Name: RNAi הפרעה על ידי הזרקה לתוך dsRNA תסיסנית עוברים (וידאו) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-04-11T11:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 30 s
Description: למדו להשתיק ביטוי גני בזחלי Drosophila באמצעות הזרקת dsRNA לתוך עוברים. שיטה זו מאפשרת זיהוי גנים הדרושים להתפתחות איברים, במיוחד במערכת הנשימה.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

המחברים מבקשים להודות קרוז סטיבן עבור נוגדן dysfusion cDNA, פרע וזבובים 1118 W.

1. העובר אוסף <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הגדרת כלובים של 25 ° C באמצעות 2-4 בן יומו w 1118 מיץ צלחות flies.Grape משתנים בכל שעה במהלך היום כדי לסנכרן את איסוף ביצים במשך 1-2 ימים לפני איסוף </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> איסוף עוברים 1 שעות במהירות של 25 ° C </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חותכים חתיכה מלבנית של אגר מיץ ענבים, לחתוך קלות בסכין גילוח באמצע, לעזוב את קו אגר </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש מכשיר מתכת העברת עוברים מהצלחת מיץ ענבים ליצירה שלך אגר מיץ ענבים, קו אותם בקו ישר עם ציר זמן של העובר בזווית של 45 מעלות לקו באמצע אגר. קבל קו ישר של כ 50 עוברים. ודא שכל נקודה עוברים באותו כיוון, עם קצה אחורי הצבעה מן השורה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חותכים חתיכה מלבנית של נייר מקל כפול, ולמקם אותו להחליק כיסוי 18x18mm. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תרימי עוברים עם קלטת מקל כפולה על להחליק את מכסה </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הנח את כיסוי להחליק להחליק כוס, יבש העובר באוויר במשך 10 דקות בערך. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מכסים את העובר בשכבה דקה של שמן 700 Halocarbon, עכשיו זה מוכן להזרקה. </li></ol> 2. משיכת המחט הפוך את המחטים microinjection ידי משיכת צינורות זכוכית נימי. אנו משתמשים חולץ מחט מן העולם Precision Instrument (דגם PUL-1). חולץ מחט מפרטי התוכנית הם: חום: 1, עיכוב 4. 3. מילוי מחטים חזור עומס מחטים באמצעות P20 Eppendorf פיפטה מצויד טיפים Eppendorf Microloader, בדרך כלל עומס 1.5-2 dsRNA μL 4. שוברים את מחטים <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לפני שבירת מחט, במקום coverslip לשקופית. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן שקופית עם טיפה של שמן באמצע השקופית </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הפעל את השלישי Picospritzer picopump להתאים את לחץ האוויר </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשבור את המחט מלא על קצה להחליק כיסוי, יצירת נקודה חדה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כאשר קצה שבור, צעד על דוושת הרגל של Picospritzer III picopump, dsRNA כמה ידלפו מתוך קצה המחט. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> קח את השקופית עם coverslip. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכנס את מחט תחת טיפת שמן באמצע השקופית מוכן לפני. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> התאם את ההגדרה על III Picospritzer picopump לקבל 100-200pl dsRNA כאשר צעד על דוושת רגל. dsRNA ניתן לראות טיפה קטנה. </li></ol> 5. הזרקה <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תביאו את קצה המחט לחלק האחורי של העובר blastoderm הראשון לתוך המטוס מוקד ואותו מזריקים את העובר מחוץ למרכז סביב אורך 30-50 ביצה%. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר שלב הרגל על ​​דוושת של III Picospritzer picopump, כמות קטנה של dsRNA יופיע כנקודה קטנה הזריקה. </li></ol> 6. פנוטיפי ניתוח <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר ההזרקה, במקום להחליק לתוך תא לחה מכוסה (פלסטיק צלחת פטרי) בשעה 18 ° C עד העוברים להתפתח לשלב העוברי הרצוי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש בדיקה כדי להסיר עוברים מהקלטת דו צדדי ולדחוק אותם אל קצה להחליק את המכסה. שטפו את העוברים את השקופית לתוך בקבוקון אוסף עם רשת ניילון בתחתית באמצעות heptane, לשטוף 3 פעמים עם PBT. עוברים Dechorionate ב אקונומיקה 50% עבור 5 דקות, לשטוף 3 פעמים עם PBT. העברת עוברים מבקבוקון את האוסף פיסת רשת ניילון, ולאחר מכן טובלים את רשת ניילון לתוך הפתרון מקבע (heptane 5 מ"ל, 4.5ml PBS, פורמלדהיד 0.5ml 37%) לשחרר את העוברים. תקן עוברים בפתרון מקבע עבור 30 דקות. Devitellinize עוברים עם מתנול, העברת עוברים אל צינור Eppendorf, ו immunostain את העוברים באמצעות פרוטוקולים סטנדרטיים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> עוברים יכול גם להתפתח בשלב הזחל המתאים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן שקופית עם טיפה של שמן Halocarbon 700 באמצע </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> העברה חד הזחלים לשקופית, לשים פתק לכסות על הדף </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שימו לב הזחלים תחת מיקרוסקופ שדה בהיר. </li></ol> 7. נציג תוצאות: דוגמה dsRNA להפיל (פרע) dysfusion הגן בעובר Drosophlia מוצג Fig1. GFP-dsRNA מוזרק הם עוברים בקרת שלילית. פרע הוא גורם שעתוק PAS bHLH לידי ביטוי בתאים היתוך קנה הנשימה. GFP-dsRNA עוברים מוזרק להראות היתוך קנה הנשימה נורמלי, חלבון פרע קיים בתאים היתוך (איור 1A). מצד שני, פרע dsRNA מוזרק עוברים להראות פיוז'ן בסניף נכשל, חלבונים פרע לא נמצאים בתאים היתוך (איור 1B). כאשר הזריקו dsRNA העוברים להתפתח בשלב הזחל, הזחלים פרע dsRNA מוזרק הראה היתוך סניף נכשל (Fig.1D) לעומת שליטה GFP-dsRNA שלילי מוזרק (תרשים 1C). תוצאות אלה הראו יעיל להפיל הביטוי פרע אנדוגני הגן על ידי dsRNA הזרקת לעוברי תסיסנית <img src="/files/ftp_upload/2477/2477fig1.jpg" alt="איור 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="איור 1"> באיור 1. הסרה של הפונקציה על ידי פרע פרע RNAi מגלה היתוך ד קנה הנשימהefects. עוברים Blastoderm (w 1118) הוזרקו או GFP-dsRNA (שליטה שלילי) או פרע dsRNA ו assayed פגמים קנה הנשימה. (א) 16 עובר שלב מוזרק עם GFP-dsRNA ומוכתמת עם α-פרע ו מב 2A12 כי כתמים לומן קנה הנשימה. בולט הוא הראה את תא המטען לרוחב, אשר התמזגו. הצבע על חצים לרוחב פרע חיובי תאים גזע היתוך. (ב) 16 עובר שלב מוזרק עם פרע dsRNA ומוכתמת עם α-פרע ו מב 2A12. העובר הראה חוסר איחוי תא המטען לרוחב (כוכבית מציינת את המיקום הרגיל של היתוך המטען לרוחב-בעוברים שליטה). פרע חיובי לא נצפו תאים, המעיד כי פרע RNA ביעילות בוטל חלבון פרע. (C ל-D) שניה instar הזחלים גם עם ה-GFP-dsRNA או פרע dsRNA נבדקו על ידי מיקרוסקופ שדה בהיר פגמים קנה הנשימה. (ג) אתרים של היתוך מסומנים על ידי כוכבית ב-GFP הזחלים dsRNA לשלוט מוזרק. (ד) בתא המטען לרוחב לא הפתיל של הזחלים פרע RNA המוזרק, (*) מציין את המיקום הרגיל של היתוך גזע לרוחב.

