포주기에서 불완전 단서로 가변 될 수 있지만, 대부분의 정상적인 배아 발달을 겪을 수있는 비교적 정상적인 포배를 형성 할 것이다. </li><li> 배아가 10cm 접시 당 80 배아의 한계로, 페트리 접시에 개발할 수 있습니다. 24 HPF, 그들은 감소 축 연장 달리 이배체 또는 동형 이배체 배아 6 (축 연장 (도 3A, 3C)의 정상 범위)의 통상의 형태 특성을 갖고 haploids 증가 바디 두께 특성 여부를 확인하기 위해 배아 관찰 (그림 3B)), 및 / 또는 황금 또는 흰둥이 및 기타 분석 등 36 MPF (그림 3, 아래 참조) 2,6,9에서 유전 안료 마커를 사용하여 diploidization을 평가. </li&gt; <li> 반수체 형태를 가지고, 또는이 용해거나 다른 조잡한 이상 결함을 전시 나타나는 배아를 제거합니다. 참고 : 원하는 경우, 매일 용해 또는 조잡한 이상 배아를 제거하기 위해 계속하고 매체를 새로 신선한 E3를 추가하는 동안 배아가 5 일 포스트 수정 될 때까지 개발을 할 수 있습니다. 참고 : 살아남은 배아는 또한 부화장 시스템에 전송하고 표준 조건 하에서 공급함으로써 5 일에 swimbladder 인플레이션 후 성장시킬 수있다. </li></ol>

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</ol>

저자는 경쟁적인 재정적 이해관계를 가지고 있지 않습니다.

중요한 단계 체외 수정에 효과적 조건에서 작동하는 것이 중요합니다. 성숙한 계란 (1 단계)의 좋은 공급을 보장하기 위해, 암컷이 짝짓기에 대한 설정은 적어도 5 일 동안 짝짓기 십자가에 설정 한 안하고 임신하는 표시해야합니다. 사육 중단하는 동안, 관찰자는 자연 계란 압출의 첫 등장에 대해 적절하게 15 ~ 30 탱크를 모니터링 할 수 있습니다. 제 달걀 가장 계란은 IVF 절차에 대한 암컷 내부에 남아 있도록하기 위하여, 자연 교배를 통해 방출 될 때 정합 중단 최대한 빨리 발생한다. 이제 성숙 계란을 수동으로 압출 준비가이 여성은, 이후 계란 릴리스에 명백한 효과없이 최대 2 시간 동안 분리 상태로 유지 될 수있다. 효과적인 정자 용액 (2 단계)를 준비하기 위해, 남성은 강력하고 이상적으로 제브라 피쉬 남성 번식의 특징 인 붉은 색조로 표시됩니다. 깨끗한 절개는 일반적으로 레모을 포함한다신체의 후방 및 전방으로 당겨 수영 방광쪽으로 잡아 당겨 장 트랙을 ving. 중앙 내장...

