Name: 자유롭게 크레이 피쉬 이동에 마음을 Ventilatory 요금 대책 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-10-15T23:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 47 s
Description: 학습하세요 가재의 심전도와 호흡률 측정 방법을 통해 자율신경 반응을 분석하는 기술입니다. 이 방법은 무척추동물 생리학 연구에 중요한 기초 자료를 제공합니다.

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소개 생물이 위협 자극 환경의 변화에​​ 대응하는 행동의 다양한 전시해야합니다. 자율 신경계의 반응은 잘 공감 신경계는 생리학 내부 환경 (.; 니콜스 외, 2001 카펜터, 1976) readies있는 전투 또는 비행 응답으로 척추 동물에서 공부합니다. 그것은 유기체가 스트레스 반응을 조절하고 임박한 공격이나 환경 변화에 반응하는 동작을 변경할 수있는 생리적 변화하는 것입니다. 증거는 심장 혈관 시스템 - 단단히함으로써 내부 환경이 응답을 응답하고 구현할 수 있도록 호흡기 시스템 연결되었는지 보여줍니다. 그것은 잘 호흡기 및 심장 혈관 시스템의 자율 제어 산소 가용성 및 임박한 행동 반응에 필요한 특정 대상 조직에 영양분을 조절 수있는 것으로 알려져 있습니다. 척추 동물에서, 자율과 생리적 반응은 잘 발전이며 그것은 복잡한 무척추 동물은 비슷하게 개발 응답 시스템을 가지고 것이라는 가능성이 보이는군요 (. Schapker 외, 2002; Zavarzin 1941). 척추 동물과 무척추 동물이 체계적으로 매우 다르다하더라도, 고도로 발달한 무척추 동물 싸움이 또는 비행 방식으로 대응할 수있는 신속한 심혈관 및 호흡기 응답을 필요로합니다. 많은 무척추 동물의 경우, 교감 같은 생리적 반응 계량하실 수 있습니다. 1927까지 거슬러 올라가는, 아주 초기 연구의 대부분은 특별히 (; 올로브 1927; Zavarzin 1941 Alexandrowicz 1932) 일반적으로 arthropods를 사용하여, 무척추 동물에서 실시되었습니다. 크레이 피쉬는 빠른 행동의 광범위한뿐만 아니라 평가 및 환경 자극에 반응하는 능력을 전시하는 것으로 알려져 있습니다. 아주 초기 연구는 방위 허세의 즉각적이고 신속한 대응 (; 헉슬리, 1880; Shuranova 외, 2006;. Wiersma, 1961 Bethe, 1897)의 동정과 같은 반응을 언급했습니다. 비트와 리듬이 중추 신경계 (; 야마 기시와 히로세, 1997;. 야마 기 외, 1997; 윌켄스 1999 Alexandrowicz 1932)에 의해 제어되기 때문에 성인 왕새우의 마음이 neurogenic입니다. 일상적으로, 동물의 심장 박동 (HR)의 측정은 흥분과 내부 환경의 준비의 직접적인 측정을 제공합니다. 인식 위협 자극 (Listerman 외., 2000)이 드러나면 왕새우에서는 HR의 증가 방어 허세 동안 기록됩니다. 신경계 반응의 이러한 유형은 또한 가시 바다 가재 (야자와 야마, 2001)에 표시되었다. ventilatory 시스템은 또한 neuronally이 전문 부속 칭했다 scaphognathites의 펌핑 작업 (Mendelson, 1971)에 의해 아가미를 통해 산소 이해에 대한 책임 ventilatory 중앙 패턴 발생기 (VPG)으로 제어됩니다. 하나 scaphognathite은 앞쪽에 끝에 각 아가미의 챔버에있는과 리듬 운동 (Pasztor 1968 년)의 아가미를 통해 물을 그립니다. VPG은 심장과 마찬가지로, 여러 가지 요인에 의해 변조된 수 있습니다. 게에서 이전 작업, 암 매지 스터는 심장과 ventilatory 리듬이 명령 뉴런 (윌켄스 외., 1974)를 통해 중앙 제어에 의해 변경될 수 있습니다 보여줍니다. Cuadras, 1979, 1980,, 리 외, 2000;. Listerman 외뿐만 아니라, VPG의 활동은 내부 반응과 사회적 상호 작용이나 갑각류의 환경 변화 (Burmistrov 및 Shuranova, 1996 변화와 함께 변화하는 것으로 알려져 있습니다. , 2000; 맥마혼 및 윌켄스, 1983; Schapker 외, 2002;. Shuranova 외, 2002;. 