<ol><li>St Johnston, D., Nusslein-Volhard, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+origin+of+pattern+and+polarity+in+the+Drosophila+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">The origin of pattern and polarity in the Drosophila embryo.</a> Cell. 68, 201-219 (1992).</li>
<li>Venken, K. J., Bellen, H. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Emerging+technologies+for+gene+manipulation+in+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Genet%22%5BJournal%5D)">Emerging technologies for gene manipulation in Drosophila melanogaster.</a> Nat. Rev. Genet. 6, 167-178 (2005).</li>
<li>Fire, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Potent+and+specific+genetic+interference+by+double-stranded+RNA+in+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Potent and specific genetic interference by double-stranded RNA in Caenorhabditis elegans.</a> Nature. 391, 806-811 (1998).</li>
<li>Kennerdell, J. R., Carthew, R. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+dsRNA-mediated+genetic+interference+to+demonstrate+that+frizzled+and+frizzled+2+act+in+the+wingless+pathway%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Use of dsRNA-mediated genetic interference to demonstrate that frizzled and frizzled 2 act in the wingless pathway.</a> Cell. 95, 1017-1026 (1998).</li>
<li>Misquitta, L., Paterson, B. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeted+disruption+of+gene+function+in+Drosophila+by+RNA+interference+%28RNA-i%29%3A+a+role+for+nautilus+in+embryonic+somatic+muscle+formation%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.+S.+A%22%5BJournal%5D)">Targeted disruption of gene function in Drosophila by RNA interference (RNA-i): a role for nautilus in embryonic somatic muscle formation.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 96, 1451-1456 (1999).</li>
<li>Horowitz, A., Simons, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Branching+morphogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Circ.+Res%22%5BJournal%5D)">Branching morphogenesis.</a> Circ. Res. 103, 784-795 (2008).</li>
<li>Hogan, B. L., Kolodziej, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organogenesis%3A+molecular+mechanisms+of+tubulogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Genet%22%5BJournal%5D)">Organogenesis: molecular mechanisms of tubulogenesis.</a> Nat. Rev. Genet. 3, 513-523 (2002).</li>
<li>Ghabrial, A., Luschnig, S., Metzstein, M. M., Krasnow, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Branching+morphogenesis+of+the+Drosophila+tracheal+system%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Cell+Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Branching morphogenesis of the Drosophila tracheal system.</a> Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 19, 623-647 (2003).</li>
<li>Jiang, L., Crews, S. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dysfusion+transcriptional+control+of+Drosophila+tracheal+migration%2C+adhesion%2C+and+fusion%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Cell.+Biol%22%5BJournal%5D)">Dysfusion transcriptional control of Drosophila tracheal migration, adhesion, and fusion.</a> Mol. Cell. Biol. 26, 6547-6556 (2006).</li>
<li>Jiang, L., Crews, S. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Drosophila+dysfusion+basic+helix-loop-helix+%28bHLH%29-PAS+gene+controls+tracheal+fusion+and+levels+of+the+trachealess+bHLH-PAS+protein%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Cell.+Biol%22%5BJournal%5D)">The Drosophila dysfusion basic helix-loop-helix (bHLH)-PAS gene controls tracheal fusion and levels of the trachealess bHLH-PAS protein.</a> Mol. Cell. Biol. 23, 5625-5637 (2003).</li>
</ol>