이 프로토콜은 gynogenetic haploids (그림 1) 또는 tetraploids의 생산에서 동형 접합 gynogenetic diploids의 생성에서와 같이 제브라 피쉬 배아의 배수성의 조작을 할 수 있습니다. 이것은 정확히 하나의 세포주기 (도 2A, 2B)에 대응하는 세포질 분열에 지연을 유도함으로써 달성된다. 세포질 분열의 중요한 한주기 지연은 열 충격으로 처리함으로써 달성된다. 같은 원래 Streisinger에 동료에 의해 설명 열 충격 (HS)의 표준 프로토콜은 최초의 세포주기 (1) 동안 한주기 세포 분열 마구간의 결과로, 기간 13 ~ 15 MPF 동안 온도 펄스를 포함했다. 이 프로토콜의 효율은 최근 열 충격 처리 슬라이딩 시간 윈도우 초기 세포주기 스캔에 의해 개선되었다. 이 검사는 여전히 최초의 세포주기 (22 ~ 24 MPF) 내에서, 열 충격에 대한 나중에 포인트를 확인하는 EMBR의 높은 비율의 결과이 경우 제 2 셀이 사이클에 영향을주는 하나의 사이클 세포 분열 실속과 YOS. 제 세포주기 동안 실험 조작은 2 셀 사이클 동안 세포 분열을 방해 DNA를 콘텐츠 복제를 일으킬 관찰은 또한 다른 어류 3,4-보고되었다. 용어 &quot;2&quot;히트 펄스 표준 HS 방법보다 이후 시점에서 발생하고, HS2에 의한 세포주기 지연이 제 2 셀의주기 동안 발생하는 반사 - 우리는 열 충격이 (HS2와 같은 변형 된 프로토콜 참조 ). 이러한 연구는 열 쇼크 후 세포질 분열 구속의 기초는 다음의 세포주기에서 스핀들 형성 및 유도를 밭고랑에 영향 히트 펄스 중에 중심 소체 복제의 억제는 것을 보여 주었다. HS2의 100 %에 가까워 세포주기 정지의 수율 결과, 표준 HS 2보다 4 배 이상으로 배수성 복제까지의 요금. 태아 치료 재치하 할구 세포 사이클링 동안 열 충격이 많은 악영향을 전시, 그 열 충격을 제안하는 것은 세포 분열이 필요한 여러 프로세스에 영향을 미칩니다. 열 쇼크가 세포 사이클 (기간 0-30 MPF)의 개시 이전에인가되는 반면에, 만약 그 중심 소체 복제와 특이 간섭 일관된 효과를 보이며 다른 중요한 세포 과정이 영향을 미치는 것으로 보이지 않는다 . 이 연구는 할구 분할의 개시 이전에 시간이 특히 중심 소체 억제를 통해 배수성을 조작하는 도구로 열 충격을 사용하는 의무가 발달 기간이 나타납니다 것으로 나타났다. 중심 소체 복제에 열 쇼크를위한 명백한 선택의 근본적인 원인은 알 수 있지만, 이러한 오 백혈구 세포와 같은 특정 유형의 열 스트레스 하에서 관찰 중심체 하부 구조의 선택적 분해와 관련 될 수있다. 배아 드의 시간 동기화velopment은 체외 수정 (IVF)에 의해 달성된다. 에 배체가 하나의 사이클 세포질 분열의 실속 HS2에 의한 이배체 배아에서 수정 결과 중 처리되지 않은 정자를 사용. 그 DNA를 불 활성화 가교, 하나의 사이클 세포질 분열 스톨이 gynogenetic diploids이 될 HSII 유도에 gynogenetic 반수체 배아 (6) 결과를 전달 UV 처리 된 정자의 사용. 때문에 결과 전체 게놈 중복의, 후자 gynogenetic diploids는 게놈에 걸쳐 하나 하나 현장에서 동형 접합이다. 간결함을 위해, 우리는 &quot;haploids&quot;및 &quot;동형 접합 diploids&quot;로 동형 접합 gynogenetic 이배체 배아로 반수체 배아를 gynogenetic을 참조하십시오. 가능한 비옥 한 경우, 동형 접합 diploids 멸균 및 치명적인없는 라인을 시작하는 데 사용할 수 있습니다. HS2에 의한 직접 동형 접합체는 쉽게 피 시험 메모리의 이형 캐리어 인 여성에서 동형 접합 diploids 때문에, 유전자 분석이나 유전 화면에 통합되어야한다높은 고정 (50 %)의 비율을 2 동형 접합체의 관리 포인트 전시 속도. 다음 프로토콜은 HS2을 수행하고 전체 동형 접합체와 배수성 중복을 유도하는 단계를 설명합니다. 배체 생산을 위해, 정자 솔루션은 치료해야한다. 동형 이배체 제조 정자는 UV 처리에 의해 불 활성화되어야한다. 논의에서 설명 된 바와 같이 또한 가시 안료 마커는 동형 diploids의 식별을 용이하게하기 위해 사용될 수있다. 최상의 결과를위한 IVF 절차가이 기간 내에 발생해야하므로 주로 자신의 빛을주기 7, 두 성인과 계란의 시작의 처음 3 시간 동안 Zebrafish의 친구는 활동 일주기 (8)에 민감합니다.

