Name: 드로소필라에서 작물 운동성과 음식 패시징 측정 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2020-05-09T14:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 13 s
Description: 배우세요 Drosophila melanogaster에서 작물 수축 횟수 측정과 염료 흡광도 분석을 통한 소화관 음식 분포 정량화 방법. 이 저비용 기술은 NPRL2 돌연변이체의 소화 운동성을 평가하여 곤충 소화 생리 메커니즘 연구에 활용됩니다.

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이 작품은 중국 국립 자연과학 재단(제3187만2287호)의 지원을 받아 장쑤성 자연과학재단(NO. BK20181456) 및 강쑤성 6개 인재 피크 프로젝트(No. SWYY-146).

1. 실험용 파리 를 유지하고 준비합니다.
<ol><li>25°C에서 25°C의 인큐베이터에서 갓 만든 식품 10mL(1% 한천, 2.4% 양조업자 효모, 3% 자당, 옥수수 5%)를 함유한 바이알에서 파리를 유지합니다. 인큐베이터의 라이트 사이클을 12h 라이트:12-h 어둡게 설정합니다.</li>
	<li>원하는 유전자형의 다수가 동시에 닫히도록 하기 위해, 문화 젊은 파리 (1-3 일 오래 된) 표면에 건조 효모와 표준 식품에서 3 일 동안. 젖은 효모를 포함한 표준 음식과 함께 성인을 새로운 음식 병으로 옮기고 2 일 동안 계란 누워를 허용하십시오. 인큐베이터에 계란을 두고 성인 파리를 새로운 유리병으로 옮겨 더 많은 계란을 수집합니다.</li>
	<li>매일 밀폐된 남성 또는 암컷 파리를 수집하고 원하는 나이에 유지 보수 조건에서 표준 음식과 함께 새로운 유리병에 배양하십시오. 참고: 더 많은 동일 나이 파리를 얻으려면 원하는 유전자형의 여러 유리알을 동시에 설정할 수 있습니다. 성인 비행 문화의 바이알은 3-5 일마다 변경해야합니다.</li>
</ol>2. 작물 수축 계산
<ol><li>CO2로 파리를 마취하고 1x 인산완충식살린 200μL(PBS, pH = 7.4)를 함유한 해부판에 1번 날아가 136.89m NaCl, 2.67m MM KCl, 8.1m M MNa2HPO 4, 1.76m4M4, 1.76mPO4m.</li>
	<li>한 쌍의 핀셋을 사용하여 흉부에서 비행을 잡고 다른 핀셋을 사용하여 흉부를 부드럽게 열고 반대 방향으로 끝을 당겨 복부를 엽니다. 조심스럽게 몸에서 작물과 용기를 꺼내.</li>
	<li>비행이 깨어나고 작물을 시각화하고 1 분 안에 계약 횟수를 계산할 때까지 기다립니다. 참고: 작물 로브의 완전한 파도만 하나의 수축으로 계산됩니다.</li>
	<li>30s 간격 사이의 5x에 대해 2.3 단계를 반복합니다.</li>
	<li>분당 평균 작물 수축 수를 계산합니다. 참고: 수축 카운트 하는 동안, 비행 살아 야 한다, 그리고 창 자 그대로 하 고 그것의 전방및 후방 끝에 부부 후 종료 해야 합니다.</li>
</ol>3. 염색식품 준비
<ol><li>PBS에서 20%(w/v)의 농도로 파란색 염료(재료표)를계량하고 용해합니다.</li>