윌켄스, 1976). 으로 크레이 피쉬에서 볼, ventilatory 활동 (VR)는 예상치 못한 외부 자극 (.; Shuranova 외, 2002. Shuranova 외, 1993)에 기록된 수있는 내부 상태와 VR의 변화에 따라 달라질 수 있습니다. HR과 VR 대책의 신뢰성과 타당성으로 인해, 요구하는 미래의 질문은 무한합니다. 이전 바와 같이, 작업은 사회적 상호 작용과 환경 교란하는 동안 자율 신경계의 반응을 조사하기 위해 수행되었습니다. 흥미롭게도, 많은 분야는 이러한 천연 호르몬 변화 및 ​​/ 또는 유기체에서 발생하는 다른 생리적 과정 동안 자율 반응 검사로 탐험으로 남아 있습니다. 향후 방향은 교미 및 후각 화학 리셉션 동안 교감과 같은 응답을 검사 수 있습니다. 가장 중요한 생리적 반응들은 내부적으로 자신을 준비하는 경우 동물들이 항상 behaviorally 응답하지 않기 때문에 행동 관찰에 비해 환경에 유기체의 반응에 큰 통찰력을 제공할 수 있습니다. 따라서 생리 측정은 유기체의 전체 변경 사항을 설명 수도 있습니다 유기체의 내부 상태를 평가하기위한 생물 학적 색인을 제공합니다. 방법 크레이 피쉬를 선을 시작하기 전에, 전선의 준비가 필요합니다. 충분히 왕새우에 넣고 충분히 (UFI, 모델 2991) 임피던스 검출기에 도달합니다. 2 개 절연 스테인레스 스틸 와이어 (AM 시스템, Carlsburg, WA 직경 0.005 인치 코팅 0.008 인치) 컷 등딱지에 삽입 될 두 전선의 끝을에서 화재로 절연 제를 (~ 0.5 mm)를 제거합니다. 동물의 외부에 노출된 와이어로 너무 절연을 제거하지 않도록주의가 짧은 circuiting 임피던스 녹음을 방지하기 위해 recoated해야합니다. 그런 다음, 집게를 사용하면 등딱지에 게재 위치에 대한 90 각도에서 전선의 구운 끝을 구부. 이 내부 장기에 손상을 할 수 있기 때문에 전선의 삽입 부분이 너무 긴 아니라는 것을 확인하십시오. 플라스틱 튜브 (전선을 보호하는)에 전선을 삽입 가능성에 대한, 그것은 느슨하게 함께 전선을 비꼬아하는 것이 좋습니다. 레코딩 마음과 환기 요금, 이상 반복 두 번째 단계와 전선의 두 세트는 플라스틱 튜브에 배치하기 전에 함께 느슨하게 꼰 수있다면. 와이어가 녹화되는 임피던스 감지기에 연결하는 혼동하지 않도록만큼 마음과 환기 율에 대한 전선을 지정해야합니다. 전선을 라벨이나 시작에서 다른 이상 한 쌍의 짧은자를하는 것이 좋습니다. feasibly 안전 왕새우를 와이어하려면, 그것은 사람 및 / 또는 왕새우 (그림 1)에 부상을 제거하는 서부 유럽 표준시 헝겊이나 종이 타올의 발톱과 다리를 (다시 떠나는하고 한쪽은 노출) 래핑하는 것이 좋습니다. <img src="/files/ftp_upload/1594/1594fig1.jpg" style="float:left;" alt="그림 1" /> 그림 1. 왕새우 chelipeds과 다리의 포장. 젖은 종이 타월에 왕새우를 포장하는 것은 사람과 왕새우에 부상을 방지할 수 있습니다. 포장은 chelipeds와 다리를 움직일 수있는 왕새우의 능력을 방해합니다. 등딱지 두께가 각 왕새우와 과도한 힘으로 다릅니다부터 배선 과정을 시작하려면, 그것은 길 챔버에서 시작하는 것이 좋습니다하면 길 챔버에서 시작하여 따라서, 내부 장기에 손상을 일으킬 수있는 과도한 압력으로 왕새우를 죽일 가능성이 적습니다 흉부 챔버에 비해. 첫 번째 구멍은 아가미 챔버 (.; Schapker 외, 2002 년 즉, ventilatory 속도를 모니터링하는 prebranchial 챔버)의 주동이의 영역에있는 표피 아래에 삽입하는 와이어 충분한 메스 단 대형 벌금 포인트를 사용하여 이루어집니다. 큰 구멍이 과도한 hemolymph 손실을하며 제대로 밀봉되지 않으며 이것은 지정된 구멍에 남아 아니라 와이어의 확률을 증가합니다. 