Name: 初代ヒト卵管上皮細胞のex vivoでの文化 (動画) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-05-09T13:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 46 s
Description: 学ぶヒト卵管上皮細胞のex vivo培養法。分泌細胞と線毛細胞を共培養し、正常な形態と極性を保持したまま漿液性卵巣がんの発生機序を研究する革新的な手法を習得できます。

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我々は、教員、研究員、住民、およびブリガムアンドウィメンズ病院の医師のアシスタント、これらの研究のための組織を利用可能にするために病理部に感謝。この作品は、NIH /国立がん研究所（P50 CA105009、K08 CA108748、U01 CA152990）、卵巣癌研究基金、月ケイ財団、ノバルティスファーマ、ロバートとデボラまず基金、ランディとジョエルカトラーの卵巣癌からの研究助成金によってサポートされていました研究基金、マーシャリブキン財団 - 科学奨学生賞、AACR - ジョージとがんの遺伝学的研究のためのパトリシアSehlフェローシップ、およびイスラエルの医療のためのアメリカの医師のフェローシップ - クレアとエマニュエルG.ローゼンブラット財団助成。

1。コラーゲンの準備とフィルターコーティング。 <ol><li>ヒト胎盤コラーゲンを準備するには、ヒト胎盤コラーゲン30mgのをピンセットで抜くと攪拌棒を500 mlのビーカーに50mlの蒸留水（のdH 2 O）の上に置く。 </li><li>それは容易に溶解するように直接コラーゲンに氷酢酸100μlsを追加。 37℃程度まで加温し、コラーゲンを溶解するために、それをかき混ぜる。それは20〜30分で溶解してください。コラーゲン鎖が溶液中に残っている場合は、フィルター滅菌が困難になります。 </li><li>のdH 2 Oを450 mlと50 mlのストックを希釈し、0.2μmメンブレンでろ過滅菌します。これは最終的な実用的なソリューションです。 4℃で保存します。 </li><li>コー​​ティングその晩コラーゲン（50〜100μl）を持つことによってトランスウェルフィルター膜を準備します。チルドコラーゲンをRTに温め、次いで一晩、室温でメンブレンをカバーするために、上部コンパートメントに追加する必要があります。トランスウェルフィルター上に解離主卵管（FT）上皮（下記参照）をメッキする前に、1Xリン酸塩で三回は過剰なコラーゲンを除去するために使用前に生理食塩水（PBS）少なくとも1時間をバッファリングのフィルターを洗う。 </li></ol> 2。組織の収集と解離。 <ol><li>新鮮な卵管（FT）采を50 ml遠心チューブに滅菌1X PBSで回収し、無菌組織培養フードに処理を要求する前に氷上で保存する。 </li><li> （サンプルはメディアの別のタイプに収集されたか、これはメッキの効率を妨げる可能性があるので、できるだけ多くの血液と外国メディアを取り除くために、少なくとも3倍血の洗浄であるとされている場合）1X PBSを冷やして一回20ml中の組織サンプルを洗浄してください。 </li><li>滅菌メスと滅菌ピンセットを使用して、少しPBSと10 cmの組織培養皿に滅菌ピンセット転送FTを用いて、上皮細胞の露出を最大化するために縦にカット。それはもはやチューブが、組織のほぼ平らなシートがないように采を開きます。その後小さいが、それでも回収可能部分（直径約3 mm）に切断。 </li><li> 50 mlチューブにチルド解離メディア45mlの（1.4 mg / mlのプロナーゼとは0.1 mg / mlのDNaseを含むMEM）に曲を転送する。 </li><li> 4 24〜72時間℃で穏やかに揺らし。 （経験から、48時間が最適です）。解離の量を確認するには、スライド上に解離メディアのドロップを入れて、凝集と組織の生存率（繊毛細胞を破って）の量を確認してください。あなたは、単一細胞といくつかの小さな塊の両方を見てみたい。 </li></ol> 3。卵管のメッキ。 <ol><li>上皮細胞の解離の量が最適であるときは、FBSの10％のボリュームを追加することにより、メディアを不活性化する。小さな凝集体に細胞懸濁液を取り除くために、数回転倒混和します。 </li><li>底部にチューブを解決するために大規模な組織の塊（間質組織を）許可する。第二50 mlチューブに上皮細胞を含むメディアを取り外します。 </li><li>オリジナルの50 mlチューブに冷たいMEMを50ml（無FBS）を追加します。追加の細胞を収集するために反転。第三50 mlチューブ（サンプルが非常に大きく、細胞の高い数値が期待されている場合、このステップは、セルのコレクションを最大化するために繰り返すことができる）にメディアを収集する。間質/細胞外組織の大部分は破棄することができます。これで、細胞懸濁液の2個の50 mlチューブを持っている。細胞ペレットから5分、吸引解離のメディアのための1000 rpmで遠心。 </li><li> USG培地（DMEM：F12 2パーセントUSGと1％ペン連鎖球菌を補充）の約5-10 mlに再懸濁し、37℃に温めピペット。これは上皮細胞を損傷し、文化の質を低下させる可能性があるため、あまりにも積極的にピペッティングしないように注意してください。単一細胞と小さな塊（図1）があるはずです。 </li><li> 1時間または最大3時間以上Primaria培養皿とインキュベートへ転送。線維芽細胞と赤血球は、プラスチックに付着しますが、FT上皮細胞はしません。何かが付着しているかどうかを確認する時間後にプレートを見てみましょう。繊毛細胞の存在は、繊毛の拍動に注目することによって見ることができます。 </li><li>このインキュベーションの間、コラーゲンコートされたフィルターを洗浄し、細胞播種の準備ができたことができます（ステップ1.4参照） </li><li> Primariaプレート上のインキュベーションの1-3時間後、15 mlのチューブに細胞懸濁液を転送し、5ml USGメディアとPrimariaプレートをすすぎ、15 mlの最終容量を作るためにチューブにこのメディアを転送する。 5分間1000rpmで遠心する。 </li><li>慎重に培地を吸引除去し、細胞ペレットを中断することは避けてください。ペレットの大きさから判断すると、USGメディアの適切な量で再懸濁します。あなたがする必要がある場合はさらに希釈できるように（通常1〜3ミリリットルの間で）以下は、初めに優れています。静かに懸濁します。 </li><li>血球計算盤に再懸濁した細胞を10μlを加え、細胞密度を決定する。