Name: 인간 Fungiform의 맛 용의자 전지의 분리 및 문화 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-05-17T12:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 46 s
Description: 배우세요 인간의 버섯형 미각 유두 세포를 분리하고 장기 배양하는 방법을. 효소적 소화와 칼슘 이미징을 활용하여 12개월 이상 생존성을 유지하며 미각 생리학 연구에 활용할 수 있습니다.

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우리는 아미 마이어스 및 기술 능력과 도움 ESI의 Quayson 감사드립니다. 이 작품은 NSF 0,216,310 및 Givaudan INC 부여 (NER)에 의해 부분적으로 지원되었다.

1. 인간 Fungiform의 맛 용의자 구하기 <ol><li> 곡선 봄 microscissors를 사용하여 혀의 앞부분은 부분 등 부분의 표면 4-8 인간 fungiform의 맛을 용의자를 제거합니다. </li><li> 즉시 격리 솔루션에 플레이스 (26 MM NaHCO 3, 2.5 MM 아뇨 2 PO 4, 20 MM 포도당, 65 MM NaCl, 20 MM KCl, 1 밀리미터 EDTA (에틸렌 다이아 민 테트라 초산) nuclease없는 물속에 녹아 및 소독 필터링). </li></ol> 2. 인간 Fungiform의 맛 용의자는 소화 인간 fungiform의 맛을 전지 용의자는 약간의 차이로 두 개의 서로 다른 효소 소화 프로토콜을 사용하여 dissociated 수 있습니다. <ol><li> pronase (1 밀리그램 / ML, 시그마 알드리치)과 엘라스타제 (1 밀리그램 / ML 시그마 알드리치) 30-45 분 (프로토콜 1) 상온에서 함께 격리 솔루션에서 품어 fungiform 용의자. </li><li> Collagenase 유형 I (워싱턴에서 550 U / ML,)로 품어 fungiform 용의자 + 엘라스타제 (10 Wort에서 U / ML,대한 hington) 35 2 ML 칼슘 무료 닮은 솔루션의 + 트립신 억제제 (워싱턴에서 0.9 밀리그램 / ML) ° 30 분 95% O 5분의 2 %의 CO 2와 부드러운 산소를위한 순환와 C 물 목욕. (다른 방법 소화, 프로토콜 2) </li><li> 부화 후 닮은 함께 용의자를 씻고 10 회 대한 화재 광택 유리 파스퇴르 피펫으로 용의자를 씹다. </li><li> RT에서 2,500 rpm으로 3 분만을 원심 분리기 및 절연 솔루션을 제거하고 미각 세포 배양 매체의 1 ML을 추가합니다. </li><li> 유리 그릇에 소화 fungiform 용의자를 전송합니다. </li><li> 수술 면도기로 부드럽게 fungiform 용의자를 해부. </li><li> 쥐의 꼬리 콜라겐 타입-1 코팅 coverslip 향해 복제 실린더로 해부하는 용의자를 250 μl를 추가합니다. </li><li> 각 잘으로 미각 세포 배양 매체의 1 ML을 추가합니다. </li></ol> 3. 인간 Fungiform의 맛 용의자 전지의 Culturing <ol><li> humidified에서 36 ° C에서 접시를 품어배양기 5 %에게 CO 2를 포함하는. </li><li> 전체 매체의 첫 번째 변경 이전 2 일 흐트러지지 인큐베이터에 넣으십시오. 그 1 ~ 3 일 안에 분명하게 보이지 않을 수도 있지만 맛이 전지는 결국 코팅된 coverslip에 바인딩됩니다. </li><li> 완전히 플레이트와 매체에서 복제 실린더를 제거하고 각 잘으로 미각 세포 매체의 1 ML을 추가합니다. </li><li> 모든 매체 6-7일 1 / 3을 교체하십시오. 더 자주 그리고 / 또는 완전히 매체를 변경하지 마십시오. </li><li> 매일 현미경으로 세포의 성장을 확인합니다. 새로운 세포의 대부분은 세포 클러스터 아래 성장. 세포 클러스터는 일반적으로 문화 2-3주은 새로 생성된 세포를 떠난 후 분리. </li><li> 일단 복제 실린더의 40~50%는 미각 세포를 팽창으로 덮여 있습니다, 36시 2~3분 위해 W / V 트립신 / EDTA (에틸렌 다이아 민 테트라 초산) 0.25 %을 사용하여 세포를 trypsinize ° C. </li><li> 15 ML 튜브로 우물에서 세포를 전송, 룸 기질에서 5 분 동안 3,000 rpm으로 원심 분리에 의해 다음 미각 세포 배양 매체 3 권 추가ature. </li><li> 미각 세포 매체의 1 ML로 뜨는 및 resuspend 세포를 제거합니다. </li></ol> 4. 