와이어가 자리에되면, 와이어에 접착제 (cyanoacrylate 에스테르) 및 가속기 (HobbyTown 미국, 렉싱턴, KY)의 작은 금액을 놓으십시오. 빠른 건조 접착제의 사용은 동물의 처리 부담을 줄일 수 있습니다. 이것은 왕새우에 독성이며 사망 원인이 있기 때문에 표피에 가속기만을 소량 곳으로주의하십시오. 즉시 종이 타월로 초과 가속기를 닦아하는 것이 좋습니다. 길 챔버에서 두 번째 와이어에 대해 이러한 단계를 반복합니다. 이 두 전선은 각 scaphognathite 운동 (그림 2) 중 강력한 정확한 임피던스 측정을 확보하기 위해 scaphognathite (호흡 기관)를 스팬하는 배치됩니다. 정확한 녹음을하려면 두 번째 와이어가 더 길 챔버 ​​외부와 흉부 챔버에 배치되지 않았는지 확인합니다. <img src="/files/ftp_upload/1594/1594fig2.jpg" style="float:left;" alt="그림 2" /> 그림 2. 길 챔버의 스테인레스 스틸 와이어의 배치. 등딱지에 하얀 점들은 표피 아래에 배치하는 스테인레스 스틸 와이어에 대한 포인트를 나타냅니다. 전선은 동적 임피던스를 통해 scaphognathite 및 측정 운동을 스팬. 흉부 챔버의 배선 심장 박동에 대한 단계는 전선이 직접 주동이의 - 꼬리 배열에있는 심장과 스팬의 중심 (그림 3)을 통해 등의 등딱지 아래에 배치를 제외하고 위와 동일합니다. 이 배치는 각 심장 수축 (Listerman 외., 2001) 동안 강력한 정확한 임피던스 측정을 보장합니다. <img src="/files/ftp_upload/1594/1594fig3.jpg" style="float:left;" alt="그림 3" /> 그림 3. 흉부 챔버의 스테인레스 스틸 와이어의 배치. 등딱지에 하얀 점들은 표피 아래에 배치하는 스테인레스 스틸 와이어에 대한 포인트를 나타냅니다. 전선이 주동이의 - 꼬리 배열의 마음을 스팬. 이것은 동적 임피던스를 통해 심장 수축의 대책있게됩니다. 모두 4 개의 선이의 배치가 완료되면 (이스트먼, 5 분 건조 E에게 즉시 접착제를 혼합poxy)과 외투 각 지역뿐만 아니라 전선을 위해 구멍을. 전선 및 뚫고 구멍이 적절하게 적용되면, 왕새우의 뒤쪽에 플라스틱 튜브를 잡아 남은 에폭시를 사용합니다. 이것은 전선이 미래 handlings에있는 구멍에서 뽑아되지 않을 것임을 보장합니다. 에폭시 건조하는 데 몇 분 정도 걸리므로, 보유 또는 에폭시 더 이상 만져 끈적하지 않습니다 때까지 물없이 컨테이너에서 왕새우를 놓습니다. 에폭시가 건조되면, 과도한 화학 물질을 제거하고 수생 환경에 그들을 다시 곳으로 물속에 왕새우를 세척. 왕새우 건강을 보장하기 위해서는 이전에 제거되지 않은 화학 물질을 제거하는 약 한 시간 안에 물을을 변경하는 것이 좋습니다. 따라서 동물이 2로 3 일간 남아 있어야하는 실험하기 전에;로 이전 조사에서 명시된 바와 같이, 우리가 장기 처리는 3 일 (. 윌켄스 외, 1985) 24 H의 시간 동안 인해 스트레스 생리 측정을 바꿀지도 모르겠어 발견 . ECGs를 기록하려면, 왕새우에서 임피던스 감지기에 전선을 연결합니다. 심장 (측정 HR)를 걸쳐 두 전선이 두 전선이 scaphognathite (측정 VR)를 스팬에 대한 마찬가지로 하나의 임피던스 감지기에 붙어 있어야합니다. 임피던스 감지기가 두 스테인리스 와이어 사이의 역동적인 저항을 측정합니다. 이러한 신호는 PowerLab/4SP 인터페이스 (AD 악기)를 통해 PowerLab에 온라인 탐지기를 연결하여 기록됩니다. 모든 이벤트는 측정 및 PowerLab 차트 소프트웨어 버전 5.5.6 (AD 인 스트 루먼트, 호주)과 함께 조정됩니다. 시작하려면, 4 kHz에서에서 수집 속도를 설정합니다. 대형 deflections은 심장 박동과 환기 율을 나타내는 것입니다. 평활화 함수가 데이터 집합에 적용 할 수 각 HR / VR을 계산에 쉽게. 100 점이 smoothed있다면 (즉, 평균) 결과 추적은 심장이 뛰는을 나타내는 것입니다. 심장 요금 10 - S 간격이 지남에 따라 각 비트의 직접 건의에 의해 결정하고 분 (BPM) 당 비트로 변환할 수 있습니다.