ヒント：あなたは明らかに暗い細胞膜を持つと非柱状である上皮細胞を探している。また、確実に移動している繊毛細胞を数えることができます。ハローappearanを持つ小さな細胞ceは赤血球であり、カウントすべきではない。これは一種の塊であるので、その使用電池数内に見積るため必要となります。種まきのターゲットは1.65 × 10 5細胞/細胞膜、または少なくとも75％フィルターカバー（図1）です。細胞があまりにもまばらに播種されている場合、細胞は完全に上皮層を形成することができなくなります。 </li><li> 24ウェルプレートのウェルの底にUSGメディア500μlを加え、トランスウェルを挿入します。 FTの細胞懸濁液（上記参照）の必要量は、それぞれのメンブレン上に加えることができる、これは通常100μlである。 </li><li>膜の上部を乱すことなくインキュベートし、1〜2日のために成長する。必要に応じて、それらの日の間に基底側にあるメディアを変更することができます。 1〜2日後に、慎重にUSGのメディアでトップを洗浄し、膜の上に小容量のリムーバブルメディア（50〜100μl）を追加することができます。それはメディアが顕微鏡の前にフィルタの頂端側から削除されている場合、細胞培養の合流を決定する方が簡単です。下部コンパートメントには、常にメディアが含まれている必要があります。かつての文化が（通常5日以内に）完全にコンフルエントな、頂辺に基底からフィルタを通って移動するメディアの量は無視できるはずです。 </li><li>最初の10日間の2日に1回基礎培地を変更します。下部コンパートメントには、常に細胞が生き続けるためにメディアを持っている必要があります。いったん細胞は、それらがそのような免疫蛍光（IF）または免疫組織化学（IHC）のようなさらなる研究、に使用することができる（図1と図2）タイト上皮層を形成している。 </li></ol> 4。膜処理。 <ol><li>膜処理が実行される試験の種類に依存しますが、通常はトランスウェルインサートからフィルタの除去を含む。 </li><li>フィルタは、典型的に除去する前の1X PBSを200μlで3回洗浄する。 </li><li>フィルターの先端と基底側からPBSを吸引除去する。これは、乾燥から膜を防ぐために、一度に1ウェルを行う必要があります。 </li><li> 、プレートからカバーを取り外し、それを上下逆さまに反転し、膜の周りにカットする滅菌メスを使用してください。代わりに、エッジの周りにメスをドラッグすると、膜のエッジの周りストレートカットすることによって、一枚の膜を除去するようにしてください。 </li><li>細胞が上にあるどちら側を追跡する、インサートからフィルタを削除するには、ピンセットを使用してください。フィルタは、必要に応じてIF、IHC、等のために処理することができます。 </li><li>例：試験は、フィルターが（適切な抗体との固定、透過処理、ブロッキングやインキュベーションの後、手続きIF規格に準拠）スライド上に配置する必要がある場合のために、DAPIで、Vectashieldを上向きにし、細胞をフィルター上に滴下さとで覆われてガラスカバースリップ。 </li></ol> 5。代表的な結果： トランスウェルフィルターは、容易に免疫組織化学（IHC）と免疫蛍光（IF）の両方でex vivoでの上皮を調べるために削除することができます。特異的なマーカーリネージュ使用して、一つはイメージできると分泌（正Pax8）及びこれらの培養物における繊毛（Sall2ポジティブ）細胞区画（図3）を定量化する。また、これらのマーカーを使用して、一つは各セルのタイプは異なる生理的な手がかりを10に応答する方法を監視することができます。このシステムは、様々な刺激に反応してFTの上皮のsecretomeと細胞内リン酸化プロテオームの変化を特徴付けるために使用されています。 <img src="/files/ftp_upload/2728/2728fig1.jpg" alt="図1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図1"> 図1。イラストは 、ex vivoでの培養は、初代ヒト卵管組織から生成される方法を描いた。卵管線毛組織が ​​手術室から取得し、24〜72時間2の解離メディアで洗浄し、インキュベートする小さな断片1を生成するためにみじん切りされています。解離が完了した後、組織片は培養管の底に沈降させていると解離上皮細胞を含む培地3を収穫される。解離の効率は、位相差顕微鏡4の下検査によって監視することができます。解離上皮細胞は、線維芽細胞と常に上皮細胞5で混合した造血細胞を除去するためにPrimariaプレート上で培養されています。非上皮細胞が十分除去されると、上皮細胞はヒト胎盤コラーゲン5で被覆されているトランスウェルフィルター上に接種されています。メディアは以下のトランスウェルを介して拡散によって提供されます。培養は24〜48時間インキュベートし、その後頂メディアが削除されます。 ex vivoでの培養物をトランスウェルフィルター上に完全な、完全な芝生を形成するために5-8日のために拡張されます。 4週間までex vivoでの培養は、この状態でviably維持することができます。漫画5は hemato付きインサートとステンドグラスから除去フィルタの例で十分に成長した生体外での文化の表現を示しています。xylinとエオシン（H＆E）は、ex vivoでの上皮の極性とアーキテクチャを実証する。 <img src="/files/ftp_upload/2728/2728fig2.jpg" alt="図2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図2"> 図2。 FT ex vivoでの文化の明視野顕微鏡。トランスウェルインサートが（）表示されているヒト胎盤コラーゲン0.4μm孔でコーティングされています。 FT上皮細胞は、それらが上皮層（c）を形成するコラーゲンコートしたインサート（b）に、上で培養されています。いくつかの破片は通常、繊毛細胞に最も頻繁に、（矢印で示す）上皮培養細胞への付着が観察される。 <img src="/files/ftp_upload/2728/2728fig3.jpg" alt="図3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="図3"> 図3。 FT ex vivoで培養免疫蛍光（IF）。 生体外での文化のイメージが（a）の分泌（Pax8）と（d）は線毛細胞（Sall2）マーカーに対する抗体を固定し、染色した場合の例。 DAPIは細胞核の位置（青）（BとE）とマージされた抗体とDAPI染色も（CとF）が表示されるためのコントロールとして使用されます。細胞の数は、細胞が培養している時間の長さ（; Sall2染色、3日間Pax8染色、7日間）に依存します。