인간 Fungiform의 맛 용의자 전지의 전파 <ol><li> T25 접시에 세포를 전송하고 미각 세포 매체 (통로 0) 4 ML에 추가합니다. 36 humidified 인큐베이터에서 ° C는 CO 2 5 %를 포함한에서 세포를 유지합니다. </li><li> 교양 미각 세포가 100 % 합류점에 도달하기 전까지 모든 매체 6-7일 1 / 3을 교체하십시오. 이때 수확 미각 세포를 활성화하려면, 멸균 PBS로 한 번 세포를 씻어가 36에서 2-3분 동안 0.25 % W / V 트립신 / EDTA (에틸렌 다이아 민 테트라 초산)를 사용하여 세포 ° C를 trypsinize </li><li> 위에서 설명한 원심 분리 후, 신선한 T-75 flasks (통로 1) 완전 맛 셀 매체 및 전송 세포에 resuspend. </li><li> 모든 매체 6-7일 1 / 3을 교체하십시오. 더 자주 그리고 / 또는 완전히 매체를 변경하지 마십시오. </li><li> 세포가 주변에 100 % 합류점에 도달했을 때 4.3 및 4.4 단계를 반복합니다. T75 플라스크에 1시 4분 희석보다 더 이상으로 세포를 분할시간에 따른 세포의 적절한 성장을 유지하는. </li></ol> 5. 교양 인간 Fungiform의 맛 용의자 세포를 동결 융해 <ol><li> 기본 미각 세포의 주식을 동결시키고 trypsinization 후 (단계 4.2), 3 ML 완전한 미각 세포 매체와 무균 15 ML 원추형 원심 튜브에 전송 세포를 추가합니다. 상온에서 5 분 동안 2,500 rpm으로 원심 분리기. </li><li> 조심스럽게 95% 태아 소 혈청 (FBS)와 5 % DMSO를 포함하는 동결 매체의 적절한 볼륨으로 뜨는 부드럽게 resuspend 세포를 제거합니다. </li><li> 라벨, 멸균 cryovials, 단단히 모자 및 이소프로판올를 포함하는 냉동 컨테이너의 장소로 세포를 전송합니다. 이전 액체 질소로 무한정 전송에 하나 이상의 일간 -80 ° C ~ 냉동기에 장소. </li><li> 37 일차 냉동 인간 fungiform의 맛을 용의자 세포, 장소의 병을 녹여하려면 ° C 물에 목욕까지 판상 흐름 세포 배양에서 작업하는 동안 단지 (약 1 분) 해동후드. </li><li> 멸균 15 ML 원추형 원심 튜브에 세포 동결 매체를 전송하고 미각 세포 배양 매체의 5 ML에 추가합니다. </li><li> 상온에서 5 분 동안 2,500 rpm으로 세포를 원심 분리기. 조심스럽게 완전한 미각 세포 배양 매체 및 멸균 T-25 조직 배양 플라스크에 전송로 뜨는, 부드럽게 resuspend 세포를 버리고. </li><li> 4 3 단계에 따라 배양 세포로 진행합니다. </li></ol> 6. 대표 결과 문화에 맛을 biopsies 성장하려고 시도 시간의 90 % 성공했다. 생검 및 분리 후 며칠이 세포는 일반적으로 분리 과정 후 남아 해부 fungiform 조직의 조각에서 바깥쪽으로 성장하고 마이 그 레이션하기 시작했다. 개별 세포 도금 (그림 1A) 이후 24-48 시간 볼 수 있었다지만, 세포가 가끔 딸 세포 (그림 1B) 생성, 최대 첨부된 세포 클러스터 미만 2~3주에 대해되었다. 생검에서문화 상품 4 주 동안 8,000 세포 - ING 4-8 인간 fungiform 용의자는 기본 인간 fungiform의 맛을 용의자 전지의 초기 분리는 약 2000에 도달합니다. 추가 3-4주위한 T25 세포 배양 flasks (통로 0)의 확장 (그림 1C) 적응 문화에 인간 fungiform의 맛을 용의자 세포가 발생하게됩니다. 기본 인간 fungiform의 맛을 용의자 전지는 더욱 3-4주 (그림 1D)의 통로-1에 의해 적어도 백만 세포의 이상을 양보하는 문화에 확장 할 수 있습니다. 기본 미각 세포가 이상 8 구절에 대해 계속 증가할 것이다. 문화 교양 인간 fungiform의 맛을 용의자 세포의 형태 교양 chemosensory 세포 비슷했다 이전에 11,12 설명했다 .. 대부분의 교양 인간 fungiform의 맛을 용의자 전지는 최대 15~30일까지 함께 또는 하나 이상의 프로세스없이 세포 기관의 원래 컴팩트한 외관을 유지했습니다. 