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자유롭게 크레이 피쉬 이동에 마음을 ventilatory 요금 대책

Measures of Heart and Ventilatory Rates in Freely Moving Crayfish

공포, 비행 또는 싸움 응답이 임박한 약탈 공격에 따른 환경의 생물에 대한 인식을 조사에 대한 기본적인 생리 기초 역할을합니다. 그것이 무척추 동물은 posses 척추 동물의 동일 자율 신경계를하는지, 증거가 보여주는 알려져 있지 않지만 무척추 동물의 내부 환경과 준비 주어진 자극에 behaviorally 행동하는 생물을 조절하는 교감 같은 답변을했습니다. 또한,이 생리 반응은 feasibly 측정하고이 동물의 내부 상태에 대한 생물 학적 인덱스 역할을 수 있습니다. 생리 반응의 측정은 심장 혈관과 호흡 - 시스템의 중추 신경계 통제 조정의 변화를 통해 직접 내부 및 외부 스트레스에 관련된 수 있습니다. 좀 더 구체적으로, 심장 및 환기 속도를 모니터링하는 것은 스트레스 반응 항상 behaviorally 관찰하지 같지는 조치를 제공합니다. 크레이 피쉬는 녹음의 가능성뿐만 아니라 왕새우의 형태 알려진 풍부한 역사, 1888 년 헉슬리까지 거슬러 올라가는, 그리고 잘 공부 전형적인 행동으로 인해 마음과 ventilatory 속도 측정을위한 좋은 모델 생물입니다.

무척추 동물은 척추 동물에 대해 설명한 것과 유사 자율 교감과 같은 응답을 보여줍니다. 심장 - 혈관과 ventilatory 시스템의 조정은 유기체 내부 상태를 평가할 수있는 생물 학적 인덱스의 측정을 위해 수 있습니다.