<table><tbody><tr><td>제브라피쉬 짝짓기 상자</td><td>Aqua Schwarz</td><td>SpawningBox1</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma</td><td>S5886</td><td></td></tr><tr><td>KCl</td><td>Sigma</td><td>P5405</td><td></td></tr><tr><td>Na2HPO4</td><td>Sigma</td><td>S3264</td><td></td></tr><tr><td>KH2PO4</td><td>Sigma</td><td>P9791</td><td></td></tr><tr><td>CaCl2</td><td>Sigma</td><td>C7902</td><td></td></tr><tr><td>MgSO4-7H2O</td><td>Sigma</td><td>63138</td><td></td></tr><tr><td>NaHCO3</td><td>Sigma</td><td>S5761</td><td></td></tr><tr><td>Tricaine</td><td>Western Chemical</td><td>Tricaine-D (MS 222)</td><td>FDA 승인 (ANADA 200-226)</td></tr><tr><td>Tris base</td><td>Sigma</td><td>77-86-1</td>로 <td>1 M Tris pH 9.0 준비</td></tr><tr><td>HCl</td><td>Sigma</td><td>920-1</td><td>1 M Tris pH 9.0</td></tr><tr><td>물고기 그물 (세밀한 메시) (4-5 인치)</td><td>PennPlax</td><td>(ThatFishThatPlace # 212370)</td><td>는 ThatFishThatPlace에서 사용 가능</td></tr><tr>대부분의 <td>표준 상점에서 사용 가능한</td><td>플라스틱 스푼</td><td></td><td></td></tr><tr><td>해부 가위</td><td>Fine Science Tools</td><td>14091-09</td><td></td></tr><tr><td>해부 집게</td><td>Dumont</td><td>SS</td><td>Fine Science Tools에서 사용 가능</td></tr>, <tr><td>해부, 스테레오스코프(투과 광원 포함),</td> <td>Nikon</td><td>, SMZ645</td><td>또는 동급</td></tr><tr><td>, 반사 광원(LED 암)</td><td>Fostec</td><td>KL1600 LED</td><td>또는 동급</td></tr>, <tr><td>페트리 플레이트, 직경</td><td></td><td></td> 10cm, <td>모든 제조사</td></tr>, <tr><td>Eppendorf 튜브 1.5ml</td><td></td><td></td>, <td>모든 제조사</td></tr>, <tr><td>얼음 양동이</td><td></td><td></td><td>모든 제조사</td></tr><tr><td>Pipetteman P-1000</td><td></td><td></td><td>모든 제조사</td></tr><tr><td>피펫 팁 1,000 &micro; l</td><td></td><td></td><td>모든 메이커</td></tr><tr><td>좁은 주걱</td><td>피셔</td><td>14-374</td><td></td></tr><tr><td>우울증 유리판</td><td>Corning Inc</td><td>722085 (피셔 고양이. No 13-748B)</td><td>는 Fisher Scientific</td></tr><tr><td>UV l에서</td> 사용 가능합니다.amp <td>UVP</td><td>모델 XX-15 (cat No. UVP18006201)</td> <td>Fisher Scientific에서 구할 수 있습니다. 이 모델에서는 관찰되지 않았지만 일부 UV 소스는 시간이 지남에 따라 강도가 감소하는 것으로 관찰되었습니다(이 경우 수정 및 문제 해결 참조).</td></tr><tr><td>UV 안경</td><td></td><td></td><td>모든 제조사</td></tr><tr><td>종이 타월</td><td></td><td></td><td>모든 제조사</td></tr><tr><td>Kimwipes</td><td>Kimberly-Clark</td><td>06-666-11</td><td>Fisher Scientific</td></tr><tr><td>Timer 스톱워치</td><td></td><td></td><td>에서 구할 수 있습니다.모든 메이커</td></tr><tr><td>워시 병</td><td>Thermo Scientific</td><td></td><td>24020500 Fisher Scientific 사에서 구할 수</td></tr><tr><td>있습니다 주방 매장에서 사용 가능한</td><td>차 여과기</td><td></td><td></td></tr><tr><td>, 비커, 250ml (2)</td><td>Corning Inc.</td><td>1000250</td><td>Fisher Scientific</td></tr><tr><td>수조 (2)</td><td></td><td></td> <td>0.1 C (예 : > <2 O Bath Series)</td></tr> <tr><td>Hanks' 용액 1</td><td></td>은 <td>위의</td><td>참조 8.0g NaCl, 0.4g KCl, 100ml ddH2O. 4°C에서 보관하십시오.</td></tr><tr><td>행크스의 용액 2</td><td>:</td> 위 <td>참조</td><td>0.358 g 무수 Na2HPO4, 0.6 g KH2 PO 4 100 ml ddH 2 O. 4 ° C에 보관하십시오.</td></tr><tr><td>행크스의 용액 4</td><td>(위 참조</td>) <td></td><td>: 50 ml ddH<>2O에 0.72 g CaClsub2 참조. 4 °C에 보관하십시오.</td></tr><tr><td>행크의 프리믹스는</td><td>위의 내용을 참조</td><td></td><td>하고 다음 순서로 추가합니다 : 10.0 ml 용액 1; &nbsp; 1.0 ml 용액 2; &nbsp; 1.0 ml 용액 4; &nbsp; 86.0ml ddH2O; &nbsp; 1.0ml 용액 5. 4 &deg에 저장; C</td></tr><tr><td>행크스의 용액 6</td><td>(위 참조</td><td></td>) <td>: 10ml ddH<<>>sub2O에 0.33g NaHCOsub3 참조. IVF 절차 당일 아침에 신선하게 준비하십시오.</td></tr><tr><td>Hank's Solution (최종 솔루션)</td> <td>위 참조</td><td></td><td>Combine 990 &mu; 행크의 l ' s 프리믹스 및 10 &mu; l: 갓 만든 용액 6 (NaHCO3 용액)</td></tr></tbody></table>