그들이 합류에게 교양 CE의 대부분을 도달 후재편은 편광-길쭉한 모양을했다. 중년 여인 미각 세포는 여러 가지 histological subtypes 및 전시 미각 세포 특징 구성되어 있습니다. 여기에서 우리는 이러한 문화권 내에서 세포가 성숙 미각 세포의 특성 많은 분자 및 생리 기능을 표시하는 것으로 나타났습니다. Gustducin 및 포스 포 라이 페이스 C - β2, (PLC-β2) mRNA는 반전 transcriptase - 중합 효소 사슬 반응 및 시퀀싱 (그림 2)에 의해 확인된 제품에 의해 감지되었다. gustducin 및 PLC-β2 표현은 immunocytochemically 타입 II와 같은 세포 (B와 D는 각각 그림 3)의 존재를 나타내는 감지되었습니다. 유행과 gustducin 및 PLC-β2 세포 신호 전달 경로와 세포 유형을 반영한 것이 정확하게 생체내을 볼 것을 반영하지 않는의 상대적인 표현 패턴. 미뢰 내에서 다른 세포 유형의 상대적 분포를 지배하는 요인 알 수 있으며, 문화 조건에 복제되지 않을 수 있습니다. 따라서, B<html> 교양 세포들의 생체내의 대응에서이 조작해서 모니터링할 수 있습니다 조건 하에서, 분자 수준에서 이러한 특성의 규정을 검토하는 기회를 제공 사이의 유사점과 차이점을 oth. 모델 시스템에 대한 중요한 기준은 관련 기능적 속성의 존재이다. 교양 세포들은 또한 여러 미각 자극 (그림 4)의 적절한 농도에 대한 응답으로 세포 내 칼슘의 강력한 증가를 전시. 이러한 연구에서는 다정하고 쓰라린 자극은 탈분극에 해당 있습니다 세포내 칼슘의 증가를 유도. 이러한 미각 세포와 같은 교양 세포의 특성은 우리가 여기서 설명하는 모델 시스템이 도입 경로와 인간의 미각 세포의 재생 능력을 더욱 연구를위한 귀중한 자산이 될 것이라는 주장에 지원을 빌려 주다. fig1.jpg &quot;/&gt; 그림 1. 첨부 파일과 교양 인간 fungiform의 맛을 용의자 세포의 형태. 콜라겐 타입-1 코팅 접시에 성장 기본 인간 fungiform의 맛을 용의자 세포 배양은 2 일 () 이후에 몇 군데 있었다. 인간 fungiform의 맛을 용의자 전지는 최대 딸 세포를 야기할 것 같았다 첨부된 세포 클러스터, 아래 4 주 동안 성장했다. 세포는 일반적으로 4 주 (B) 내에서 합류로 증가, 그리고 (C와 D) 수확 각각 reseeding 후 2 일 그리고 4 주를 나타냅니다. 교양 세포는 최소한 8 개월 동안 성장을 계속했다. 스케일 바 = 50 nm의. 그림 1의 일부도 Ozdener 동부 표준시로 표시되었다. 알. 10. <img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/3730/3730fig2.jpg" /> 그림 2. RT-PCR 결과는 특정 미각 세포 biomarker의 mRNAs (gustducin 및 PLC-β2)의 존재를 보여주었다. 교양 인간 fungiform 세포로부터 총 RNA는 역방향 transc였다RT-PCR (Invitrogen)에 윗첨자 첫 스트랜드 합성 시스템을 이용한 ribed하고 gustducin 및 PLC-β2의 검출을위한 구체적인 primers로 증폭하여 PCR에 사용. Primers (표 1) 하나 이상의 introns에 걸쳐하기로했다. 각각의 mRNA는 통로 4 또는 시퀀싱에 의해 확인 예상 크기의 증폭 제품과 5에서 교양 인간 fungiform의 맛을 용의자 세포에서 발견되었다. 특정 mRNA는 더 게놈 DNA의 오염을 나타내는없는 역방향 transcriptase없이 제어 실험에서 검출되지 않았습니다. PCR 제품은 2% 아가로 오스 젤에 별거 중이 젤의 증폭 제품은 면도칼로 excised되었다. DNA가 QIAquick 젤 추출 키트 (Qiagen)을 사용하여 겔에서 추출되었다. PCR 제품은 펜실베니아 장면 시설의 대학에서 순서가되었다. C-PCR 및 C-RT는 각각 PCR 및 역방향 Transcriptase를위한 제어 실험입니다. 그림 2의 일부도 Ozdener 동부 표준시로 표시되었다. 알. <sup&gt; 10. <img alt="그림 3" src="/files/ftp_upload/3730/3730fig3.jpg" /> 그림 3. 교양 인간 fungiform의 맛을 용의자 세포 통로 4 또는 5의 Immunostaining은 미각 세포 생체 존재를 보여주었다. 교양 인간 fungiform의 맛을 용의자 전지 (5 일 이전) 4 ° C.