אין ניגודי אינטרסים הכריז.

נוכח שיטת הזרקה dsRNA כאן מאפשר ניתוח רגיש מאוד מהיר של תפקוד הגן בהתפתחות תסיסנית קנה הנשימה. שיטה זו עלולה להיות מיושם לנתח תפקוד הגן רקמות אחרות ופיתוח איברים.

<table><tbody><tr><td>שמן Halocarbon 700</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H8898</td><td></td></tr><tr><td>משאבת פקו-ספריץר Picospritzer III</td><td>Parker Hannifin Corporation</td><td>051-0500-900</td><td></td></tr><tr><td>מיקרו-פיפטות</td><td>Fisher Scientific</td><td>21170M</td><td></td></tr><tr><td>מיקרו-לואדרים (Microloaders)</td><td>Eppendorf</td><td>930001007</td><td></td></tr></tbody></table>

rnai הפרעה על ידי הזרקה לתוך dsrna תסיסנית עוברים

RNAi Interference by dsRNA Injection into Drosophila Embryos

בדיקה גנטית היא אחת השיטות החזקות ביותר עבור השגת תובנות לתוך תהליך ביולוגיות מורכבות 1. במהלך השנים שיפורים רבים וכלים מניפולציה גנטית הפכו זמינים תסיסנית 2. זמן קצר לאחר הגילוי הראשוני על ידי Frie מלו ו 3 כי RNA גדילי כפול ניתן להשתמש מציאה את פעילותם של גנים בודדים Caenorhabditis elegans, התערבות RNA (RNAi) הוצגה כדי לספק גישה חזקה גנטית הפוכה לנתח פונקציות הגן בהתפתחות איבר תסיסנית 4, 5. איברים רבים, כולל ריאות, כליות, כבד, מערכת כלי הדם, מורכבים ברשתות צינורי מסועפת תחבורה חיוני נוזלים או גזים 6, 7. ניתוח של היווצרות תסיסנית קנה הנשימה מספקת מערכת מודל מצוינת ללמוד את המורפוגנזה של איברים אחרים צינורי 8. תסיסנית ברקלי פרויקט הגנום חשף מאות הגנים באים לידי ביטוי במערכת קנה הנשימה. כדי לחקור את המנגנון המולקולרי ו הסלולר של היווצרות צינור, האתגר הוא להבין את התפקידים של גנים אלה בהתפתחות קנה הנשימה. כאן, אנו תיאר שיטה מפורטת של dsRNA זריקה לתוך העובר תסיסנית כדי ביטוי גנים בודדים מציאה. אנחנו בהצלחה הפילו dysfusion אנדוגני (פרע) ביטוי גנים באמצעות זריקה dsRNA. פרע הוא חלבון bHLH-PAS לידי ביטוי בתאים היתוך קנה הנשימה, והוא נדרש ענף היתוך קנה הנשימה 9, 10. פרע RNAi בוטלו לחלוטין הביטוי פרע וגרם פגם היתוך קנה הנשימה. שיטה זו פשוטה יחסית מספקת כלי לזיהוי גנים requried עבור tissure ופיתוח איבר תסיסנית.

