一种快速高通量的方法映射核糖核蛋白（RNPs）人类的前体mRNA

游泳池的设计和寡复苏

1. 第一步是要研究设计的前体mRNA池。这是可以做到使用UCSC基因组浏览器和下载的特定基因，拼接路口，或其他感兴趣的领域。
2. 一旦利益的窗户已被选中，在它们之间的瓷砖计算使用下列条件：读取的长度应为30与10核苷酸重叠，因此​​每个寡核苷酸转移从之前的20个核苷酸核苷酸。 *寡重叠，应增加在接近的剪接位点，以确保足够的覆盖范围;增加10至20个核苷酸的重叠，可以做到这一点。
3. 侧翼每个与通用引物序列，这将是用来放大池下游30个核苷酸的寡核苷酸。应提交安捷伦，将一个自定义的寡核苷酸芯片印刷序列平铺寡订单。
4. 要恢复从芯片表面的DNA寡核苷酸开始放置在阵列杂交室阵列封面幻灯片和幻灯片上轻轻移液500μL的dh ₂
5. 夹心数组封面幻灯片上，照顾，以避免气泡，可以破坏的过程。可以肯定的数组正面朝下放置，以便与寡核苷酸的一边是接触水面。一个好的经验法则是“安捷伦触及安捷伦”，意思是阵列上的安捷伦标签面临着封面上的幻灯片安捷伦标签
6. 关闭杂交室和旋转在99℃过夜，在杂交炉
7. 翌日，小心地取出数组，并从会议厅制定的水，它现在包含寡核苷酸阵列的表面解放。这是寡核苷酸池
8. 在50％幅度将在1.5 mL Eppendorf管的游泳池和超声池3-5个脉冲
9. 接下来，由低循环PCR扩增池，使用的末尾加上一个T7号标记的通用引物。对于第一轮，变性94 ° C 1分钟，55℃退火20秒，1分钟拉长为72 ° C。随后的几轮，做10秒，20秒，10秒，在每个相应的温度，5分钟，最后延伸72 ° C。由于寡恢复的效率取决于放大池所需的周期数，可能需要尝试多个周期的数字。要小心不要过度放大的游泳池，这是由丙烯酰胺凝胶涂乐队标志着。 PCR扩增产物可存放在4℃直至需要。
10. 在寡准备的最后一步是利用Ambion公司MEGAshortscript™套件转录RNA。 *以下协议改编自Ambion公司
    1. 解冻的T7 10X反应缓冲液，在室温下4个核苷酸的解决方案和水，同时保持冰的T7酶组合
    2. 组装反应混合物在室温下的无RNase的离心管。反应缓冲液的组成部分可以使模板DNA沉淀，如果反应是在冰上混合。
    3. 按照以下顺序，吸管3μL无核酸水，10X反应缓冲液，每75毫米NTP解决方案2μL，5μL模板DNA（PCR扩增寡核苷酸池）和2μL的T7酶，一个终体积20μL
    4. 管轻轻一抖混合反应，然后简要离心收集管底部的混合物。
    5. 在热循环反应在37℃2小时。孵化时间将依赖模板，因此它可能是必要的使用时间课程的实验，以确定获得最大的收益率孵育时间
    6. 2小时后，取出一个额外的15分钟的模板DNA加入1μL涡轮DNA酶反应和孵化，在37 ° C
    7. 终止反应和恢复酚/氯仿抽提和乙醇沉淀的RNA。
       1. 为20μL的反应体积，加115μL的_{dh 2} O和15μL3 M醋酸钠的反应。
       2. 调匀再加入75μL酸性苯酚和75μL氯仿。由涡旋混合溶液，然后在室温下13000转一分钟的离心。水层转移到一个新的管和重复提取
       3. 转移到一个新的管水层，并添加150μL氯仿。涡旋和以前一样的混合物离心机。水层转移到一个新的管。
    8. 两卷的100％的冷乙醇添加水层和混合以及收回的RNA。冰寒的混合物，最少为15分钟，在-20 ° C，然后离心机在4 ° C时最高速度在15分钟沉淀的RNA。小心取出上清液，和105的0.1倍的Tris - EDTA（TE）缓冲液重悬沉淀..
11. 这是很难删除所有从T7套件反应的游离核苷酸，最准确的结果，量化的RNA使用RiboGreen的。
    1. 要开始定量，先稀足够的1X TE，2300μL+50μL/sample。
    2. 接下来，RiboGreen。您将需要1000μL，50μL/样本。对于大范围的样品（1微克/毫升至20毫微克/毫升）混合在1x TE RiboGreen 1:200;低范围样本（50毫微克/毫升为1毫微克/毫升）混合在1x TE RiboGreen 1:2000 ;移液器到每一个不透明板以及50μLRiboGreen解决方案，开始与A1和向下移动，而不是跨
    3. 稀释到2微克/毫升高范围的样品或为100 ng /μL低范围的样品RNA原液
    4. 利用股票的解决方案，创建标准曲线由六个随后1:2稀释原来的2微克/毫升或100毫微克/毫升股票;移液器的股票240到μL的PCR条管。在余下的7管，吸液管120μL的1X TE。取120μLRNA的股票，混合管2。从管2 120μL和混合管3。重复，直到管7。管8只会有TE和将您的空白。吸取50μL的标准曲线的解决方案不透明板，A1：H2（两次运行曲线）
    5. 在一个新的管中，45μL的TE 5μL的寡核苷酸池混合，并添加所有50μL到包含50μLRiboGreen良好。
    6. 使用酶标仪设置本机读取从顶部的荧光，后一分钟的组合激发波长485 nm，发射波长为530 nm读板
    7. 使用标准曲线生成量化回收的RNA，应储存在-20 ° C