열 충격이 치료와 제브라 피쉬 배아의 배수성 조작

Ploidy Manipulation of Zebrafish Embryos with Heat Shock 2 Treatment

배수성의 조작은 diploids에 tetraploids에 diploids, 또는 haploids 유용한 변환, 수 있습니다. 그것은 단일 이형 어머니 동질 접합체의 직접 제작이 가능하기 때문에 제브라 다니오 레 리오의에서는 특별히 동형 gynogenetic diploids 생성 유전자 분석에 유용하다. 이 문서에서는 첫 번째 세포주기, 열 쇼크 2 (HS2) 동안 열 펄스에 따라 배수성 복제에 대한 수정 된 프로토콜을 설명합니다. 중심 소체 복제의 억제를 통해,이 방법은 제 2 셀주기 동안 정확한 세포 분열 스톨 초래한다. 영향을받지 DNA 복제에 결합 정확한 하나의 사이클 부문 스톨은 전체 게놈 중복을 초래한다. 이 방법과 관련된 프로토콜은 하나의 세포주기 분할 지연과 배수성 중복을 일으킬 계란과 정자 수집, 정자의 자외선 치료, 체외 수정 및 열 펄스를 포함한다. 이 프로토콜의 수정 된 버전을 적용 할 수있다다른 동물 종의 배수성 변화를 유도한다.

한 셀 사이클 토키네 스톨에도 불구하고, DNA 복제 배아 (도 1)의 DNA 콘텐츠의 중복 결과, 예컨대 배아 정상적으로 발생한다. Streisinger에 열 충격 프로토콜 (표준 HS)는 기간 13~15분 게시물 수정 (MPF) 동안 열 펄스를 포함하고 파생 된 방법은 여기에 설명 된 반면, 35 MPF 1, 2에서 첫 번째 배아 세포 분열 동안 주로 세포질 분열 체포를 유도, 열 쇼크 2 (HS2)가, 기간 22 ~ 24 MPF 동안 열 충격을 사용하고 50 MPF (; 2,3,4 그림 2)에서 두 번째 배아 세포 분열 동안 세포질 분열 체포를 유도라고도합니다. 24 HPF에서 배아의 관찰 그들이 이배체 또는 동형 접합 배체 배아의 정상적인 형태 특성, 또는 반수체 배아의 형태 특성 축 짧고 넓은 몸을 여부를 결정하는 수 (그림 3) ...

배수성 조작 수정 된 프로토콜은 초기 배아 세포질 분열에 한 사이클 실속을 유도하는 열 쇼크를 사용한다. 이 프로토콜은 제브라에서 설명되지만, 다른 종에도 적용 할 수있다.