에서 하룻밤 (표 2) 4 % paraformaldehyde로 고정하고, 일차 항체와 incubated되었습니다 이미지 Leica TCS-SP2 공촛점 레이저 스캐닝 현미경과 함께 인수했다. 약, 교양 fungiform의 맛을 용의자 세포의 60 %가 gustducin (B) 및 PLC-β2 (D)와 20~30%으로 표시되었습니다. 해당 셀의 전송 이미지는 (A와 C) 표시됩니다. 컨트롤이 들어, 특정 면역 글로불린 항체와 immunostaining 것은 특이 현상 immuno의 반응성 (데이터가 표시되지 않음)의 부재를 보여주었다. 스케일 바 = 50 nm의. 부분그림 3은 역시 Ozdener 동부 표준시로 표시되었다. 알. 10. <img alt="그림 4" src="/files/ftp_upload/3730/3730fig4.jpg" /> 통로 4 또는 5에서 그림 4. 교양 인간 fungiform의 맛을 용의자 세포는 다른 자극에 반응한다. 교양 인간 fungiform의 맛을 용의자 전지 (4-​​5일 이전) 1mM Fura-2 AM (분자 프로브) 및 10 밀리그램 / ML Pluronic F127 (분자 프로브)로로드했습니다. 교양 인간 fungiform의 맛을 용의자 세포에서 세포 내 칼슘 수준 ([칼슘 2 +] I)의 변경은 표준 수동 이미징 기술을 이용하여 측정되었다. 전지는 340 나노미터와 380 나노미터의 여기 파장의 간접 형광 현미경과 510 nm의 중심 밴드 패스 필터가 정한 방출 파장을 사용하여 시각 있었다. 필요하면 자극이 목욕 용액에 용해 후 산도와 osmolarity 재조정되었다. 교양 인간 fungiform의 맛을 용의자 전지는 달콤한 쓴맛 자극에 응답했습니다. Graphs은 [카 2]의 대표적인 반응을 보여주는에 노출 (A) Denatonium (2 ㎜), (B) Sucralose (1 ㎜) 중 개별 셀의 I 수준. 각 성분은 하나의 개별 셀을 나타냅니다. <table border="1"><tbody><tr><td> 유전자 </td><td> 순서 </td><td colspan="2"> PCR 조건 </td><td> 예상 크기 (BP) </td><td> 참고 </td></tr><tr><td> β-Actin </td><td> GGACTTCGAGCAAGAGATGG AGCACTGTGTTGGCGTACAG </td><td> 7 분 45 초 45 초 45 초 7 분 </td><td> 95 94 53 72 72 </td><td> 234 </td><td> NM_001101.3 </td></tr><tr><td> Gustducin </td><td> TCTGGGTATGTGCCAAATGA GGCCCAGTGTATTCTGGAAA </td><td> 7 분 45 초 45 초 45 초 7 분 </td><td> 95 94 53 72 72 </td><td> 386 </td><td> NM_001102386 </td></tr><tr><td> PLC-β2 </td><td> GTCACCTGAAGGCATGGTCT TTAAAGGCGCTTTCTGCAAT </td><td> 3 분 30 초 30 초 60 초 7 분 </td><td> 95 94 53 72 72 </td><td> 333 </td><td> NM_004573 </td></tr></tbody></table> 표 1. 맛이 특정 분자를 검출에 사용 Primers 및 조건. <table border="1"><tbody><tr><td> 일차 항체 </td><td> 출처 </td><td> 숙주 </td><td> 묽게 함 </td><td> 이차 항체 </td><td> 출처 </td><td> 숙주 </tD&gt; <td> 묽게 함 </td></tr><tr><td> Gustducin </td><td> SantaCruz </td><td> 토끼 </td><td> 1:500 </td><td> 안티 - 토끼 IgG 알렉사 633 </td><td> 분자 프로브 </td><td> 염소 </td><td> 1:500 </td></tr><tr><td> PLC-β 2 </td><td> SantaCruz </td><td> 토끼 </td><td> 1:500 </td><td> 안티 - 토끼 IgG 알렉사 633 </td><td> 분자 프로브 </td><td> 염소 </td><td> 1:500 </td></tr></tbody></table> 표 2. 항체가 특정 분자의 표현을 감지를 위해 사용됩니다.