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</ol>

博士Drapkinは、ノバルティスの医薬品へのコンサルタントです。それ以外の著者は、利害の潜在的な競合を宣言しません。

SOCのための起源の候補地としてのFTの同定は、既知の危険因子をリンクするメカニズムと実際の漿液性発癌過程の解読を目指した基礎およびトランスレーショナルリサーチのための機会を提供しています。このための重要な私たちはFTSECが骨盤漿液性癌のための細胞の起源であるという仮説のテストを開始できるような扱いやすいモデル系の開発です。ここに記載さex vivoでの培養モデルでは、ネイティブのFTの上皮の形態学と生物学を維持する方法で分離し、主要なFTの分泌と繊毛細胞の共培養を可能にする斬新なシステムです。このシステムを使用して、我々は最近、この上皮のsecretomeを特徴とどのように上皮は、機械的および遺伝毒性傷害10に応答します。排卵、卵巣腫瘍形成に関連する主要な危険因子は、組織損傷、炎症性メディエーター、増殖因子、およびホルモン11の組み合わせによって特徴づけられる。このシステムは、分泌および繊毛細胞の応答と生存率に排卵環境の影響を研究するために使用することができる。さらに、他の細胞型（すなわち炎症性細胞）の影響は、そのドライブの細胞型の分化およびこれらの細胞の悪性形質転換に寄与する要因のイベントのより良い理解を可能にするために検討することができます。同様のモデルは極性上皮が存在する他の組織に記載されている。例えば、気道上皮の極性初代培養において、細胞増殖および細胞傷害への応答にヘレグリンの効果は、12を評価した。モデルシステムのこれらのタイプは、上皮組織から生じる腫瘍の開始と病因を研究する新規かつ有用な方法を提供し、これはそのようなない細胞株が現在存在しないFTのような組織で非常に重要である、と偉大ながある場所キー経路の同定と新たな治療戦略の開発のために必要。

<table><tbody><tr><td>ヒト胎盤由来コラーゲン (Bornstein and Traub Type IV)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C7521</td><td></td></tr><tr><td>DMEM:F12培地</td><td>Cellgro</td><td>15-090-CV</td><td></td></tr><tr><td>Ultroser G</td><td>Crescent Chemical Company</td><td>67042</td><td>ストックボトルに20 mlのDMEM:F12を加え、培地500 mlあたり10 mlを使用する（最終濃度2%）</td></tr><tr><td>Pen Strep</td><td>Invitrogen</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>BD Primaria培養プレート</td><td>BD Biosciences</td><td>353802</td><td></td></tr><tr><td>24ウェル Transwell透過性サポート</td><td>Corning</td><td>3470</td><td> クリア、6.5 mmインサート、0.4 &amp;#x03BC;m孔径、処理済みポリエステル </td></tr><tr><td>MEM (Minimal Essential Media)</td><td>Cellgro</td><td>10-010-CV</td><td></td></tr><tr><td>プロナーゼ</td><td>Roche Group</td><td>11459643001</td><td></td></tr><tr><td>DNAse</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>DN25</td><td></td></tr><tr><td>Sall2抗体</td><td>Harvard - T. Benjamin Lab</td><td>Gift</td><td>1:20希釈</td></tr><tr><td>Pax8抗体</td><td>Proteintech</td><td>10336-1-AP</td><td>1: 1000希釈</td></tr></tbody></table>