התערבות RNA הוכח יעיל מאוד כדי לנתח את תפקוד הגן<em&gt; תסיסנית</em&gt; פיתוח קנה הנשימה. פרוטוקול מפורט בשימוש על ידי ג&#39;יאנג במעבדה להזריק dsRNA לעוברי לטוס ביטוי גנים מציאה מודגם. טכניקה זו יש פוטנציאל ההקרנה גנים הדרושים להתפתחות רקמות איבר<em&gt; תסיסנית</em&gt;.

RNAi הפרעה על ידי הזרקה לתוך dsRNA תסיסנית עוברים

סריקה גנטית היא אחת השיטות העוצמתיות ביותר הזמינות להשגת תובנות לגבי תהליכים ביולוגיים מורכבים 1. לאורך השנים חלו שיפורים רבים...

המטרה הכוללת של הליך זה היא להשתיק ביטוי של גנים אנדוגניים באמצעות הזרקת RNA דו-גדילי לעוברים של דרוזופילה, וזאת כדי לזהות גנים הדרושים להתפתחות איברים. פעולה זו מבוצעת תחילה על ידי איסוף העוברים וסידורם בקו ישר. לאחר מכן, מוכנות מחטים המשמשות להזרקת RNA דו-גדילי לתוך העוברים.לבסוף, העוברים מועברים לתא לחית (moist chamber) כדי להתפתח. בסופו של דבר, ניתן להשיג תוצאות המראות פגמים בחיבור ענפי הקנה של ה-drosophila באמצעות צביעה בנוגדנים של עוברים בשלב מאוחר, או על ידי תצפית בזחלים תחת מיקרוסקופ שדה בהיר (brightfield microscope). היתרון המרכזי של טכניקה זו על פני שיטות קיימות, כגון סקר גנטי קדימה (forward genetic screen) לזיהוי גנים הדרושים להתפתחות איברים, הוא שזוהי גישה גנטית הפוכה (reverse genetic approach) פשוטה ומהירה יחסית לניתוח תפקודי גנים לפני שזמין מוטנט עבור אותו גן.שיטה זו יכולה לסייע במתן מענה לשאלות מפתח בתחום הביולוגיה ההתפתחותית, כגון זיהוי גנים קריטיים הדרושים להתפתחות מערכת הטרכיא של ה-D. זהו מודל מצוין לחקר המורפוגנזה של איברים ביונקים, כגון דרכי הנשימה של חרפת-חושה, מערכת הדם, צינורות הכליות ואפיתל חקרני. באופן כללי, מי שאינם מנוסים בשיטה זו עלולים להתקשות בתחילה, שכן נדרש זמן ללמידת הטכניקות, כגון יישור העוברים, שבירת מחטים והזרקת RNA שזוף אל תוך העוברים.הדגמה ויזו

rnai-interference-by-dsrna-injection-into-drosophila-embryos

Research

JoVE Journal

Biology

ביולוגיה

אנו מתארים שיטה רגיש לזהות הרגולטורים postembryonic של ביטוי חלבונים לוקליזציה...

RNAi הקרנת לזהות פנוטיפים Postembryonic ב ג elegans</em

מטרתו של פרסום זה היא לדמיין ולדון בצעדים האופרטיביים של פרוטוקול צפון כתם משופר על RNA שחולץ מתסיסנית עוברים, תאים ורקמות. פרוטוקול זה שימושי במיוחד לאיתור יעיל של מיני RNA קטנים.