<ol><li>Mbiene, J. P., Maccallum, D. K., Mistretta, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organ+cultures+of+embryonic+rat+tongue+support+tongue+and+gustatory+papilla+morphogenesis+in+vitro+without+intact+sensory+ganglia%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Comp.+Neurol%22%5BJournal%5D)">Organ cultures of embryonic rat tongue support tongue and gustatory papilla morphogenesis in vitro without intact sensory ganglia.</a> J. Comp. Neurol. 377, 324-340 (1997).</li>
<li>Miyamoto, T., Fujiyama, R., Okada, Y., Sato, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Strain+difference+in+amiloride-sensitivity+of+salt-induced+responses+in+mouse+non-dissociated+taste+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Neurosci.+Lett%22%5BJournal%5D)">Strain difference in amiloride-sensitivity of salt-induced responses in mouse non-dissociated taste cells.</a> Neurosci. Lett. 277, 13-16 (1999).</li>
<li>Caicedo, A., Jafri, M. S., Roper, S. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+situ+Ca2%2B+imaging+reveals+neurotransmitter+receptors+for+glutamate+in+taste+receptor+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">In situ Ca2+ imaging reveals neurotransmitter receptors for glutamate in taste receptor cells.</a> J. Neurosci. 20, 7978-7985 (2000).</li>
<li>Qin, Y. M., Shi, J. Q., Zhang, G. H., Deng, S. P., Wang, T. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+reliable+method+to+obtain+cells+of+taste+buds+from+fungiform+papillae+of+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Histochem%22%5BJournal%5D)">A reliable method to obtain cells of taste buds from fungiform papillae of mice.</a> Acta Histochem. 112, 107-112 (2010).</li>
<li>Spielman, A. I., Mody, I., Brand, J. G., Whitney, G., MacDonald, J. F., Salter, M. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+method+for+isolating+and+patch-clamping+single+mammalian+taste+receptor+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res%22%5BJournal%5D)">A method for isolating and patch-clamping single mammalian taste receptor cells.</a> Brain Res. 503, 326-329 (1989).</li>
<li>Kishi, M., Emori, Y., Tsukamoto, Y., Abe, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Primary+culture+of+rat+taste+bud+cells+that+retain+molecular+markers+for+taste+buds+and+permit+functional+expression+of+foreign+genes%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Primary culture of rat taste bud cells that retain molecular markers for taste buds and permit functional expression of foreign genes.</a> Neuroscience. 106, 217-225 (2001).</li>
<li>Ruiz, C. J., Stone, L. M., McPheeters, M., Ogura, T., Bottger, B., Lasher, R. S., Finger, T. E., Kinnamon, S. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Maintenance+of+rat+taste+buds+in+primary+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Chem.+Senses%22%5BJournal%5D)">Maintenance of rat taste buds in primary culture.</a> Chem. Senses. 26, 861-873 (2001).</li>
<li>Stone, L. M., Tan, S. S., Tam, P. P., Finger, T. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+cell+lineage+relationships+in+taste+buds%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Analysis of cell lineage relationships in taste buds.</a> J. Neurosci. 22, 4522-4529 (2002).</li>
<li>Ozdener, H., Yee, K. K., Cao, J., Brand, J. G., Teeter, J. H., Rawson, N. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+and+long-term+maintenance+of+rat+taste+cells+in+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Chem.+Senses%22%5BJournal%5D)">Characterization and long-term maintenance of rat taste cells in culture.</a> Chem. Senses. 31, 279-290 (2006).</li>
<li>Ozdener, M. H., Brand, J. G., Spielman, A. I., Lischka, F. W., Teeter, J. H., Breslin, P. A., Rawson, N. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+Human+Fungiform+Papillae+Cells+in+Culture%5BTitle%5D)+AND+%22Chem.+Senses%22%5BJournal%5D)">Characterization of Human Fungiform Papillae Cells in Culture.</a> Chem. Senses. 36, 601-612 (2011).</li>
<li>Gomez, G., Rawson, N. E., Hahn, C. G., Michaels, R., Restrepo, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characteristics+of+odorant+elicited+calcium+changes+in+cultured+human+olfactory+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci.+Res%22%5BJournal%5D)">Characteristics of odorant elicited calcium changes in cultured human olfactory neurons.</a> J. Neurosci. Res. 62, 737-749 (2000).</li>
<li>Wolozin, B., Sunderland, T., Zheng, B. B., Resau, J., Dufy, B., Barker, J., Swerdlow, R., Coon, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Continuous+culture+of+neuronal+cells+from+adult+human+olfactory+epithelium%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Mol.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Continuous culture of neuronal cells from adult human olfactory epithelium.</a> J. Mol. Neurosci. 3, 137-146 (1992).</li>
<li>Wick, N., Saharinen, P., Saharinen, J., Gurnhofer, E., Steiner, C. W., Raab, I., Stokic, D., Giovanoli, P., Buchsbaum, S., Burchard, A., Thurner, S., Alitalo, K., Kerjaschki, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transcriptomal+comparison+of+human+dermal+lymphatic+endothelial+cells+ex+vivo+and+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol.+Genomics%22%5BJournal%5D)">Transcriptomal comparison of human dermal lymphatic endothelial cells ex vivo and in vitro.</a> Physiol. Genomics. 17, 179-192 (2007).</li>
<li>Fu, L., Zhu, L., Huang, Y., Lee, T. D., Forman, S. J., Shih, C. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Derivation+of+neural+stem+cells+from+mesenchymal+stemcells%3A+evidence+for+a+bipotential+stem+cell+population%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells+Dev%22%5BJournal%5D)">Derivation of neural stem cells from mesenchymal stemcells: evidence for a bipotential stem cell population.</a> Stem Cells Dev. 17, 1109-1121 (2008).</li>
<li>Sandow, S. L., Grayson, T. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Limits+of+isolation+and+culture%3A+intact+vascular+endothelium+and+BKCa%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Heart+Circ.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Limits of isolation and culture: intact vascular endothelium and BKCa.</a> Am. J. Physiol. Heart Circ. Physiol. 297, H1-H7 (2009).</li>
</ol>