初代ヒト卵管上皮細胞のex vivoでの文化

Ex Vivo Culture of Primary Human Fallopian Tube Epithelial Cells

上皮性卵巣がんは、米国の女性の癌死亡の主要な原因です。他の女性特有の癌とは対照的に、死亡率は近年減少している乳がんや子宮がん、同じように、卵巣癌の治癒率は、過去二十人以上の比較的変わっていない。これは、手術と化学療法は3、2、最も効果的な早期の疾患を検出するための適切なスクリーニングツールの不足によるところが大きい。その結果、ほとんどの患者は、進行した段階の疾患とびまん性腹部関与を呈する。これは、さらに、卵巣癌は複数の組織学的サブタイプ4、5で異種の病気であるという事実によって複雑になる。漿液性卵巣癌（SOC）は、最も一般的で積極的なサブタイプと最も頻繁にBRCA遺伝子の突然変異に関連付けられているフォームです。この分野における現在の実験モデルは、よりよい開始遺伝的事象と疾患6,7の病因を理解するために癌細胞株とマウスモデルの使用を必要とする。最近、卵管が原点8,9の提案された細胞として卵管（FT）分泌上皮細胞（FTSEC）で、SOCの起源のための新規サイトとして浮上している。ない細胞株またはFTの上皮またはFTSECを研究するために利用可能な培養システムは現在ありません。ここでは、初代ヒトFT上皮細胞は、そのアーキテクチャ、極性、免疫表現型、および生理学的および遺伝毒性ストレス因子への応答を保持する方法で培養されている小説のex vivo培養系を説明します。このex vivoのモデルは、腫瘍がこの組織から発生する可能性、およびメカニズムが腫瘍の開始と進行に関与する方法について理解をできるように、SOCの研究のための有用なツールを提供しています。

卵管（FT）は、漿液性卵巣癌（SOC）の原産地別のサイトとして浮上している。このプロトコルは、分離するための新しい方法を説明し、<em&gt;生体外で</em卵管上皮細胞の&gt;文化。このシステムを反復する<em&gt; in vivoで</em&gt;上皮とSOCの病因の研究が可能になります。

上皮性卵巣がんは、米国における女性のがん死亡原因の主要な要因となっています。乳がんなどの他の女性特有のがんとは異なり、...