免疫共沉淀的寡核苷酸池与利益的RNP

1. 免疫共沉淀开始之前，准备A和蛋白G磁珠从Invitrogen公司以1:1的比例混合，最终成交量的50％μL反应的蛋白质。例如，对于两种反应中，您将添加50μL的每个珠子。
2. 使用一个像这样一个自Novagen磁分离架举行到位的珠子，而你去除上清，洗珠与冷的1X PBS等体积的两倍
3. 第二次洗涤后，在同等体积的冷1X PBS重悬珠，并添加2％反应的抗体吴。这一数额可能会有所不同，根据抗体，因此试验是必要的，以找到最佳的条件。
4. 抗体/珠的混合物过夜孵育4 ° C的一个旋转平台
5. 上午，添加2微克每超声酵母总RNA的反应，以阻止非特异性结合，和一个额外的30分钟旋转4 ° C。
6. 使用磁机架举行的珠子，去除上清，洗珠两次用冷的1X PBS，留在管内的第二次洗的PBS。
7. 取出新的管子，每个反应和每管分装50μL珠混合。让珠坐，同时准备一个主结构
8. 每个反应中添加200毫微克的寡核苷酸池，保护引物摩尔比，超声酵母总RNA 2微克，20μLHeLa细胞的核提取物（这是RNP源），和缓冲区发送带来的音量高达120微升。保护引物的通用引物RNA的版本。订购转录模板在末尾加上一个T7号标记的通用引物，然后抄写使用MEGAshortscript™套件模板的RNA。
9. 从珠分装和主结构在120μL重悬珠取出上清液。在4 ° C为1-2小时，岩石的反应。
10. 孵化后，每个反应，一个“总”的RNA样品中删除一个小等份（包括珠）
11. 将其余磁选立场的反应，去除上清。虽然是没有必要的分析样品下游流的，它可能是有用的保存的。
12. 洗磁珠冷1X PBS 50μL的1-2倍。绑定珠抗体的RNA是“知识产权”的样本。
13. 在1％的0.1倍TE缓冲液中的SDS 50μL重悬的“总”和“IP”珠和样品的温度在65℃，15分钟洗脱RNA。
14. 去除上清，它现在包含以前绑定的珠子和干净的酚/氯仿抽提乙醇沉淀的RNA。干颗粒，并在50μL的0.1倍TE缓冲液重悬。

合作IP样本的逆转录和扩增准备aminoallyl标签

1. 接着，RNA样品，必须反转录和PCR扩增。逆转录反应，使用反向通用引物。
2. 对于每个样本，混合1μL开始反向通用引物，1μL模板的RNA（免疫反应）和10μLDH _{2 O。}热的反应，在70 ° C 5分钟，然后寒意在冰上或保持在4 ° C。
3. 当样品冷却，使以下主结构。对于每一个反应，结合10毫米dNTPs 4μL，2μL10X Arrayscript缓冲区，1μLRNase抑制剂，和1μL反转录酶。调匀，加入8μL主结构每个逆转录反应。
4. 使用PCR仪，样品在42 ° C孵育2小时，95 ° C 5分钟，然后4 ° C，直到样品需要放大。
5. 反向转录后的RNA样品，PCR扩增使用的通用引物，含有T7启动标记的引物之一。放大池所需的周期数将取决于合作IP的效率，因此它可能是需要尝试多个周期。每个反应需要5μL10倍的Taq反应缓冲液，0.2μL每个引物（100毫米），cDNA模板1μL（逆转录反应），10毫米dNTPs 1μL，42.2μLDH _{2 O，} 0.4μLTaq酶。
   
   开始3分钟，94℃孵育样品的PCR。接下来，每个周期内，变性94 ° C 45秒，退火55 ° 30秒，在72 ° C和拉长最终伸长率在72℃10分钟，一分钟。
6. 下一步，抄写样品​​再次使用MEGAshortscript™套件，然而，这一次加2μLaminoallyl双绞线，而不是T7双绞线。 aminoallyl双绞线将用于标签的Cy染料的RNA。
7. 酚/氯仿和乙醇沉淀的样品。不要使用Glycoblue或醋酸铵，这两者都可能干扰样品的杂交到阵列。干颗粒和重悬在4.5μL0.1 M的碳酸钠。