관심의 어떠한 충돌 선언 없습니다.

우리는 12 개월 기간을 걸치는, 8 이상의 구절에 대한 인간의 fungiform의 맛을 용의자로부터 얻은 세포를 유지했습니다. 이러한 문화들은 미각 수용체 세포의 핵심 분자 및 생리 학적 특성 이외에, 성숙한 미뢰 세포 유형의 여러 마커를 표현할 수있는 무대 체외에서 성숙 많은 중 새로운 세포를 생성합니다. 의 존재 gustducin 및 PLC-β2 교양 세포의 하위 집합에 immunoreactivity이 결론과 일치합니다. 가장 중요한 것은, 일부 세포는 dissociated 미각 세포 5, 미뢰 조각 3과 교양 인간과 쥐의 미각 세포 19,10에있는 세포의 기능으로하는 세포 내 칼슘의 일시적 증가와 함께 달콤한 쓴맛의 자극의 응용 프로그램에 응답했습니다. 이것은 문화의 세포 중 일부가 다정하고 쓴웃음을위한 분자 수용체를 표현한다는 의미뿐만 아니라,하지만 그들은 calci를 생성하는 데 충분한 G-단백질 결합 형질 도입의 계단식의를 가지고있다답변 음...

<table border="1"><tbody><tr><td> 시약의 이름 </td><td> 회사 </td></tr><tr><td> MCDB 123 </td><td> 시그마 - 올드 리치 </td></tr><tr><td> Iscove의 DMEM 매체 </td><td> MediaTech </td></tr><tr><td> 엘라스타제 </td><td> 시그마 - 올드 리치 </td></tr><tr><td> Pronase 전자 </td><td> 시그마 - 올드 리치 </td></tr><tr><td> 엘라스타제 </td><td> 워딩턴 </td></tr><tr><td> 콩 콩 트립신 억제제 </td><td> 워딩턴 </td></tr><tr><td> Collagenase의 제 1 형 </td><td> 워딩턴 </td></tr><tr><td> 쥐의 꼬리 콜라겐 제 1 형 </td><td> BD 과학 </td></tr><tr><td> Fura - 오전 2시 </td><td> 분자 프로브 </td></tr><tr><td> RT-PCR을위한 윗첨자 최초 스트랜드 합성 시스템 </td><td> Invitrogen </td></tr><tr><td> Leica TCS SP2의 스펙트럼 공촛점 현미경 </td><td> Leica 마이크로 시스템즈 주식 회사 </TD&gt; </tr><tr><td> 디스커버리-1 영상 역과 Metamorph 소프트웨어 </td><td> 분자 장치 </td></tr><tr><td> 작은 미세 팁 포셉 및 엑스트라 봄날의 가위 </td><td> 파인 과학 도구 </td></tr></tbody></table>