卵巣がんは、多様な臨床像、複数の組織学的亜型、および広範な遺伝子異常を伴う極めて致死率の高い疾患です。漿液性卵巣癌は最も一般的で侵襲性の高い亜型であり、近年の研究では、これらの腫瘍の相当数が卵巣ではなく卵管から発生することが示唆されています。本手順の目的は、分泌細胞と繊毛細胞の両方を共培養し、それらの正常な形態、極性、および生理機能を維持できるヒト卵管細胞のex vivo培養系を構築することです。まず、新鮮なヒト卵管組織サンプルを採取し、それらを小さく切断することでこれを達成します。次に、上皮細胞を卵管組織の間質から分離します。その後、卵管上皮細胞を単離し、培養液から他の細胞型を除去します。最終ステップは、コラーゲンコートしたフィルターへの卵管上皮細胞の播種と、共培養による増殖です。最終的に、免疫蛍光顕微鏡法または免疫組織化学によって、培養液中に卵管分泌細胞と繊毛細胞の両方が存在することを示す結果を得ることができます。卵巣がん細胞株の使用などの既存の手法と比較した本技術の主な利点は、正常なヒト卵管上皮の形態学的構造と極性を維持したexvivo共培養において、2種類の卵管上皮細胞を同時に研究できることです。ヒト卵管上皮細胞を培養する前に、上皮細胞培養の基質として機能させるためのコラーゲンコーティング済みトランスウェルフィルターを準備する必要があります。まず、30 milligramsのヒト胎盤コラーゲンを、50 millilitersの蒸留水とマグネチックスターラーを入れたBCOに移します。次に、100 µLの氷酢酸をコラーゲンに直接ピペットで加えます。ビーカーを撹拌機能付きホットプレートに置き、溶液を撹拌しながら37 °Cまで加熱し、20〜30分間加熱・撹拌します。コラーゲンが完全に溶解し、コラーゲンの線維が残っていないことを確認してください。コラーゲンが溶解した後、450 millilitersの蒸留水を加え、組織培養用クリーンベンチ内で0.2 micronメンブレンを用いて滅菌ろ過します。この溶液を50 milliliterチューブに移します。コラーゲンコートしたトランスウェルフィルターメンブレンを準備するため、まずピンセットを用いてフィルターを24ウェルプレートのウェル内に配置し、次に50 to 100 microlitersのコラーゲン溶液をトランスウェルフィルターの上部にピペッティングし、室温で一晩インキュベートします。残ったコラーゲン溶液は4°Cで保存してください。採取した新鮮な卵管采を50 mL遠心チューブに入れた滅菌PBSに入れ、直ちに組織培養フード内の氷上に置きます。冷却したPBS 20 mLをチューブにピペットで加えます。組織を洗浄するため、組織を動かさないように注意してPBSを吸引し、洗浄をさらに2回繰り返します。組織に血液が付着している場合は、滅菌ピンセットを使用して組織を滅菌済みの10 cm組織培養皿に移します。次に、滅菌鉗子で卵管の線維を1本保持し、滅菌刃を装着したメスを用いて、上皮細胞の露出を最大限にするために線維を縦方向に切断します。鉗子を使用して、線維がほぼ平坦なシート状になるまで広げます。その後、シートを直径約3mmの小さな断片に切断します。ピンセットを用いて、組織片を45 mLの冷却した解離培地を含む50 mL遠心チューブに移します。チューブをシェイキングプラットフォームに設置し、4 °Cで24〜72時間、緩やかに揺らして撹拌します。最適な解離状態を確認する手順については、書面によるプロトコルを参照してください。凝集の程度と、拍動する繊毛細胞によって示される組織の生存率を確認します。最適な解離が達成されると、単一細胞といくつかの小さな凝集塊の両方が観察されるはずです。5 mLのFBSを加えてプロナーゼを不活化させます。次に、チューブを2、3回反転させ、細胞の塊をより小さな凝集塊に分散させます。その後、ストローマ組織の大きな塊がチューブの底に沈殿するように、室温で1～2分間静置します。そして、大きな組織片を乱さないように、セロロジカルピペットを用いて上皮細胞を含む培地を吸引し、清潔な50 mLチューブピペットに移します。組織の残渣が入った50 mLチューブに、冷やしたFBS不含MEMを50 mL加えます。チューブを転倒混和して残っている上皮細胞を回収し、その後、大きな凝集塊を沈殿させます。再び、大きな組織塊を乱さないように培地を回収し、新しい50 mLチューブに移します。