Manipulation of ploidy allows for useful transformations, such as diploids to tetraploids, or haploids to diploids. In the zebrafish Danio rerio, ...

본 절차의 전반적인 목적은 하나의 배아 세포 주기에 해당하는 세포질 분열을 억제함으로써 초기 제브라피시 배아의 이배체화를 촉진하는 것입니다. 이 방법은 성체 또는 생식 형질에 관여하는 유전자의 식별, 근친교배 계통의 생성 또는 기타 유전적 조작과 같이 유전학 분야의 핵심 질문들에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다. 이 기술의 주요 장점은 이배체화를 촉진하는 방법이 간단하면서도 효과적이어서, 단일 이형접합체 개체에 존재하는 대립유전자를 직접적으로 동형접합화할 수 있다는 점입니다.실험 전날 오후, 원하는 제브라피시 계통의 교배 쌍을 암수를 분리할 수 있는 칸막이가 있는 표준 제브라피시 교배 상자에 배치합니다. 실험 당일 아침, 산란이 시작될 수 있도록 물리적 칸막이를 제거합니다. 자연 교배 중 알이 배출되었는지 확인하기 위해 교배 쌍이 들어있는 수조를 육안으로 점검합니다.알 배출의 첫 징후가 보이면 수컷과 암컷을 분리하여 번식을 중단시키십시오. 미리 선택한 암컷들을 개별적으로 유지하거나 동일한 수조에 함께 모아 두십시오. 원하는 배아 수에 따라 여러 마리의 암컷을 사용하십시오.제브라피시 정소에서 정자 용액을 준비하려면, 텍스트 프로토콜에 따라 안락사를 확인한 후 비커에서 수컷을 꺼냅니다. 컨디셔닝된 물을 사용하여 짧게 헹구고, 페이퍼 타월의 여러 곳에 잠시 놓아 가볍게 말립니다. 해부용 가위나 면도날을 사용하여 물고기의 머리를 제거하고 복부를 따라 세로로 절개합니다.그 다음 반사광 광원이 있는 해부 현미경 아래에서 해부용 핀셋을 사용하여 내부 장기를 제거합니다. 각 정소 덩어리를 꺼내어 Hank solution이 들어 있는 마이크로 원심분리 튜브로 옮깁니다. 정자를 용액 속으로 방출시키기 위해 좁은 스패튤라를 사용하여 정소를 으깨거나, 1,000 µL 팁을 사용하여 기포가 생기지 않도록 주의하면서 용액 내에서 5~6회 파이펫팅합니다.그 다음 고환 부스러기가 가라앉도록 둡니다. 정자 용액은 2~3시간 동안 활성을 유지할 수 있도록 얼음 위에 보관하십시오. UV 정자 처리를 진행하는 경우, 정자 부스러기는 남겨두고 정자 용액만 깨끗한 마이크로원심분리 튜브로 옮깁니다.정자의 UV 처리를 수행하려면, 얼음 베드 위에 놓인 오목 글라스 플레이트의 깨끗하고 건조한 웰에 정자 용액을 최대 1 mL까지 옮깁니다. 오목 플레이트가 놓인 얼음 베드를 광원으로부터 19 cm 떨어진 UV 램프 아래에 두고, 115 V에서 90초 동안

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Research

연구

JoVE Journal

Developmental Biology

발생생물학

이것은 바로 자외선 - inactivated 정자와 수정 후 두 번째 meiotic 부서 차단하여 gynogenetic의 diploid의 zebrafish의 배아 (단 유전적 기여 어머니의 유래 배아)를 생성하는 방법입니다. EP의 배아는 첫 번째 meiotic 부문 중 재조합에 의해 완전히 homozygous하지 않습니다, 그러나 그들은 재조합하여 centromere에서 분리되지 않은 모든 loci에 homozygous 있습니다.

초기 압력에 의해 Gynogenetic의 Diploid의 Zebrafish 만들기

여기에서 우리는 살아있는 제브라피시 배아의 산화 스트레스를 측정하는 프로토콜을 보고합니다. 이 절차를 통해 전체 배아 조직과 단일 세포 집단 모두에서 활성 산소 종(ROS)을 검출할 수 있습니다. 이 프로토콜은 정성적 분석과 정량적 분석을 모두 수행합니다.