자유롭게 크레이 피쉬 이동에 마음을 Ventilatory 요금 대책

공포, 도피 또는 투쟁 반응은 ... 하에서 유기체가 주변 환경을 인식하는지 살펴보기 위한 기본적인 생리학적 기초가 됩니다.

서로 다른 길이로 절단하여 준비한 두 세트의 스테인리스강 와이어를 보호용 플라스틱 튜브 안에 넣습니다. 와이어 준비가 완료되면, 가슴방(gid chamber)과 와이어가 심장을 가로지르는 흉강(thoracic chamber)에 작은 구멍을 뚫어 가재의 와이어 연결 작업을 수행합니다. 와이어는 큐티클 바로 아래에 배치하고 접착제로 밀봉합니다.그런 다음 이 와이어들을 임피던스 검출기에 연결하여 각 세트의 와이어 사이의 동적 저항을 측정합니다. 임피던스 검출기는 아날로그-디지털 변환 보드에 연결되며, 이 보드는 다시 컴퓨터에 연결됩니다. 소프트웨어는 수집된 데이터를 파형으로 제공하며, 이는 실험 분석을 위해 분당 박동수(beats per minute) 형식으로 수집될 수 있습니다.안녕하세요, 저는 켄터키 대학교 생물학과 Robin Cooper 박사 연구실의 Sonya Burrower입니다. 오늘은 가재의 심전도와 전기도를 기록하는 방법을 보여드리겠습니다. 저희 연구실에서는 다양한 환경 조건에서 가재의 자율신경 반응을 기록하기 위해 이 절차를 사용합니다.이제 시작하겠습니다. 기록용 전선을 준비하기 위해, 가재의 몸속에 삽입하여 임피던스 검출기에 충분히 닿을 수 있을 정도의 길이로 절연된 스테인리스강 전선 두 개를 자릅니다. 불꽃을 사용하여 가재의 가슴갑각(carabase)에 삽입될 두 전선 끝부분의 절연체 약 0.5 mm를 제거합니다.동물 외부에 노출된 전선이 단락되는 것을 방지하기 위해 절연체를 너무 많이 제거하지 않도록 주의하십시오. 반드시 수지 코팅(rec coated) 처리가 되어 있어야 합니다. 다음으로, 포셉을 사용하여 전선의 그을린 끝부분을 90도 각도로 구부려 갑각 내에 배치하십시오.와이어의 삽입 부분이 너무 길면 내부 장기가 손상될 수 있으므로 주의하십시오. 심박수와 호흡수를 모두 기록하는 경우, 이 단계들을 한 번 더 반복하십시오. 심박수용 와이어와 호흡수용 와이어를 구분할 수 있도록 반드시 라벨을 붙이십시오.보호용 플라스틱 튜브에 더 쉽게 삽입할 수 있도록 전선들을 느슨하게 꼬아줍니다. 기록용 전선이 준비되었다면, 가재를 효율적이고 안전하게 연결하기 위해 배선 작업을 시작하겠습니다. 우선 가재의 집게발과 다리를 젖은 천으로 감싸서 작업자와 가재 모두가 부상당할 위험을 제거하는 것이 좋습니다.아가미강 내에서 배선 과정을 시작합니다. 미세 포인트 메스를 사용하여 아가미강의 주둥이 쪽 부위에서 큐티클 아래로 와이어를 삽입할 수 있을 만큼만 첫 번째 구멍을 뚫습니다. 와이어가 고정되면, 소량의 속건성 접착제와 경화 촉진제를 와이어 위에 떨어뜨립니다.가속제는 가재에게 독성이 있으므로 큐티클 위에 아주 소량만 도포하도록 주의하십시오. 아가미실 내의 두 번째 와이어에 대해서도 이 단계를 반복합니다. 이 두 와이어가 S Scag nite를 가로질러 배치되어야 강하고 정확한 임피던스 측정이 가능합니다.