上皮細胞懸濁液が入った2本の50 mLチューブを、1000 rpmで5分間遠心分離します。遠心分離後、培地を吸引して廃棄します。次に、両方の細胞ペレットを37 °Cに予温したUSG培地5 mLに懸濁し、緩やかにピペッティングします。その後、細胞懸濁液をペトリ皿に移し、37 °C、5% CO2の組織培養インキュベーター内で1〜3時間インキュベートし、上皮細胞懸濁液から線維芽細胞および赤血球を除去します。インキュベーションの間に、コラーゲンコートフィルターを100 µLのPBSで洗浄し、余分なコラーゲンを除去します。メンブレンに触れると、卵管のex vivo培養の品質に影響を及ぼす可能性があるため、絶対に触れないようにしてください。インキュベーション時間が経過した後、細胞懸濁液を15 milliliter遠心チューブに移します。次に、プレートを5 millilitersのUSG培地で洗浄し、この溶液を15 milliliter遠心チューブに加えます。次に、細胞懸濁液を1000 rotations per minuteで5分間遠心分離します。遠心分離後、細胞ペレットを乱さないように培地を吸引除去します。ペレットの大きさに応じて、1〜3 mLのUSG培地でペレットを再懸濁します。ヘモサイトメーターを用いて、10 µLの細胞懸濁液中の上皮細胞数および繊毛細胞数を計数する。上皮細胞は非円柱形で、細胞膜がはっきりと濃く染まって見える。また、生きた繊毛細胞は運動していることが確認できる。細胞計数後、赤血球は計数から除外すること。上皮細胞の濃度が1.65 × 10⁵ cells/100 Lになるように、十分な量の培地を加えて希釈します。細胞を播種するには、まず24ウェルプレートの各ウェルにUSG培地を500 µLずつ分注します。次に、コラーゲンコート済みのトランスウェルフィルターを各ウェルに設置し、コラーゲンENCコート済みのトランスウェルインサートの上に細胞懸濁液を100 µLずつ分注します。細胞を入れたプレートを組織培養インキュベーターに入れ、48時間インキュベートします。この時間が経過した後、インサートの頂端側をUSG培地で注意深く洗浄し、メンブレンの上に50～100 µLの培地をピペットで加えます。次に、フィルターの基底側から培地を吸引します。インサートを挿入し、新鮮なUSG培地と交換します。その後、プレートを組織培養インキュベーターに戻します。培養期間中は2日ごとに基礎培地を交換してください。培養細胞が、特定の用途に求められる目的のコンフルエンスに達したときに（次へ進みます）。ウェルから基礎培地を吸引し、200 µLのPBSで培養物を慎重に洗浄します。この洗浄を2回繰り返します。最後に、ウェル内にPBSを残しておきます。メンブレンを1枚ずつ処理します。まず、単一のウェルからPBSを吸引します。次に、ピンセットを使用してトランスウェルメンブレンインサートを取り出し、インサートを裏返します。次に、滅菌済みのメスを使用して、メンブレンの縁に沿って直線的に切り込みを入れます。その後、ピンセットを用いてメンブレンをインサートから一度に剥がして取り出します。その後、目的のアプリケーションに応じた標準的な手順に従ってフィルターを処理できます。10倍の倍率で撮影したこの明視野像は、コラーゲンでコーティングした後のトランスウェルメンブレンの表面を示しています。こちらの別の10倍倍率の画像では、コラーゲンコーティングされたインサート上で培養され、上皮層を形成している卵管上皮細胞を示しています。矢印は、繊毛細胞に付着している可能性がある細胞残渣の存在を示しています。20倍の倍率で撮影したこの明視野像は、培養における健全な卵管上皮細胞層を示しています。この蛍光顕微鏡画像は、卵管上皮培養細胞の免疫蛍光染色を示しています。分泌細胞のマーカーであるanti PAX eightが赤色で、核マーカーのdpiが青色で示されています。この合成画像では、PAX eightとDPIの両方が重なり合っていることがわかります。この画像は、卵管上皮培養細胞のanti cellを用いた免疫蛍光染色を示すものです。赤色で示されている線毛細胞のマーカーであるTwoと、青色で示されている核マーカーのdpiです。この合成画像では、この開発後、TwoとDPIの両方が重複していることがわかります。この技術により、卵巣癌分野の研究者が、漿液性卵巣癌の新たな発生部位としての卵管の役割を探索する道が開かれました。