제브라 피쉬 배아에서 산화 스트레스의 분석

제브라피쉬는 고등 척추동물과의 유전적 유사성으로 인해 발생 생물학 및 인간 질병 연구를 위한 강력한 모델 시스템입니다. 이 프로토콜은 초기 배발생에 필수적인 유전자의 열성 돌연변이를 식별하기 위한 전방 스크리닝 전략에 활용할 수 있는 반수체 제브라피시 배아를 만드는 방법론을 설명합니다.

반수체 제브라 피쉬 배아의 생산에 의해<em&gt; 체외</em&gt; 시비

이 프로토콜은 서로 다른 유전적 배경을 가진 기생충 제브라피시 배아를 생성하는 방법에 대한 단계별 지침을 제공합니다. 제브라피시 배아의 탁월한 이미징 기능과 결합하면 이 방법은 관심 후보 유전자에 대한 세포 자율 기능과 비세포 자율 기능을 조사할 수 있는 독특하고 강력한 수단을 제공합니다.

Blastulae 개발의 외과 융합에 의해 Parabiotic 제브라 피쉬 배아의 생성

Zebrafish 최근 연구 개발 하는 동안 DNA 복제 타이밍을 vivo에서 모델 시스템으로 사용 되었다. 여기 상세한 프로필 복제 타이밍에 zebrafish 태아를 사용 하기 위한 프로토콜. 이 프로토콜 돌연변이, 개별 세포 유형, 질병 모델, 그리고 다른 종에서 복제 타이밍을 공부 하기 쉽게 적응 될 수 있다.

DNA 복제 타이밍 Zebrafish Vivo에서 모델 시스템으로 사용 하 여 프로 파일링

생체 내 이미징은 신경계 발달의 근본적인 세포 메커니즘을 조사하는 데 사용할 수있는 강력한 도구입니다. 여기에서 우리는 개발 제브라피시 신경계 내의 다중 색깔 Brainbow 표지세포의 다수를 구상하기 위하여 시간 경과 공초점 현미경 검사법을 이용하기 위한 기술을 기술합니다.

무지개와 타임랩스 공초점 이미징을 사용하여 살아있는 제브라피시의 뇌 발달 시각화

이 논문은 온전한 제브라피쉬 배아 내에서 정상 및 비정상적인 시토신 메틸화의 신속하고 효율적인 시공간적 모니터링을 위한 프로토콜을 설명합니다.

온전한 Zebrafish 배아 내에서 정상 및 비정상적인 시토신 메틸화에 대한 신속하고 효율적인 시공간 모니터링

이 작업은 제브라피쉬 배아에 형질전환 구조를 만들어 주입하기 위한 게이트웨이 기반 복제 방법인 모듈식 Tol2 형질전환 시스템에 대한 프로토콜을 설명합니다.

Zebrafish Tol2 시스템: 유연한 모듈식 게이트웨이 기반 트랜스제네시스 접근 방식

이 프로토콜은 zSpRY-ABE8e를 사용하여 정확한 제브라피쉬 질병 모델을 구성하기 위해 PAM 제한 없이 효율적인 아데닌 염기 편집을 수행하는 방법을 설명합니다.

zSpRY-ABE8e를 사용한 인간 유전 질환의 Zebrafish 모델링을 위한 효율적인 PAM 없는 염기 편집

여기에서는 안정적인 zpc:cas9 knock-in line과 sgRNA 발현 카세트의 Tol2 매개 전달을 결합하는 모계 돌연변이를 생성하기 위한 프로토콜에 대해 설명합니다.

zpc:cas9 Knock-in 제브라피시를 사용한 모계 돌연변이 생성

배우세요 제브라피쉬 배아에서 열 충격을 이용한 배수성 조작 방법을. 이 기술은 세포질 분열 억제를 통해 이배체화를 촉진하며, 유전학 연구와 근교계 품종 생성에 활용됩니다.

열 충격이 치료와 제브라 피쉬 배아의 배수성 조작

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