	<li>식품 냉각 과정에서 최종 농도0.5%(w/v)에 1:40 희석을 하여 삶은 액체 유지 보수 식품(1.1단계)에 20%의 청색 염료를 넣습니다. 참고: 파란 염료는 음식이 식기 전에 첨가되고 교반과 잘 섞입니다. PBS에서 청색 염료를 용해하는 것은 선택 사항입니다. 증류수도 적합합니다.</li>
</ol>4. 염색된 음식으로 파리를 먹이기
<ol><li>같은 숙성 된 파리의 그룹을 기아 식품 (증류수의 1 % 한마)으로 유리병으로 옮겨 4 시간 동안 음식 섭취를 보장합니다.</li>
	<li>파리를 새 유리알로 옮기고, 원하는 시간 동안 파리를 배양하여 식품염색블루로 염색합니다. 참고: 먹이 주기 시간은 중요한 요소이며 연구 목적에 따라 다릅니다. 짧은 수유, 통과 하는 음식의 시간 내에서, 작물에서 창 자에 음식 운동성의 속도를 평가 하는 데 사용할 수 있습니다. 유지 보수 조건에서 식품은 약 2 시간 동안 통과합니다. 그러나 통과 시기는 문화 조건과 관련이 있을 수 있습니다. 긴 먹이, 최대 며칠, 작물과 창 자 사이 지속적인 음식 분포 상태를 평가 하는 데 사용할 수 있습니다.</li>
</ol>5. 작물과 장에서 파리를 해부하고 염료 샘플을 수집
<ol><li>CO2로 파리를 마취하고 1x PBS 200 μL을 포함하는 해부 판에 한 번 날아갑니다.</li>
	<li>한 쌍의 핀셋을 사용하여 흉부에서 비행을 잡고 다른 핀셋을 사용하여 머리를 몸에서 떼어 내십시오. 나머지 바디를 1x PBS의 200 μL을 포함하는 새로운 우물로 이동합니다.</li>
	<li>1x PBS 의 200 μL에서 핀셋을 사용하여 플라이 바디에 부착된 염료를 청소하여 2배 의 몸을 부드럽게 흔들어 바디를 세척하십시오.</li>
	<li>두 쌍의 핀셋을 사용하여 복부를 부드럽고 부드럽게 열고 전체 용기를 몸에서 조심스럽게 분리합니다.</li>
	<li>조심스럽게 전체 창자에서 작물을 벗고 1 x PBS의 100 μL튜브에 넣어.</li>
	<li>마지막으로, 1x PBS의 100 μL을 가진 다른 튜브에 자르기 없이 전체 창자를 넣습니다(이하 용기라고 함).</li>
	<li>파이펫 팁을 사용하여 튜브에서 각각 자르기와 내장을 분쇄하여 염료가 PBS에 용해되도록 합니다.</li>
	<li>5.1-5.7 단계를 반복하여 설계된 실험을 위해 충분한 작물과 내장이 수집될 때까지 반복하십시오. 참고: 작물과 창자는 완전히 균질화되어야 하며 모든 염료를 버퍼에 용해해야 합니다. 연구 목적으로 하나 또는 여러 작물 또는 창 자를 하나의 튜브에서 수집할 수 있습니다.</li>
</ol>6. 작물과 창자에 염료 양을 계산
<ol><li>원심 분리는 1 분 동안 최고 속도로 샘플 튜브를 원심 분리하고 96 웰 플레이트의 우물에 90 μL을 전송합니다.</li>
	<li>표준으로 1 x 10-7 g/mL에서 1 x 10-4 g/mL농도로 일련의 파란색 염료 희석제를 만듭니다.</li>
	<li>96 웰 플레이트의 우물에 90 μL 표준을 연이어 추가합니다.</li>
	<li>플레이트 분광광계로 630 nm에서 샘플 및 표준의 흡광도를 측정합니다.</li>
	<li>표준 곡선을 만들려면 각 표준에 대해 흡광도 대 농도의 선 그래프를 플롯합니다. 그런 다음 샘플을 통해 염료 농도를 계산하는 데 사용되는 방정식을 얻기 위해 점을 통해 가장 적합한 선을 그립니다.</li>
	<li>샘플 농도를 0.1mL로 곱하여 염료의 양을 계산합니다.</li>
</ol>