ex-vivo-culture-of-primary-human-fallopian-tube-epithelial-cells

Research

JoVE Journal

Biology

生物学

の調査のための人間の卵管モデル<em&gt; C.トラコマチス</em&gt;感染症

我々は、確立するための方法論を記述する...

三次元異<em&gt; in vitroで</em卵巣がんの発生と進行中に間質相互作用の上皮&gt;モデリング

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ヒト卵管上皮をシングルセル解析で効率的に抽出する方法

私たちは、ヒト腎臓全体を処理して一次腎近位尿細管上皮細胞を単離および培養するための最適化されたプロトコルと、これらの細胞を3次元、マイクロ流体、微生理学的プラットフォームで適用して腎近位尿細管を再現するためのプロトコールを提示します。...

初代ヒト近位尿細管上皮細胞の単離と腎近位尿細管の微生理学的モデルの作成におけるそれらの使用

このプロトコルは、 in vitro および in vivoでの高悪性度漿液性卵巣癌(HGSOC)マウスモデルの開発について詳しく説明しています。マウス卵管オルガノイドの誘導から,ヒトHGSOC遺伝学を再現するための遺伝子組み換え,および腫瘍の in vivo...

高悪性度漿液性卵巣癌モデリングのための卵管上皮細胞からのマウス由来オルガノイド株の開発

学ぶヒト卵管上皮細胞のex vivo培養法。分泌細胞と線毛細胞を共培養し、正常な形態と極性を保持したまま漿液性卵巣がんの発生機序を研究する革新的な手法を習得できます。

初代ヒト卵管上皮細胞のex vivoでの文化

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