인간 fungiform의 맛 용의자 전지의 분리 및 문화

Isolation and Culture of Human Fungiform Taste Papillae Cells

미각 세포는 음식에 포함된 간단한 자극하고 복잡한 화학 분자의 광범위한 감지를 허용 독특한 histological, 분자 및 생리 특성으로 고도의 전문입니다. 인간, 개별 fungiform의 용의자에서 제로로부터 많은 20 등 입맛에 포함되어 있습니다. 여러 세포주기위한 문화의 맛을 용의자 세포를 유지하는 능력이 독특한 감각 세포, 분자 재생 및 기능적 특성을 특성화를 위해 상당한 유틸리티 될 비록 culturing 인간의 미각 세포에 대한 설립 프로토콜은 없습니다. 미각 세포의 이전 연구는 일차 문화, 설치류에서 explant 문화, 또는 조직 조각 1,2,3,4의 세미 그대로 입맛에 갓 고립된 세포를 사용하여 수행되었습니다. 이러한 준비는 각각 장점이 있지만, 장기적인 문화의 발전은 특히 미각 세포 증식과 diffe의 연구를 위해 상당한 이점을 제공했을rentiation. 우리를 포함하여 몇몇 그룹은, 미각 세포 배양 모델의 개발 및 구축에 관심이 있었다. 문화 미각 세포에 대한 대부분의 시도는 3-5 D 5,6,7,8 이후 일반적으로 지속하지 세포와 제한된 생존을보고했습니다. 우리는 최근 쥐 미각 세포 9 확장된 문화를위한 성공적인 방법에보고했다. 우리는 여기서 처음 격리된 인간 fungiform의 맛을 용의자 세포에 대한 체외 배양 시스템의 설립에 대해보고합니다. 생검에 의해 얻은 인간 fungiform 용의자의 세포가 성공적으로 생존 능력의 손실없이 더보다 여덟 구절 (12 개월) 동안 문화를 유지했다. 세포는 성숙한 미각 세포의 특징 많은 분자 및 생리 기능을 표시합니다. Gustducin 및 포스 포 라이 페이스 C β2 (PLC-β2) mRNA는 반전 transcriptase - 중합 효소 사슬 반응에 의해 여러 세포에서 감지하고 시퀀싱에 의해 확인되었다. Immunocytochemistry 분석 돌풍의 존재를 증명교양 미각 세포의 ducin 및 PLC-β2 표현. 교양 인간 fungiform 세포는 또한 미각 수용체와 신호 전달 경로 중 적어도 일부는 현재의 것을 나타내는 여러 미각 자극의 적절한 농도에 대한 응답으로 세포 내 칼슘의 증가를 전시. 이러한 결과는 충분히 성인 인간의 미각 세포가 생성하고 적어도 8 구절 지속 돼 있음을 나타냅니다. 세포의 많은 모델 맛을 시스템으로의 사용을 지원하는 성인 취향의 상피에서 심하게 격리 세포의 생리 및 생화 학적 특성을 유지합니다. 이 시스템은 체외 준비에의 포유류의 미각 수용체 세포의 증식, 분화 및 기능에 관련된 프로세스의 추가 연구를 가능하게합니다. 인간 fungiform 셀 문화 확립을 위해 사용되는 휴먼 fungiform의 맛을 용의자가 검토되었다 연구 프로토콜 아래에서 적절한 정보를 동의에 따라 연구를 위해 기증했다그리고 IRB위원회에 의해 승인했다. 프로토콜 (# 0934)는 Schulman 어소 기관 검토위원회 주식, 신시내티, OH에 의해 승인되었습니다. 아래 글 프로토콜은 Ozdener 외 의해 보고된 출판 매개 변수를 기반으로합니다. 2011 10.

우리는 인간의 fungiform의 맛을 용의자 전지의 장기 문화를 분리하고 관리하기위한 재현성 프로토콜을 개발하기위한. 생검에 의해 얻은 인간 fungiform 용의자의 세포가 성공적으로 생존 능력의 손실없이 더보다 여덟 구절 (12 개월) 동안 문화를 유지했다.

인간 Fungiform의 맛 용의자 전지의 분리 및 문화

미세포는 매우 전문화되어 있으며, 광범위한 단순 물질의 검출을 가능하게 하는 독특한 조직학적, 분자적 및 생리학적 특성을 가지고 있습니다.

본 절차의 목적은 인간의 진균형 미뢰 세포 배양의 성공적인 확립을 입증하는 것입니다. 이는 먼저 자원봉사자로부터 진균형 미뢰를 채취하고 효소 칵테일을 사용하여 이들을 분리함으로써 달성됩니다. 두 번째 단계는 인간의 진균형 미뢰에서 세포를 세포 배양 접시로 옮기는 것입니다.다음으로, 세포를 배양하고 배지를 교체하여 인간 진균 세포의 배양 상태를 유지합니다. 세포당 미각을 형성합니다. 최종적으로, calcium imaging, confocal microscopy 및 light microscopy를 사용하여 미각, 세포 마커 및 생리적 반응의 존재를 입증합니다.이 기술의 주요 장점은 실험을 수행할 때마다 매번 신선하게 채취한 조직 대신 세포주를 사용할 수 있다는 점입니다. 이 방법은 인간의 미각 기전을 파악하는 데 도움을 줄 수 있을 뿐만 아니라, 다른 종이나 재생 연구와 같은 다른 시스템에도 적용될 수 있습니다.이 방법은 미세포가 어떻게 재생되는지, 그리고 미각 세포의 증식과 성숙 과정에서 어떤 요인들이 유전자 발현을 조절하는지와 같은 미각 분야의 핵심 질문들에 답하는 데 도움이 될 수 있습니다. 이 절차를 시작하려면, 곡선형 미세 가위를 사용하여 혀 앞부분의 등쪽 표면에서 인간의 fungal form taste papillae를 제거하여 채취하십시오. 이 프로토콜의 상세 내용은 이전 JoVE 논문에 게재되었습니다.그런 다음 샘플을 즉시 분리 용액에 넣어 균류 유두(pap pill)를 소화시킵니다. 35 °C의 순환식 항온수조에서 collagenase type one, elastase 및 soybean tripsin inhibitor가 포함된 분리 용액을 사용하여 95% oxygen, 5% carbon dioxide로 완만하게 산소 공급을 하며 30분 동안 분리합니다. 배양 후, 유두를 ringer solution으로 세척합니다.화염 연마된 유리 파스퇴르 피펫으로 10회 흡입한 후, 상온에서 2,500 RPM으로 3분간 원심분리합니다. 그 다음, 분리 용액을 제거합니다. 피펫에 미뢰 세포 배양 배지 1 mL를 첨가합니다.그 다음 소화된 곰팡이 유두(fungi formm papillae)를 유리 접시로 옮깁니다. 이제 수술용 면도날을 사용하여 곰팡이 유두를 조심스럽게 절개합니다. 절개된 유두 250 µL를 쥐 꼬리 콜라겐이 코팅된 커버슬립 위에 첨가합니다.클로닝 실린더에 1개를 넣습니다. 그 후, 웰에 미각 세포 배