<ol><li>Kusano, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gastrointestinal+motility+and+functional+gastrointestinal+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Pharmaceutical+Design%22%5BJournal%5D)">Gastrointestinal motility and functional gastrointestinal diseases.</a> Current Pharmaceutical Design. 20 (16), 2775-2782 (2014).</li>
<li>Reiter, L. T., Potocki, L., Chien, S., Gribskov, M., Bier, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+systematic+analysis+of+human+disease-associated+gene+sequences+in+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Research%22%5BJournal%5D)">A systematic analysis of human disease-associated gene sequences in Drosophila melanogaster.</a> Genome Research. 11 (6), 1114-1125 (2001).</li>
<li>Apidianakis, Y., Rahme, L. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drosophila+melanogaster+as+a+model+for+human+intestinal+infection+and+pathology%5BTitle%5D)+AND+%22Disease+Models+%26+Mechanisms%22%5BJournal%5D)">Drosophila melanogaster as a model for human intestinal infection and pathology.</a> Disease Models & Mechanisms. 4 (1), 21-30 (2011).</li>
<li>Lemaitre, B., Miguel-Aliaga, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Digestive+Tract+of+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Genetics%22%5BJournal%5D)">The Digestive Tract of Drosophila melanogaster.</a> Annual Review of Genetics. 47, 377-404 (2013).</li>
<li>Miguel-Aliaga, I., Jasper, H., Lemaitre, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anatomy+and+Physiology+of+the+Digestive+Tract+of+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Genetics%22%5BJournal%5D)">Anatomy and Physiology of the Digestive Tract of Drosophila melanogaster.</a> Genetics. 210 (2), 357-396 (2018).</li>
<li>Strand, M., Micchelli, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quiescent+gastric+stem+cells+maintain+the+adult+Drosophila+stomach%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Quiescent gastric stem cells maintain the adult Drosophila stomach.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108 (43), 17696-17701 (2011).</li>
<li>Ren, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Beadex+affects+gastric+emptying+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Research%22%5BJournal%5D)">Beadex affects gastric emptying in Drosophila.</a> Cell Research. 24 (5), 636-639 (2014).</li>
<li>Xi, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+TORC1+inhibitor+Nprl2+protects+age-related+digestive+function+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Aging%22%5BJournal%5D)">The TORC1 inhibitor Nprl2 protects age-related digestive function in Drosophila.</a> Aging. 11 (21), 9811-9828 (2019).</li>
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<li>Chtarbanova, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drosophila+C+virus+systemic+infection+leads+to+intestinal+obstruction%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Virology%22%5BJournal%5D)">Drosophila C virus systemic infection leads to intestinal obstruction.</a> Journal of Virology. 88 (24), 14057-14069 (2014).</li>
<li>Solari, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Opposite+effects+of+5-HT%2FAKH+and+octopamine+on+the+crop+contractions+in+adult+Drosophila+melanogaster%3A+Evidence+of+a+double+brain-gut+serotonergic+circuitry%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Opposite effects of 5-HT/AKH and octopamine on the crop contractions in adult Drosophila melanogaster: Evidence of a double brain-gut serotonergic circuitry.</a> PLoS One. 12 (3), 0174172(2017).</li>
</ol>