氨基烯丙基标记的RNA用Cy染料

1. 要开始的标签协议的荧光染料，Cy3和Cy5溶解于45μL二甲基亚砜，。为了避免光线，在黑暗中管包裹在铝箔和储存在-20 ° C
2. 添加2.5μL无核酸酶水RNA样品调匀
3. 接下来，添加3μL的“总”的样本，Cy3标记，与3μL的Cy5的“知识产权”样本。在黑暗中孵育样品在室温下1小时，CY - 3样品会变成红色或粉红色，而CY - 5会变成蓝色。
4. 终止反应，加入6 4米羟胺盐酸UL，每个样品，调匀，自旋简要。 15分钟在室温下孵育。
5. 净化酚/氯仿抽提，乙醇沉淀和重新悬浮颗粒50μL的0.1倍TE标记的样品

杂交样品芯片使用安捷伦阵列杂交试剂盒

1. 首先，轻轻混匀50μL封闭液的10倍，140核酸无H2 _O，Cy3标记的“总”池，25μL的Cy5的标记为“知识产权”池25μL，10μL的微升杂交25X碎片缓冲区和250μL的2倍的杂交缓冲液，同时注意避免引入气泡。离心样品简单地收集在试管底部的解决方案，同时也减少气泡。
2. 将O形圈在杂交室的封面幻灯片，并仔细移液器到幻灯片的解决方案。
3. 将“三明治”的解决方案的封面幻灯片上的探测阵列。请记住，东方的阵列幻灯片，使阵列上的安捷伦标签面临着封面上的幻灯片安捷伦标签。
4. 夹在杂交室幻灯片/阵列三明治和旋转50 ° C时为3小时。
5. 而阵列旋转，请在50 mL锥形管50毫升的解决方案：一个圆锥形充满50毫升生署_{2 O}两个1X SCC的缓冲溶液中，每一个单独的管，和一个2倍SCC的缓冲区。
6. 三个小时的潜伏期后，小心地松开阵列/幻灯片夹层，放置于50 ml含有2倍的SCC的缓冲区锥形。使用镊子，轻轻分开的封面幻灯片阵列拉出封面幻灯片。要小心，不要触摸幻灯片拉出阵列。关闭锥形，轻轻地反转60秒。
7. 使用镊子，转移到1倍SCC解决方案的阵列，帽筒，轻轻倒置1分钟，然后转移到阵列中的第二1X SCC解决方案，并再次轻轻地反转一分钟。
8. 最后，转移到阵列中的DH _{2 O}管，轻轻地反转30秒。
9. 干的幻灯片的边缘上放置一个Kimwipe数组。继续旋转的阵列擦拭确保不会破坏含有寡核苷酸的一面。
10. 将干阵列一个空的50毫升锥形管和微阵列扫描仪扫描

解读基因芯片

1. 芯片扫描仪将创建一个数组的TIF图像。使用网格文件（由安捷伦提供的），这是您的特定池独特的形象，通过安捷伦的特征提取软件运行。
2. 安捷伦软件将解释每个功能的信号，创建一个文件，这是一个Perl脚本解析。在每个功能的信号是归在该通道的总强度。例如在一个特定功能的绿色通道，个别功能的绿色通道的强度除以总强度以上所有功能的绿色通道。最后的输出是在阵列上的每个功能的绿色通道，红色通道的日志比例。
3. 从芯片的寡核苷酸池中的数据可以被重新映射到基因组得到一个图片在哪里，以及如何强烈，利益的RNP约束。

图1。实验原理图

A.切片方案。选择和下载利益的前体mRNA序列后，通过选择面积平铺在30 10个核苷酸的增量转向核苷酸窗口。通用引物结合位点侧翼每边的窗口。

B.合成阵列。应提交安捷伦，将一个自定义的寡核苷酸芯片印刷序列平铺寡订单。

C.免疫共沉淀。煮沸后关闭阵列的寡核苷酸，在HeLa细胞的核提取物孵育，然后加入准备对利益的RNP抗体的磁珠提取。标签用Cy3寡核苷酸池，并用Cy5绑定的IP地址池，适用于探测阵列和扫描。

图2。注释基因组和浓缩数据分析。

A.平均得分从数组中的数据，在每个基因组的协调基地，十个日志和地图转换得分给定的坐标。这个平均步的一个例证是3个重叠的30 nt的寡核苷酸2分，4，0.5，平均每10 NT窗口浓缩得分作图以上。可以可视化USCS基因组浏览器中使用自定义跟踪选定的基因组区域。例如浏览器窗口是在CLTA基因，基因的功能（外显子/内含子/选择性剪接等），沿底部，并从客运大楼的约束寡核苷酸日志平均富集分数由暗红色的竖线代表。客运大楼的强烈结合在polypyrimidine道外显子2上游。

执行此过程时，重要的是记住，池创建灵活和开放的修改，在RNA或蛋白质水平。在RNA水平同源地区，疾病基因突变，多态性，或随机突变可以被引入到寡核苷酸序列。在蛋白质水平的RNA结合因子可以修改的磷酸化或其他翻译后修饰。此外，具有约束力的环境可以被操纵，以增加或减少交互或与RNA结合蛋白的利益竞争的其他因素的水平。