각 Scag 이동 시, 심박수 기록에 사용되는 두 개의 전선은 동일한 방식으로 삽입하되, 심장 바로 위의 등쪽 carabase 아래에 배치하여 심장을 가로지르는 rostral cordal 배열로 배치한다는 점이 다릅니다. 이러한 배치는 각 심장 수축 동안 강력하고 정확한 임피던스 측정을 보장합니다. 네 개의 전선 배치가 모두 완료되면, 즉석 접착제를 혼합하여 각 위치의 구멍과 전선을 코팅합니다.전선과 뚫은 구멍이 충분히 덮이면, 남은 에폭시를 사용하여 플라스틱 튜브를 가재의 등 쪽에 고정합니다. 이렇게 하면 향후 취급 중에 전선이 구멍에서 빠지는 것을 방지할 수 있습니다. 에폭시가 마르는 데 몇 분 정도 소요되므로, 에폭시가 더 이상 끈적이지 않을 때까지 가재를 잡고 있거나 물이 없는 용기에 넣어 둡니다.건조가 완료되면 가재를 물로 씻어 과잉 화학 물질을 제거하고 다시 수생 환경에 넣습니다. 가재의 건강을 보장하기 위해 약 1시간 후에 물을 갈아주어 남아 있는 화학 물질을 제거하는 것이 좋습니다. 장시간의 취급은 스트레스로 인해 생리학적 측정값에 영향을 주므로, 실험을 시작하기 전 2~3일 동안 동물을 그대로 둡니다.이제 심전도 기록 과정을 살펴보겠습니다. 심전도(electrocardiograms 또는 ECG) 기록을 시작하려면, 가재에 연결된 전선을 임피던스 검출기에 연결하십시오. 심장을 가로지르는 두 개의 전선은 하나의 임피던스 검출기에 연결되어야 합니다.마찬가지로 Tite를 가로지르는 두 개의 와이어에 대해, 임피던스 검출기는 두 스테인리스 스틸 와이어 사이의 동적 저항을 측정합니다. 이러한 신호들은 검출기를 power lab에 온라인으로 연결하여 기록합니다. 모든 이벤트는 power lab 차트 소프트웨어 내에서 측정 및 보정됩니다.기록을 시작하려면 획득률을 4 kHz로 설정하십시오. 큰 편향은 심박수와 환기률을 나타냅니다. 데이터 세트에 평활화 함수를 적용할 수 있습니다.각 심박수와 호흡수를 쉽게 측정하기 위해, 10초 간격으로 각 박동 수를 직접 세어 이를 분당 박동 수로 변환함으로써 심박수를 결정할 수 있습니다. 몇 시간 동안 방해받지 않고 안정된 상태로 둔 가재가 제시되어 있습니다. 정상 상태의 기저율을 기록하여 자율신경 반응의 변화를 확인합니다.가재의 꼬리를 가볍게 두드려 꼬리 튀기기 반응(tail flip response)을 유도합니다. 그러면 컴퓨터 모니터에 심장 박동수와 환기율의 변화가 나타납니다. PowerLab Chart 소프트웨어를 사용하여 이러한 반응을 분당 박동수의 변동으로 확인하고, 꼬리 튀기기 유도 전의 초기 수치와 비교할 수 있습니다.지금까지 가재의 자율신경 반응을 기록하는 방법을 보여드렸습니다. 이 절차를 수행할 때, 전선을 조심스럽게 배치하고 가재를 최소 이틀 동안 그대로 두는 것이 중요하다는 점을 기억하십시오. 이렇게 해야 기록된 결과가 가재를 다루는 과정에서 발생한 스트레스 반응이 아니라, 실험에 의한 결과임을 보장할 수 있습니다.이상입니다. 시청해 주셔서 감사드리며, 실험에 좋은 결과가 있기를 바랍니다.