저자는 공개 할 것이 없습니다.

드로소필라에서 섭취 한 음식은 작물에서 소화를위한 장으로 이동합니다. 이 과정에서 영양분이 흡수되고 폐기물이 대변으로 몸밖으로 추방됩니다. 따라서, 대변 배출과 함께 음식 섭취를 비교하는 것은 대략 바디에 있는 음식 운동의 속도를 평가하기 위하여 이용될 수 있습니다. 모세관 피더(CAFE)의 방법은 식품섭취(10,,11)를측정하는 데 널리 사용된다. 대변 수 계산 방법은 대변생성(12)의양을 추정하는 데 사용될 수 있다. 그러나, Drosophila 바디에 있는 음식 운동은 작물 운동성을 포함하여 많은 요인의 통제의 통제의 밑에 있습니다. 작물 기능은 CAFE 및 대변 계수 방법을 사용하여 쉽게 평가할 수 없습니다. 이 프로토콜은 Drosophila에서작물에서 창자에 작물 운동성 및 음식 패청기를 정량적으로 평가할 수 있습니다....

대부분의 동물은 환경에서 에너지와 영양분을 흡수하는 위장관 (GI) 관에게 불린 소화관을 가지고 있습니다. 인간 기관은 식도, 위, 소장 및 대장 (결장)의 네 부분으로 구성됩니다. 위장에서 장으로 음식 통로는 영양 흡수에 필수적입니다. 노화, 독성 약물 및 감염과 같은 일부 이펙터는 소화 불량, 위식도 역류 질환 및 변비1과같은 일부 질병 및 증상과 관련된 장애된 기관 운동성 및 위 비우기를 유발합니다.
과일 파리(Drosophila 멜라노가스터)는쉽게 유전 적 조작으로 인해 생물 의학 연구에서 널리 사용되는 모델 동물입니다. 중요하게도, 인간 질병과 관련되었던 유전자의 대략 77%는 Drosophila2에 있는 호모로그를 가지고있습니다. Drosophila를 사용 하 여 연구는 많은 질병 메커니즘의 우리의 이해에 거 대 한 발전을 했다. 강력한 유전 적 모델 유기체로서, Drosophila는 GI tract 연구3에서널리 사용됩니다. 드로소필라는 세 가지 이산 영역으로 나뉘어져 있는 간단한 소화관을 가지고 있습니다: 전가, 미드구트 및 힌드구트4. 작물, 전장의 일부, 섭취 식품 저장에 대 한 사이트 역할을 하는 가방 같은 구조. 미드구트는 농생장세포(EC)와 분비장내분비(EE) 세포5로구성된 상피층을 통한 식품 소화 및 영양 흡수 부위로서 긴 튜브 및 기능이다. 흥미롭게도, 드로소필라의 위장 기능은 두 부분으로 나뉩니다: 식품 저장과 구리 세포 영역(CCR)으로서 작물 기능은 pH & lt;36을가진 고산성 영역이다. 드로소필라에서섭취된 음식은 처음에는 작물로 옮겨져 미드구트7로펌핑됩니다. 따라서, 작물은 음식 패시징에 중요한 역할을한다. 내장 근육에 둘러싸여 밸브와 스핑크터의 복잡한 배열로 구성된 작물은 추가 소화를 위해 중간 구장으로 음식을 수축하고 이동유지합니다.
이 프로토콜은 드로소필라의작물에서 미드구트까지 음식 이동을 감지할 수 있게 해줍니다. 작물 수축은 작물 수축 빈도를 계산하여 평가됩니다. 또한 작물과 장 사이의 식품 분포를 감지하여 식품 패싱에 대한 작물의 효과를 조사합니다. 또한, 식품 분포는 다른 수유 기간을 사용하여 즉각적인 음식 운동 또는 기본 식품 상태를 반영하는 데 사용할 수 있습니다. 종합하면, 이 프로토콜은 Drosophila에서작물 운동성과 음식 패청기를 신속하게 평가하는 방법을 제공합니다.

<table><tbody><tr><td>96웰 플레이트</td><td>Thermo fisher</td><td>269620</td><td></td></tr><tr><td>Brillant Blue FCF</td><td>Solarbio</td><td>E8500</td><td>FD& C 블루 No. 1</td></tr><tr><td>원심분리기</td><td>써모 피셔</td><td>Heraeus Pico 17</td><td></td></tr><tr><td>분광 광도계</td><td>Spectra Max</td><td>cMax plus</td><td></td></tr><tr><td>핀셋</td><td>Dumont</td><td>11252-30</td><td></td></tr></tbody></table>

드로소필라에서 작물 운동성과 음식 패시징 측정

Measuring Crop Motility and Food Passaging in Drosophila

대부분의 동물은 음식을 소화하기 위해 위장관 (GI) 항로를 사용합니다. 기관에서 섭취 한 음식의 움직임은 영양소 흡수에 필수적입니다. 무질서한 GI 운동성 및 위 비우는 다중 질병 및 현상을 일으키는 원인이 됩니다. 강력한 유전 모델 유기체로서 Drosophila는 GI 운동성 연구에 사용될 수 있습니다. D로소필라 작물은 포유류 위장과 기능적으로 유사한 추가 소화를 위해 음식을 미드구트로 계약하고 이동하는 기관입니다. 제시는 간단한 측정 도구를 사용하여 Drosophila 작물 운동성을 연구하는 프로토콜입니다. 작물 수축을 계산하여 작물 의 운동성을 평가하는 방법과 분광계를 사용하여 작물과 장 사이에 파란색으로 염색된 식품의 분포를 검출하여 식품 패세이징에 대한 작물의 효과를 조사하는 방법이 설명되어 있다. 이 방법은 대조군과 nprl2 돌연변이 파리 사이의 작물 운동성의 차이를 감지하는 데 사용되었습니다. 이 프로토콜은 비용 효율적이며 작물 운동성에 매우 민감합니다.

작물 수축 속도를 계산하고 염색 된 식품 분포를 감지하는 이러한 방법은 식품 운동성에 작물 기능을 평가하는 데 사용할 수 있습니다. 작물 수축은 음식을 창자에 밀어 넣는 빈도를 반영합니다. 짧은 수유 기간 후에 즉석에서 염료의 분포는 작물에서 미드구트로 지나가는 즉각적인 음식을 나타냅니다.
라파마이신 복합체 1(TORC1)의 표적은 영양소와 세포 대사를 중재하는 마스터 레귤레이터입니다. TORC1 억제는 드로소필라를포함한 많은 유기체에서 수명을 연장한다. TORC1의 억제제로, nprl2 돌연변이 플라이는 TORC1 및 GI 소화 결함8,,9의과잉 활성화를 표시한다. nprl2 돌연변이체의 자르기 크기는 3일 된 때 정상이며 15일 전에 확대되며, 유전적 배경제어(yw)8과비교하면 확대...