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Research

연구

JoVE Journal

Neuroscience

신경과학

gustatory 전달을 기본 분자 메커니즘의 지식은 최근에 크게 인해 동물 모델을 사용하는, 상당한 발전을 즐기고있다. 그러나, 인간의 조직에있는 포유류 영장 연구 중에서 맛이 감도 및 특이성의 넓은 다양성. 우리는 인간의 혀 용의자의 생활 미각 세포를 수집하는 생검 방법을 설명합니다.

인간 혀에서 Fungiform (맛) 용의자를 수집하는 기술

이 비디오에서는 쥐의 혀에서 상피 세포를 분리하는 방법에 대해 설명합니다. 이러한 세포는 세포 콜로니를 발생시키기 위해 추가로 배양될 수 있습니다.

쥐 혀 상피 세포의 분리 및 배양: 마우스 모델에서 혀 상피 세포를 분리하고 배양하는 절차

이 비디오에서는 쥐 혀에서 CVP(circumvallate papillae) 상피를 분리하는 방법을 설명합니다.

마우스 모델에서 CVP(Circumvallate Papillae) 상피의 분리: 마우스 혀에서 CVP 상피를 분리하는 효소 절차

여기에서 우리는 디지털 사진에서 fungiform 유두 밀도를 측정하기위한 프로토콜을 제시한다. 이 방법은 밀러 &amp; 리디 (1990)에 의해 fungiform 용의자의 원래 설명 작업에 우선 순위 및 목표 특성 통계를 작성합니다.

Fungiform 용의자 객관적인 분석을위한 덴버 유두 프로토콜

이 프로토콜 인간 맛 응답을 측정 하 고 간단한 해 부 평가, 짧은 맛 테스트 및 유효성 검사 방법의 보고 된 감각과 맛 수용 체 유전자를 사용 하 여 포함.

맛 시험: 짧고 검증 테스트

이 원고는 인간의 피부에서 유 두와 망상 섬유 아 세포를 분리 하기 위한 FACS 기반 프로토콜을 설명 합니다. 이는 시험관 문화를 우회 하 고,이는 일반적으로 사용 되는 격리 프로토콜을 통해 명시적으로 불가피 한 것 이었습니다. 발산 된 섬유 아 세포 서브 세트는 기능적으로 구별 되 고 진 피 내에서 차별적 유전자 발현 및 국 소화를 표시 한다.

형광 활성 세포 선별에의 한 인간의 피부에서 유 두 및 망상 섬유 아 세포의 분리

이 논문은 전체 및 그대로 미각 (내면의 신경 섬유 포함)을 일관되게 산출하고 미각과 주변 유두 내의 구조 사이의 관계를 유지하는 전체 곰팡이, 둘레 및 미각 미각의 조직 준비, 염색 및 분석을위한 방법을 설명합니다.

곰팡이, 둘레 및 미각 미각의 전체 마운트 염색, 시각화 및 분석

이 프로토콜은 성인 마우스의 후미 유두로부터 분리된 맛 줄기 세포로부터 추출한 언어 오르가노이드를 배양하고 가공하는 방법을 제시한다.

성인 마우스 맛 줄기 세포에서 파생 된 언어 오르가노이드의 생성 및 배양

본 프로토콜은 성인용 마우스 입맛에서 파생된 구강 각질 세포의 격리 및 배양을 설명합니다. 면역스테인링을 이용한 평가 방법도 보고된다.

성인 마우스 입천장에서 1 차 구강 각막 세포의 격리 및 문화

여기서 우리는 전통적인 방법에 록 억제제 Y-27632를 추가하여 인간 칭기발 상피 세포의 격리 및 배양에 대한 변형된 방법을 제시한다. 이 방법은 더 쉽고 시간이 많이 걸리며 줄기 세포 특성을 향상시키며 실험실과 임상 응용 분야에서 더 많은 수의 고잠재 상피 세포를 생성합니다.

Y-27632를 사용하여 1차 인간 칭기발 상피 세포의 격리 및 배양

배우세요 인간의 버섯형 미각 유두 세포를 분리하고 장기 배양하는 방법을. 효소적 소화와 칼슘 이미징을 활용하여 12개월 이상 생존성을 유지하며 미각 생리학 연구에 활용할 수 있습니다.

인간 Fungiform의 맛 용의자 전지의 분리 및 문화

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