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Research

연구

JoVE Journal

Biology

생물학

우리는 촉각과 화학적 단서의 부재에서 행동 시각적 단서의 효과를 연구를위한 두 가지 방법을 개발했습니다. 한 가지 방법은 수족관에서 반사 벽에 왕새우 찍고 답변을 포함, 다른 하나는 투명 파티션 뒤에 살아있는 왕새우가 제공하는 시각 입력의 효과를 검사합니다.

크레이 피쉬에 리플렉션하는 행동 응답 녹음

실험 근육 구조, 시냅스 반응, 이온 그라디언트 및 막 잠재력에 대한 투자율의 효과를 조사 경험을 얻기 위해 학생들을위한 쉬운 접근 방법을 보여줍니다. 또한, 감각 - CNS - 모터 근육 회로의 연결 회로에서 화합물의 효과를 테스트하는 방법을 보여 제공됩니다.

멤브레인 후보, 시냅틱 응답,의 연결 회로, Neuromodulation과 크레이를 사용하여 근육 조직학 : 학생 실험실 연습

이 실험의 주된 목적은 일차 감각 뉴런은 동물에 대한 고유 정보를 공동 움직임과 위치 정보를 전달 방법을 이해하는 것입니다. 이 보고서의 추가 목적은 해부 현미경으로 해부와 뉴런의보고에 의해 준비의 해부 존재합니다.

크레이 피쉬 복부 근육 수용체 기관 : Proprioception에서 학생 실험실 연습

이 보고서에서 우리는 크레이 피쉬 hindgut의 생물을 조사하는 데 사용할 수있는 기법을 보여줍니다. 우리는 가재의 복부를 절개하다와 관련된 해부학, 생리학 활동의 변조를 연구하는 방법을 보여줍니다. 수축의 연동 활동과 강도는 강제 변환기를 사용하여 측정하고 있습니다.

크레이 피쉬 Hindgut와 생리 실험 : 학생 실험실 연습

이것은 생물 세포막은 전기 모델을 사용하여 구분할 수있는 방법에 대한 데모입니다. 우리는 또한 학생 중심의 연구소에 대한 왕새우의 복부 신경 코드에서 작업 잠재력을 기록 절차를 보여줍니다.

회로 기판과 생물 세포막을 모델링하고 Axons에 전기 신호를 측정 : 학생 실험실 연습을

물고기의 대부분의 생활은 수영에 predicated입니다. 이 프로토콜은 개인 및 교육 생선에 사용할 모드를 수영의 범위를 캡처 기술을 설명하고, 수영 생리학과 행동과 관련된 통계를 포함합니다.

물고기의 수영 성능 평가

생리와 해부학 적 기술은 갑각류 도보 사지 관절 proprioceptors과 근육의 긴장 수용체에 대한 기능과 구조를 해결하기 위해 증명된다.

게 사지에서 고유 감각과 긴장 수용체 : 학생 실험실 연습

circadian 시간의 함수로 가재 광수용체의 둔감 및 감도 회복에 대한 연구를 위한 프로토콜이 제시된다.

빛 자극전달 시 가재 광수용체 의 둔감화 및 회수

이 기사 연속 기록과 대 심장 및 운동 활동의 분석에 대 한 비 침범 성 biomonitoring 시스템을 제공합니다. 근 적외선 광학 센서, 비디오 추적 모듈, 및 그것의 생리 적인 상태를 반영 하 고 심장 박동 변동 동안 대 동작 특징 대 하트 비트를 평가 하기 위한 소프트웨어가이 시스템에 의하여 이루어져 있다.

왕새우 심장 및 동작 활동의 지속적인 비 침범 성 측정

열 도전 중 심박수를 측정하면 급성 환경 변화의 결과로 생물의 생리적 반응에 대한 통찰력을 제공합니다. 모델 유기체로 미국 랍스터(Homarus americanus)를사용하여,이 프로토콜은 후기 무척추 동물에서 심장 박동을 측정하기 위해 상대적으로 비 침습적이고 비치명적인 접근법으로 임피던스 폐포의 사용을 설명합니다.

후기 무척추 동물에서 심박수의 최소 침습 측정을 위한 임피던스 폐색술

학습하세요 가재의 심전도와 호흡률 측정 방법을 통해 자율신경 반응을 분석하는 기술입니다. 이 방법은 무척추동물 생리학 연구에 중요한 기초 자료를 제공합니다.

자유롭게 크레이 피쉬 이동에 마음을 Ventilatory 요금 대책

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