이 프로토콜의 목표는 드로소필라 용기의 작물 수축을 측정하고 식품 유통을 정량화하는 것입니다.

Most animals use the gastrointestinal (GI) tract to digest food. The movement of the ingested food in the GI tract is essential for nutrient absorption. ...

이 방법은 작물 수축을 계산하고 단지 소화에서 음식 분포를 검출하여 작물 운동성을 평가하는 데 사용됩니다. 이 기술의 장점은 작물 운동성을 지속적으로 평가한다는 것입니다. 그것은 낮은 비용과 수행하기 쉽습니다.이 방법을 사용하면 위장의 음식 통로에서 소화 기능을 연구하는 모델로 필러만 사용할 수 있습니다. 그 과정을 입증하는 데 도움이 되는 것은 제 실험실대학원생인 준멩 시(Junmeng Xi)가 될 것입니다. 60%의 습도와 12시간 암울한 주기로 25도 의 섭씨 25도 의 갓 만든 음식 10 밀리리터가 들어있는 바이알에서 파리를 유지하십시오.많은 수의 욕망 표현형이 건조한 효모로 표준 음식으로 어린 파리를 배양하여 동시에 닫히는지 확인하고 성인파리를 젖은 효모로 유리병으로 옮기고 달걀 누워를 위해 이틀간 기다립니다. 인큐베이터에 계란을 두고 성인 파리를 새로운 유리병으로 옮겨 더 많은 계란을 수집합니다. 매일 밀폐된 남성 또는 암컷 파리를 수집하고 원하는 나이에 표준 음식과 함께 새로운 바이알로 배양하십시오.이산화탄소로 파리를 마취하고 PBS 200 마이크로리터를 잘 해부하는 접시에 날아갑니다. 두꺼비에 핀셋을 넣고 흉부에서 비행을 잡은 다음 다른 핀셋으로 흉부를 열고 복부를 열기 위해 반대 방향으로 끝을 당깁니다. 조심스럽게 몸에서 작물과 용기를 가지고 비행이 깨어 날 때까지 기다립니다.비행이 깨어있을 때, 1 분에 작물 계약의 횟수를 계산합니다. 각 카운트 사이에 30초를 기다리며 다섯 번 카운트하는 수축을 반복합니다. 파란색 염료의 무게를 측정하고 20 %의 농도로 PBS에 용해하십시오.그런 다음 식품 냉각 과정에서 삶은 액체 유지 보수 식품에 넣고 5 %의 최종 농도로 저어줍니다. 4 시간 동안 굶주린 음식과 유리병에 파리를 유지 한 후, 염색 된 음식과 함께 새로운 유리로 전송하고 원하는 시간 동안 그들을 문화, 유지 보수 조건에서 식품은 약 2 시간 만에 비행을 통과 한다는 것을 명심하십시오. 200 마이크로리터를 포함하는 해부 판으로 마취 된 비행을 전송합니다.핀셋을 사용하여 흉부에서 비행을 파악하고 다른 핀셋으로 머리를 제거한 다음, 몸을 PBS로 새로운 우물로 옮기고 몸에 부착 된 염료를 제거하기 위해 부드러운 흔들림으로 씻어 내세요. 두 쌍의 핀셋으로 복부를 열고 몸에서 전체 용기를 조심스럽게 분리하십시오. 전체 창자의 작물을 벗고 PBS의 100 마이크로 리터와 튜브에 넣어.PBS의 10

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Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

Drosophila melanogaster은 한 세기 이상에서 많은 중요한 생물 학적 과정의 분자 및 세포 기초를 이해하기 위해 사용되었습니다 유전자와 behaviorally 다루기 쉬운 모델 시스템이다. Drosophila 잘 플라이 행동의 유전적 기초에 대한 통찰력을 얻기 위해 악용되었습니다.