Enhanced צפון כתם איתור של RNA קטן מינים ב תסיסנית

טכניקות גן מציאה מבוססות התערבות RNA (RNAi) נמצאות בליבה של מחקר Tribolium. כאן, אנו מספקים סקירה של טכניקת RNAi הזחל שלנו בcastaneum Tribolium. הזחל RNAi הוא טכניקה פשוטה, אך רבת עוצמה המספקת גישה מהירה לפנוטיפים פסד של פונקציה, המאפשר לחוקרים ללמוד פונקציות גן בהקשרים מגוונים.

התערבות RNA הזחל בחיפושית האדומה הקמח, Tribolium castaneum

RNA interference (RNAi) הוא כלי בעל ערך רב לחשיפת תפקוד הגנים. עם זאת, היכולת למקד גנים באמצעות RNAi בשלבים טרום-בוגרים מוגבלת בווקטור המלריה האנושי העיקרי Anopheles gambiae. אנו מתארים פרוטוקול RNAi להפחתת תפקוד הגנים באמצעות הזרקה ישירה במהלך התפתחות הגולם.

RNAi טריגר משלוח לתוך<em&gt; Gambiae אנופלס</em&gt; גלמים

כאן, אנו מציגים פרוטוקולים לגידול חיפושית ביניים-נבט, Dermestes maculatus (ד maculatus) במעבדה. בנוסף, אנחנו משתפים פרוטוקולי RNAi ושיטות עובריים וההורי לניתוח פנוטיפים עובריים ללמוד לתפקד גני מין זה.

התרומם על רגליו אחורי פעמים תקועות מציאת גן בתיווך רנ"א סתר החיפושית, Dermestes maculatus

מאמר זה מדגים טכניקות הרומן שפותחו עבור משלוח אוראלי של זוגיות גדילי RNA (dsRNA) דרך הרקמות וסקולריים הצמחים עבור התערבות RNA (RNAi) מהצינורות האכלה חרקים.

שיטות משלוח כפול גדילי RNA אוראלי לזירוז התערבות RNA שיפה וחרקים Hemipteran צמח sap-האכלה

הפרעות RNA היא טכניקה ישימה ורבת עוצמה למניפולציה ביטוי גנים בשלבים התפתחותיים ספציפיים. כאן, אנו מתארים את הצעדים הדרושים ליישום טכניקה זו חיפושית הצלילה הימית תרמונקטוס מרמורטוס, מרכישת רצפי גנים ועד לחיסול גנים המשפיעים על מבנה או התנהגות.

הפרעות RNA בחפשיות מימיות ככלי רב עוצמה למניפולציה ביטוי גנים בנקודות זמן התפתחותיות ספציפיות

מתן אוראלי של dsRNA המיוצר על ידי חיידקים, שיטת אספקה להפרעות RNA (RNAi) המשמשת באופן שגרתי ב - Caenorhabditis elegans, יושם כאן בהצלחה על יתושים בוגרים. השיטה שלנו מאפשרת מחקרים חזקים בגנטיקה הפוכה ומחקרי וקטורים חוסמי העברה ללא שימוש בהזרקה.

מתן יעיל של הפרעת RNA דרך הפה (RNAi) ליתושים אנופלס גמביה בוגרים

המניפולציה של הפרעות RNA (RNAi) מהווה אתגר עצום במינים רבים של טפילים בעלי גודל זעיר, כגון צרעות טריכוגרמה . מחקר זה התווה שיטת RNAi יעילה ב - Trichogramma denrolimi. המתודולוגיה הנוכחית מספקת מודל חזק לחקר בקרת גנים בצרעות טריכוגרמה .

הפרעות RNA בפרזיטואיד ביצה, Trichogramma dendrolimi Matsumura

מאמר זה לוקח את הטרנסגנזה בתיווך אינטגראז phiC31 בדרוזופילה כדוגמה ומציג פרוטוקול אופטימלי למיקרו-הזרקה עוברית, צעד מכריע ליצירת זבובים טרנסגניים.

מיקרו-הזרקה של עובר לטרנסגנזה בדרוזופילה

למדו להשתיק ביטוי גני בזחלי Drosophila באמצעות הזרקת dsRNA לתוך עוברים. שיטה זו מאפשרת זיהוי גנים הדרושים להתפתחות איברים, במיוחד במערכת הנשימה.

RNAi הפרעה על ידי הזרקה לתוך dsRNA תסיסנית עוברים

גלה סרטונים נוספים