분석의 방법 Drosophila 행동

이 비디오는 자유롭게 걷는 파리를 추적하여 일반적인 운동 능력을 평가하는 방법을 설명합니다. 주요 프로토콜은 비디오 추적 소프트웨어를 사용한 분석의 설정 및 데이터 분석을 보여줍니다.

자유롭게 걷는 파리 추적: 초파리의 이동을 평가하는 방법

초파리 유충의 먹이 회로는 공급 속도의 변화가 stomatogastric 신경 회로의 변화와 상관 관계가 될 수있는 간단하면서도 강력한 모델을 제공합니다. 이 회로는 입 후크 돌기뿐만 아니라 foregut 보내 중앙 세로토닌 성 신경 세포로 구성된다.

의 애벌레 먹이 회로의 기능적 분석 초파리</i

여기에서 우리는 높은 처리량 검사를 가능하게 초파리의 비행 성능의 신속하고 정확한 측정하는 방법을 설명합니다.

비행 성능의 정확하고 빠른 측정을위한 개선 된 방법에<em&gt; 초파리</em

초파리 melanogaster의는 자발적인 운동 활성 등의 행동에 영향을 미치는 유전 적 또는 환경 적 조작을 공부에 유용하다. 여기에서 우리는 적외선 빔과 자발적인 운동 활성을 정량화하는 데이터 분석 소프트웨어와 함께 모니터를 활용하는 프로토콜을 설명합니다.

의 자발적인 운동 활성의 결정<em&gt; 초파리</em

이 보고서는 TriKinetics Drosophila Activity Monitor를 사용하여 초파리 유충 활동을 측정하는 방법을 설명합니다. 이 장치는 적외선 빔을 사용하여 최대 16 마리의 개별 동물의 움직임을 감지합니다. 데이터를 분석하여 분석 챔버 내 동물의 비율 및 위치를 포함한 모션 매개변수를 나타낼 수 있습니다.

에서 애벌레 활동의 측정<em&gt; 초파리</em&gt; 활동 모니터

우리는 Drosophila melanogaster 채집 경로 길이 분석에 대한 자세한 프로토콜을 제공합니다. 우리는 실험 동물의 준비 및 취급, 분석 수행 및 데이터 분석 방법에 대해 논의합니다.

대한 꼴 경로 길이 프로토콜<em&gt; 노랑 초파리</em&gt; 애벌레

CApillary FEeder (CAFE) 분석은 음식 섭취의 기저에 있는 메커니즘을 조사하기 위한 간단하고 예산 친화적이며 매우 신뢰할 수 있는 방법입니다. 다재다능한 유전자 모델 유기체인 Drosophila melanogaster와 함께 사용되는 이 제품은 음식 섭취의 조절 메커니즘에 대한 새로운 통찰력을 얻을 수 있는 강력한 수단을 제공합니다.

모세관 공급 분석은 식품 섭취를 측정<em&gt; 노랑 초파리</em

이 문서 melanogaste 동기 부여를 공부 r에 초파리에서 남성 짝짓기 드라이브를 사용하는 행동 분석에 대해 설명합니다. 이 방법을 사용하여, 연구자는이 동기를 기초가 유전 적 분자 및 세포 메커니즘을 밝히기 위해 고급 플라이 neurogenetic 기술을 이용할 수있다.

측정과 남성의 변경 결합 드라이브<em&gt; 노랑 초파리</em

이 프로토콜의 목표는 Drosophila 애벌레에서 기계적 고치에 대한 향상된 분석법을 수행하는 방법을 보여주는 것입니다. 우리는 기계적 과민성 (알로디니아 및 과민증)이 Drosophila 애벌레에 존재한다는 것을 보여주기 위하여 여기에서 분석기를 이용합니다.

드로소필라 애벌레의 기계적 고치절 측정을 위한 향상된 분석 및 도구

이 프로토콜은 파킨슨병의 알파 시누클레인 기반 초파리 모델에서 변비를 모델링하기 위한 분석을 제시합니다.

파킨슨병의 초파리 모델에서 변비 측정

배우세요 Drosophila melanogaster에서 작물 수축 횟수 측정과 염료 흡광도 분석을 통한 소화관 음식 분포 정량화 방법. 이 저비용 기술은 NPRL2 돌연변이체의 소화 운동성을 평가하여 곤충 소화 생리 메커니즘 연구에 활용됩니다.

드로소필라에서 작물 운동성과 음식 패시징 측정

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